趙新華 馬怡茗 賀龍梅 汪紅英
RNA選擇性剪切是調(diào)控蛋白多樣性的重要機(jī)制,在腫瘤發(fā)生與發(fā)展過程中發(fā)揮著重要的作用。伴隨著深度測(cè)序技術(shù)在腫瘤研究中的應(yīng)用,RNA選擇性剪切(Alternative splicing,AS)在腫瘤發(fā)生與發(fā)展過程中的作用引發(fā)研究者的重視[1-3]。RBPMS(RNA-binding protein with multiple splicing)屬于RNA結(jié)合蛋白家族,編碼蛋白的N端有一個(gè)保守的RRM(RNA recognition motif)區(qū)域[4]。其在軸突導(dǎo)向[5]、平滑肌可塑性[6]以及癌細(xì)胞增殖和遷移[7]的調(diào)控過程中發(fā)揮作用,但是在結(jié)腸癌發(fā)生與發(fā)展中的作用還是未知。
氧化偶氮甲烷(azoxymethane,AOM)-葡聚糖硫酸鈉(dextran sulfate sodium,DSS)模型是比較成熟的結(jié)腸炎相關(guān)結(jié)腸癌動(dòng)物模型,可在3個(gè)月內(nèi)模擬急性炎癥修復(fù)期、輕度不典型增生、腺瘤到腺癌的結(jié)腸炎相關(guān)結(jié)腸癌發(fā)生與發(fā)展動(dòng)態(tài)過程。本研究將初步探索RBPMS小鼠和人結(jié)腸癌中的變化,并檢測(cè)其在結(jié)腸癌細(xì)胞增殖中的作用。
將小鼠隨機(jī)分為對(duì)照組和給藥組,對(duì)照組不做任何處理。給藥組在實(shí)驗(yàn)第1天單劑量腹腔注射AOM(12.5 mg/kg),1周后給予含2.5%DSS的飲用水5天,停藥2周,作為1個(gè)DSS周期;共給予4個(gè)周期的DSS。每組各5只小鼠。
分別在第1、2、3、4個(gè)DSS周期結(jié)束時(shí),處死給藥組小鼠,相應(yīng)的命名為AD1(急性炎癥修復(fù)期)、AD2(輕度不典型增生)、AD3(腺瘤)和AD4(腺癌)組,對(duì)照組小鼠命名為Con組。小鼠解剖后取遠(yuǎn)端結(jié)腸(結(jié)腸一半至肛門),結(jié)腸剖開,用生理鹽水清洗干凈,置于液氮中速凍,并存放于-80度冰箱中長期保存。
HCT116細(xì)胞使用RPMI-1640(含10%FBS和1%青鏈霉素)常規(guī)培養(yǎng),當(dāng)融合度高于90%時(shí),使用0.25%胰酶消化傳代。細(xì)胞轉(zhuǎn)染使用lipofectamineTM2000將小干擾RNA及其對(duì)照分別轉(zhuǎn)入HCT116細(xì)胞系。
RBPMS特異性小干擾RNA序列:
siRBPMS#1:
5′-GGAGGUCCGGACCCUAUUUTTAAAUAGG
GUCCGGACCUCCTT-3′;
siRBPMS#2:
5′-CCGCUUCGAUCCUGAAAUUTTAAUUUCA
GGAUCGAAGCGGTT-3′;
siRBPMS#3:
5′-GCUUUCACCUAUCCCGCUUTTAAGCGG
GAUAGGUGAAAGCTT-3′。
RBPMS的引物序列:
RBPMS-F:TATGAGCTCACAGTGCCTGC;
RBPMS-R:GCTAACTCCGCTGGGTACAG。
使用Trizol法提取小鼠結(jié)腸組織的總RNA。使用NanoDrop K5600檢測(cè)提取的總RNA的濃度和純度。
按照Agilent mRNA表達(dá)譜芯片的說明書操作,應(yīng)用檢測(cè)合格的總RNA熒光擴(kuò)增后進(jìn)行芯片雜交,掃描芯片獲取圖像,記錄數(shù)據(jù)。
使用10%福爾馬林對(duì)AD4組小鼠結(jié)腸組織固定24 h,石蠟包埋后切取4 μm厚組織切片。60℃烘烤過夜后,經(jīng)二甲苯和濃度梯度酒精脫蠟。于95℃的0.01 M(pH 6.0)檸檬酸鹽緩沖液中熱修復(fù)15 min,自然冷卻至室溫。滴加3%雙氧水阻斷內(nèi)源性過氧化物酶,利用兔源性RBPMS抗體(1∶100)于4℃孵育過夜。滴加酶標(biāo)抗兔二抗試劑孵育30分鐘,二氨基聯(lián)苯胺顯色,蘇木素復(fù)染,經(jīng)梯度酒精和二甲苯脫水后,使用中性樹脂封片。
使用RIPA(添加蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑)裂解液提取細(xì)胞總蛋白質(zhì),使用NE-PER?Nuclear and Cytoplasmic Extraction Reagents(Thermo Fisher Scientific)提取細(xì)胞核蛋白和胞漿蛋白。使用BCA法檢測(cè)蛋白含量。
取50 μg蛋白質(zhì),使用十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳分離,380 mA橫定電流轉(zhuǎn)膜1 h;5%脫脂奶粉室溫封閉1 h;加入一抗4度過夜;使用TTBS洗膜5 min×3次;加入二抗室溫孵育1 h,使用TTBS洗膜5 min×3次;加入ECL發(fā)光液,使用Amersham Imager 6000化學(xué)發(fā)光成像儀記錄結(jié)果。
細(xì)胞常規(guī)消化、計(jì)數(shù)后接種于96孔板,每孔接種3 000個(gè)細(xì)胞,每組設(shè)5個(gè)復(fù)孔。于接種1天、3天和5天后,每孔加入20 μL MTT(5 mg/mL),繼續(xù)培養(yǎng)4 h。棄上清后,每孔加入200 μL二甲基亞砜(DMSO),振蕩1 min后,檢測(cè)OD490 nm處的吸光度值。
細(xì)胞常規(guī)消化、計(jì)數(shù)后接種于24孔板,每孔接種500個(gè)細(xì)胞,每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔。于接種7天后,棄上清,每孔加入100 μL結(jié)晶紫染料,5 min后,沖洗孔板并拍照計(jì)數(shù)。
細(xì)胞常規(guī)消化后,75%乙醇固定過夜。離心后采用細(xì)胞周期染色液室溫孵育15分鐘,使用流式細(xì)胞儀檢測(cè)周期。
采用Graph Pad Prism 7.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。計(jì)量資料如果呈正態(tài)分布,比較采用單因素或兩因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD方法。檢驗(yàn)水準(zhǔn)為α=0.05。
AOM-DSS模型能夠有效模擬人的結(jié)腸炎相關(guān)結(jié)腸癌病程。小鼠模型不同時(shí)期結(jié)腸全基因組芯片數(shù)據(jù)顯示,RBPMS的表達(dá)水平在結(jié)腸炎相關(guān)結(jié)腸癌發(fā)生與發(fā)展過程中逐漸升高(t=7.165,P<0.01)(圖1)。提示RBPMS可能與結(jié)腸炎相關(guān)結(jié)腸癌的發(fā)生與發(fā)展有關(guān)。進(jìn)一步通過免疫組織化學(xué)染色法檢測(cè)小鼠結(jié)腸癌組織中RBPMS蛋白的表達(dá),結(jié)果顯示腫瘤組織中該蛋白的表達(dá)顯著高于癌旁組織(圖2)。
圖1 AOM/DSS小鼠結(jié)腸炎相關(guān)結(jié)腸癌模型中RBPMS表達(dá)水平的芯片檢測(cè)結(jié)果。AD1:急性炎癥恢復(fù)期;AD2:輕度不典型增生;AD3:腺瘤;AD4:腺癌。**P<0.01。
圖2 免疫組織化學(xué)染色檢測(cè)AOM/DSS小鼠結(jié)腸炎相關(guān)結(jié)腸癌模型中RBPMS表達(dá)。(標(biāo)尺:100 μm)
將小干擾RNA瞬時(shí)轉(zhuǎn)染HCT116細(xì)胞,72 h后收集細(xì)胞總蛋白質(zhì),Western blot檢測(cè)RBPMS的表達(dá)。Western blot檢測(cè)顯示si-RBPMS#2和si-RBPMS#3能夠顯著降低RBPMS的表達(dá)水平(圖3)。
圖3 Western blot檢測(cè)RBPMS特異性小干擾RNA的敲降效率
隨后,進(jìn)一步檢測(cè)敲降RBPMS對(duì)結(jié)腸癌細(xì)胞增殖和克隆形成的影響。結(jié)果顯示,敲降RBPMS能夠顯著抑制HCT116細(xì)胞的增殖能力(圖4)。對(duì)照組細(xì)胞的克隆形成數(shù)為(226±25)個(gè)。敲降RBPMS組的細(xì)胞克隆形成能力顯著降低,克隆形成數(shù)分別為(167.7±12.5)個(gè)(t=3.615,P<0.05),(103.3±8.6)個(gè) (t=8.034, P<0.01)和 (82.6±10.7)個(gè)(t=9.13,P<0.001)(圖5)。
圖4 MTT法檢測(cè)敲降RBPMS對(duì)細(xì)胞增殖的影響。*P<0.05,***P<0.001
圖5 敲降RBPMS對(duì)細(xì)胞克隆形成能力的影響。5A:克隆形成實(shí)驗(yàn)結(jié)晶紫染色代表性結(jié)果圖片;5B:各組克隆形成數(shù)量統(tǒng)計(jì)結(jié)果。*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001
通過流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)敲降RBPMS對(duì)結(jié)腸癌細(xì)胞細(xì)胞周期的影響。結(jié)果顯示,使用siRNA敲降RBPMS,處于G1期的細(xì)胞比例由(79.65±1.17)%上升為(88.61±1.21)%(t=4.564,P<0.05),(83.65±2.49)%(t=2.784,P<0.05)和(83.52±1.34)%(t=3.763,P<0.05);而處于S期的細(xì)胞比例由(10.43±0.48)%下降為(5.73±1.2)%(t=3.634,P<0.05),(6.17±0.83)%(t=4.044, P<0.05) 和 (5.47±1.16)% (t=3.952,P<0.05)。敲降RBPMS能夠造成HCT116細(xì)胞G0/G1期阻滯,且S期細(xì)胞比例顯著降低(圖6)。
圖6 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)敲降RBPMS對(duì)細(xì)胞周期的影響。6A:流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)周期結(jié)果圖;6B:各組G1期、S期和G2期統(tǒng)計(jì)結(jié)果圖。*P<0.05
RNA選擇性剪接是多外顯子基因組中翻譯蛋白多樣性的重要機(jī)制,通過選擇性地對(duì)前體mRNA剪接位點(diǎn)的組合加工,形成不同的成熟mRNA,可以使一個(gè)基因翻譯成不同結(jié)構(gòu)和功能的異構(gòu)體,進(jìn)而改變功能結(jié)構(gòu)域,親和力及穩(wěn)定性[11-12]。約90%的基因存在選擇性剪接,且60%的剪接產(chǎn)生的異構(gòu)體編碼不同的蛋白[13]。選擇性的對(duì)前體mRNA剪接位點(diǎn)的組合加工,形成不同的成熟mRNA,可以使一個(gè)基因翻譯成不同結(jié)構(gòu)和功能的異構(gòu)體,進(jìn)而改變功能結(jié)構(gòu)域,親和力及穩(wěn)定性[14]。例如:BCL2L1 pre-mRNA選擇性剪接產(chǎn)生的BCL-XL在很多腫瘤中是抗凋亡功能,而腫瘤中低表達(dá)的BCL-XS則有明顯的促凋亡作用[14-16]。在腫瘤的發(fā)生與發(fā)展過程中任何作用蛋白的變化、作用元件或剪切位點(diǎn)的突變都會(huì)導(dǎo)致促癌基因或抑癌基因的異常剪接,導(dǎo)致細(xì)胞的惡性轉(zhuǎn)化[17],過度增殖[18],轉(zhuǎn)移[18]及藥物抗性增強(qiáng)[19]等。
本研究發(fā)現(xiàn)在結(jié)腸炎相關(guān)結(jié)腸癌組織中RBPMS mRNA表達(dá)水平升高,并且敲降該基因可以顯著抑制結(jié)腸癌細(xì)胞系HCT116的增殖和克隆形成能力。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)敲降RBPMS造成結(jié)腸癌細(xì)胞G0/G1期阻滯,S期細(xì)胞減少。這提示RBPMS可能發(fā)揮癌基因的作用。但是目前關(guān)于RBPMS在腫瘤中的作用報(bào)道較少,大多數(shù)研究顯示該基因可能發(fā)揮抑癌基因的作用。在多發(fā)性骨髓瘤(multiple myeloma,MM),其低表達(dá)與晚期MM相關(guān),EZH2通過啟動(dòng)子的甲基化在轉(zhuǎn)錄水平抑制RBPMS的表達(dá),并參與耐藥過程[20-21]。而且,RBPMS調(diào)控 MYC, Bcl-2, p15INK4b, p21CIP1/WAF1,p57KIP2等基因的表達(dá)抑制細(xì)胞增殖、促進(jìn)細(xì)胞凋亡[22-23]。雖然RBPMS在結(jié)腸癌中的促癌作用還需要進(jìn)一步的驗(yàn)證,但是我們的研究提示該基因在不同的腫瘤中,可能發(fā)揮截然不同的作用。未來我們需要更多的研究明確結(jié)腸炎相關(guān)結(jié)腸癌中RBPMS的靶基因及其調(diào)控機(jī)制。