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H2O2對(duì)體外培養(yǎng)視網(wǎng)膜色素上皮細(xì)胞中BMP-6及其相關(guān)受體的影響△

2020-04-22 03:13劉明楊曉崗馬波陳麗
眼科新進(jìn)展 2020年3期
關(guān)鍵詞:鐵調(diào)素孵育氧化應(yīng)激

劉明 楊曉崗 馬波 陳麗

年齡相關(guān)性黃斑變性(age-related macular degeneration,AMD)是50歲以上人群視力喪失的重要原因,已成為全球失明的主要原因之一,因此,AMD的防治具有舉足輕重的意義[1]。目前認(rèn)為,AMD的發(fā)病機(jī)制是由于氧化應(yīng)激、細(xì)胞老化、炎癥等因素綜合作用所致的,而氧化應(yīng)激可能是各種因素的共同作用機(jī)制[2]。視網(wǎng)膜色素上皮(retinal pigment epithelium,RPE)細(xì)胞是位于視網(wǎng)膜最外層的單細(xì)胞層,在AMD的發(fā)病機(jī)制中起著重要作用,是其發(fā)病的中心環(huán)節(jié)[3]。有研究證明,鐵代謝異常與AMD的發(fā)病密切相關(guān)[4]。而在肝臟中,骨形態(tài)發(fā)生蛋白(bone morphogenetic protein,BMP)-6可調(diào)節(jié)鐵調(diào)素進(jìn)而維持鐵的平衡[5]。這些研究均提示,BMP-6可能與AMD的發(fā)病有關(guān),在保護(hù)RPE細(xì)胞方面可能發(fā)揮著重要的調(diào)控作用。此外,我們既往研究發(fā)現(xiàn),H2O2可引起RPE細(xì)胞鐵調(diào)素水平的下降[6],而BMP-6是調(diào)節(jié)鐵調(diào)素的關(guān)鍵因子[5]。因此,本研究利用細(xì)胞培養(yǎng)和分子生物學(xué)等技術(shù),在細(xì)胞層面觀察氧化應(yīng)激對(duì)RPE細(xì)胞的損傷作用和對(duì)BMP-6及其相關(guān)受體的影響,探討RPE細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷的分子機(jī)制,為AMD的防治尋找新的靶點(diǎn)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實(shí)驗(yàn)細(xì)胞及分組RPE細(xì)胞(美國ATCC公司),常規(guī)培養(yǎng),隨機(jī)分為對(duì)照組、H2O2組、實(shí)驗(yàn)組。其中對(duì)照組RPE細(xì)胞正常培養(yǎng);H2O2組RPE細(xì)胞加入200 μmol·L-1H2O2培養(yǎng);實(shí)驗(yàn)組RPE細(xì)胞先加入0.1 ng·L-1BMP-6培養(yǎng)1 h后,再加入200 μmol·L-1H2O2繼續(xù)培養(yǎng)。

1.1.2 試劑與儀器DMEM培養(yǎng)基(Gibco,美國);胎牛血清(Hyclone,美國);過氧化氫(滬試貨號(hào)10011208);BMP-6(PeproTech,美國);流式細(xì)胞儀(型號(hào)CytoFLEX,BECKMAN,美國);酶標(biāo)儀(Thermo,美國);細(xì)胞凋亡試劑盒(上海翊圣,中國);活性氧(reactive oxygen species,ROS)試劑盒、DAPI(碧云天,中國);PCR儀(ABI,美國);兔多抗GAPDH(杭州賢至,中國);鼠多抗BMP、兔多抗BMPR1A、兔多抗BMPR1B、兔多抗尤文素(Hemojuvelin,HJV)(Affinity,美國);HRP標(biāo)記的羊抗兔二抗(武漢博士德,中國)。

1.2 方法

1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)RPE細(xì)胞常規(guī)DMEM/F12培養(yǎng),次日貼壁生長(zhǎng)后更換為無血清培養(yǎng)液培養(yǎng)24 h,取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的細(xì)胞,制備單細(xì)胞懸液,細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),按每孔5×105個(gè)細(xì)胞接入6孔板,在含體積分?jǐn)?shù)5% CO2的飽和濕度條件下,37 ℃培養(yǎng)細(xì)胞密度至70%。按實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)處理各組細(xì)胞。

1.2.2 流式細(xì)胞儀檢測(cè)RPE細(xì)胞ROSH2O2組RPE細(xì)胞加入200 μmol·L-1H2O2處理12 h后,將對(duì)照組與H2O2組用不含EDTA的2.5 g·L-1胰蛋白酶消化細(xì)胞,終止消化后EP管收集,1200 r·min-1離心3 min,去上清,加PBS重懸,用PBS將細(xì)胞潤(rùn)洗2次后1200 r·min-1離心3 min,按照DCFH-DA細(xì)胞ROS檢測(cè)試劑盒操作說明,去PBS,用無血清培養(yǎng)基11000稀釋DCFH-DA,每管加入1 mL,對(duì)照加不含DCFH-DA的無血清培養(yǎng)基;37 ℃培養(yǎng)箱孵育20 min,每隔3 min混勻一次;用無血清培養(yǎng)基洗滌細(xì)胞3次;流式細(xì)胞儀上機(jī)檢測(cè)。

1.2.3 實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)BMP-6及相關(guān)受體mRNA按照RNA提取試劑盒說明書,用Trizol法提取對(duì)照組和H2O2組mRNA,-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆?;按逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系,反應(yīng)條件25 ℃ 5 min,50 ℃ 15 min,85 ℃ 5 min,4 ℃ 10 min逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA;再按實(shí)時(shí)熒光定量 PCR反應(yīng)體系,反應(yīng)條件50 ℃ 2 min,95 ℃ 10 min,95 ℃ 30 s,60 ℃ 30 s,共40 個(gè)循環(huán)。 BMP-6和GAPDH引物序:GAPDH上游引物為5’-TCAAGAAGGTGGTGAAGCAGG-3’,下游引物為5’-TCAAAGGTGGAGGAGTGGGT-3’;BMPR1A上游引物為5’-GGAGATGGCTCGTCGTTGTA-3’,下游引物為5’-AGTCTGGAGGCTGGATTGTG-3’;BMPR1B上游引物為5’-CCACCACCCTAGACGCTAAA-3’,下游引物為5’-TGCCAACTCGAGTGTTAGGT-3’;HJV上游引物為5’-GATCCCAACTTTACCGTGGC-3’,下游引物為5’-CCACAGAACAAAGAGCCCAG-3’,繪制溶解曲線,最終數(shù)據(jù)以2-△△Ct進(jìn)行分析。

1.2.4 TUNEL染色檢測(cè)細(xì)胞凋亡H2O2組和實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞培養(yǎng)12 h后,與對(duì)照組一起進(jìn)行離心收集細(xì)胞,PBS清洗1次,重懸,加載在鋪好的多聚賴氨酸載玻片上,自然干燥,在40 g·L-1多聚甲醛室溫中固定30 min,PBS清洗3遍,每次5 min;將爬好細(xì)胞的玻片浸入40 g·L-1的多聚甲醛(pH 7.4)溶液中室溫固定25 min,隨后用PBS洗滌3次,每次5 min;將細(xì)胞爬片浸入用PBS配制的體積分?jǐn)?shù)0.1% TritonX-100溶液中10 min(冰上操作),隨后用PBS洗滌2次,每次5 min;用PBS溶液潤(rùn)洗樣本,輕輕去掉多余液體,并用濾紙小心吸干載玻片上樣本周圍的液體,處理后的樣本放在濕盒中以保持樣本濕潤(rùn);按15的比例用去離子水稀釋5×Equilibration Buffer,每個(gè)樣本滴加100 μL 1×Equilibration Buffer使其全部覆蓋待檢樣本區(qū)域,室溫孵育10~30 min,或者將載玻片放入一個(gè)含有1×Equilibration Buffer的缸中,保證緩沖液沒過樣本,在平衡細(xì)胞的同時(shí)在冰上解凍Alexa Fluor 647-12-dUTP Labeling Mix;在平衡后的區(qū)域周圍用吸水紙洗掉100 μL 1×Equilibration Buffer中的大部分,然后在組織上加入TdT孵育緩沖液;把塑料蓋玻片蓋在組織上以保證試劑平均分布,在濕盒的底部放上用水浸濕的紙巾,將載玻片置于濕盒內(nèi),37 ℃孵育60 min;將濕盒用鋁箔紙包裹以避光;然后用PBS洗滌3次,每次5 min ;復(fù)染核:滴加DAPI避光孵育5 min,對(duì)標(biāo)本進(jìn)行染核,PBST 5 min×4次洗去多余DAPI;用吸水紙擦干切片上的液體,用含抗熒光淬滅劑的封片液封片,然后在熒光顯微鏡下觀察采集圖像。

1.2.5 Weatern blot檢測(cè)BMP-6及其受體蛋白水平表達(dá)應(yīng)用組織裂解液裂解細(xì)胞提取總蛋白,按照BCA蛋白定量試劑盒通過標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出樣品的蛋白濃度,對(duì)照組、H2O2組、實(shí)驗(yàn)組蛋白均取等量(30 μg),加入上樣緩沖液,97 ℃加熱6 min變性,冷卻后取樣,進(jìn)行SDS-PAGE凝膠電泳,采用電轉(zhuǎn)儀將蛋白從分離膠轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,將PVDF膜放入封閉液(TBST+50 g· L-1脫脂奶粉)中,室溫封閉30 min。加入一抗(BMP-6、BMPR1A、BMPR1B及HJV的單克隆抗體)并用封閉液稀釋,室溫孵育過夜。用1×TBST漂洗5~6次,每次5 min。加入適當(dāng)比例稀釋的二抗,室溫孵育2 h。 用1×TBST漂洗5~6次,每次5 min。ECL試劑盒化學(xué)熒光法顯色,用BandScan分析膠片灰度值對(duì)Western blot結(jié)果作半定量分析。三組Western blot法測(cè)定均實(shí)施了3次,測(cè)定結(jié)果穩(wěn)定。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析所有結(jié)果均采用SPSS17.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行分析處理,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,整體比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)或單因素方差分析,組間比較如具有方差齊性采用LSD法,如不具有方差齊性則采用Tamhane法。檢驗(yàn)水準(zhǔn):α=0.05。

2 結(jié)果

2.1 H2O2對(duì)RPE細(xì)胞ROS的影響對(duì)照組細(xì)胞內(nèi)ROS水平為(70.55±7.71)%,H2O2組細(xì)胞內(nèi)ROS水平為(99.25±0.28)%,兩組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖1。

圖1 流式細(xì)胞儀檢測(cè)對(duì)照組和H2O2組ROS水平

2.2 H2O2對(duì)RPE細(xì)胞內(nèi)BMP-6的影響H2O2組內(nèi)BMP-6 mRNA水平(0.27±0.05)%相對(duì)于對(duì)照組(0.95±0.06)%為(0.25±0.12)%,與對(duì)照組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。在蛋白水平上,H2O2組(0.18±0.05)相對(duì)于對(duì)照組(0.54±0.07) BMP-6的表達(dá)水平明顯降低(P<0.05),見圖2。

2.3 BMP-6對(duì)H2O2環(huán)境下RPE細(xì)胞的影響TUNEL染色結(jié)果顯示,對(duì)照組的染色陽性細(xì)胞數(shù)比例為(8.25±1.06)%,H2O2組為(51.22±8.51)%,與對(duì)照組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);實(shí)驗(yàn)組的染色陽性細(xì)胞數(shù)為(27.63±5.37)%,與H2O2組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖3。

2.4 H2O2對(duì)BMP受體mRNA及蛋白水平的影響Weatern blot檢測(cè)結(jié)果顯示,H2O2組BMP的BMPR1A、BMPR1B及HJV受體水平均低于實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組,實(shí)驗(yàn)組各受體水平與對(duì)照組和H2O2組比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均為P<0.05)。見圖4。

圖2 H2O2對(duì)RPE細(xì)胞中BMP-6 mRNA及蛋白水平的影響 與對(duì)照組比較,*P

圖3 TUNEL檢測(cè)各組RPE細(xì)胞凋亡率(×400;紅色為凋亡細(xì)胞,藍(lán)色為細(xì)胞核) 與對(duì)照組比較,*P2O2組比較,#P

圖4 H2O2對(duì)BMP-6相關(guān)受體mRNA及蛋白水平的影響 A:氧化應(yīng)激對(duì)受體mRNA水平的影響;B:Western blot檢測(cè)結(jié)果圖;C:氧化應(yīng)激對(duì)受體蛋白水平的影響。與對(duì)照組比較,*P2O2組比較,#P

3 討論

ROS是反映細(xì)胞內(nèi)氧化應(yīng)激水平的直接指標(biāo),ROS增多可導(dǎo)致脂質(zhì)氧化、蛋白質(zhì)破碎、交聯(lián)與聚集,同時(shí)還可導(dǎo)致DNA堿基氧化,進(jìn)一步啟動(dòng)細(xì)胞凋亡[7]。人RPE細(xì)胞暴露于煙霧環(huán)境中可產(chǎn)生大量ROS,同時(shí)抗氧化劑水平下降,導(dǎo)致線粒體功能損害,最后引起RPE細(xì)胞凋亡[8]。我們研究發(fā)現(xiàn),H2O2可以顯著提高RPE細(xì)胞內(nèi)ROS的水平,起到促進(jìn)氧化應(yīng)激損傷的作用。既往研究發(fā)現(xiàn),氧化應(yīng)激可以影響鐵調(diào)素的水平[9],而在肝臟中,BMP-6已被證實(shí)是鐵調(diào)素的主要調(diào)節(jié)因子[10]。我們擬進(jìn)一步觀察氧化應(yīng)激是否可以影響B(tài)MP-6的水平,結(jié)果顯示,相對(duì)于對(duì)照組,H2O2組BMP-6 mRNA水平及蛋白水平均明顯降低,證實(shí)了氧化應(yīng)激可以通過抑制BMP-6起到氧化損傷的作用。

盡管BMP信號(hào)通路在動(dòng)物胚胎發(fā)育、組織分化和細(xì)胞增殖中發(fā)揮關(guān)鍵作用[11],但有關(guān)BMP信號(hào)通路在AMD發(fā)病中扮演的角色還有待闡明。我們運(yùn)用TUNEL染色法觀察BMP-6預(yù)處理后再添加H2O2處理后細(xì)胞凋亡的變化,結(jié)果顯示,BMP-6可以保護(hù)RPE細(xì)胞對(duì)抗氧化應(yīng)激損傷,顯著降低氧化應(yīng)激導(dǎo)致的RPE細(xì)胞的凋亡。

BMPs可以激活Smad依賴的和多個(gè)Smad非依賴的信號(hào)通路,直接影響下游基因的轉(zhuǎn)錄,它們通過與細(xì)胞表面受體結(jié)合并形成由兩種I型和II型絲氨酸/蘇氨酸激酶受體組成的異四聚體復(fù)合物來啟動(dòng)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)級(jí)聯(lián)反應(yīng)[12]。 12種BMP有五種已知的BMPI型受體:激活素受體樣激酶1(ACVRL1或ALK1);1A型激活素受體(ActR-1A或ALK2);BMP受體1A型(BMPR1A,也稱ALK3 );活化素受體1B型(ACVR1B或ALK-4)和BMP受體1B型(BMPR-1B或ALK-6)[13]。HJV是一種BMP共受體,在青少年血色素沉著癥中被破壞時(shí),會(huì)導(dǎo)致鐵調(diào)素嚴(yán)重缺乏和組織鐵過表達(dá)[14]。HJV選擇性結(jié)合 BMP受體,作為BMP的共受體可以激活 BMP/Smad 信號(hào)通路和鐵調(diào)素的表達(dá)[15]。BMP6-HJV-BMP受體復(fù)合物啟動(dòng)磷酸化信號(hào)級(jí)聯(lián),Smad1/5/8 被磷酸化并與 Smad4 結(jié)合,形成 Smad 復(fù)合物進(jìn)入細(xì)胞核,從而激活鐵調(diào)素的轉(zhuǎn)錄。最新研究表明,肝細(xì)胞核因子4α通過滅活肝癌細(xì)胞中骨形態(tài)發(fā)生蛋白途徑,特別是通過BMP1A起到抑制Hepcidin的作用[16]。Castoldi等[17]發(fā)現(xiàn),通過抑制miR-122可增加BMPR1A及HJV等控制全身鐵水平的基因。氧化應(yīng)激可下調(diào)BMP-6,而添加BMP-6可減輕氧化應(yīng)激所致的細(xì)胞凋亡,因此,我們擬進(jìn)一步觀察氧化應(yīng)激是通過何種與鐵調(diào)控相關(guān)的BMP受體起到促進(jìn)細(xì)胞凋亡的作用。熒光定量PCR結(jié)果顯示,H2O2可抑制BMP受體的活性(BMP1A受體、BMPR1B受體及HJV受體),而添加了BMP-6后可對(duì)抗氧化應(yīng)激對(duì)其相關(guān)受體的抑制作用。

本研究發(fā)現(xiàn),氧化應(yīng)激可對(duì)RPE細(xì)胞起到氧化損傷作用,氧化應(yīng)激可以下調(diào)BMP-6的水平促進(jìn)細(xì)胞凋亡,而BMP-6預(yù)處理RPE細(xì)胞則可以對(duì)抗氧化應(yīng)激損傷;進(jìn)一步觀察發(fā)現(xiàn),氧化應(yīng)激可以抑制BMPR1、BMPR1B及HJV受體,而BMP-6則可以對(duì)抗這種抑制作用,進(jìn)一步驗(yàn)證了BMP-6在氧化應(yīng)激損傷RPE細(xì)胞中的作用。但我們實(shí)驗(yàn)僅初步探索了氧化應(yīng)激對(duì)RPE細(xì)胞造成損傷的機(jī)制以及BMP-6對(duì)抗氧化應(yīng)激損傷的結(jié)果。氧化應(yīng)激損傷RPE細(xì)胞的具體分子機(jī)制以及BMP-6對(duì)抗氧化應(yīng)激損傷的作用仍需進(jìn)一步的研究。

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