魏劍浩 朱召芹
摘 要 新型冠狀病毒肺炎是當(dāng)今世界最受關(guān)注的公共衛(wèi)生問題,實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)是其疫情防控的關(guān)鍵環(huán)節(jié)之一。本文主要介紹現(xiàn)常用的新型冠狀病毒實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法,尤其是核酸、抗原/抗體等檢測(cè)方法,同時(shí)就已見報(bào)告的部分新型冠狀病毒實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)新技術(shù)作一簡(jiǎn)要介紹。
關(guān)鍵詞 新型冠狀病毒 實(shí)驗(yàn)室檢測(cè) 核酸檢測(cè)
中圖分類號(hào):R512.99; R446 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A 文章編號(hào):1006-1533(2021)17-0006-05
Progress in laboratory techniques for COVID-19 detection
WEI Jianhao, ZHU Zhaoqin
(Department of Clinical Laboratory, Shanghai Public Health Clinical Center, Shanghai 201508, China)
ABSTRACT Coronavirus disease 2019 (COVID-19) has been the most concerned public health disaster in the world today and laboratory detection is one of the key links for epidemic prevention and control. This article mainly introduces the commonly used laboratory detection methods for the severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2), especially the ones such as nucleic acid, antigen/antibody test and so on, and outlines some new technologies for its detection that have been reported.
KEy WORDS SARS-CoV-2; laboratory detection; nucleic acid test
目前,由新型冠狀病毒,即嚴(yán)重急性呼吸綜合征冠狀病毒2(severe acute respiratory syndrome coronavirus 2, SARS-CoV-2)感染引起的新型冠狀病毒肺炎(coronavirus disease 2019, COVID-19)疫情已導(dǎo)致全球逾1.6億人感染,340多萬人死亡?,F(xiàn)階段我國(guó)的疫情防控重點(diǎn)已從嚴(yán)防本土病例暴發(fā)轉(zhuǎn)為對(duì)境外輸入病例的篩查和控制,以及對(duì)進(jìn)口物品攜帶污染及密切接觸人群的監(jiān)測(cè)[1]。隨著防疫工作的穩(wěn)步推進(jìn),各級(jí)醫(yī)療機(jī)構(gòu)和疾病防控部門已常態(tài)化開展SARS-CoV-2檢測(cè)工作。COVID-19是一種席卷全球的傳染病,不同的國(guó)家或地區(qū)都應(yīng)找到適合自身情況的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法,這是當(dāng)前各國(guó)醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室的緊急要?jiǎng)?wù)。本文主要介紹目前醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室常用的SARS-CoV-2檢測(cè)方法及其技術(shù)特點(diǎn),同時(shí)就已見報(bào)告的部分SARS-CoV-2實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)新技術(shù)作一簡(jiǎn)要介紹。
SARS-CoV-2是一種人畜共患病病毒,其屬于β冠狀病毒屬Sarbecovirus亞屬,為單股、正鏈RNA病毒,常為多形性包膜病毒,顆粒呈圓或橢圓形,直徑60 ~ 140 nm。SARS-CoV-2含有4種結(jié)構(gòu)蛋白,即刺突蛋白、核衣殼蛋白、膜蛋白和包膜蛋白。SARS-CoV-2通過刺突蛋白調(diào)節(jié)與受體結(jié)合和膜融合的過程,并通過刺突蛋白1B結(jié)構(gòu)域特異性地識(shí)別宿主細(xì)胞表面的血管緊張素轉(zhuǎn)化酶2(angiotensin-converting enzyme 2, ACE2)。研究發(fā)現(xiàn),SARS-CoV-2的刺突蛋白對(duì)ACE2的親和力較嚴(yán)重急性呼吸道綜合征冠狀病毒(severe acute respiratory syndrome coronavirus, SARS-CoV)高約10 ~ 20倍[2-3],這可能是導(dǎo)致SARS-CoV-2在人群中傳播更廣的原因(表1)。
目前,國(guó)內(nèi)對(duì)SARS-CoV-2的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法主要有肺部影像學(xué)檢查、病毒培養(yǎng)及檢測(cè)、病毒相關(guān)核酸檢測(cè)、病毒特異性抗原/抗體檢測(cè)等(表2)。
2.1 肺部影像學(xué)檢查
在COVID-19疫情暴發(fā)初期,影像學(xué)檢查是篩查和發(fā)現(xiàn)患者非典型肺部炎癥的基本依據(jù)[7-8]。但COVID-19的影像學(xué)表現(xiàn)并不一致,肺部CT檢查時(shí)常可見患者雙肺多葉磨玻璃樣混濁或肺部實(shí)變影,呈周圍或后部分布樣征象。由于存在這些影像學(xué)特征,一些回顧性研究認(rèn)為,肺部CT檢查篩查COVID-19的敏感性高(86% ~ 98%),但特異性較低[5]。但也有研究指出,發(fā)熱、胃腸道癥狀、感覺減退/喪失或精神神經(jīng)癥狀仍可能是COVID-19患者早期的唯一表現(xiàn)[9]。另外,肺部影像學(xué)檢查也不適用于SARS-CoV-2感染窗口期和無癥狀的感染者[7]。
2.2 病毒培養(yǎng)及檢測(cè)
病毒培養(yǎng)及檢測(cè)是病原學(xué)鑒定的金標(biāo)準(zhǔn),也是目前最貼近科霍原則(Kochs postulates)的COVID-19實(shí)驗(yàn)室診斷方法,所獲病毒株還是檢測(cè)試劑、疫苗研發(fā)和抗病毒藥物篩選等研究的重要基礎(chǔ)。特別是在當(dāng)前英國(guó)、巴西、印度等國(guó)出現(xiàn)SARS-CoV-2變異株后,我們亟需對(duì)這些突變株的傳播能力、致病力和免疫逃逸能力等作進(jìn)一步的研究。鼻咽拭子、痰和其他下呼吸道分泌物等臨床樣本均可通過接種人呼吸道上皮細(xì)胞、猴腎細(xì)胞Vero-E6和人肝癌細(xì)胞Huh-7細(xì)胞系等進(jìn)行分離培養(yǎng),應(yīng)選取經(jīng)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction, PCR)法和/或下一代測(cè)序技術(shù)(nextgeneration sequencing, NGS)檢測(cè)為病毒核酸陽(yáng)性且病毒載量較高的樣本進(jìn)行分離培養(yǎng)。受感染細(xì)胞多從細(xì)胞邊緣開始出現(xiàn)病變或首先變成不規(guī)則形態(tài),然后細(xì)胞內(nèi)顆粒逐漸增多,最后細(xì)胞圓縮、脫落,而健康的對(duì)照細(xì)胞形態(tài)保持良好。此時(shí)可收集培養(yǎng)細(xì)胞,并分離出病毒培養(yǎng)株。SARS-CoV-2的培養(yǎng)必須在具備生物安全三級(jí)及以上資質(zhì)的實(shí)驗(yàn)室內(nèi)進(jìn)行,不得在臨床常規(guī)生物安全二級(jí)的實(shí)驗(yàn)室中進(jìn)行,且需有先進(jìn)的實(shí)驗(yàn)設(shè)施和專業(yè)的技術(shù)人員,成本高,操作時(shí)感染風(fēng)險(xiǎn)大,故不推薦用作為COVID-19的常規(guī)診斷方法。
2.3 SARS-CoV-2核酸檢測(cè)
根據(jù)國(guó)家衛(wèi)生健康委員會(huì)等發(fā)布的新版COVID-19診療方案,病毒核酸檢測(cè)陽(yáng)性仍是發(fā)現(xiàn)SARS-CoV-2攜帶者(SARS-CoV-2核酸陽(yáng)性,但無明顯的臨床和影像學(xué)表現(xiàn)且血清特異性SARS-CoV-2抗體陰性者)和確診SARS-CoV-2感染的標(biāo)準(zhǔn)和依據(jù)。SARS-CoV-2檢測(cè)的靶基因主要包括病毒核酸中開放讀碼框1ab、核衣殼蛋白、包膜蛋白和刺突蛋白的編碼基因。國(guó)內(nèi)迄今批準(zhǔn)的SARS-CoV-2核酸檢測(cè)試劑盒均是以上述基因中的1個(gè)或多個(gè)位點(diǎn)作為靶標(biāo)來進(jìn)行檢測(cè)的。有專家建議,可同時(shí)檢測(cè)2個(gè)及以上的靶標(biāo),以保證結(jié)果的特異性和準(zhǔn)確性[2]。國(guó)內(nèi)市場(chǎng)上針對(duì)上述靶標(biāo)設(shè)計(jì)的核酸擴(kuò)增檢測(cè)試劑盒多達(dá)數(shù)十種,檢測(cè)方法主要有實(shí)時(shí)熒光PCR(realtime PCR, RT-PCR)法、恒溫?cái)U(kuò)增法、雙擴(kuò)增法、聚類規(guī)律間隔短回文重復(fù)序列(clustered regularly interspaced short palindromic repeats, CRISPR)/CRISPR相關(guān)蛋白(CRISPR associated proteins, Cas)檢測(cè)法,以及基于NGS的核酸檢測(cè)方法等。
2.3.1 RT-PCR法
RT-PCR法是目前國(guó)內(nèi)應(yīng)用最為廣泛的SARS-CoV-2核酸檢測(cè)方法,其能在1次反應(yīng)中對(duì)樣本中的多個(gè)靶標(biāo)進(jìn)行檢測(cè),這些靶標(biāo)既可是同一病原體的不同靶標(biāo),也可是不同病原體的同一特征性靶標(biāo)。但在對(duì)COVID-19患者的臨床檢測(cè)中須注意,單次咽拭子采樣核酸檢測(cè)的陽(yáng)性率并不高,約為30% ~ 50%[1],故陰性結(jié)果不能排除SARS-CoV-2感染,需進(jìn)一步排除樣本采集、運(yùn)輸和實(shí)驗(yàn)室操作等各環(huán)節(jié)中可能存在的問題,對(duì)疑似感染患者應(yīng)重復(fù)多次采樣檢測(cè)來避免檢測(cè)結(jié)果假陰性可能。
2.3.2 恒溫?cái)U(kuò)增法
與傳統(tǒng)PCR法經(jīng)一系列重復(fù)的變溫過程和30 ~ 40個(gè)循環(huán)完成檢測(cè)不同,恒溫?cái)U(kuò)增法的擴(kuò)增反應(yīng)多于60 ~ 65 ℃下進(jìn)行,在特異性引物和酶的作用下1 h左右時(shí)間內(nèi)即可大量擴(kuò)增目標(biāo)基因,然后通過肉眼或使用熒光染料(如SYBR綠等)進(jìn)行簡(jiǎn)單的光度測(cè)量就能觀察到結(jié)果了。恒溫?cái)U(kuò)增法被認(rèn)為是一種具有高敏感性、高特異性、高效益成本比、高效率和快速的DNA擴(kuò)增技術(shù),有研究判斷該方法的靈敏度較傳統(tǒng)PCR法高10倍左右[6]。恒溫?cái)U(kuò)增法還有擴(kuò)增步驟相對(duì)簡(jiǎn)便的特點(diǎn),這使其率先成為SARS-CoV-2即時(shí)檢測(cè)所用核酸擴(kuò)增技術(shù)[10]。我國(guó)學(xué)者創(chuàng)新性地將恒溫?cái)U(kuò)增技術(shù)與微流控芯片技術(shù)結(jié)合起來,設(shè)計(jì)出適配于智能手機(jī)攝像功能的檢測(cè)模塊,希望能夠構(gòu)建一種患者自行采樣檢測(cè)—智能手機(jī)上傳檢測(cè)結(jié)果—云端分析—反饋結(jié)果的SARS-CoV-2檢測(cè)新模式,目前正處于科研階段[11]。但恒溫?cái)U(kuò)增法也有缺點(diǎn)和不足,如對(duì)引物集的設(shè)計(jì)要求較高,需有熟練的操作人員和良好的實(shí)驗(yàn)室規(guī)范來防止污染,需要專門的實(shí)驗(yàn)室(區(qū)域)來進(jìn)行檢測(cè)等。
2.3.3 CRISPR/Cas檢測(cè)法
CRISPR/Cas系統(tǒng)是細(xì)菌的免疫系統(tǒng),用于對(duì)抗外來DNA和RNA的入侵。細(xì)菌通過CRISPR RNA和Cas識(shí)別目標(biāo)DNA和RNA,并將入侵的外來核酸裂解。研究顯示,利用CRISPR和Cas,主要是Cas12a和Cas13,可用于檢測(cè)樣本中的特異性核酸[12]。Cas12a和Cas13能分別與引導(dǎo)RNA序列指定的RNA或DNA靶標(biāo)結(jié)合,然后無差別地剪切含熒光信號(hào)的DNA/RNA探針而產(chǎn)生擴(kuò)增信號(hào)[13]??衫肅as12a或Cas13結(jié)合SARS-CoV-2的特定靶標(biāo),通過裂解報(bào)告分子來檢測(cè)有無病毒。已有研究利用基于CRISPR/Cas13的特異性高靈敏度酶促解鎖技術(shù)完成SARS-CoV-2的檢測(cè),成功篩檢出10 ~ 100 copies/μL的樣本[10]。目前,更多的研究者正在研究將多種擴(kuò)增技術(shù)與CRISPR/Cas技術(shù)結(jié)合起來,以使CRISPR/Cas檢測(cè)法發(fā)展成為SARS-CoV-2 RNA的下一代快速檢測(cè)工具[5, 11]。
2.3.4 NGS
在COVID-19疫情初期,NGS即成功幫助我們迅速?gòu)幕颊叩臉颖局需b定出SARS-CoV-2的基因組序列,找到此次疫情的“元兇”[14]。根據(jù)WHO和我國(guó)聯(lián)合發(fā)布的報(bào)告,僅2019年12月底—2020年2月中旬,我國(guó)就分離出104株SARS-CoV-2病毒株,并運(yùn)用Illumina測(cè)序和Oxford納米孔測(cè)序技術(shù)對(duì)它們進(jìn)行了測(cè)序[15]。Illumina測(cè)序是一種使用固相橋放大的序列合成方法,而Oxford納米孔測(cè)序則涉及將DNA分子通過蛋白質(zhì)孔移位,是經(jīng)測(cè)量移位前后的電壓變化來確定DNA序列的。2020年6月,美國(guó)FDA同意可緊急使用Illumina公司基于NGS的COVID-19診斷方法[6],這是NGS首次被批準(zhǔn)用于疾病診斷?;蚪M測(cè)序?qū)τ谠O(shè)計(jì)PCR法和其他核酸檢測(cè)的引物和探針序列非常重要。但在國(guó)內(nèi),NGS目前尚主要用于科研探索,尚無大規(guī)模臨床應(yīng)用的實(shí)例。
2.4 SARS-CoV-2特異性抗原/抗體檢測(cè)
SARS-CoV-2的免疫檢測(cè)是SARS-CoV-2實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)的重要組成,并被認(rèn)為是SARS-CoV-2核酸檢測(cè)的重要補(bǔ)充[3, 16]。國(guó)內(nèi)現(xiàn)有的SARS-CoV-2抗原/抗體檢測(cè)方法均為定性檢測(cè)方法,還無法對(duì)抗原/抗體進(jìn)行定量檢測(cè)。
SARS-CoV-2的特異性抗原檢測(cè)相對(duì)困難,主要的免疫檢測(cè)抗原靶標(biāo)是病毒的核衣殼蛋白和刺突蛋白,通常僅在患者急性感染期或血液中病毒載量較高時(shí)檢測(cè)才可得到陽(yáng)性結(jié)果,故尚不能單獨(dú)用于COVID-19患者的診斷和鑒別[10]。國(guó)內(nèi)迄今批準(zhǔn)的SARS-CoV-2抗原檢測(cè)試劑為數(shù)不多。
現(xiàn)有的大多數(shù)SARS-CoV-2免疫檢測(cè)試劑都為針對(duì)患者血液或體液中的特異性抗體的檢測(cè)試劑,它們一般以病毒的核衣殼蛋白和刺突蛋白作為捕獲抗原,檢測(cè)的是樣本中對(duì)應(yīng)的免疫球蛋白M和免疫球蛋白G。國(guó)內(nèi)已批準(zhǔn)的SARS-CoV-2抗體檢測(cè)方法主要有化學(xué)發(fā)光法、膠體金法、熒光免疫層析法、橫向流動(dòng)免疫分析(lateral flow immunoassay, LFIA)法和酶聯(lián)免疫吸附分析(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)法。化學(xué)發(fā)光法具有線性范圍寬、通量高、自動(dòng)化程度高、操作易于標(biāo)準(zhǔn)化等特點(diǎn),但其依賴于特定的化學(xué)發(fā)光檢測(cè)儀,成本較高,臨床應(yīng)用受到一定的限制;膠體金法、熒光免疫層析法和LFIA法操作簡(jiǎn)便、快捷,對(duì)檢測(cè)人員和場(chǎng)所的要求不高,適用于基層醫(yī)療單位和現(xiàn)場(chǎng)篩查,但靈敏度較低;ELISA法同樣較核酸檢測(cè)操作簡(jiǎn)便、快捷,但其需使用特異性和高親和力的第二抗體(有時(shí)需使用昂貴的重組抗體),使之在即時(shí)檢測(cè)中的應(yīng)用受到限制。有研究顯示,ELISA法檢測(cè)SARS-CoV-2核衣殼蛋白免疫球蛋白G的敏感性顯著高于檢測(cè)其刺突蛋白免疫球蛋白G的敏感性[6],但檢測(cè)免疫球蛋白G和免疫球蛋白M的敏感性是否也存在差異則還未見相關(guān)報(bào)告。分析SARS-CoV-2抗體檢測(cè)相關(guān)研究數(shù)據(jù)發(fā)現(xiàn),單獨(dú)檢測(cè)免疫球蛋白M或免疫球蛋白G的特異性較好,而同時(shí)檢測(cè)免疫球蛋白M和免疫球蛋白G或聯(lián)合檢測(cè)總抗體(免疫球蛋白M、免疫球蛋白G和免疫球蛋白A)可提高檢出率[17-18],但應(yīng)注意此時(shí)易受類風(fēng)濕因子、抗核抗體、嚴(yán)重黃疸等因素的影響而出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果[2]。
需指出的是,抗體檢測(cè)可用于核酸檢測(cè)陰性的疑似感染患者的補(bǔ)充檢測(cè)或聯(lián)合核酸檢測(cè)用于疑似感染患者的診斷,但不能替代核酸檢測(cè)單獨(dú)用作為SARS-CoV-2感染與否的依據(jù),亦不適用于一般人群的篩查[4]。隨著SARS-CoV-2疫苗接種人群的逐漸擴(kuò)大,詳細(xì)詢問患者的疫苗接種史和免疫相關(guān)基礎(chǔ)疾病對(duì)理解其抗體水平的變化及抗體檢測(cè)結(jié)果至關(guān)重要。此外,無論是抗原還是抗體檢測(cè),臨床上多使用患者的血清樣本進(jìn)行檢測(cè)。但有研究表明,對(duì)血清樣本熱滅活會(huì)影響SARS-CoV-2抗體檢測(cè)的結(jié)果,尤其對(duì)免疫球蛋白M檢測(cè)結(jié)果的影響更大[19]。因此,在采用ELISA法等免疫分析法檢測(cè)SARS-CoV-2抗體時(shí),患者的血清樣本最好不經(jīng)熱滅活等預(yù)處理。不過,此時(shí)患者的血清樣本仍有感染能力,實(shí)驗(yàn)室人員應(yīng)注意操作的規(guī)范性和安全性。膠體金法和LFIA法等免疫檢測(cè)法還易受環(huán)境因素如溫度、濕度等的影響,故須對(duì)檢測(cè)環(huán)境進(jìn)行控制。
2.5 其他實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)技術(shù)
對(duì)SARS-CoV-2感染,除上述實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法外,新的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)技術(shù)也不斷涌現(xiàn),其中生物傳感器病毒檢測(cè)平臺(tái)(biosensing platforms for detecting viruses, BPFDV)就是這些新技術(shù)的代表之一。生物傳感器通常由功能受體、傳感器和信號(hào)探測(cè)器/分析儀組成,其可感知目標(biāo)分子并直接向終端用戶發(fā)送光或電信號(hào)等反饋信息。隨著納米技術(shù)的不斷發(fā)展,功能性材料和結(jié)構(gòu)強(qiáng)化技術(shù)的進(jìn)步降低了關(guān)鍵器件的信噪比和采樣響應(yīng)時(shí)間,使得基于生物傳感器的診斷技術(shù)取得了較大進(jìn)步。BPFDV被認(rèn)為是未來緩解PCR法檢測(cè)壓力的有效替代解決方案之一[6, 19]。我國(guó)Shan等[20]致力于研究SARSCoV-2感染后釋放的揮發(fā)性有機(jī)化合物,以金納米顆粒作為傳感器陣列檢測(cè)呼出氣中的疾病特異性生物標(biāo)志物,研發(fā)的裝置能通過揮發(fā)性有機(jī)化合物與金納米顆粒表面發(fā)生連接反應(yīng)所引起的電阻信號(hào)的變化來完成檢測(cè)。不過,這種呼出氣分析儀雖具有快速篩查COVID-19的潛力,但易受環(huán)境濕度和背景疾病等因素的影響,檢測(cè)的敏感性和準(zhǔn)確性均離臨床應(yīng)用的要求有不小的距離[6]。
此外,作為世界人口數(shù)量第一的大國(guó),我國(guó)的國(guó)情決定了各級(jí)醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室需要具備大規(guī)模檢測(cè)SARSCoV-2的能力。但在一些發(fā)達(dá)國(guó)家,如美國(guó)和一些歐洲國(guó)家,人口數(shù)量較少或人口密度較低,故更關(guān)注那些便于攜帶并能快速進(jìn)行COVID-19篩查的便攜式即時(shí)檢測(cè)設(shè)備。這是國(guó)外SARS-CoV-2即時(shí)檢測(cè)產(chǎn)品發(fā)展迅速的主要原因,相關(guān)產(chǎn)品包括GenMark DX公司的ePlex系統(tǒng)、Cepheid公司的Xpert Xpress SARS-CoV-2檢測(cè)系統(tǒng)、Abbott公司的ID NOW檢測(cè)系統(tǒng)、Bosch Healthcare Solutions公司的Vivalytic VRI平臺(tái)和BioFire Defense公司的FilmArray系統(tǒng)等。Zhen等[21]的研究顯示,Xpert Xpress SARS-CoV-2檢測(cè)系統(tǒng)的陽(yáng)性符合率為98.3%,檢測(cè)下限為100 copies/mL;ID NOW檢測(cè)系統(tǒng)的陽(yáng)性符合率為87.7%,檢測(cè)下限為20 000 copies/mL;ePlex系統(tǒng)的陽(yáng)性符合率為91.4%,檢測(cè)下限為1 000 copies/mL。在檢測(cè)所需時(shí)間方面,ID NOW檢測(cè)系統(tǒng)僅需17 min,大大少于Xpert Xpress SARS-CoV-2檢測(cè)系統(tǒng)的46 min和ePlex系統(tǒng)的約1.5 h。
COVID-19的大流行突出了實(shí)驗(yàn)室診斷在傳染病防控方面的關(guān)鍵作用,也對(duì)我國(guó)各級(jí)醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室的能力建設(shè)提出了更高要求。我國(guó)目前的SARS-CoV-2檢測(cè)主要在各級(jí)定點(diǎn)醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行。因此,樣本運(yùn)送和結(jié)果報(bào)告反饋仍需耗費(fèi)一定的時(shí)間。此外,大量樣本的檢測(cè)給實(shí)驗(yàn)室人員帶來了過重的工作壓力,并可能提高交叉污染發(fā)生的風(fēng)險(xiǎn)。針對(duì)現(xiàn)有檢測(cè)體系的不足,我們應(yīng)盡快研發(fā)出高通量、多靶標(biāo)、快速、自動(dòng)化的檢測(cè)系統(tǒng),在保證精度和準(zhǔn)確性的同時(shí),減少對(duì)實(shí)驗(yàn)室條件的依賴,推行分散篩查,提高檢測(cè)效率,降低患者外出就診傳播疾病的風(fēng)險(xiǎn)。
目前,雖已有中、美、俄、英等國(guó)研發(fā)的十余種SARS-CoV-2疫苗獲準(zhǔn)緊急使用,但在世界范圍內(nèi)疫苗的分配和接種情況并不均衡。部分國(guó)家和地區(qū)的COVID-19疫情仍然十分嚴(yán)峻,特別是在部分國(guó)家和地區(qū)檢出的SARS-CoV-2新突變株,它們具有更強(qiáng)的傳染性、致病性和免疫逃逸能力,這給實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)工作敲響了警鐘。醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室應(yīng)做好進(jìn)一步提高檢測(cè)能力的準(zhǔn)備,以應(yīng)對(duì)疫情變化帶來的新挑戰(zhàn)。
參考文獻(xiàn)
[1] 黨燕, 婁金麗. 新型冠狀病毒肺炎的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)現(xiàn)狀[J].標(biāo)記免疫分析與臨床, 2020, 27(4): 702-706.
[2] 中國(guó)醫(yī)院協(xié)會(huì)臨床微生物實(shí)驗(yàn)室專業(yè)委員會(huì), 徐英春, 胡繼紅. 新型冠狀病毒實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)專家共識(shí)[J]. 協(xié)和醫(yī)學(xué)雜志, 2021, 12(1): 18-26.
[3] 廣東省科學(xué)技術(shù)廳新冠肺炎防控指揮辦科研攻關(guān)組實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)協(xié)作組. 廣東地區(qū)新型冠狀病毒實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)專家共識(shí)(全文)[J]. 國(guó)際呼吸雜志, 2020, 40(22): 1681-1689.
[4] Petrosillo N, Viceconte G, Ergonul O, et al. COVID-19, SARS and MERS: are they closely related? [J]. Clin Microbiol Infect, 2020, 26(6): 729-734.
[5] Udugama B, Kadhiresan P, Kozlowski HN, et al. Diagnosing COVID-19: the disease and tools for detection [J]. ACS Nano, 2020, 14(4): 3822-3835.
[6] Orooji Y, Sohrabi H, Hemmat N, et al. An overview on SARS-CoV-2 (COVID-19) and other human coronaviruses and their detection capability via amplification assay, chemical sensing, biosensing, immunosensing, and clinical assays [J]. Nanomicro Lett, 2021, 13(1): 18.
[7] 國(guó)家衛(wèi)生健康委辦公廳, 國(guó)家中醫(yī)藥管理局辦公室. 關(guān)于印發(fā)新型冠狀病毒肺炎診療方案(試行第八版)的通知[EB/OL]. (2020-08-19) [2020-08-22]. http://www.nhc.gov.cn/ yzygj/s7653p/202008/0a7bdf12bd4b46e5bd28ca7f9a7f5e5a. shtml.
[8] Asselah T, Durantel D, Pasmant E, et al. COVID-19: discovery, diagnostics and drug development [J]. J Hepatol, 2021, 74(1): 168-184.
[9] Berlin DA, Gulick RM, Martinez FJ. Severe COVID-19 [J]. N Engl J Med, 2020, 383(25): 2451-2460.
[10] Song Q, Sun X, Dai Z, et al. Point-of-care testing detection methods for COVID-19 [J]. Lab Chip, 2021, 21(9): 1634-1660.
[11] Sun F, Ganguli A, Nguyen J, et al. Smartphone-based multiplex 30-minute nucleic acid test of live virus from nasal swab extract [J]. Lab Chip, 2020, 20(9): 1621-1627.
[12] Gootenberg JS, Abudayyeh OO, Lee JW, et al. Nucleic acid detection with CRISPR-Cas13a/C2c2 [J]. Science, 2017, 356(6336): 438-442.
[13] Abudayyeh OO, Gootenberg JS, Konermann S, et al. C2c2 is a single-component programmable RNA-guided RNAtargeting CRISPR effector [J]. Science, 2016, 353(6299): aaf5573.
[14] Wu F, Zhao S, Yu B, et al. A new coronavirus associated with human respiratory disease in China [J]. Nature, 2020, 579(7798): 265-269.
[15] Lu R, Zhao X, Li J, et al. Genomic characterisation and epidemiology of 2019 novel coronavirus: implications for virus origins and receptor binding [J]. Lancet, 2020, 395(10224): 565-574.
[16] 杜晶輝, 李莎, 劉旭. 新型冠狀病毒肺炎診斷的相關(guān)實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)技術(shù)應(yīng)用[J]. 檢驗(yàn)醫(yī)學(xué), 2020, 35(8): 843-848.
[17] Yuan X, Yang C, He Q, et al. Current and perspective diagnostic techniques for COVID-19 [J]. ACS Infect Dis, 2020, 6(8): 1998-2016.
[18] Lisboa Bastos M, Tavaziva G, Abidi SK, et al. Diagnostic accuracy of serological tests for COVID-19: systematic review and meta-analysis [J]. BMJ, 2020, 370: m2516.
[19] Hu X, An T, Situ B, et al. Heat inactivation of serum interferes with the immunoanalysis of antibodies to SARS-CoV-2 [J]. J Clin Lab Anal, 2020, 34(9): e23411.
[20] Shan B, Broza YY, Li W, et al. Multiplexed nanomaterialbased sensor array for detection of COVID-19 in exhaled breath [J]. ACS Nano, 2020, 14(9): 12125-12132.
[21] Zhen W, Manji R, Smith E, et al. Comparison of four molecular in vitro diagnostic assays for the detection of SARS-CoV-2 in nasopharyngeal specimens [J]. J Clin Microbiol, 2020, 58(8): e00743-20.