趙澤鵬,張佳音,苑颯龍,白佳鵬,楊蕎瑀,張麗云
(河北北方學(xué)院 動(dòng)物科技學(xué)院,河北 張家口 075000)
電泳技術(shù)在大分子物質(zhì)的定性、定量分析等方面具有重要地位,其中醋酸纖維膜電泳具有分離速度快、區(qū)帶清晰、樣品用量小等特點(diǎn),在高校開(kāi)出率很高,是高校生化實(shí)驗(yàn)教學(xué)中最基本的教學(xué)項(xiàng)目之一[1]。血清蛋白電泳對(duì)于某種血清蛋白的異常變化推測(cè)發(fā)生了某些疾病意義重大,例如血清球蛋白水平對(duì)神經(jīng)介入術(shù)后急性缺血性腦卒中患者炎癥因子和神經(jīng)激素水平有一定影響[2],多發(fā)性骨髓瘤會(huì)分泌異常單克隆免疫球蛋白(M蛋白)導(dǎo)致異常球蛋白增加,正常球蛋白合成減少[3-4]。近些年,醋酸纖維膜電泳常用的巴比妥緩沖液試劑不易購(gòu)得,其他替代緩沖液分離血清蛋白效果又說(shuō)法不一,因此,篩選適合該電泳的緩沖液對(duì)保障實(shí)驗(yàn)質(zhì)量有重要意義?;趯?shí)驗(yàn)原理及電泳緩沖液的特點(diǎn),選取幾種常用緩沖液進(jìn)行篩選試驗(yàn),為教學(xué)和科研提供依據(jù)。
(1)成年家兔:由河北北方學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物科提供。
(2)電泳支持物:醋酸纖維膜,2.0 cm×8.0 cm,購(gòu)自北京六一生物技術(shù)有限公司。
(3)主要試劑:Tris堿,鹽酸,磷酸,乙二胺四乙酸二鈉(Na2EDTA),硼酸,四硼酸鈉,氯化鈉,磷酸氫二鈉,磷酸二氫鈉,巴比妥鈉,巴比妥,氨基黑10B,甲醇,冰乙酸,95%乙醇,天津市津東天正化學(xué)試劑廠生產(chǎn),均為分析純。
(4)主要儀器:JA3003分析天平,購(gòu)自上海舍巖儀器有限公司;DYY-12型電泳儀、DYCP-38B型臥式電泳槽,購(gòu)自北京六一生物科技有限公司;EOS 6D Mark II單反相機(jī),購(gòu)自佳能(中國(guó))有限公司。
1.2.1 實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備
(1)血清的制備
選取健康成年家兔,保定,使用10 mL真空負(fù)壓采血管(帶有枸櫞酸鈉),從耳緣靜脈抽取靜脈血,靜置30 min,離心,2 000 rpm,10 min,取上清液,冷藏備用。
(2)制備濾紙橋
裁剪合適尺寸的濾紙條,4層附著在電泳槽的支架上,一端與支架的前沿對(duì)齊,另一端浸于緩沖溶液中,而后用緩沖溶液全部浸濕,驅(qū)趕濾紙與支架間的氣泡,使之緊貼于支架上。
(3)試劑的配制
①電泳緩沖溶液:6種電泳緩沖溶液按表1分別稱取試劑,放入燒杯加水溶解后,移至1 000 mL容量瓶,定容,混勻備用。
表1 6種緩沖溶液的成分
②染色液:稱取氨基黑10B 0.5 g,放入燒杯中,加40 mL蒸餾水溶解后,移至100 mL容量瓶,加入冰乙酸10 mL,用甲醇定容至刻度。
③漂洗液:量取95%乙醇45 mL、冰乙酸5 mL,在100 mL容量瓶中用蒸餾水定容至刻度。
1.2.2 分組與薄膜的選擇處理
將選定的緩沖液編號(hào)分組,1~6組分別為Tris-鹽酸緩沖液、Tris-磷酸緩沖液、Tris-硼酸緩沖液、磷酸鹽緩沖液、硼酸鹽緩沖液、巴比妥緩沖液。
取6套玻璃平皿,按照1~6的順序編號(hào),依次加入對(duì)應(yīng)的緩沖液。每套平皿中浸泡12張標(biāo)記好的醋酸纖維膜,方法:辨別無(wú)光澤面,用鉛筆在膜的一端2 cm處作標(biāo)記,作為點(diǎn)樣位置,然后將無(wú)光澤面向下,浸泡于平皿內(nèi)緩沖液中,注意觀察薄膜觸及液面的瞬間,若瞬間全部浸濕說(shuō)明薄膜質(zhì)量好,否則應(yīng)棄掉。使薄膜自然下沉,浸泡30 min。
1.2.3 最適電壓的篩選
根據(jù)薄膜的長(zhǎng)度計(jì)算電壓[5],設(shè)定60 V、70 V、80 V 3種電壓條件,觀察各種緩沖液分離血清蛋白效果,最佳電壓以圖譜蛋白區(qū)帶出現(xiàn)5條、條帶整齊、清晰為判定標(biāo)準(zhǔn)。電泳時(shí)間為50 min。試驗(yàn)操作方法如下:
(1)點(diǎn)樣 將充分浸泡的薄膜取出,用濾紙吸干多余緩沖液,無(wú)光澤面向上平放于干凈的玻璃板上。取20 μL新鮮血清加在載玻片上,傾斜載玻片使血清分散,用點(diǎn)樣器沾取血清,在纖維膜標(biāo)記的位置垂直點(diǎn)樣,并隨之提起。
(2)電泳 將點(diǎn)樣的醋酸纖維膜無(wú)光澤面向下,點(diǎn)樣端靠近負(fù)極,兩端緊貼電泳槽上的濾紙橋,拉直放好,每個(gè)電泳槽放置12條,蓋好蓋子,平衡10 min,選擇電壓和電泳時(shí)間,通電(3臺(tái)電泳儀同時(shí)電泳,每臺(tái)電泳儀連接2個(gè)電泳槽,電泳槽按照1-6編號(hào),槽內(nèi)是對(duì)應(yīng)編號(hào)的緩沖液)。
(3)染色及漂洗 將纖維膜放入氨基黑染液染色5 min,取出,再漂洗3~5次,至背景清晰,記錄試驗(yàn)結(jié)果。
1.2.4 緩沖溶液穩(wěn)定性試驗(yàn)
(1)使用頻次:每種緩沖液120張醋酸纖維膜,在最適電壓下,觀察各緩沖液分離血清蛋白圖譜效果,操作方法同上,重復(fù)操作5次(24條/次)。根據(jù)有效纖維膜的蛋白區(qū)帶出現(xiàn)條數(shù)及概率判定使用頻次對(duì)緩沖液穩(wěn)定性的影響。
(2)使用時(shí)間:室溫放置6個(gè)月的緩沖液分離血清蛋白,重復(fù)上述操作1次(即每種緩沖液24條纖維膜),試驗(yàn)條件、操作方法和判定標(biāo)準(zhǔn)同上,觀察放置一定時(shí)間對(duì)緩沖液穩(wěn)定性的影響。
1.2.5 各種緩沖液電泳結(jié)果的比較
(1)電泳圖譜蛋白質(zhì)分離效果的比較
比較各種電泳緩沖液分離血清蛋白的效果,根據(jù)蛋白區(qū)帶出現(xiàn)條數(shù)、概率以及分辨力對(duì)緩沖液進(jìn)行評(píng)價(jià)。
(2)蛋白質(zhì)區(qū)帶分散程度定量分析
分別選擇各種緩沖液電泳效果較好的圖譜,測(cè)量各組蛋白間距,計(jì)算并取均值,根據(jù)膜條擴(kuò)展的總距離(從點(diǎn)樣區(qū)到清蛋白最遠(yuǎn)端的距離)、點(diǎn)樣區(qū)距第一條帶遠(yuǎn)端、最遠(yuǎn)區(qū)帶與最近區(qū)帶的距離對(duì)緩沖液進(jìn)行評(píng)價(jià)。
1.2.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理
用IBM SPSS Statistics 25對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理。緩沖液的區(qū)帶分散程度定量分析比較采用配對(duì)樣本t檢驗(yàn)。
在60 V電壓時(shí),Tris-鹽酸、Tris-磷酸、磷酸鹽、巴比妥緩沖液的電泳圖譜均出現(xiàn)4條蛋白質(zhì)區(qū)帶,其中第3條為α2-球蛋白和β-球蛋白合并,稱為α2、β-球蛋白(下同),從正極到負(fù)極依次為清蛋白、α1-球蛋白、α2、β-球蛋白、γ-球蛋白;硼酸鹽緩沖液出現(xiàn)3條蛋白質(zhì)區(qū)帶,其中第2條為α1、α2、β-球蛋白合并。70 V電壓時(shí),Tris-鹽酸、Tris-磷酸、磷酸鹽、巴比妥緩沖液圖譜出現(xiàn)5條區(qū)帶,從正極到負(fù)極依次為清蛋白、α1-球蛋白、α2-球蛋白、β-球蛋白、γ-球蛋白,硼酸鹽緩沖液的電泳圖譜則均出現(xiàn)4條區(qū)帶。80 V電壓時(shí),Tris-鹽酸、Tris-磷酸、巴比妥緩沖液的電泳圖圖譜均出現(xiàn)5條區(qū)帶,磷酸鹽、硼酸鹽緩沖液的電泳圖譜均出現(xiàn)4條(表2)。Tris-硼酸緩沖液在3個(gè)電壓梯度下圖譜均出現(xiàn)8條區(qū)帶。70v時(shí)各緩沖液電泳圖譜區(qū)帶數(shù)量出現(xiàn)最多,且區(qū)帶整齊、分辨力高、位置較適中,為最佳電壓。
表2 不同梯度電壓各種緩沖液電泳圖譜最多區(qū)帶數(shù)統(tǒng)計(jì)(n=12)
2.2.1 使用頻次
除去薄膜質(zhì)量、操作失誤等問(wèn)題導(dǎo)致結(jié)果無(wú)效的,在使用頻次穩(wěn)定性試驗(yàn)中有效薄膜及區(qū)帶數(shù)量見(jiàn)表3。第1次試驗(yàn)中,Tris-鹽酸、Tris-磷酸和巴比妥緩沖液中圖譜出現(xiàn)5條區(qū)帶概率分別為8.33%、66.66%、65.22%;第5次試驗(yàn)中,Tris-鹽酸、Tris-磷酸、磷酸鹽和巴比妥緩沖液中圖譜出現(xiàn)5條區(qū)帶概率分別為8.33%、68.18%、62.50%,出現(xiàn)5條區(qū)帶概率相差不大。Tris-硼酸和硼酸鹽緩沖液電泳圖譜均未出現(xiàn)5條蛋白質(zhì)區(qū)帶。
表3 各種緩沖液使用頻次穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果
2.2.2 使用時(shí)間
緩沖液放置6個(gè)月穩(wěn)定性電泳試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表4,Tris-鹽酸、Tris-磷酸和巴比妥緩沖液圖譜出現(xiàn)5條區(qū)帶概率分別為8.69%、62.50%、58.33%,與使用頻次穩(wěn)定性試驗(yàn)中首次電泳結(jié)果相比差異較小。
表4 緩沖液放置6個(gè)月電泳穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果
2.3.1 電泳圖譜蛋白質(zhì)分離效果的比較
選擇的是70 V電壓、50 min條件下各種緩沖液具有代表性的圖譜,并根據(jù)蛋白質(zhì)泳動(dòng)速度和分散距離分類比對(duì),見(jiàn)圖1~3。圖1為Tris-鹽酸、Tris-磷酸和巴比妥緩沖液,這3種緩沖液雖然分散有所程度不同,但圖譜居中;與其他兩種緩沖液不同的是,Tris-鹽酸4條蛋白質(zhì)區(qū)帶居多;圖2為硼酸鹽和磷酸鹽緩沖液,二者區(qū)帶數(shù)及位置基本相同。圖3為Tris-硼酸緩沖液,圖譜有9條區(qū)帶??梢?jiàn)在相同試驗(yàn)條件下,Tris-磷酸和巴比妥緩沖液圖譜效果優(yōu)于其他緩沖液。
注:1.清蛋白;2.α1-球蛋白;3.α2-球蛋白;4.β-球蛋白;5.γ-球蛋白圖1 Tris-鹽酸、Tris-磷酸和巴比妥緩沖液電泳圖譜分離效果的比較
注:1.清蛋白;2.α1-球蛋白;3.α2β-球蛋白;4.γ-球蛋白圖2 硼酸鹽和磷酸鹽緩沖液電泳圖譜分離效果的比較
注:因不能確定圖譜蛋白區(qū)帶名稱故沒(méi)有進(jìn)行標(biāo)記圖3 Tris-硼酸緩沖液電泳圖譜分離效果
2.3.2 區(qū)帶分散程度定量分析
每種緩沖液選取50張醋酸纖維膜,分別統(tǒng)計(jì)薄膜蛋白區(qū)帶分布距離,取其平均值進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,結(jié)果見(jiàn)表5。膜條擴(kuò)展的總距離,Tris-鹽酸、Tris-磷酸和巴比妥緩沖液三者間差異不顯著(P>0.05),與磷酸鹽和硼酸鹽緩沖液間差異極顯著(P<0.01);點(diǎn)樣區(qū)距第一條帶遠(yuǎn)端的距離和最遠(yuǎn)區(qū)帶與最近區(qū)帶的距離,Tris-磷酸與巴比妥緩沖液二者間無(wú)顯著差異(P>0.05),與Tris-鹽酸差異顯著(P<0.05)、與磷酸、硼酸鹽緩沖液差異極顯著(P<0.01),Tris-鹽酸與其他4種緩沖液均差異顯著(P<0.05);最遠(yuǎn)區(qū)帶與最近區(qū)帶的距離,磷酸鹽緩沖液與硼酸鹽緩沖液間差異顯著(P<0.05)。Tris-硼酸圖譜均出現(xiàn)超過(guò)5條區(qū)帶的現(xiàn)象,此處不做分析。
表5 各種緩沖液電泳圖譜蛋白區(qū)帶分散程度分析
影響質(zhì)點(diǎn)遷移率的因素有多種,包括帶電質(zhì)點(diǎn)的性質(zhì)、電場(chǎng)強(qiáng)度、緩沖液的黏度、溫度、pH值和離子強(qiáng)度以及固體支持物的電滲現(xiàn)象等。由于醋酸纖維薄膜電滲很小,如果緩沖液性質(zhì)穩(wěn)定,此時(shí)影響質(zhì)點(diǎn)遷移的主要因素便是電場(chǎng)強(qiáng)度。電泳速度與電場(chǎng)強(qiáng)度和電流強(qiáng)度成正比,電壓增加,電流也相應(yīng)增大,從而加速電泳。但電流過(guò)大時(shí),血清蛋白運(yùn)動(dòng)快但區(qū)帶卻分不開(kāi),產(chǎn)生的熱效應(yīng)足夠高的話甚至?xí)寡宓鞍鬃冃远荒芊蛛x[6]。此外,還應(yīng)根據(jù)室溫對(duì)電壓適當(dāng)調(diào)整[7,8],因此選擇合適的電壓是電泳試驗(yàn)良好效果的重要環(huán)節(jié)。
通過(guò)對(duì)60 V、70 V、80 V 3種電壓梯度的對(duì)比,60 V時(shí)區(qū)帶緊密不易分離,隨著電壓的增大,移動(dòng)的距離越遠(yuǎn),區(qū)帶整體向正極方向移動(dòng)的距離增加;80 V時(shí)蛋白區(qū)帶整體明顯偏向正極,導(dǎo)致緩沖液圖譜的清蛋白泳動(dòng)到濾紙橋邊緣,造成蛋白丟失,且電壓過(guò)高導(dǎo)致Tris-硼酸的清蛋白出現(xiàn)了“蝴蝶狀”。說(shuō)明電壓過(guò)高,蛋白質(zhì)各組分之間展開(kāi)距離短,出現(xiàn)擠壓,導(dǎo)致區(qū)分困難,并且極易造成蛋白質(zhì)區(qū)帶過(guò)度移動(dòng);電壓過(guò)低,樣品泳動(dòng)速度慢且易擴(kuò)散,所呈現(xiàn)的圖譜常有“拖尾”現(xiàn)象不利于圖譜的觀察。
除了離子強(qiáng)度和電場(chǎng)強(qiáng)度,使用頻次和放置時(shí)間也是影響電泳緩沖液穩(wěn)定性的主要因素。試驗(yàn)表明,圖譜出現(xiàn)各種蛋白質(zhì)區(qū)帶數(shù)量首次比末次(第5次)相比較,Tris-磷酸、Tris-硼酸、磷酸鹽、硼酸鹽和巴比妥緩沖液基本一致,說(shuō)明使用頻次5次以內(nèi),各緩沖液圖譜區(qū)帶數(shù)量和清晰度變化不大;Tris-鹽酸緩沖液圖譜出現(xiàn)4條和3條蛋白質(zhì)區(qū)帶的薄膜數(shù)量前后相差2張,說(shuō)明重復(fù)使用5次對(duì)該緩沖液電泳效果有一定影響。放置了6個(gè)月的緩沖液圖譜出現(xiàn)各種蛋白質(zhì)區(qū)帶數(shù)量與頻次穩(wěn)定試驗(yàn)中首次數(shù)量對(duì)比,各種緩沖液相差不明顯,出現(xiàn)5條的占比率有所下降,其中Tris-磷酸緩沖液比放置前降低了4.16%,巴比妥緩沖液降低了4.17%,可見(jiàn)放置6個(gè)月時(shí)間的電泳緩沖液的電泳圖譜區(qū)帶占比率總體是下降的,但下降幅度不大,可以繼續(xù)使用,表明室溫下放置6個(gè)月時(shí)間對(duì)緩沖液穩(wěn)定性影響較小。含Tris堿的電泳緩沖溶液對(duì)溫度比較敏感,在溫度改變10攝氏度時(shí),電泳緩沖液的pH會(huì)發(fā)生明顯的改變[9],因本試驗(yàn)溫度在20~25 ℃,故不存在這種可能性。電泳槽中緩沖溶液經(jīng)6次使用后不應(yīng)簡(jiǎn)單地采取交換電極的方法,而是將緩沖液取出重新混合過(guò)濾后再進(jìn)行使用,一般用4個(gè)周期后需更換新溶液[10]。
電泳圖譜和各蛋白分散程度分析是驗(yàn)證優(yōu)質(zhì)電泳緩沖液的兩個(gè)重要條件。選擇適合電泳的電極緩沖液是蛋白分離圖譜質(zhì)量的保障,不僅可以提高區(qū)帶分辨力和清晰度,還能降低拖尾和吸附現(xiàn)象。通過(guò)緩沖液對(duì)比試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),以Tris堿制成的有機(jī)電泳緩沖溶液比無(wú)機(jī)緩沖溶液出現(xiàn)的試驗(yàn)結(jié)果好。原因可能為Tris緩沖溶液穩(wěn)定,與血清的相容性好,Tris-硼酸緩沖溶液與鈣、鎂離子不會(huì)形成沉淀;相反,硼酸鹽與鈣、鎂離子會(huì)產(chǎn)生沉淀,當(dāng)相同pH、相同濃度的Tris-硼酸緩沖溶液的離子強(qiáng)度比硼酸鹽緩沖溶液的離子強(qiáng)度低,這對(duì)血清蛋白測(cè)定尤為重要[9]。
Tris-磷酸與巴比妥緩沖液的電泳圖譜不僅出現(xiàn)5條蛋白質(zhì)帶比率相當(dāng),而且區(qū)帶清晰、整齊、易分辨,說(shuō)明這2種緩沖液分離血清蛋白的效果相當(dāng);同樣的磷酸和硼酸鹽緩沖液圖譜蛋白質(zhì)出現(xiàn)4條,且結(jié)構(gòu)緊密,泳動(dòng)距離短,用于醋酸纖維膜電泳效果較差;Tris-磷酸與巴比妥緩沖液、磷酸鹽和硼酸鹽緩沖液的膜條擴(kuò)展的總距離、點(diǎn)樣區(qū)距第一條帶遠(yuǎn)端的距離、最遠(yuǎn)區(qū)帶與最近區(qū)帶的距離均相差不大,雖然Tris-鹽酸上述3項(xiàng)指標(biāo)都優(yōu)于巴比妥,但Tris-鹽酸出現(xiàn)4條區(qū)帶比率較大,且蛋白區(qū)帶有擴(kuò)散現(xiàn)象,綜合考慮效果不如巴比妥緩沖液。
綜上所述,采用醋酸纖維膜電泳分離家兔血清蛋白,在電壓條件為70 V時(shí),各種緩沖液電泳分離血清蛋白圖譜均達(dá)到最佳,其中Tris-磷酸、巴比妥、Tris-鹽酸緩沖液均出現(xiàn)5條清晰區(qū)帶;各緩沖液穩(wěn)定性在使用5次以內(nèi)、室溫條件放置6個(gè)月后影響不大;圖譜區(qū)帶數(shù)量、清晰度、分散程度分析表明Tris-磷酸、巴比妥緩沖液效果最好,Tris-鹽酸緩沖液次之,磷酸鹽、硼酸鹽緩沖液較差;Tris-硼酸緩沖液為何出現(xiàn)的多于5條蛋白質(zhì)區(qū)帶、每條區(qū)帶是什么蛋白質(zhì),尚待進(jìn)一步研究探討。
6種電泳緩沖液在電壓為70 V、電泳時(shí)間為50 min試驗(yàn)條件下分離血清蛋白,圖譜區(qū)帶清晰、重復(fù)性好、結(jié)果穩(wěn)定。以圖譜分離5條蛋白質(zhì)區(qū)帶為準(zhǔn),Tris-磷酸緩沖液與巴比妥緩沖液效果相當(dāng),可以替代巴比妥緩沖液用于血清蛋白纖維膜電泳。