劉 雪,馬春梅,王冰微,楊 碩*
1南京醫(yī)科大學免疫學系,江蘇 南京 211166;2南京中醫(yī)藥大學藥理學系,江蘇 南京 210023
肥胖目前已成為全球關(guān)注的重大健康問題,研究報道全球超過30%的人口有肥胖問題。肥胖會誘發(fā)心血管疾病、高血壓、糖尿病和腫瘤等多種疾病。多項研究表明腸道菌群異常、炎癥及代謝異常會誘發(fā)肥胖及肥胖相關(guān)疾病,但是其具體發(fā)病機制仍有待進一步闡明[1-3]。并且,目前尚無有效抑制肥胖發(fā)生的手段,因此對于肥胖發(fā)生機制及治療方法的探究成為全球科學家需要解決的問題。
巨噬細胞是連接固有免疫和適應性免疫的重要免疫細胞,廣泛分布于多種組織和器官,已有多項研究表明巨噬細胞參與代謝類疾病、心血管疾病及腫瘤等多種疾病的調(diào)控反應[4]。異質(zhì)性和可塑性是巨噬細胞的重要特征,在外界不同環(huán)境因素刺激下,巨噬細胞表現(xiàn)出不同的分型。主要包括經(jīng)典活化型(促炎型)M1 型和替代活化型(抑炎型)M2 型,M1型主要受脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)和干擾素(interferon,IFN)-γ激活,分泌促炎細胞因子白介素(interleukin,IL)-6、腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor,TNF)-α、誘導型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)等,主要發(fā)揮促炎、殺菌及抗原遞呈等功能,M2 型主要受IL-4 和IL-13 刺激激活,高表達精氨酸酶1(arginase-1,ARG1)、發(fā)現(xiàn)于炎癥區(qū)域1(found in inflammatory zone 1,F(xiàn)iZZ1)蛋白、甘露糖受體C1 樣蛋白1(mannose receptor C type 1 like protein 1,MRC1),主要起抑炎、組織修復等功能[5]。近年來,多項研究證實脂肪組織巨噬細胞(adipose tissue macrophage,ATM)在調(diào)控代謝炎癥過程中發(fā)揮重要作用[6],已有研究表明,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激琥珀酸受體1(succinate receptor 1,SUNCR1)可以通過調(diào)控脂肪相關(guān)巨噬細胞極化來調(diào)控肥胖的發(fā)生[7]。近期一系列研究提示巨噬細胞極化在調(diào)控脂肪發(fā)生過程中發(fā)揮重要作用。
近年來研究表明,肥胖及肥胖相關(guān)疾病與炎癥小體的功能異常有關(guān)。炎癥小體是機體先天免疫系統(tǒng)細胞內(nèi)多分子復合體識別受體,可以識別多種體內(nèi)外信號[8]。炎癥小體主要由核心蛋白NLR(NOD-like receptor)或PYHIN(pyrin and HIN domaincontaining)分子、接頭蛋白ASC(apoptosis-associated speck-like protein containing a CARD)以及蛋白酶Caspase-1 和Caspase-11 組成。炎癥小體核心分子感受病原和體內(nèi)危險信號刺激后,可招募接頭蛋白和蛋白酶組裝成多分子蛋白復合體,進而誘導蛋白酶激活剪切炎癥因子IL-1β和IL-18前體形成成熟形式,成熟形式的IL-1β和IL-18分子隨后釋放到細胞外激活炎癥反應。研究報道抑制性炎癥小體NOD樣受體家族(NOD-like receptor,NLR)的NLRP12 可以通過調(diào)控腸道菌群穩(wěn)態(tài)抑制高脂誘導的小鼠肥胖的產(chǎn)生[9]。另外,研究證實炎癥小體NLRP1 和NLRP3 也參與抑制高脂誘導的小鼠肥胖及胰島素抵抗[10]。炎癥小體黑素瘤缺乏因子2(absent in melanoma 2,AIM2)屬于干擾素誘導的含有HIN-20結(jié)構(gòu)域蛋白家族的一員。近年來,多項研究證實炎癥小體AIM2在調(diào)控病毒感染、腫瘤發(fā)生及動脈粥樣硬化產(chǎn)生過程中發(fā)揮重要作用[11-13],但是其在代謝及肥胖相關(guān)疾病中的調(diào)控作用尚不明確。
本研究利用高脂誘導肥胖小鼠模型,著重探究炎癥小體AIM2在調(diào)控肥胖發(fā)生過程中的角色和功能,為臨床肥胖患者的診治提供一定理論依據(jù)。
AIM2 全敲小鼠(Jackson 公司,美國),AIM2 條件敲除小鼠(北京百奧賽圖生物公司);高脂飼料(北京欣晨夕生物公司);葡萄糖(生工生物公司,美國);胰島素(Invitrogen 公司,美國);蘇木素和伊紅(Sigma 公司,美國);血糖試紙(羅氏生物公司,美國);APC-F4/80、FITC-CD-11b、PE-CY7-CD-86 流式抗體、PE-CD-206流式抗體,膠原酶Ⅱ(Thermo公司,美國);DMEM 高糖培養(yǎng)基和血清(Gibco 公司,美國),TRIzol 試劑盒(Life 公司,美國),逆轉(zhuǎn)錄試劑盒和SYBR Green(諾唯贊生物試劑公司,美國),引物由上海生工生物有限公司合成。
1.2.1 肥胖小鼠模型
所有小鼠(每籠飼養(yǎng)4只)置于正常光照條件下喂養(yǎng),分為正常飲食組(普通飼料)和高脂飲食組(60%高脂飼料),高脂飲食組小鼠7 周齡時開始喂高脂飼料,連續(xù)15 周,期間每周稱小鼠體重。本研究經(jīng)南京醫(yī)科大學實驗動物福利倫理委員會批準。
1.2.2 小鼠葡萄糖耐受和胰島素敏感性實驗
小鼠饑餓16 h 后,開始進行葡萄糖耐受實驗,腹腔注射葡萄糖(1.5 g葡萄糖/kg小鼠體重),尾尖取血,用羅氏血糖儀測小鼠血糖。血糖測定時間依次為0、15、30、60、90 min,小鼠饑餓6 h 后進行胰島素耐受實驗,腹腔注射胰島素(0.75 U/kg 小鼠體重),尾尖取血,用羅氏血糖儀測小鼠血糖。
1.2.3 骨髓來源的巨噬細胞分離與培養(yǎng)
取8~12 周齡的小鼠,處死后,分離小鼠大腿骨置于無菌PBS 的培養(yǎng)皿中,清除關(guān)節(jié)連接處的其他組織,并沿關(guān)節(jié)處分開。將干凈的骨頭轉(zhuǎn)移到新的帶有PBS 的皿中,剪開骨頭的末端。用含有培養(yǎng)基的5 mL注射器針頭插入骨頭的開口處,將骨髓吹入一個新的培養(yǎng)皿中。1 000 r/min 離心5 min,棄上清,加入1 mL RPMI1640 培養(yǎng)基重懸,再加入20 mL 10%的L929培養(yǎng)基,接種到細胞培養(yǎng)瓶中。放置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)7 d,每2 天更換1 次新鮮的培養(yǎng)基。
1.2.4 巨噬細胞的刺激和極化
取出小鼠骨髓,將分化成熟的巨噬細胞按3×105個/孔接種到12 孔板,用含有10% L929 培養(yǎng)基的DMEM 培養(yǎng)基培養(yǎng),12 h 后,將培養(yǎng)基換為正常DMEM 培養(yǎng)基,分別用LPS(誘導巨噬細胞向M1樣巨噬細胞極化,濃度為200 ng/mL)和IL-4(誘導巨噬細胞向M2 樣巨噬細胞極化,濃度為20 ng/mL)刺激細胞,24 h后收集細胞,分別用流式抗體F4/80和CD86 標記M1 型巨噬細胞,用流式抗體F4/80 和CD206 標記M2 型巨噬細胞,進行流式檢測。并對M1 型巨噬細胞分泌的促炎細胞因子IL-6、TNF-α和iNOS,對M2 型巨噬細胞分泌的促炎細胞因子Arg1、Ym1、Mrc1進行基因表達分析。
1.2.5 流式細胞分析
將極化的巨噬細胞用消化酶37 ℃消化10 min后,加入培養(yǎng)基終止消化,收集細胞后,1 500 r/min離心5 min,去上清。加入PBS,5 000 r/min離心5 min,然后每個樣品加入100 μL含有流式抗體的染色液重懸,常溫避光染色30 min。5 000 r/min離心3 min,棄上清,加上染色液重懸,上機檢測。
1.2.6 HE染色
組織甲醛固定48 h,石蠟包埋,切片,二甲苯脫蠟,再使用逐級降濃度酒精水化,無水酒精1~2 min,95%酒精1~2 min,80%酒精1~2 min,自來水洗。蘇木素液染5~10 min,自來水洗,1%鹽酸酒精分化0.5~1.0 min,流水沖洗15 min,酒精脫水,95%酒精1~2 min,無水酒精1~2 min,二甲苯透明,蓋玻片封片,等樹膠干燥后,顯微鏡下采集圖像,Image J 軟件計算細胞面積。
1.2.7 RNA提取與定量PCR分析
小鼠處死,收集小鼠附睪周圍脂肪組織并勻漿,經(jīng)過離心后,總RNA 由TRIzol 試劑盒提取后反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。使用SYBR Green Supermix(Vazyme 公司,美國)進行qRT-PCR。通過標準曲線方法計算基因的表達,并以Hprt為內(nèi)參基因?qū)⑵錁藴驶?。具體引物基因序列如下:AIM2上游引物5′-CTGAAAACTGCTCTGCTGCCT-3′,下游引物5′-TGCCACCATCTGTTTCTTCTGA-3′;FABP4 上游引物5′-GGGGCCAGGCTTCTATTCC -3′,下游引物5′ -GGAGCTGGGTTAGGTATGGG-3′;PPARγ上游引物5′-TCGCTGATGCACTGCCTATG-3′,下游引物5′-GAGAGGTCCACAGAG-CTGATT-3′;Hprt 上游引物5′-GTCCCAGCGTCGTGATTAGC-3′,下游引物5′-TGGCCTCCCATCTCCTTCA-3′;IL-6 上游引物5′-CTTGGGACTGATGCTGGTGAC-3′,下游引物5′-GCCATTGCACAACTCTTTTCTC-3′;TNF-α上游引物5′-TTCCCAAATGGCCTCCCT-3′,下游引物5′-TGGGCTACAGGCTTGTCACTC-3′;iNOS 上游引物5′-AGGGAATCTTGGAGCGAGTTG-3′,下游引物5′-TGAGGGCTTGGCTGAGTGAG-3′;Arg1 上游引物5′-CACAGTCTGGCAGTTGGAAGC-3′,下游引物5′-TGGTTGTCAGGGGAGTGTTG-3′,Ym1 上游引物5′-CATTGGAGGATGGAAGTTTGG-3′,下游引物5'-GGTACTGCCAGTCCAGGTTGA-3′,Mrc1 上游引物5′-CTCAACCCAAGGGCTCTTCTAA-3′,下游引物5′-AAGGTGGCCTCTTGAGGTATGT-3′。
數(shù)據(jù)采用GraphPad Prism 7.0 軟件進行統(tǒng)計學分析,并以均值±標準差()表示。組間比較采用t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
為了探究AIM2在肥胖發(fā)生中的作用,分別給予野生型(WT)小鼠正常飲食和60%高脂飲食15周后,取小鼠性腺周圍脂肪組織,基因水平分析AIM2 的表達情況,結(jié)果顯示,在高脂誘導的肥胖小鼠中,AIM2表達顯著下調(diào)(圖1)。該結(jié)果提示AIM2對肥胖發(fā)生有重要的調(diào)節(jié)作用。
圖1 AIM2在高脂誘導的小鼠肥胖模型中的表達分析Figure 1 AIM2 expression level analysis in obesity mouse induced by high-fat food
為了明確AIM2 在肥胖發(fā)生中的具體功能,對AIM2 敲除小鼠進行高脂飲食造模,對其體重、脂肪結(jié)構(gòu)、葡萄糖耐受及胰島素耐受情況進行分析。造模結(jié)果顯示,AIM2基因敲除小鼠體重增加水平顯著高于WT小鼠(圖2A)。小鼠性腺周脂肪組織HE染色結(jié)果表明,相比于WT 小鼠,AIM2 基因敲除小鼠的脂肪細胞明顯增大,脂肪細胞間炎性細胞浸潤顯著增多(圖2B、C)。并且AIM2基因敲除小鼠的葡萄糖抵抗能力以及胰島素敏感性都被破壞,小鼠出現(xiàn)了葡萄糖不耐受和胰島素抵抗(圖2D、E)。由于脂肪生成受多種脂肪生成相關(guān)蛋白的調(diào)控,我們分析了脂肪生成相關(guān)分子的基因表達變化,結(jié)果顯示AIM2缺失后,可以顯著誘導脂肪合成相關(guān)分子脂肪酸結(jié)合蛋白4(fatty acid binding protein 4,F(xiàn)ABP4)和過氧化物酶體增殖劑激活受體γ(peroxisome proliferators-activated receptors,PPARγ)的上調(diào)表達(圖2F、G)。以上結(jié)果表明,AIM2在高脂誘導的小鼠肥胖發(fā)生過程中發(fā)揮保護作用,抑制小鼠肥胖的產(chǎn)生。
圖2 AIM2抑制小鼠肥胖的發(fā)生Figure 2 AIM2 inhibits the occurrence of obesity in mice
前期研究顯示AIM2 在巨噬細胞中高表達,并且發(fā)現(xiàn)高脂造模后脂肪組織中巨噬細胞浸潤明顯增多,為了進一步探究AIM2 調(diào)控脂肪發(fā)生的作用機制,構(gòu)建了巨噬細胞(Cx3cr1-cre)AIM2 條件性敲除小鼠來明確巨噬細胞中的AIM2對高脂誘導的肥胖發(fā)生的影響。對同窩FLOX小鼠和條件敲除小鼠進行高脂飲食造模,與AIM2fl/fl小鼠相比,AIM2fl/flCx3cr1-Cre 小鼠體重增加更多(圖3A),與此相一致,病理結(jié)果顯示,AIM2 基因敲除小鼠脂肪細胞更大,冠狀結(jié)構(gòu)更少(圖3B、C)。并且AIM2fl/flCx3cr1-Cre小鼠對葡萄糖的耐受能力和對胰島素的抵抗能力顯著下降(圖3D、E)。另外,在巨噬細胞中特異性缺失AIM2 后,同樣可以顯著促進FABP4 和PPARγ的表達上調(diào)(圖3F、G)。上述結(jié)果揭示AIM2調(diào)控小鼠肥胖的發(fā)生可能是通過對巨噬細胞的免疫調(diào)節(jié)來發(fā)揮作用的。
為了進一步明確AIM2 對巨噬細胞的調(diào)節(jié)作用,首先取出WT和AIM2基因敲除小鼠高脂造模后的性腺周脂肪組織,發(fā)現(xiàn)相比WT 小鼠,AIM2 基因敲除小鼠M1 型巨噬細細胞促炎細胞因子IL-6、TNF、iNOS 顯著上調(diào)表達,但是M2型巨噬細胞產(chǎn)生的抑炎細胞因子Arg1、Ym1、Mrc1 沒有顯著變化(圖4A、B)。同時,分離WT 小鼠和AIM2基因敲除小鼠的骨髓來源巨噬細胞,分別用M1 型巨噬細胞促炎極化因子LPS 和M2 型巨噬細胞抑炎極化因子IL-4刺激細胞。流式分析結(jié)果顯示AIM2 缺失后,促炎巨噬細胞(M1 樣巨噬細胞)比例顯著增加,但是不影響抑炎巨噬細胞(M2樣巨噬細胞)比例的改變(圖4C、D)。與此相一致,基因表達分析結(jié)果表明AIM2缺失后,M1型巨噬細胞標志分子IL-6、iNOS 顯著上調(diào)表達,M2 型巨噬細胞標志分子Arg1、Ym1 沒有顯著變化(圖4E~H)。以上結(jié)果表明,AIM2 缺失促進脂肪組織巨噬細胞向M1型巨噬細胞極化,提高促炎細胞因子表達水平,加重脂肪組織炎性程度,進而產(chǎn)生葡萄糖代謝異常,促進脂肪生長。
圖3 巨噬細胞中的AIM2抑制小鼠肥胖的發(fā)生Figure 3 AIM2 in macrophages inhibits the occurrence of obesity in mice
慢性炎癥和免疫細胞在脂肪組織累積與肥胖密切相關(guān),巨噬細胞是脂肪組織中最主要的炎性細胞。大量研究表明,當肥胖發(fā)生時,脂肪組織巨噬細胞大量浸潤,介導肥胖患者產(chǎn)生胰島素抵抗[14-15]。巨噬細胞有不同的表型,目前已有多項研究報道,在脂肪發(fā)生過程中,脂肪巨噬細胞經(jīng)歷從抗炎M2 型向促炎M1型轉(zhuǎn)換[16]。
炎癥小體AIM2 作為胞質(zhì)中DNA 識別感受器,在抵御細菌和病毒感染過程中發(fā)揮重要作用。有文獻報道AIM2在銀屑病的病灶皮膚中表達明顯升高,并且也有研究表明AIM2 能調(diào)節(jié)皮膚干細胞的功能[17]。近期研究表明AIM2在腸道干細胞中可以通過調(diào)控AKT信號通路抑制腸道腫瘤的發(fā)生,并且不依賴于其炎癥小體的功能[18]。但是關(guān)于AIM2在肥胖及相關(guān)疾病的報道非常少,其調(diào)控機制尚不明確。
本課題組在其他研究過程中發(fā)現(xiàn)AIM2敲除小鼠比野生型小鼠易發(fā)胖,因此開展了本項研究。本研究發(fā)現(xiàn)AIM2 在肥胖小鼠中顯著下調(diào)表達,因此分別對WT小鼠和AIM2敲除小鼠進行高脂造模,結(jié)果顯示AIM2 敲除小鼠的體重增加水平顯著高于WT 小鼠,并且小鼠的脂肪含量更多、脂肪細胞更大。這些結(jié)果表明AIM2在脂肪發(fā)生過程中也發(fā)揮重要作用。接下來對小鼠進行了葡萄糖耐受實驗和胰島素抵抗實驗,結(jié)果顯示AIM2 敲除小鼠的葡萄糖耐受能力顯著低于WT小鼠,并且AIM2敲除小鼠產(chǎn)生了很強的胰島素抵抗。
多項研究已經(jīng)證實脂肪組織巨噬細胞在調(diào)控胰島素抵抗介導的脂肪發(fā)生過程中發(fā)揮重要作用,本研究分別對AIM2fl/flCx3cr1-Cre 和AIM2fl/fl小鼠進行高脂造模,發(fā)現(xiàn)與AIM2敲除小鼠一致,在巨噬細胞中特異性地敲除AIM2 后,小鼠體重增加值顯著高于對照小鼠,脂肪細胞更大,并且葡萄糖耐受能力也顯著低于對照小鼠,胰島素抵抗能力明顯減弱。這些結(jié)果表明AIM2主要在巨噬細胞中發(fā)揮調(diào)控脂肪發(fā)生的作用。
大量研究表明,炎癥小體激活產(chǎn)生的IL-1β和IL-18具有廣泛的生物學功能,在免疫炎癥中起著重要作用。IL-1β可以促進中性粒細胞和巨噬細胞遷移至感染和損傷部位,并且IL-1β也可促進樹突細胞、巨噬細胞和中性粒細胞的活化[19]。另外,多項研究證實脂肪巨噬細胞極化在調(diào)控脂肪的發(fā)生過程中發(fā)揮重要作用。體內(nèi)外炎性因子檢測結(jié)果證實AIM2 敲除小鼠明顯促進M1 型促炎細胞因子IL-6、TNF-α、iNOS 上調(diào),但是不會顯著影響M2 型抑炎因子Arg1、Ym1、Mrc1 的變化。以上結(jié)果提示AIM2可能通過調(diào)控脂肪組織巨噬細胞向M1型極化來介導胰島素抵抗和脂肪形成。
綜上所述,本研究揭示了炎癥小體AIM2 在肥胖發(fā)生過程中的重要角色,明確了AIM2 主要在脂肪組織的巨噬細胞中發(fā)揮調(diào)控作用,并且是通過抑制巨噬細胞向M1 極化來抑制機體炎癥,進而抑制胰島素抵抗以及脂肪形成。這將為肥胖的治療及其作用機制研究提供一定的理論基礎。