趙琦 相綠竹 彭瑞 王曄 牟曉峰
[摘要]目的 比較人肺腺癌細胞系A(chǔ)549和正常人肺上皮細胞系BEAS-2b、肺腺癌和癌旁組織中RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶的表達。方法 分別采用實時熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(RT-qPCR)和蛋白免疫印跡(Western blot)方法檢測A549和BEAS-2b細胞中RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶mRNA及蛋白的表達水平;采用免疫組化法(IHC)檢測肺腺癌與癌旁組織中RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶的表達。結(jié)果RT-qPCR檢測結(jié)果顯示,與BEAS-2b細胞相比,A549細胞中甲基化轉(zhuǎn)移酶樣蛋白3(METTL3)mRNA的表達水平顯著上升(t=5.708,P<0.05),而甲基化轉(zhuǎn)移酶樣蛋白14(METTL14)和腎母細胞瘤1相關(guān)蛋白(WTAP)mRNA的表達水平顯著下降(t=24.080、9.207,P<0.05)。Wes-tern blot檢測顯示,與BEAS-2b細胞相比,A549細胞中METTL3、METTL14蛋白的表達水平均顯著上升(t=6.502、6.869,P<0.05),而WTAP蛋白的表達水平顯著下降(t=8.822,P<0.05)。IHC檢測顯示,METTL3、METTL14定位于細胞核內(nèi),肺腺癌組織中二者的表達水平較癌旁組織顯著升高(t=3.055、4.339,P<0.05);WTAP定位于細胞核和細胞質(zhì)內(nèi),肺腺癌組織中其表達水平較癌旁組織顯著下降(t=3.611,P<0.05)。結(jié)論A549細胞和肺腺癌組織中RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶的表達與BEAS-2b細胞及癌旁組織相比有明顯差異,提示可能存在某些依賴于N6-甲基腺嘌呤(m6A)修飾的機制影響肺腺癌的發(fā)生發(fā)展。
[關(guān)鍵詞] 肺腫瘤;腺癌;tRNA甲基轉(zhuǎn)移酶類
[中圖分類號] R734.2[文獻標(biāo)志碼] A[文章編號] 2096-5532(2020)04-0394-05
doi:10.11712/jms.2096-5532.2020.56.069[HT]
[網(wǎng)絡(luò)出版] http://kns.cnki.net/kcms/detail/37.1517.R.20200417.1001.019.html;2020-04-18 16:17
EXPRESSION AND SIGNIFICANCE OF RNA METHYLTRANSFERASE IN LUNG ADENOCARCINOMA
ZHAO Qi, XIANG Lüzhu, PENG Rui, WANG Ye, MU Xiaofeng
(Department of Medicine, Qingdao University, Qingdao 266071, China)
[ABSTRACT]Objective To compare the expression of RNA methyltransferase in human lung adenocarcinoma cell line A549 and normal human lung epithelial cell line BEAS-2b, as well as in lung adenocarcinoma and adjacent tissues. Methods Real-time quantitative polymerase chain reaction (RT-qPCR) and Western blot were used to determine the expression levels of RNA methyltransferase mRNA and protein, respectively, in A549 and BEAS-2b cells. Immunohistochemistry (IHC) was used to localize and determine the expression of RNA methyltransferase in lung adenocarcinoma and adjacent tissues. Results RT-qPCR results showed that compared with BEAS-2b cells, A549 cells had a significantly higher mRNA expression level of methyltransferase-like protein 3 (METTL3) (t=5.708,P<0.05) and significantly lower mRNA expression levels of methyltransferase-like protein 14 (METTL14) and Wilms tumor 1-associating protein (WTAP) (t=24.080,9.207;P<0.05). Western blot results showed that compared with BEAS-2b cells, A549 cells had significantly higher protein expression levels of METTL3 and METTL14 (t=6.502,6.869;P<0.05) and a significantly lower protein expression level of WTAP (t=8.822,P<0.05). IHC results showed that METTL3 and METTL14 were localized in the nucleus, and their expression in lung adenocarcinoma tissues was signi-
ficantly higher than that in adjacent tissues (t=3.055,4.339;P<0.05); WTAP was localized in the nucleus and cytoplasm, and its expression in lung adenocarcinoma tissues was significantly lower than that in adjacent tissues (t=3.611,P<0.05). Conclusion Compared with BEAS-2b cells and adjacent tissues, A549 cells and lung adenocarcinoma tissues have significantly different RNA methyltransferase expression, suggesting that there may be some mechanisms that rely on N6-methyladenosine modification affec-ting the development and progression of lung adenocarcinoma.
[KEY WORDS] lung neoplasms; adenocarcinoma; tRNA methyltransferases
中國的癌癥發(fā)病率和死亡率逐年上升,據(jù)統(tǒng)計,2015年中國約有429.2萬例癌癥新發(fā)病例和281.4萬例癌癥死亡病例,肺癌是其中最為常見的一種癌癥,也是癌癥死亡的首要原因[1]。肺腺癌占所有肺癌的80%左右,且大多數(shù)肺腺癌病人在確診時已處于晚期階段,病人術(shù)后5年生存率較低[2]。目前,肺腺癌治療方式有手術(shù)、放化療以及靶向治療等,靶向治療以其精準(zhǔn)、高效的特點在癌癥治療中起到了越來越大的作用[3]。因此,發(fā)現(xiàn)并篩選新的肺腺癌有效的預(yù)后標(biāo)志物和潛在的治療靶點是目前研究的重要臨床課題之一。
N6-甲基腺嘌呤(m6A)修飾是真核細胞mRNA及非編碼RNA中最為豐富的表觀遺傳學(xué)修飾[4-5],而且該修飾過程是動態(tài)、可逆的。目前普遍認為,m6A修飾受3種蛋白調(diào)控,包括“讀寫器”、“消除器”及“閱讀器”。其中,“讀寫器”即“writers”,指RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶,主要包括甲基化轉(zhuǎn)移酶樣蛋白3(METTL3)、甲基化轉(zhuǎn)移酶樣蛋白14(METTL14)以及腎母細胞瘤1相關(guān)蛋白(WTAP),它們的主要作用為促進RNA的m6A修飾過程[6]。METTL3與METTL14具有43%的同源性,兩者常以復(fù)合體的形式發(fā)揮作用,其中METTL3主要作為催化核心,而METTL14主要作為RNA結(jié)合平臺發(fā)揮作用[7]。WTAP可與METTL3-METTL14復(fù)合物相互作用,影響細胞內(nèi)m6A的沉積[8]。既往研究發(fā)現(xiàn),RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶與腫瘤的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān),如神經(jīng)膠質(zhì)瘤、胃癌、結(jié)直腸癌、乳癌、肝癌、膀胱癌等[9-14]。但這3種RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶在肺癌中的作用機制還不十分清楚。因此,本研究采用多種方法,比較人肺腺癌細胞及正常人肺上皮細胞、人肺腺癌組織和癌旁組織中RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶的表達差異,為探究m6A甲基化在肺癌發(fā)生中的作用機制提供實驗基礎(chǔ)。
1 材料和方法
1.1 實驗材料
1.1.1 細胞與組織 人肺腺癌細胞株A549和人正常肺上皮細胞株BEAS-2b均購自上海歌凡生物科技有限公司。10對肺腺癌與癌旁組織(距離癌組織2 cm)標(biāo)本均來自青島市中心醫(yī)院病理科,取材自2016—2018年青島市中心醫(yī)院的肺癌手術(shù)病人。10例病人中,男6例,女4例;病人年齡54~64歲,平均58.7歲;腫瘤位于右肺6例,位于左肺4例;分化程度為中高分化3例,低分化7例;腫瘤最大徑為2~10 cm,平均4.7 cm;TNM分期為1A期2例,1B期1例,2B期1例,3A期5例,3B期1例。
1.1.2 主要試劑與儀器 胎牛血清、RPMI 1640及DMEM培養(yǎng)基均購自美國Sigma公司;擴增用ETTL3、METTL14、WTAP引物以及Trizol、反轉(zhuǎn)錄試劑盒均購自英濰捷基(上海)貿(mào)易有限公司;[LL]實時熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(RT-qPCR)檢測試劑盒(SYBRSelect Master Mix)購自美國ABI公司;細胞裂解液RIPA、BCA蛋白檢測試劑盒、磷酸鹽緩沖液(PBS)及牛血清清蛋白(BSA)、二氨基聯(lián)苯胺(DAB)試劑盒、蘇木精染液均購自北京索萊寶科技有限公司;METTL3、METTL14、WTAP、GAPDH一抗和辣根過氧化物酶標(biāo)記IgG二抗購自美國Abcam公司。熒光定量PCR儀購自美國ABI公司;電泳儀購自美國伯樂公司;光學(xué)顯微鏡購自德國蔡司公司;多功能分子成像系統(tǒng)購自美國Azure Biosystems公司。
1.2 實驗方法
1.2.1 細胞培養(yǎng) A549、BEAS-2b細胞分別在含有體積分?jǐn)?shù)0.10胎牛血清和體積分?jǐn)?shù)0.01青霉素-鏈霉素的RPMI 1640、DMEM培養(yǎng)液中培養(yǎng)。將處于指數(shù)生長期的細胞制成細胞懸液,以每孔6×105個細胞的密度接種于6孔板中,待細胞融合度約為90%時分別用Trizol和RIPA裂解液收取細胞。
1.2.2 RT-qPCR檢測RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶mRNA的表達 將Trizol法提取的A549、BEAS-2b細胞總RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA。以cDNA作為模板,分別應(yīng)用METTL3、METTL14、WTAP特異性引物進行擴增,以GAPDH為內(nèi)參。反應(yīng)體系10 μL,包括:1∶14稀釋的cDNA模板4.6 μL,上、下游引物各0.2 μL,Master Mix 5.0 μL。每個樣本設(shè)3個復(fù)孔。反應(yīng)條件:95 ℃熱啟動10 min;95 ℃、15 s,60 ℃、1 min(收集熒光信號),40個循環(huán)。反應(yīng)完成后根據(jù)Ct值計算目的基因的相對表達量。PCR擴增所用引物及其序列見表1。
1.2.3 蛋白免疫印跡(Western blot)檢測RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶蛋白的表達 已處理的細胞加入RIPA裂解液和蛋白酶抑制劑提取總蛋白,采用BCA法測定蛋白濃度。在120 g/L的聚丙烯酰胺凝膠中電泳后,于冰上轉(zhuǎn)至PVDF膜上。使用50 g/L脫脂奶粉室溫封閉1 h,加入兔抗人或鼠抗人的METTL3、METTL14、WTAP一抗(稀釋度均為1∶1 000),4 ℃孵育過夜。加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔或羊抗鼠二抗(稀釋度均為1∶3 000),再加入GAPDH直標(biāo)抗體(稀釋度為1∶5 000),室溫孵育1 h,洗膜后顯影成像。以GAPDH為內(nèi)參照,計算METTL3、METTL14、WTAP的相對表達量。
1.2.4 免疫組化法(IHC)檢測肺腺癌及癌旁組織中RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶的表達 將10對肺腺癌與癌旁組織石蠟切片脫蠟至水,抗原修復(fù),放入體積分?jǐn)?shù)0.03的過氧化氫溶液中室溫避光孵育25 min,應(yīng)用PBS(pH值7.4)洗滌。以30 g/L BSA室溫封閉30 min,加按比例配好的一抗4 ℃孵育過夜;洗滌后加入與一抗相應(yīng)種屬的二抗室溫孵育50 min;DAB顯色,蘇木精復(fù)染細胞核。放入乙醇及二甲苯中脫水晾干,中性樹膠封片。光學(xué)顯微鏡下觀察,進行圖像采集分析。以細胞核深棕色為強陽性,棕黃色為中度陽性,淺黃色為弱陽性,藍色為陰性。對每個組織點識別分析出強陽性、中度陽性、弱陽性及陰性的細胞數(shù)量、百分比,進行H-score評分。H-score=∑(PI×I),其中PI為陽性細胞數(shù)占切片中所有細胞數(shù)的百分比,I為著色強度。
1.3 統(tǒng)計學(xué)分析
采用Graph Pad Prism 5軟件自帶的統(tǒng)計學(xué)分析模塊進行統(tǒng)計學(xué)處理。計量資料以[AKx-D]±s的形式表示,兩組之間比較采用t檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1 RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶mRNA在BEAS-2b以及A549細胞中的表達比較
RT-qPCR檢測結(jié)果顯示,與正常肺上皮細胞BEAS-2b相比較,肺腺癌細胞A549中METTL3 mRNA的表達水平顯著上升(t=5.708,P<0.05),METTL14和WTAP mRNA的表達水平顯著下降(t=24.080、9.207,P<0.05)。見表2。
2.2 RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶蛋白在BEAS-2b及A549細胞中的表達比較
Western blot檢測結(jié)果顯示,與正常肺上皮細胞BEAS-2b相比,肺腺癌細胞A549中METTL3、METTL14蛋白的表達水平均顯著上升(t=6.502、6.869,P<0.05),而WTAP蛋白的表達水平則顯著下降(t=8.822,P<0.05),差異均有統(tǒng)計學(xué)意義。見圖1、表3。
2.3 RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶在人肺腺癌及癌旁組織中的表達比較
IHC檢測顯示,METTL3、METTL14定位于細胞核內(nèi),肺腺癌組織中二者的表達水平較癌旁組織顯著升高(t=3.055、4.339,P<0.05);WTAP定位于細胞核和細胞質(zhì)內(nèi),肺腺癌組織中其表達水平較癌旁組織下降,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=3.611,P<0.05)。見圖2、表4。
3 討論
已有研究結(jié)果表明,RNA的m6A修飾在多種生物學(xué)過程中發(fā)揮著重要作用,包括干細胞的自我更新和分化、組織發(fā)育、熱休克反應(yīng)、晝夜節(jié)律控制、DNA損傷修復(fù)等[15-17]。除此之外,m6A修飾還可以影響mRNA的穩(wěn)定性、剪接、轉(zhuǎn)運、定位、翻譯以及微小RNA(miRNA)加工和RNA與蛋白質(zhì)間的相互作用[18-22]。RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶作為重要的m6A修飾蛋白在多種腫瘤的發(fā)生發(fā)展中起著重要作用。已有研究證實,RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶可以作為“促癌基因”發(fā)揮促進腫瘤細胞增殖和轉(zhuǎn)移的作用,例如,METTL3在胃癌表達明顯升高,可促進mym型鋅指蛋白1(ZMYM1)mRNA的m6A修飾,增強其穩(wěn)定性,進而促進ZMYM1相關(guān)復(fù)合物對E-cadherin的轉(zhuǎn)錄抑制,從而促進胃癌細胞上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化和轉(zhuǎn)移[10];WTAP在急性髓細胞白血?。ˋML)表達上調(diào),發(fā)揮著類似“原癌基因”的作用[23];WTAP在膀胱癌組織表達明顯上升,有望成為潛在的治療靶點[24]。此外,還有研究認為,RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶在部分癌癥中發(fā)揮“抑癌基因”的作用,例如,上調(diào)METTL3能明顯抑制腎細胞癌細胞增殖、遷移和侵襲等,并誘導(dǎo)G0/G1期阻滯,這可能是通過PI3K-Akt-mTOR通路來實現(xiàn)的[25];而METTL14在肝癌中通過與DGCR8相互作用,能上調(diào)microRNA-126的表達,從而抑制腫瘤細胞轉(zhuǎn)移[13]。
RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶在肺腺癌中的作用尚不明確,因此本研究比較了人肺腺癌細胞和正常人肺上皮細胞、人肺腺癌組織和癌旁組織中RNA甲基化轉(zhuǎn)移酶的表達變化。結(jié)果顯示,與正常人肺上皮細胞及癌旁組織相比,人肺腺癌細胞及肺腺癌組織中METTL3的mRNA及蛋白表達水平均顯著上升;METTL14蛋白水平在肺腺癌組織中的表達同樣顯著升高,但mRNA表達水平下降。METTL14蛋白和mRNA表達不一致,分析原因可能為:mRNA雖表達下降,但因某種原因穩(wěn)定性增加,導(dǎo)致降解減少,進一步導(dǎo)致蛋白表達增加;或者是METTL14蛋白降解減少,蛋白表達量增加對mRNA的表達產(chǎn)生阻遏,使mRNA表達減少。其具體機制尚不清楚,這是我們下一步探討的重點問題之一。但作為酶類,METTL14發(fā)揮生物學(xué)作用主要在蛋白水平,因此我們認為蛋白水平的結(jié)果更有意義。另外,作為METTL3-METTL14復(fù)合體的重要的協(xié)同蛋白,不論在mRNA水平還是在蛋白水平,WTAP的表達均明顯下降。WTAP表達下降的可能原因之一是,在肺腺癌中,其RNA m6A修飾并不主要是METTL3-METTL14復(fù)合體介導(dǎo)的,METTL3和METTL14可能單獨作用介導(dǎo)RNA m6A的催化作用;另一原因可能為,在肺腺癌組織中存在另外一種METTL3-METTL14復(fù)合體的協(xié)同蛋白,該蛋白與WTAP相互競爭,共同協(xié)助復(fù)合體的催化作用,具體蛋白類別還需進一步研究。
從本文研究結(jié)果結(jié)合RNA m6A的廣泛生物學(xué)功能來看,一定存在某些依賴于m6A修飾的機制影響著肺腺癌的生物學(xué)過程。需要進一步結(jié)合m6A高通量測序等一系列手段挖掘潛在的結(jié)合靶點,這也是我們下一步將要進行的研究工作。
[參考文獻]
[1]CHEN W, ZHENG R, BAADE P D, et al. Cancer statistics in China[J].? A Cancer Journal for Clinicians, 2016,66(2):115-132.
[2]PAZ-ARES L, TAN E H, OBYRNE K, et al. Afatinib versus gefitinib in patients with EGFR mutation-positive advanced non-small-cell lung cancer: overall survival data from the phase Ⅱb LUX-Lung 7 trial[J].? Annals of Oncology, 2017,28(2):270-277.
[3]NUKAGA S, YASUDA H, TSUCHIHARA K, et al. Ampli-fication of EGFR wild-type alleles in non-small cell lung cancer cells confers acquired resistance to mutation-selective EGFR tyrosine kinase inhibitors[J].? Cancer Research, 2017,77(8):2078-2089.
[4]ROUNDTREE I A, EVANS M E, PAN T, et al. Dynamic RNA modifications in gene expression regulation[J].? Cell, 2017,169(7):1187-1200.
[5]LIN Xinyao, CHAI Guoshi, WU Yingmin, et al. RNA m6A methylation regulates the epithelial mesenchymal transition of cancer cells and translation of Snail[J].? Nature Communications, 2019,10(1):2065-2077.
[6]LAN Q, LIU P Y, HAASE J, et al. The critical role of RNA m6A methylation in cancer[J].? Cancer Research, 2019,79(7):1285-1292.
[7]BUJNICKI J M, FEDER M, RADLINSKA M, et al. Structure prediction and phylogenetic analysis of a functionally diverse family of proteins homologous to the MT-A70 subunit of the human mRNA: m6A methyltransferase[J].? Journal of Molecular Evolution, 2002,55(4):431-444.
[8]LIU Jianzhao, YUE Yanan, HAN Dali, et al. A METTL3-METTL14 complex mediates mammalian nuclear RNA N6-adenosine methylation[J].? Nature Chemical Biology, 2014,10(2):93-95.
[9]CUI Qi, SHI Hailing, YE Peng, et al. m6A RNA methylation regulates the self-renewal and tumorigenesis of glioblastoma stem cells[J].? Cell Reports, 2017,18(11):2622-2634.
[10]YUE Ben, SONG Chenlong, YANG Linxi, et al. METTL3-mediated N6-methyladenosine modification is critical for epithelial-mesenchymal transition and metastasis of gastric cancer[J].? Molecular Cancer, 2019,18(1):142.
[11]PENG W, LI J, CHEN R, et al. Upregulated METTL3 promotes metastasis of colorectal cancer via miR-1246/SPRED2/MAPK signaling pathway[J].? Journal of Experimental & Cli-
nical Cancer Research: CR, 2019,38(1):393.
[12]LIU Liwen, LIU Xin, DONG Zihui, et al. N6-methyladenosine-related genomic targets are altered in breast cancer tissue and associated with poor survival[J].? Journal of Cancer, 2019,10(22):5447-5459.
[13]MA Jinzhao, YANG Fu, ZHOU Chuanchuan, et al. METTL14 suppresses the metastatic potential of hepatocellular carcinoma by modulating N6-methyladenosine-dependent primary MicroRNA processing[J].? Hepatology (Baltimore, Md.), 2017,65(2):529-543.
[14]HAN Jie, WANG Jingzi, YANG Xiao, et al. METTL3 promote tumor proliferation of bladder cancer by accelerating pri-miR221/222 maturation in m6A-dependent manner[J].? Mole-cular Cancer, 2019,18(1):110.
[15]XIANG Y, LAURENT B, HSU C H, et al. RNA m(6)A methylation regulates the ultraviolet-induced DNA damage response[J].? Nature, 2017,543(7646):573-576.
[16]WANG Y, LI Y, TOTH J I, et al. N6-methyladenosine modification destabilizes developmental regulators in embryonic stem cells[J].? Nature Cell Biology, 2014,16(2):191-198.
[17]WANG X, LU Z K, GOMEZ A, et al. N6-methyladenosine-dependent regulation of messenger RNA stability[J].? Nature, 2014,505(7481):117-120.
[18]WANG X, ZHAO B S, ROUNDTREE I A, et al. N(6)-methyladenosine modulates messenger RNA translation efficiency[J].? Cell, 2015,161(6):1388-1399.
[19]CHEN T, HAO Y J, ZHANG Y, et al. m(6)A RNA methy-
lation is regulated by microRNAs and promotes reprogramming to pluripotency[J].? Cell Stem Cell, 2015,16(3):289-301.
[20]LIU Nian, DAI Qing, ZHENG Guanqun, et al. N(6)-methyladenosine-dependent RNA structural switches regulate RNA-protein interactions[J].? Nature, 2015,518(7540):560-564.
[21]ALARCN C R, LEE H, GOODARZI H, et al. N6-methyladenosine marks primary microRNAs for processing[J].? Nature, 2015,519(7544):482-485.
[22]ZHOU Jun, WAN Ji, GAO Xiangwei, et al. Dynamic m(6)A mRNA methylation directs translational control of heat shock response[J].? Nature, 2015,526(7574):591-594.
[23]BANSAL H, YIHUA Q, IYER S P, et al. WTAP is a novel oncogenic protein in acute myeloid leukemia[J].? Leukemia, 2014,28(5):1171-1174.
[24]CHEN Lezhong, WANG Xinghuan. Relationship between the genetic expression of WTAP and bladder cancer and patient prognosis[J].? Oncology Letters, 2018,16(6):6966-6970.
[25]LI Xiao, TANG Jingyuan, HUANG Wen, et al. The M6A methyltransferase METTL3: acting as a tumor suppressor in renal cell carcinoma[J].? Oncotarget, 2017,8(56):96103-96116.
(本文編輯 馬偉平)
[收稿日期]2019-09-04; [修訂日期]2020-03-19
[基金項目]國家自然科學(xué)基金面上項目(81670822);青島市醫(yī)療衛(wèi)生B類重點學(xué)科(青衛(wèi)科教字〔2019〕9號)
[第一作者]趙琦(1994-),女,碩士研究生。
[通信作者]牟曉峰(1970-),男,碩士,主任技師,碩士生導(dǎo)師。E-mail:muxiaofeng2005@126.com。