侯曦露,唐　郡,朱　斌,嚴(yán)和中,余森源,賀　艷,歷海清,王教學(xué),劉　衛(wèi)△

(1.安徽醫(yī)科大學(xué)附屬解放軍臨床學(xué)院消化內(nèi)科/解放軍第一〇五醫(yī)院消化內(nèi)科，合肥 230601；2.蚌埠醫(yī)學(xué)院附屬解放軍臨床學(xué)院消化內(nèi)科，合肥 230031)

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抑制組蛋白去乙酰酶1后對(duì)人胃癌干細(xì)胞的影響*

侯曦露1,唐郡1,朱斌1,嚴(yán)和中1,余森源1,賀艷2,歷海清1,王教學(xué)1,劉衛(wèi)1△

(1.安徽醫(yī)科大學(xué)附屬解放軍臨床學(xué)院消化內(nèi)科/解放軍第一〇五醫(yī)院消化內(nèi)科，合肥 230601；2.蚌埠醫(yī)學(xué)院附屬解放軍臨床學(xué)院消化內(nèi)科，合肥 230031)

[摘要]目的研究抑制組蛋白去乙?；?(HDAC1)后對(duì)人胃癌干細(xì)胞(GCSGs)增殖、干性及侵襲作用的影響。方法以CD44為胃癌干性標(biāo)志物，流式分選出GCSCs。實(shí)時(shí)熒光定量核酸擴(kuò)增檢測(cè)(RT-qPCR)和蛋白免疫印跡法(Western blot)分別檢測(cè)GCSGs與胃癌非干細(xì)胞中HDAC1的表達(dá)量。組蛋白去乙酰化酶抑制劑處理GCSCs后，CCK-8法、克隆形成和Transwell實(shí)驗(yàn)觀察細(xì)胞增殖和侵襲的變化；RT-qPCR和Western blot檢測(cè)其對(duì)凋亡、侵襲相關(guān)蛋白及干性標(biāo)志物表達(dá)的影響。結(jié)果HDAC1在GCSCs中的表達(dá)比胃癌非干細(xì)胞高。實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞的增殖和侵襲能力相較于對(duì)照組均減弱，且下調(diào)干性標(biāo)志物及介導(dǎo)上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化。結(jié)論抑制HDAC1的去乙?；饔煤驡CSCs的增殖、干性及侵襲能力降低。

[關(guān)鍵詞]組蛋白去乙?；?；胃癌干細(xì)胞；增殖；干性；侵襲

胃癌是我國(guó)常見(jiàn)的惡性腫瘤之一，其病死率居惡性腫瘤的首位[1]。即使正規(guī)治療后，大多數(shù)患者仍死于轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)[2]。腫瘤干細(xì)胞是一種具有自我更新和產(chǎn)生異質(zhì)性腫瘤細(xì)胞系的腫瘤細(xì)胞亞群[3]。近年研究表明，腫瘤干細(xì)胞對(duì)多種腫瘤增殖和侵襲作用相關(guān)[3]。然而腫瘤干細(xì)胞增殖與侵襲的相關(guān)分子標(biāo)志物與胃癌的關(guān)系尚需確定。表觀遺傳修飾是分子調(diào)控中的重要作用模式之一，在細(xì)胞的增殖、分化中起著重要的作用。組蛋白乙?；?去乙?；{(diào)控是表觀遺傳學(xué)中研究的主要內(nèi)容，組蛋白去乙?；?(HDAC1)催化組蛋白去乙?；饔茫墒够蜣D(zhuǎn)錄活性下降[1]。近年來(lái)研究表明，異常的組蛋白去乙酰化可能與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展相關(guān)，并且HDAC1在結(jié)腸癌、肝癌、胰腺癌和前列腺癌中均高表達(dá)[4-8]。筆者前期研究結(jié)果提示，HDAC1在胃癌干細(xì)胞(GCSCs)中表達(dá)異常，同時(shí)也提示HDAC1可能在GCSCs自我更新及分化過(guò)程中起一定的作用。因此，本研究通過(guò)CCK-8法、克隆形成、Transwell實(shí)驗(yàn)及檢測(cè)干性(SOX2、BMI1、c-Myc)、侵襲(E-cadherin、Vimentin)標(biāo)志物的表達(dá)，探究去乙?；敢种苿?TSA)抑制HDAC1去乙?；饔煤髮?duì)GCSCs中增殖、干性及侵襲的影響，以進(jìn)一步明確HDAC1在GCSCs生長(zhǎng)中的作用。

1材料與方法

1.1材料人胃癌MGC803細(xì)胞(購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù))培養(yǎng)于含10%胎牛血清、雙抗(青霉素100 U/mL+鏈霉素100 μg/mL)的RPMI-1640培養(yǎng)液，置于37 ℃、5% CO2和100%濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。將實(shí)驗(yàn)分成兩組，每組培養(yǎng)48 h，每24小時(shí)更換1次培養(yǎng)液。實(shí)驗(yàn)組：培養(yǎng)液中TSA濃度400 nmol/L；對(duì)照組：培養(yǎng)液中與實(shí)驗(yàn)組TSA等量的DMSO。

1.2主要試劑RPMI-1640培養(yǎng)基(美國(guó)Gibco公司)；胎牛血清(杭州四季青生物制品公司)；CCK8(上海碧云天生物制品公司)；TSA(美國(guó)Cayman公司)；鼠抗人HDAC1、SOX2、BMI1、c-Myc 、GAPDH單克隆抗體(美國(guó)Santa Cruz公司)；鼠抗人E-cadherin、Vimentin單克隆抗體(美國(guó)Cell Signaling Technology公司)；羊抗鼠二抗(上海碧云天生物制品公司)。

1.3方法

1.3.1流式分選收集1×106個(gè)貼壁培養(yǎng)的胃癌MGC803細(xì)胞， 磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗2次，重懸在100 μL FACS緩沖液中。設(shè)立實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組，實(shí)驗(yàn)組加入CD133-PE和CD133-FITC各10 μL，對(duì)照組為CD133-PE和CD133-FITC單陽(yáng)性對(duì)照組，陰性對(duì)照加入10 μL同型對(duì)照抗體，于4 ℃避光孵育，每隔10 min混懸1次細(xì)胞，30 min后流式細(xì)胞儀檢測(cè)。流式分選的目標(biāo)細(xì)胞群體為CD133+和CD133-細(xì)胞亞群。

1.3.2平板克隆形成用0.25%胰酶徹底分離MGC803-control 和MGC803-TSA細(xì)胞，使其為單細(xì)胞懸液，以200個(gè)/孔的濃度接種到6孔板中。用含有10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基培養(yǎng) 2周，Giemsa染色后計(jì)數(shù)菌落個(gè)數(shù)。

1.3.3實(shí)時(shí)熒光定量核酸擴(kuò)增檢測(cè)(RT-qPCR)按照TRIzol(TAKARA,Kyoto,Japan)說(shuō)明書(shū)提取總RNA，經(jīng)紫外分光光度計(jì)測(cè)量其純度及濃度后，分別取總RNA 1 000 ng，按照運(yùn)轉(zhuǎn)錄試劑盒說(shuō)明書(shū)操作，逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)合成20 μL體系cDNA。以反應(yīng)所得cDNA及SYBR Premix Ex TaqⅡ (TAKARA,Kyoto,Japan)進(jìn)行定量PCR擴(kuò)增，以GAPDH為內(nèi)參照。所有引物序列見(jiàn)表1。

表1　RT-qPCR檢測(cè)引物序列

1.3.4蛋白免疫印跡法(Western blot)檢測(cè)用含有1 mmol/L蛋白酶抑制劑的RIPA裂解液在冰上裂解細(xì)胞30 min。將總細(xì)胞裂解物在4 ℃下離心15 min后吸取上清液并用DAB試劑(Thermo,USA)測(cè)量總蛋白水平。以10%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分離，半干電轉(zhuǎn)移法轉(zhuǎn)至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜，室溫下?lián)u床封閉2 h。4 ℃過(guò)夜敷一抗，PBST洗膜后放入羊抗鼠二抗(1∶5 000)中，室溫孵育1～2 h，PBST洗膜后電化學(xué)發(fā)光法顯色，以GAPDH為內(nèi)參照。

1.3.5CCK-8檢測(cè)用0.25%胰酶分離MGC803-control和MGC803-TSA細(xì)胞，使其成為單細(xì)胞懸液，以5 000個(gè)/孔的濃度接種到96孔板中。每組設(shè)4個(gè)平行孔,并設(shè)3個(gè)不含細(xì)胞的空白對(duì)照，37 ℃環(huán)境中用含有10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h使細(xì)胞貼壁后，每孔加入10 μL CCK-8試劑，繼續(xù)培養(yǎng)2 h后檢測(cè)光密度(OD)值(450 nm)。

1.3.6體外侵襲實(shí)驗(yàn)在Transwells上室中加入20 μL Matrigel/RPMI-1640 (1∶2)混合液后放入37 ℃孵育箱中30 min使其凝固。用0.25%胰酶分離MGC803-control和MGC803-TSA細(xì)胞，使其成為單細(xì)胞懸液，以3×104個(gè)/孔的濃度接種到Transwells上室中。上室再加入200 μL無(wú)血清RPMI-1640培養(yǎng)基，下室加入500 μL含有10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基。在37 ℃中培養(yǎng)24 h后，用4%多聚甲醛將上室細(xì)胞固定15 min,結(jié)晶紫染色5 min,最后用棉簽小心擦拭染色細(xì)胞。隨機(jī)取10個(gè)200倍下視野拍照并計(jì)數(shù)細(xì)胞個(gè)數(shù)。

2結(jié)果

2.1HDAC1在GCSCs與胃癌非干細(xì)胞中的表達(dá)將流式分選的CD133+GCSCs和CD133-胃癌非干細(xì)胞分別通過(guò)RT-qPCR和Western blot的方法在mRNA和蛋白水平上檢測(cè)HDAC1表達(dá)水平。結(jié)果表明在mRNA和蛋白水平上HDAC1在CD133+GCSCs的表達(dá)高于CD133-胃癌非干細(xì)胞，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)，見(jiàn)圖1、2。

2.2GCSCs增殖能力的變化抑制HDAC1去乙?；瘜?dǎo)致GCSCs增殖能力降低。為了檢測(cè)HDAC1去乙?；瘜?duì)GCSCs增殖能力的影響，采用200 nmol/L TSA處理GCSCs 24 h。細(xì)胞增殖通過(guò)CCK-8實(shí)驗(yàn)和克隆實(shí)驗(yàn)檢測(cè)。如圖3所示：前3 d 實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組中細(xì)胞的增殖能力差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。后3 d 實(shí)驗(yàn)組GCSCs的增殖能力較對(duì)照組逐漸減弱，而且隨著時(shí)間的推移，兩組差距增大(P<0.05)。TSA抑制GCSCs的增殖能力且具有時(shí)間依賴性。克隆形成實(shí)驗(yàn)結(jié)果也表明，實(shí)驗(yàn)組GCSCs的克隆形成能力比對(duì)照組明顯減弱(P<0.01)，HDAC1去乙?；灰种坪驡CSCs的增殖能力明顯降低，見(jiàn)圖4。

圖1　流式分選出CD133+和CD133-的胃癌細(xì)胞

2.3處理GCSCs后侵襲能力的變化抑制HDAC1去乙?；瘜?dǎo)致GCSCs侵襲能力降低基于侵襲是GCSCs重要特征之一，通過(guò)Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)GCSCs的侵襲能力。為了評(píng)估HDAC1在GCSCs侵襲中的作用，用TSA抑制HDAC1去乙?；?，從而使HDAC1失去功能。實(shí)驗(yàn)組GCSCs的侵襲能力顯著減弱(50%，P<0.01)，見(jiàn)圖5。

圖2　RT-qPCR和Western blot鑒定HDAC1在CD133+

2.4抑制HDAC1去乙?；瘜?dǎo)致GCSCs干性蛋白的下調(diào)和介導(dǎo)上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)因?yàn)槲赴┠[瘤干性標(biāo)志物都不夠特異，所以檢測(cè)了幾種可能維持腫瘤干細(xì)胞干性的轉(zhuǎn)錄因子表達(dá)情況。RT-qPCR和Western blot表明實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞的Sox2、Bmi1和c-Myc 的mRNA和蛋白表達(dá)量均比對(duì)照組細(xì)胞的表達(dá)量低(P<0.05)。為探究實(shí)驗(yàn)組侵襲能力減弱的可能機(jī)制，筆者進(jìn)一步檢測(cè)了TSA抑制HDAC1乙?；饔煤蠹?xì)胞中侵襲相關(guān)分子的表達(dá)，發(fā)現(xiàn)抑制HDAC1乙酰化后Vimentin的mRNA和蛋白表達(dá)均降低(P<0.05)。而E-cadherin的mRNA和蛋白表達(dá)均增高(P<0.05)，見(jiàn)圖6。

圖3　CCK-8實(shí)驗(yàn)檢測(cè)TSA處理GCSCs

A:兩組克隆實(shí)驗(yàn)；B:兩組克隆個(gè)數(shù)定量分析。

圖4克隆實(shí)驗(yàn)檢測(cè)TSA處理GCSCs后增殖能力的變化

A:兩組Transweel實(shí)驗(yàn)(×200)；B:兩組侵襲細(xì)胞數(shù)定量分析。

圖5處理GCSCs后侵襲能力的變化

圖6　RT-qPCR和Western blot檢測(cè)TSA處理GCSCs后

3討論

HDACs屬于去乙?；讣易?，有Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ 4型。HDACs可通過(guò)調(diào)節(jié)組蛋白或者轉(zhuǎn)錄因子等其他蛋白的轉(zhuǎn)錄從而調(diào)節(jié)基因轉(zhuǎn)錄[9]。近年發(fā)現(xiàn)，HDACs參與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展，且在人類(lèi)多種腫瘤細(xì)胞中均高表達(dá)，如HDACs可增加腫瘤細(xì)胞的增殖能力，可影響細(xì)胞外基質(zhì)從而增強(qiáng)腫瘤細(xì)胞侵襲和轉(zhuǎn)移的能力。同時(shí)HDACs抑制劑可通過(guò)抑制去乙酰化作用從而抑制體外腫瘤細(xì)胞的增殖[10]。組蛋白的去乙酰化修飾在胚胎干細(xì)胞干性的維持和分化過(guò)程中起著非常重要的作用。大量研究表明，胚胎干細(xì)胞特征性的基因都受去乙?；降恼{(diào)控，例如BMI1、OCT4和SOX2等，對(duì)胚胎干細(xì)胞的自我更新和分化的狀態(tài)產(chǎn)生重要影響[11]。其中，HDAC1是一種與腫瘤關(guān)系最密切的組蛋白去乙酰化酶[4]。

HDAC1是由美國(guó)哈佛大學(xué)的Taunton等發(fā)現(xiàn)的第1個(gè)哺乳動(dòng)物的組蛋白去乙?；?，其蛋白質(zhì)含有482個(gè)氨基酸，相對(duì)分子質(zhì)量約5.5×104。HDAC1不僅抑制基因的轉(zhuǎn)錄，而且可以通過(guò)線粒體轉(zhuǎn)位促進(jìn)癌基因合成，抑制細(xì)胞凋亡與分化障礙。因此，深入探討HDAC1的調(diào)節(jié)機(jī)制有助于研發(fā)高效安全的靶向藥物。前期筆者驗(yàn)證了HDAC1在GCSCs中高表達(dá)。為了探究HDAC1去乙?；饔脤?duì)GCSCs的影響，通過(guò)TSA抑制HDAC1的去乙?；饔?，發(fā)現(xiàn)抑制乙?；驡CSCs的增殖、侵襲及其干性能力均減弱。另外，莊涵虛等[1]用HDAC1 siRNA干擾片段干擾HDAC1的表達(dá)后發(fā)現(xiàn)HDAC1 siRNA可使胃癌細(xì)胞MGC-803癌基因c-Myc基因表達(dá)降低，下調(diào)凋亡相關(guān)蛋白caspase-9、caspase-3及抗凋亡蛋白BCL-2。同時(shí)Zhang等[12]發(fā)現(xiàn)HDAC抑制劑能活化胃癌細(xì)胞系中的抑癌基因p21 VAF1，組蛋白去乙酰化可使胃癌細(xì)胞中p21VAF1基因失活，而p21VAF1基因可影響c-Myc、Bcl-2的表達(dá)，從而抑制DNA的復(fù)制，阻斷細(xì)胞周期。

研究胃癌細(xì)胞的干性對(duì)于了解胃癌細(xì)胞轉(zhuǎn)移的機(jī)制至關(guān)重要。然而，GCSCs的分離和培養(yǎng)仍具有挑戰(zhàn)性。盡管大多數(shù)的胃癌細(xì)胞表達(dá)CD133，但其可作為GCSCs的一個(gè)標(biāo)志分子。本研究發(fā)現(xiàn)抑制HDAC1去乙酰化后，干性因子SOX2、BMI1、c-Myc的表達(dá)也隨之降低。張永杰等[13]發(fā)現(xiàn)在腸型胃癌組織標(biāo)本中HDAC1和Oct4兩者表達(dá)呈正相關(guān)，且HDAC1可通過(guò)調(diào)節(jié)Oct4的表達(dá)從而維持干細(xì)胞的干性特征和多能性。說(shuō)明HDAC1的去乙?；饔脤?duì)維持GCSCs的干性有影響，因此HDAC1有望成為鑒定和分離GCSCs的一個(gè)新的標(biāo)志物。

EMT是胚胎發(fā)育過(guò)程中的一個(gè)關(guān)鍵步驟，并且是休眠腫瘤細(xì)胞獲得侵襲能力的一種最常見(jiàn)的現(xiàn)象[14]。越來(lái)越多的證據(jù)表明EMT與GCSCs侵入鄰近胃癌組織相關(guān)[2]。EMT的主要分子機(jī)制為上調(diào)間質(zhì)標(biāo)志物和下調(diào)上皮標(biāo)志物[15]。研究發(fā)現(xiàn)，抑制HDAC1去乙酰化水平后，GCSCs間質(zhì)標(biāo)志物Vimentin表達(dá)降低和上皮標(biāo)志物細(xì)胞黏附分子E-cadherin表達(dá)升高，該結(jié)果代表EMT過(guò)程的抑制。本研究結(jié)果表明HDAC1去乙?；饔猛ㄟ^(guò)介導(dǎo)EMT促進(jìn)GCSCs的侵襲作用。

綜上所述，TSA抑制GCSCs HDAC1去乙酰化作用后，體外GCSCs的增殖、干性和侵襲能力顯著降低。其機(jī)制可能與下調(diào)干性標(biāo)志物、凋亡相關(guān)蛋白及EMT相關(guān)蛋白相關(guān)。本研究豐富了HDAC1在GCSCs中的作用研究，探究其成為胃癌預(yù)測(cè)指標(biāo)的可能性。但其在腫瘤致瘤、進(jìn)展、增殖、侵襲等方面相關(guān)具體分子機(jī)制復(fù)雜，所以HADC1影響GCSCs干性、增殖和侵襲的其他機(jī)制有待進(jìn)一步研究。

參考文獻(xiàn)

[1]莊涵虛，馬旭東，賴亞棟，等．RNA干擾沉默HDAC1基因?qū)ξ赴┘?xì)胞增殖、凋亡、組蛋白乙?；图谆挠绊慬J]．南方醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)，2014，34(2)：246-250．

[2]Yang L,Ping YF,Yu X,et al.Gastric cancer stem-like cells possess higher capability of invasion and metastasis in association with a mesenchymal transition phenotype[J].Cancer Lett,2011,310(1):46-52.

[3]Yang L,Ren Y,Yu X,et al.ALDH1A1 defines invasive cancer stem-like cells and predicts poor prognosis in patients with esophageal squamous cell carcinoma[J].Mod Pathol,2014,27(5):775-783.

[4]董潔，尹曉燕，崔錚，等．組蛋白去乙?；?對(duì)人胃癌發(fā)生發(fā)展的影響[J]．中國(guó)醫(yī)藥指南，2011，9(17)：60-62．

[5]李曾，廖洪，譚政，等．組蛋白去乙?；?在人腎癌、膀胱癌和前列腺癌組織中的表達(dá)及臨床意義[J]．廣東醫(yī)學(xué)，2012，33(1)：92-95．

[6]呂必華，張玲，朱長(zhǎng)才，等．姜黃素抑制HepG2細(xì)胞HDAC1活性及促進(jìn)P21WAF1/CIP1表達(dá)的研究[J]．中國(guó)中藥雜志，2007，32(19)：2051-2055．

[7]Higashijima J,Kurita N,Miyatani T,et al.Expression of histone deacetylase 1 and metastasis-associated protein 1 as prognostic factors in colon cancer[J].Oncol Rep,2011,26(2):343-348.

[8]高道鍵，徐岷，張玉琦，等．RNA干擾組蛋白去乙?；?對(duì)人胰腺癌細(xì)胞增殖、凋亡的調(diào)控機(jī)制研究[J]．解放軍醫(yī)學(xué)雜志，2010，35(4)：380-383．

[9]Pflum MK,Tong JK,Lane WS,et al.Histone deacetylase 1 phosphorylation promotes enzymatic activity and complex formation[J].J Biol Chem,2001,276(50):47733-47741.

[10]谷華偉，劉艷，桑軍俠，等．組蛋白去乙?；敢种苿┑难芯窟M(jìn)展[J]．中國(guó)當(dāng)代醫(yī)藥，2015，7(16)：15-21．

[11]Hattori N,Imao Y,Nishino K,et al.Epigenetic regulation of Nanog gene in embryonic stem and trophoblast stem cells[J].Genes Cells,2007,12(3):387-396.

[12]Zhang Q,Song Y,Chen W,et al.By recruiting HDAC1,MORC2 suppresses p21 Waf1/Cip1 in gastric cancer[J].Oncotarget,2015,6(18):16461-16470.

[13]張永杰，秦叔逵，王杰軍，等．腸型胃癌中HDAC1與Oct4表達(dá)的相關(guān)性研究[J/CD]．中華臨床醫(yī)師雜志(電子版)，2013，7(14)：6387-6390．

[14]Lee HJ,Park MK,Lee EJ,et al.Resolvin D1 inhibits TGF-β1-induced epithelial mesenchymal transition of A549 lung cancer cells via lipoxin A4 receptor/formyl peptide receptor 2 and GPR32[J].Int J Biochem Cell Biol,2013,45(12):2801-2807.

[15]Xu YF,Ge FJ,Han B,et al.High-mobility group box 1 expression and lymph node metastasis in intrahepatic cholangiocarcinoma[J].World J Gastroenterol,2015,21(11):3256-3265.

Effection of HDAC1 deacetylase inhibition on gastric cancer stem cells*

Hou Xilu1,Tang Jun1,Zhu Bin1,Yan Hezhong1,Yu Senyuan1,He Yan2,Li Haiqing1,Wang Jiaoxue1,Liu Wei1△

(1.DepatmentofGastroenterology,theAffiliatedPeople′sLiberationArmyClinicalCollegeofAnhuiMedicalUniversity/the105thHospitalofPeople′sLiberationArmy,Hefei,Anhui230060,China;2.DepatmentofGastroenterology,theAffiliatedPeople′sLiberationArmyClinicalCollegeofBengbuMedicalCollege,Hefei,Anhui230031,China)

[Abstract]ObjectiveTo explore the effect of HDAC1 deacetylase inhibition on the proliferation differentiation and invasion in human gastric cancer stem cells(GCSCs).MethodsThe GCSCs were selected as CD44 marker by using flow cytometry.RT-qPCR and Western Blot were used to detect the expression of HDAC1 in GCSCs and non GCSCs.The effect of proliferation and invasion in GCSCs were observed by CCK-8 assay,colony formation and transwell assay after the cells were treated with TSA.The expression of proteins related apoptosis,differentiation and invasion were detected by using RT-qPCR and Western blot.ResultsThe expression of HDAC1 in GCSCs was higher than that in non GCSCs.The capacities of proliferation and invasion in experimental group were attenuated compared to the control group.The proteins related differentiation was down regulated,and epithelial mesenchymal transition was mediated.ConclusionAfter the deacetylation of HDAC1 was inhibited,the proliferation,differentiation and invasion of GCSCs were reduced.

[Key words]HDAC1;gastric cancer stem cells;proliferation;differentiation;invasion

doi:·論著·10.3969/j.issn.1671-8348.2016.17.005

*基金項(xiàng)目：南京軍區(qū)面上A類(lèi)項(xiàng)目(11MA041)。

作者簡(jiǎn)介：侯曦露(1989-)，住院醫(yī)師，碩士，主要從事胃癌的分子生物學(xué)研究。△通訊作者，Tel:18909696246；E-mail:liuwei196432@sina.com。

[中圖分類(lèi)號(hào)]R735.2

[文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼]A

[文章編號(hào)]1671-8348(2016)17-2319-04

(收稿日期：2015-11-28修回日期：2016-01-14)