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多表位丙型肝炎病毒抗原的表達(dá)和分析

2020-07-03 05:55蘇秋東郭敏卓畢勝利賈志遠(yuǎn)
醫(yī)學(xué)研究雜志 2020年6期
關(guān)鍵詞:緩沖液抗原質(zhì)粒

蘇秋東 郭敏卓 伊 瑤 畢勝利 賈志遠(yuǎn) 邱 豐

丙型肝炎病毒(hepatitis C virus, HCV)屬于黃病毒科肝炎病毒屬,是一種由脂膜包裹的正鏈RNA病毒。其基因組RNA長(zhǎng)約9600nt,包含一個(gè)多蛋白開放閱讀框,編碼約3000個(gè)氨基酸的多聚蛋白,結(jié)構(gòu)蛋白主要有C、E1和E2,非結(jié)構(gòu)蛋白主要有NS2、NS3、NS4A、NS4B、NS5A和NS5B。HCV是慢性肝炎的主要致病因子,預(yù)估全球有7110萬(wàn)慢性丙肝患者,約10%~20%慢性肝炎患者在20~30年里將會(huì)發(fā)展為肝纖維化和肝硬化甚至肝癌[1]。2015年全球HCV感染診斷率僅為20%,其中只有15%確診丙肝患者得到了有效治療,HCV的診斷治療問題亟待解決[2]。在目前直接抗病毒(direct-acting antivirals, DAAs)療法對(duì)HCV有效的情況下,提高診斷及治療率對(duì)于實(shí)現(xiàn)世界衛(wèi)生組織2030年消除病毒性肝炎的目標(biāo)至關(guān)重要。

HCV實(shí)驗(yàn)室診斷主要包括核酸和血清學(xué)診斷。需要提取病毒核酸、受型別特異性限制、成本高以及需要專業(yè)操作是核酸檢測(cè)的弊端。而血清學(xué)檢測(cè)簡(jiǎn)單易行,成本低廉,所以一直是HCV臨床診斷的主要輔助手段。HCV病毒蛋白 C、NS3、NS4和NS5區(qū)擁有保守的免疫顯性區(qū)域[3]。因此HCV抗體檢測(cè)用診斷抗原主要圍繞這4個(gè)區(qū)設(shè)計(jì)。第1代HCV抗體檢測(cè)使用NS4的一段抗原,第2代為包含C、NS3和NS4免疫顯性區(qū)的重組抗原,目前使用的第3代檢測(cè)試劑加入NS5區(qū)抗原且優(yōu)化了NS3區(qū)抗原[4]。迄今已經(jīng)發(fā)現(xiàn)HCV存在8個(gè)基因型和86個(gè)基因亞型[5,6]。因此目前常用的抗體檢測(cè)試劑都使用3~6種重組抗原或合成肽,大大增加了檢測(cè)成本和非特異性反應(yīng)。多表位HCV診斷抗原的設(shè)計(jì)為解決這些問題提供了一條很好的途徑。最早的多表位抗原出現(xiàn)在2006年,隨后不同的設(shè)計(jì)層出不窮[7]。我國(guó)HCV主要流行亞型為1b和2a[8]。此研究將這兩種主要流行亞型的6個(gè)主要免疫區(qū)域進(jìn)行串聯(lián),制備新型HCV抗體診斷抗原,并利用陰陽(yáng)性血清評(píng)價(jià)其診斷效能。

材料與方法

1.主要材料與試劑:BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞購(gòu)自北京全式金生物技術(shù)有限公司。M48載體,為本科室構(gòu)建,由pET43.1a載體,在Nde Ⅰ和Nco Ⅰ酶切位點(diǎn)之間插入Trx標(biāo)簽改造所得。限制性內(nèi)切酶NcoⅠ和XhoⅠ以及T4 DNA連接酶購(gòu)自美國(guó)NEB公司。預(yù)螯合Ni2+親和層析介質(zhì)為美國(guó)GE公司產(chǎn)品。山羊抗人IgG H&L(HRP)酶標(biāo)物為英國(guó)Abcam公司產(chǎn)品。50份HCV陽(yáng)性血清參照WS213-2018丙型肝炎診斷標(biāo)準(zhǔn):①生化指標(biāo)異常;②血液抗-HCV陽(yáng)性;③血液HCV RNA陽(yáng)性,核酸定量范圍為4.97(4.52,6.34)[Log轉(zhuǎn)換,中位數(shù)(Q1,Q3)];④來(lái)源于科室現(xiàn)存血清庫(kù)。50份HCV陰性血清:①血液抗-HCV陰性;②血液HCV RNA陰性;③來(lái)源于科室現(xiàn)存血清庫(kù)。HAV、HBV、HDV及HEV陽(yáng)性血清各20份,由實(shí)驗(yàn)室和臨床確診,來(lái)源于科室現(xiàn)存血清庫(kù)。

2.HCV多表位診斷抗原表達(dá)質(zhì)粒的制備:根據(jù)參考文獻(xiàn)[4,9~13]與相關(guān)經(jīng)驗(yàn),將HCV NS3(1b)aa 1201-1464、Core(1b)aa 1-34、NS4A(1b)aa 1681-1735、NS4A(2a)aa 1681-1735、NS4B(2a) aa 1929-1935及NS5A(2a)aa 2273-2307等6個(gè)抗原區(qū)域用(GGGS)3進(jìn)行串聯(lián),5′端添加CCATGG(Nco Ⅰ)酶切位點(diǎn),3′端添加CTCGAG(Xho Ⅰ)酶切位點(diǎn),密碼子優(yōu)化后交由日本TaKaRa公司進(jìn)行基因合成,命名為H65F。利用Nco Ⅰ和Xho Ⅰ限制性內(nèi)切酶及T4 DNA連接酶將H65F亞克隆到M48表達(dá)載體上,轉(zhuǎn)化BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞。16h后挑取6個(gè)單菌落(1~6號(hào))接種于2ml培養(yǎng)基中(10g/L蛋白胨,5g/L酵母提取液,10g/L NaCl,50μg/ml氨芐霉素)振蕩培養(yǎng),誘導(dǎo)進(jìn)行小量表達(dá),提取質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序并雙酶切鑒定,驗(yàn)證正確的質(zhì)粒命名為H65。

3.HCV多表位診斷抗原的制備:選擇4號(hào)作為菌株進(jìn)行大量表達(dá)(3L),誘導(dǎo)條件為30℃,1mmol/L IPTG,5h。離心(3500r/min, 10min, 4℃)收集沉淀,用溶解緩沖液(20mmol/L 磷酸鹽緩沖液,20mmol/L咪唑,0.5mol/L NaCl,pH 7.0)重懸后用超聲儀破碎(功率300W,超聲時(shí)間20s,間歇時(shí)間20s,共20個(gè)循環(huán)),離心(11000r/min, 10min, 4℃)收集上清。將上清加載于預(yù)螯合Ni2+親和層析介質(zhì)中。分別用0、0.1、0.5mol/L咪唑(溶于溶解緩沖液中)進(jìn)行梯度洗脫。取樣進(jìn)行SDS-PAGE(恒流35mA,45min)電泳,分析H65蛋白的含量以及分布情況。將H65蛋白蛋白含量最高、純度最好的洗脫液于PBS (137mmol/L NaCl,2.7mmol/L KCl,10mmol/L Na2HPO4,2mmol/L KH2PO4, pH 7.4)中透析,并于0℃保存?zhèn)溆谩?/p>

4.HCV多表位診斷抗原抗原性初步分析:H65蛋白抗原性的初步分析利用Western blot法檢測(cè)。取10μl透析后H65蛋白進(jìn)行SDS-PAGE電泳(恒流35mA,45min),半干轉(zhuǎn)膜法(恒壓15V,35min)至PVDF膜上。室溫,封閉液(1% BSA,0.05% 吐溫-20,溶于PBS中)振蕩孵育PVDF膜1h。室溫,1∶10稀釋HCV陰陽(yáng)性血清后分別處理兩塊PVDF膜1h,而后用PBS洗膜10min。用山羊抗人IgG H&L(HRP)酶標(biāo)物(1∶5000)室溫處理PVDF膜1h后用高鹽緩沖液(0.5mol NaCl,0.2% SDS,溶于PBS中)洗膜30min后超純水洗膜,用DAB顯色,清水終止顯色。

5.HCV多表位診斷抗原診斷效能評(píng)價(jià):利用蛋白H65建立血清HCV-IgG抗體檢測(cè)間接法ELISA試劑盒,對(duì)“金標(biāo)準(zhǔn)”確診的陰陽(yáng)性血清樣本以及其他肝炎病毒陽(yáng)性標(biāo)本進(jìn)行檢測(cè),評(píng)價(jià)其對(duì)陰陽(yáng)性血清標(biāo)本的鑒別能力,并與某商品化試劑盒進(jìn)行比較,評(píng)價(jià)其優(yōu)劣。包被緩沖液(50mmol/L碳酸鹽緩沖液,pH 9.6)1∶300稀釋蛋白H65后加入ELISA板中,37℃孵育2h。37℃,封閉液孵育1h后用PBST洗滌。每孔加PBS和待測(cè)血清各50μl,37℃孵育1h后洗滌;加入山羊抗人IgG H&L(HRP)酶標(biāo)物(1∶6000),37℃孵育1h后洗滌;加新鮮配制TMB液顯色,2mol/L H2SO4終止反應(yīng)。用酶標(biāo)儀測(cè)定450nm處各孔吸收度值(A值)。

利用某商品化HCV-IgG ELISA檢測(cè)試劑盒檢測(cè)待測(cè)同批血清,具體操作遵循廠家說明書,最后用酶標(biāo)儀測(cè)定450nm處吸收度值(A值)。

6.統(tǒng)計(jì)學(xué)方法:實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS 22.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,用GraphPad Prism 8.00軟件繪制6組血清A值散點(diǎn)圖。對(duì)HCV陰陽(yáng)性兩組血清A值分布進(jìn)行Wilcox檢驗(yàn)(獨(dú)立樣本Mann-WhitneyU檢驗(yàn)),原假設(shè)為在兩組類別上,A值分布相同。根據(jù)經(jīng)驗(yàn)選取陰性血清A值均值2.1倍作為臨界值。用McNemer檢驗(yàn)及Kappa一致性檢驗(yàn)評(píng)價(jià)兩種檢測(cè)方法的一致性,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

結(jié) 果

1.融合表達(dá)層析純化可獲得高純度蛋白H65:HCV 6個(gè)抗原區(qū)域用(GGGS)3串聯(lián)并進(jìn)行密碼子優(yōu)化后,片段大小為1608bp(圖1A),構(gòu)建好的表達(dá)質(zhì)粒經(jīng)測(cè)序、雙酶切鑒定(圖1B)及小量表達(dá)(圖2A)證實(shí)構(gòu)建成功,命名為H65質(zhì)粒。

圖1 H65表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建A.H65表達(dá)區(qū)段示意圖;B.H65表達(dá)質(zhì)粒的鑒定;1.H65表達(dá)質(zhì)粒雙酶切鑒定;2.H65基因片段

H65蛋白小量表達(dá)SDS-PAGE結(jié)果發(fā)現(xiàn),與未誘導(dǎo)菌比較,誘導(dǎo)菌組在約74.2kDa處有明顯表達(dá)條帶(圖2A),H65蛋白在大腸桿菌中表達(dá)良好。大量表達(dá)(3L)發(fā)現(xiàn)H65蛋白占菌體總蛋白的39.82%(圖2B)。超聲處理后發(fā)現(xiàn)蛋白H65主要存在上清中(圖2B)。經(jīng)親和層析純化后H65蛋白主要存在于0.5mol/L咪唑洗脫液中,濃度為2.991mg/ml,純度為94.53%(圖2B)。

圖2 蛋白H65表達(dá)及純化電泳分析A.小量表達(dá);B.大量表達(dá)及純化。1.未誘導(dǎo)菌;2~6.誘導(dǎo)菌;7.超聲后總菌體蛋白;8.超聲液上清;9.超聲液沉淀;10.親和層析上樣;11.穿柱;12.0.1mol/L咪唑洗脫液;13.0.5mol/L咪唑洗脫液

2.蛋白H65可以與HCV-IgG陽(yáng)性血清發(fā)生特異性反應(yīng):利用Western blot法,初步鑒定蛋白H65的抗原性。HCV陽(yáng)性血清作為一抗,山羊抗人IgG H&L(HRP)酶標(biāo)物作為二抗,在NC膜上相應(yīng)位置出現(xiàn)了明顯條帶(圖3A);而HCV陰性血清作為一抗,在NC膜上相應(yīng)位置無(wú)條帶(圖3B)。并且無(wú)論是用HCV陰陽(yáng)性血清,無(wú)蛋白H65表達(dá)菌(空載體)都未見明顯條帶(圖3)。

圖3 蛋白H65的Western blot法分析A.HCV陽(yáng)性血清作為第一抗體,羊抗人IgG H&L (HRP)作為第二抗體;B.HCV陰性血清作為第一抗體,羊抗人IgG H&L(HRP)作為第二抗體;1.陰性對(duì)照;2.H65蛋白

3.基于蛋白H65的間接法ELISA可以很好地鑒別HCV-IgG陰陽(yáng)性血清標(biāo)本:蛋白H65作為包被抗原建立間接法ELISA試劑,分別對(duì)50份HCV陽(yáng)性和陰性血清樣本進(jìn)行檢測(cè)。陽(yáng)性樣本A值分布為1.487±0.055,陰性血清樣本A值分布為0.082±0.007。兩組數(shù)據(jù)分布比較使用Wilcox檢驗(yàn),結(jié)果發(fā)現(xiàn)兩組數(shù)據(jù)分布明顯不同(P<0.01),根據(jù)經(jīng)驗(yàn)陰性血清A值均值2.1倍作為臨界值得出臨界值為0.171。McNemer檢驗(yàn)顯示結(jié)果,新制備診斷試劑與“金標(biāo)準(zhǔn)”比較,P=1.00,Kappa=0.940,提示診斷結(jié)果與“金標(biāo)準(zhǔn)”一致性優(yōu)異。

圖4 蛋白H65在HCV感染血清學(xué)診斷效果P.陽(yáng)性血清;N.陰性血清

應(yīng)用某商品化試劑盒檢測(cè)相同的血清(按照說明書判定陰陽(yáng)性),陽(yáng)性結(jié)果46份(46/50),陰性結(jié)果44份(44/50)。與新型試劑盒進(jìn)行比較,詳見表1,進(jìn)行McNemer檢驗(yàn)發(fā)現(xiàn),P=1.00,Kappa=0.900。

表1 新制備與商品化試劑盒比較(n)

討 論

多表位抗原區(qū)域的選擇依賴于4個(gè)關(guān)鍵因素:①免疫顯性區(qū)域;②對(duì)HCV抗體特異;③屬于線性或連續(xù)性表位;④在不同基因型之間進(jìn)化保守[4]。除了NS3區(qū)抗原區(qū)段大小達(dá)到264個(gè)氨基酸外,其他5個(gè)抗原區(qū)段大小都低于60個(gè)氨基酸。Palenzuela等[14]推論NS3蛋白所表現(xiàn)出的高免疫原性很可能是由構(gòu)象型表位觸發(fā)的,因此為了促使NS3區(qū)構(gòu)象型表位的形成,在其區(qū)域片段的選擇上并沒有局限于文獻(xiàn)所報(bào)道的表位區(qū)域。同樣,其他5個(gè)免疫顯性區(qū)域的選擇也在文獻(xiàn)報(bào)道表位區(qū)的基礎(chǔ)上上下游延伸部分氨基酸,以盡力確保完整表位的展現(xiàn)[15,16]??紤]到我國(guó)HCV的主要流行株為1b和2a,尤其是1b占主導(dǎo)地位[8]。因此在抗原區(qū)域的選擇上,NS3、C和NS4A選取1b基因亞型,NS4A、NS4B和NS5A選取2a基因亞型。其中NS4A在1b和2a基因亞型中不保守,因此共存了這兩個(gè)相似表位[17]。

多表位串聯(lián)表達(dá)增加了蛋白高級(jí)結(jié)構(gòu)的呈現(xiàn)及表達(dá)的難度[18]。首先,表位區(qū)域上下游的延伸以及GGGS連接臂的加入大大降低了各抗原區(qū)域之間的相互影響。選取的免疫顯性區(qū)主要為線性表位,加之連接臂的存在,大大降低了錯(cuò)誤折疊的發(fā)生。其次,Trx標(biāo)簽的融合,大大提高了可溶性表達(dá)的概率。再者,密碼子的優(yōu)化并不單單考慮最優(yōu)密碼子的替換,同時(shí)還考慮了轉(zhuǎn)錄和翻譯以及核酸二級(jí)結(jié)構(gòu)的動(dòng)能變化。最后,表達(dá)條件的優(yōu)化讓大部分目的蛋白以可溶性形式存在,且表達(dá)量占菌體總蛋白的39.82%(圖2B)。

基于多表位HCV診斷抗原建立的間接法ELISA敏感度為98.00%(cut-off值為0.171),特異性為96.00%,陽(yáng)性預(yù)測(cè)值為96.08%,陰性預(yù)測(cè)值為97.96%,符合率為97.00%。雖然與某商品化試劑盒比較不能否定一致性檢驗(yàn)存在差異(Kappa=0.900),但參考上述指標(biāo),新制備檢測(cè)試劑更加優(yōu)異。而且包被抗原只使用1個(gè)融合蛋白,相對(duì)于傳統(tǒng)診斷試劑使用3~6個(gè)融合蛋白大大降低了診斷試劑的成本以及假陽(yáng)性結(jié)果的出現(xiàn),為血清學(xué)診斷的普遍使用及HCV診斷率的提高奠定基礎(chǔ)[19]。

本研究不足之處在于沒有評(píng)價(jià)新制備試劑對(duì)不同基因型HCV血清標(biāo)本的診斷效能。下一步工作將利用不同基因型(對(duì)HCV 1b和2a基因型血清標(biāo)本診斷效能優(yōu)異,數(shù)據(jù)未發(fā)表)血清對(duì)抗原的診斷效能進(jìn)行全面評(píng)價(jià)。

總之,多表位HCV診斷抗原能夠在原核表達(dá)系統(tǒng)中可溶性表達(dá),以這一融合蛋白建立的間接法ELISA能夠?qū)CV陰陽(yáng)性血清標(biāo)本鑒別診斷。

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