顏茂華 許斌 趙立來 朱求亮 羅建民 楊正明
[摘要] 目的 觀察骨肉瘤患者Ⅰ型膠原α1(COL1A1)基因多態(tài)性,探討骨肉瘤與COL1A1基因多態(tài)性的相關(guān)性。 方法 收集骨肉瘤以及正常患者外周血樣本,應(yīng)用焦磷酸測序方法(Pyrosequencing)對54例骨肉瘤患者與126例健康對照者COL1A1基因rs1061970位點進行分析。 結(jié)果 54例骨肉瘤患者COL1A1rs1061970位點基因型頻率中,TT(13.0%)和CT(48.1%)要顯著高于正常對照組TT基因型頻率11.9%及CT等位基因頻率30.2%(P<0.05),骨肉瘤患者組中T等位基因的頻率為37.0%,高于對照組的27.0%,OR為1.59,95%CI 0.99~2.57,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),但是骨肉瘤的發(fā)病風險仍呈上升趨勢。 結(jié)論 COL1A1基因多態(tài)性與骨肉瘤的發(fā)生具有相關(guān)性,攜帶COL1A基因T等位基因的發(fā)生骨肉瘤的風險增高。
[關(guān)鍵詞] 骨肉瘤;Ⅰ型膠原;基因多態(tài)性
[中圖分類號] R966;R979.1 [文獻標識碼] A [文章編號] 1673-9701(2015)03-0019-04
骨肉瘤作為好發(fā)于青少年的惡性腫瘤,手術(shù)方法多為廣泛切除或者截肢,導(dǎo)致致殘致畸,患者后續(xù)生活質(zhì)量較差,故而早期預(yù)警、診斷以及治療變得異常重要。近年研究結(jié)果顯示,膠原在骨組織中除了對結(jié)構(gòu)蛋白起到支持作用外,還可以深刻影響骨細胞的分化[1]、增殖[1]、粘附[2,3]以及形態(tài)發(fā)生[4],而且和癌細胞的骨轉(zhuǎn)移也息息相關(guān)[5-7]。正常的骨組織中,90%的骨基質(zhì)由Ⅰ性膠原構(gòu)成,而軟骨中以Ⅱ型膠原為主。骨肉瘤發(fā)生時候,膠原的含量以及類型的變化可能影響骨肉瘤的分類、分化以及預(yù)后,有研究顯示[8],Ⅰ型膠原的表達在不同分化水平的骨肉瘤中表達有顯著差異,因此,可作為骨肉瘤分化以及惡性程度判斷的參考標準。Ⅰ型膠原α1(COL1A1)基因主要編碼Ⅰ型膠原的α1鏈,是構(gòu)成3股螺旋鏈不可或缺的一部分。該基因啟動子和UTR區(qū)域具有單核苷酸多態(tài)性(SNP),某些位點的SNP不僅引起單核苷酸堿基的改變,最后可導(dǎo)致蛋白表達和構(gòu)象變化,這種變化目前已被證實可能與許多疾病密切相關(guān),比如高度近視[9]、肝纖維化[10]、骨礦物質(zhì)密度和礦物質(zhì)轉(zhuǎn)換[11]以及椎間盤疾病[12]。骨肉瘤作為結(jié)締組織病的一種,相關(guān)的風險基因尚缺少系統(tǒng)研究,因此,對COL1A1基因多態(tài)性與骨肉瘤易感性關(guān)系的研究,將有助于更好地為提示患者患病風險提供預(yù)警。
1 資料與方法
1.1 臨床資料
于2008年1月~2013年12月期間,收集研究對象血液或石蠟切片。126例健康對照者來自我院體檢中心,其中男80例,女46例,年齡(25±10)歲。54例骨肉瘤患者來自我院骨科病房,其中男39例,女15例,年齡7~35歲,平均(20±10)歲,兩組患者年齡和性別的差異無統(tǒng)計學意義。骨肉瘤患者組納入標準為經(jīng)過臨床、影像及病理學(穿刺或者組織活檢)確診為骨肉瘤;排除標準:有遺傳性腫瘤綜合征史。病理類型:骨母細胞、軟骨母細胞亞型 39例,纖維母細胞型及混合型 15例;腫瘤位置:上肢骨 16例,下肢骨 38例;Enneking GTM分期:ⅠA、ⅠB期 9例,ⅡA、ⅡB、Ⅲ期 45例;轉(zhuǎn)移:有轉(zhuǎn)移 14例,無轉(zhuǎn)移 40例;治療方式:截肢 18例,保肢36例。
1.2 DNA提取
每例研究對象取外周靜脈血4 mL或者取其石蠟組織切片。全血使用2%EDTA抗凝,運輸至實驗室后,常規(guī)苯酚-氯仿法提取DNA,所取DNA溶于TE溶液,檢測純度和含量。取部分DNA模板4℃冰箱保存?zhèn)溆茫溆嗟姆盅b后-20℃凍存,石蠟包埋樣本利用Qiagen公司QIAamp DNA FFPE Tissue試劑盒中提取說明進行,切片厚度在5 μm以上。
1.3 基因多態(tài)性檢測
COL1A1基因SNP檢測:采用聚合酶鏈反應(yīng)結(jié)合焦磷酸測序(PCR-Pyrosequencing)方法進行COL1A1基因型檢測,COL1A1 rs1061970基因型,擴增含該多態(tài)位點的PCR引物序列為5′-TGT TCC TTT TTG TTC AAA GTC TAT-3′和biotin-5′-AAA ATT CAC AAG TCC CCA TCC-3′,測序引物為:5-ttattccttgatattttttc-3,產(chǎn)物為88bp。PCR反應(yīng)體系為25 μL,包括Taq聚合酶1U,MgCl2 2.0 mmol/L,dNTPs 0.2 mmol/L,上下游引物各0.2 μmol/L,DNA模板。PCR條件為:95℃預(yù)變性3 min,然后94℃ 30 s,60℃ 30 s,72℃ 45 s進行30個循環(huán)后,72℃延伸8 min。取適量PCR產(chǎn)物進行單鏈化,結(jié)合測序序列后使用SNP檢測通用試劑盒PyroMarkR. Gold Q96,用焦磷酸測序儀(PyroSequencer,Qiagen)進行檢測。每一批PCR反應(yīng)均以蒸餾水替代DNA模板作為陰性對照,并隨機抽取10%的DNA標本進行二次分析以驗證分析方法的正確性。
1.4 統(tǒng)計學方法
根據(jù) Hardy-Weinberg平衡定律(H-W平衡定律),按以下公式計算各基因型理論頻數(shù):CC=np2,CT=2npq,TT=nq2,其中n為樣本量,p、q分別為相應(yīng)的等位基因頻率,分別對骨肉瘤患者組及正常人群組分布進行SNP群體代表性檢驗。以χ2檢驗比較各基因型頻率在病例組與對照組之間的差異。以比值比(oddsratio,OR)及其95%可信區(qū)間(confidenceinterval,CI)表示各種基因型發(fā)生骨肉瘤的風險度。OR值以非條件Logistic回歸計算,并經(jīng)性別、年齡狀況校正。統(tǒng)計學分析用SPSS 10.0版(SPSS Inc., Chicago, IL)進行。
2 結(jié)果
2.1基因分型結(jié)果
COL1A1基因位于17號染色體上,具體位置為17q21。rs1061970 位于UTR區(qū)域的多態(tài)性,直接影響到翻譯的效率,COL1A1擴增產(chǎn)物片段長度為88 bp,利用帶biotin的引物擴增該片段后,制備成單鏈用于焦磷酸測序,該法簡便易行,操作簡單,可實現(xiàn)高通量檢測。檢測發(fā)現(xiàn)患者組合對照組基因型頻率和等位基因頻率分布符合H-W平衡定律,并且兩者頻率分布之間差異有統(tǒng)計學意義(P=0.04)。從而提示,COL1A1基因rs1061970位點多態(tài)性與骨肉瘤的發(fā)生有明顯相關(guān)。表1中骨肉瘤患者與正常對照組COL1A1 rs1061970位點基因型分布和基因頻率比較經(jīng)過H-W平衡檢驗在基因型頻率出現(xiàn)上無顯著差異。正常人群和骨肉瘤患者COL1A1基因多態(tài)性見表1。經(jīng)檢驗兩者在基因型頻率和等位基因頻率之間的差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。由此可見,COL1A1 rs1061970基因多態(tài)性與骨肉瘤的發(fā)生有相關(guān)性。根據(jù)位點T所占人數(shù)/總?cè)藬?shù)(位點T人數(shù)+位點C人數(shù)),基因位點T在骨肉瘤患者中的比例(37.0%)要高于正常對照(27.0%),疾病風險比為1.59,95%CI為0.99~2.57,盡管兩組之間無統(tǒng)計學差異(P=0.056),但是攜帶T型的患者發(fā)生骨肉瘤的風險增加。
表1 骨肉瘤患者和正常對照組基因分布以及關(guān)聯(lián)分析
注:T/T、C/T和C/C分別為COL1A1基因rs1061970位點TT型、CT型和C型;基因位點T的計算為T/T人數(shù)×2+C/T人數(shù),基因位點C的計算為C/C人數(shù)×2+C/T人數(shù)
2.2 骨肉瘤患者 COL1A1基因多態(tài)性在各臨床亞組中的分布差異
隨后我們針對骨肉瘤患者不同基因型與臨床不同因素進行分層分析,結(jié)果顯示rs1061970位點與年齡、性別、病理類型、疾病的發(fā)生部位以及GTM分期差異均無統(tǒng)計學意義,而與患者有無轉(zhuǎn)移存在顯著差異,rs1061970位點三種基因型頻率分布與無轉(zhuǎn)移組的差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),說明rs1061970基因型分布在轉(zhuǎn)移與非轉(zhuǎn)移組中存在差異;進一步對有轉(zhuǎn)移組C、T等位基因頻率分布與無轉(zhuǎn)移組進行統(tǒng)計,結(jié)果顯示差異無統(tǒng)計學意義(OR=2.111,95%CI:0.853~5.225,P=0.102),但是攜帶T的患者發(fā)生轉(zhuǎn)移的風險增加。見表2。
表2 骨肉瘤患者COL1A1基因rs1061970位點基因型分布與發(fā)病風險的分層分析(n)
3 討論
骨肉瘤是異質(zhì)性比較強的疾病,其預(yù)后往往受到多種因素的影響,目前專門針對骨肉瘤預(yù)后的生物標志物主要有APE1、VEGF、mTOR、EGFR、PARP1、OGG1、BRCA1、ERCC1、XRCC1等,但是由于潛在標志物特異性不強,且多為基因表達分析,有一定波動性,因此,在一定意義上限制了臨床上應(yīng)用,亟待探索其他相關(guān)標志物,用于骨肉瘤的預(yù)后判斷。COL1A1基因也就是編碼Ⅰ型膠原α1亞單位的基因,不少研究提示該基因某些非編碼區(qū)域位點多態(tài)性可能和多種疾病有關(guān),比如研究顯示和轉(zhuǎn)錄因子Sp1結(jié)合的位點多態(tài)性與絕經(jīng)后婦女腕關(guān)節(jié)骨折有關(guān)[13],從一定意義上證實這個基因SNP和骨代謝的關(guān)系。研究發(fā)現(xiàn),COL1A1的多態(tài)性與骨肉瘤的易感性密切相關(guān)[14],本研究從另一個角度揭示位點T與骨肉瘤的發(fā)生風險和轉(zhuǎn)移風險存在一定的相關(guān)性。COL1A1基因rs1061970位點基因多態(tài)性是由胸腺嘧啶核苷酸(T)替代咆嘧啶核苷酸(C)而形成,該區(qū)域處于3-UTR位置,多態(tài)性存在可能影響翻譯的效率。本研究顯示,COL1A1基因3UTR區(qū)域T→C的多態(tài)性在骨肉瘤患者以及正常對照中的基因頻率存在差異,進一步通過C和T分布頻率分析顯示,證實了 COL1A1 rs1061970位點的TC和TT,可能是風險性因素,存在這2個位點的患者骨肉瘤的易感性和轉(zhuǎn)移風險增加。而CC和CT,可能是保護性因素,但是兩組差異僅在SNP分布頻率上具有統(tǒng)計學意義,而C和T之間不具有統(tǒng)計學意義。該基因多態(tài)性可能調(diào)控著COL1A1基因的翻譯。我們也將臨床因素和該位點多態(tài)性進行關(guān)聯(lián)分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)該位點多態(tài)性主要與轉(zhuǎn)移有關(guān),而和患者的病理類型、發(fā)生部位、年齡、GTM分期和性別都沒有顯著相關(guān)性,進一步說明TC和TT可能是骨肉瘤轉(zhuǎn)移的風險因素,后續(xù)對于該位點與骨肉瘤轉(zhuǎn)移的功能的深入分析,將為我們闡明COL1A1對骨肉瘤細胞轉(zhuǎn)移相關(guān)生物學功能的影響。此外,有研究顯示,在骨肉瘤患者的外周血中發(fā)現(xiàn),存在COL1A1 mRNA高表達的患者[15],最后都發(fā)生了轉(zhuǎn)移,在一定程度上提示,COL1A1的表達和患者預(yù)后存在負相關(guān)。然而,在肝癌中的研究中表現(xiàn)為COL1A1低表達的患者預(yù)后較差,并被認為是一個潛在的存活因子[16]。以上結(jié)果在一定程度上提示,COL1A1在不同腫瘤中對腫瘤預(yù)后的影響存在差異。因此,進一步研究將通過點突變的形式明確該位點變化對COL1A1表達的變化,以及通過大樣本人群的檢測探討COL1A1表達以及SNP變化和患者預(yù)后的相關(guān)性,并探討可能在上面結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子位點,以期最后明確該基因位點多態(tài)性和骨肉瘤生物學功能的關(guān)系。
另外,本研究首次利用焦磷酸測序儀檢測COL1A1基因多態(tài)性和骨肉瘤相關(guān)性。焦磷酸測序可以用于SNP,甲基化以及未知序列的檢測,盡管讀長只有5~60 bp,但是操作簡單,成本相對普通的一代和二代測序比較有優(yōu)勢,現(xiàn)在已經(jīng)有不少商品化的基于焦磷酸測序平臺的試劑盒已經(jīng)開發(fā)出來,比如EGFR、Kras的檢測試劑盒[17],用于非小細胞肺癌替尼類藥物的伴隨診斷。因此針對若干已知位點的快速檢測可以考慮焦磷酸測序平臺,不僅可實現(xiàn)高通量而且單個樣本的檢測成本較有優(yōu)勢。
在本研究中,也存在許多不足之處,由于骨肉瘤的發(fā)病率較低,本實驗中患者的樣本收集較少,研究的患者均來自同一所醫(yī)院,使得研究樣本有較大的局限性,實驗只有1個位點,應(yīng)該在不同地區(qū)和種族中進行大樣本數(shù)據(jù)分析,并聯(lián)合多個SNP位點進行多中心研究,以最終明確COL1A1基因多態(tài)性與骨肉瘤的敏感性。
[參考文獻]
[1] Cheng Y,Ramos D,Lee P,et al. Collagen functionalized bioactive nanofiber matrices for osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells: Bone tissue engineering[J]. Journal of Biomedical Nanotechnology,2013,(2):287-298.
[2] Teixeira S,H. Fernandes M,P. Ferraz M,et al. Proliferation and mineralization of bone marrow cells cultured on macroporous hydroxyapatite scaffolds functionalized with collagen type I for bone tissue regeneration[J]. Journal of Biomedical Materials Research Part A, 2010,(1):1-8.
[3] Kuo Y C,Yeh C F. Effect of surface-modified collagen on the adhesion,biocompatibility and differentiation of bone marrow stromal cells in poly(lactide-co-glycolide)/chitosan scaffolds[J]. Colloids and Surfaces B:Biointerfaces,2011,82(2):624-631.
[4] Liu L,Qin C,Butler W T,et al. Controlling the orientation of bone osteopontin via its specific binding with collagen I to modulate osteoblast adhesion[J]. Journal of Biomedical Materials Research Part A,2007,80(1):102-110.
[5] Olsen B R. Morphogenesis:Collagen it takes and bone it makes[J]. Current Biology,1996, 6(6):645-647.
[6] Tamiya M,Tokunaga S,Okada H,et al. Prospective study of urinary and serum cross-linked N-telopeptide of type I collagen(NTx) for diagnosis of bone metastasis in patients with lung cancer[J]. Clinical Lung Cancer,2013,14(4):364-369.
[7] Tamiya M,Suzuki H,Kobayashi M,et al. Usefulness of the serum cross-linked N-telopeptide of type I collagen as a marker of bone metastasis from lung cancer[J]. Medical Oncology,2012,29(1):215-218.
[8] Zhao H,Han K L,Wang Z Y,et al. Value of C-telopeptide-cross-linked Type I collagen, osteocalcin,bone-specific alkaline phosphatase and procollagen Type I N-terminal propeptide in the diagnosis and prognosis of bone metastasis in patients with malignant tumors[J]. Medical Science Monitor,2011,17(11):CR626-CR633.
[9] 張惠忠,丘距世. 人骨肉瘤組織中Ⅰ,Ⅱ和Ⅲ型膠原基因的表達[J]. 腫瘤,2002,22(6): 463-465.
[10] Inamori Y,Ota M,Inoko H,et al. The COL1A1 gene and high myopia susceptibility in Japanese[J]. Human Genetics,2007,122(2):151-157.
[11] Zhao Y P,Wang H,F(xiàn)ang M,et al. Study of the association between polymorphisms of the COL1A1 gene and HBV-related liver cirrhosis in Chinese patients[J]. Digestive Diseases and Sciences,2009,54(2):369-376.
[12] Kostik M M,Smirnov A M,Demin G S,et al. Genetic polymorphisms of collagen type I α1 chain(COL1A1) gene increase the frequency of low bone mineral density in the subgroup of children with juvenile idiopathic arthritis[J]. The EPMA Journal,2013,4(1):1-8.
[13] Tilkeridis C,Bei T,Garantziotis S,et al. Association of a COL1A1 polymorphism with lumbar disc disease in young military recruits[J]. Journal of Medical Genetics,2005,42(7):44.
[14] He M,Wang Z,Zhao J,et al. COL1A1 polymorphism is associated with risks of osteosarcoma susceptibility and death[J]. Tumor Biology,2014,35(2):1297-1305.
[15] Wong I H N,Chan A T,Johnson P J. Quantitative analysis of circulating tumor cells in peripheral blood of osteosarcoma patients using osteoblast-specific messenger RNA markers:A pilot study[J]. Clinical Cancer Research,2000,6(6):2183-2188.
[16] Hayashi M, Nomoto S, Hishida M, et al. Identification of the collagen type 1 alpha 1 gene (COL1A1)as a candidate survival-related factor associated with hepatocellular carcinoma[J]. BMC Cancer,2014,14(1):108-110.
[17] 王樹新,徐林富,王良明,等. 焦磷酸測序和雙脫氧測序法檢測結(jié)直腸癌患者K-ras基因突變的對比研究[J].腫瘤學雜志,2012,18(5):339-341.
(收稿日期:2014-09-15)