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花煙草NaERF1 基因的克隆及在非生物脅迫下的表達模式分析

2020-01-14 06:59魯琳趙希勝劉桂雲(yún)劉維東王艷婷吳玲莉任學良
生物技術通報 2020年1期
關鍵詞:結構域克隆煙草

魯琳 趙希勝 劉桂雲(yún) 劉維東 王艷婷 吳玲莉 任學良

魯黎明2

(1. 四川農(nóng)業(yè)大學風景園林學院,成都 611130;2. 四川農(nóng)業(yè)大學農(nóng)學院,成都 611130;3. 貴州省煙草科學研究院,貴陽 550081)

轉錄因子是一類能夠調控下游基因轉錄的關鍵DNA 結合蛋白,它能夠特異地結合在真核生物基因的啟動子順式作用元件區(qū)域,從而激活或者抑制基因的表達[1]。高等植物中,有眾多的轉錄因子,其中,AP2/ERF 類轉錄因子較為古老,為植物所特有且植物中最大的一類,。從結構上看,AP2/ERF 類轉錄因子均含有1-2 個高度保守的AP2 結構域,含有1 個結構域的為ERF 亞家族,含有2 個結構域的為AP2亞家族[2]。

AP2/ERF 家族轉錄因子在植物的生命活動過程中發(fā)揮著十分重要的作用,參與了細胞增殖、花器管發(fā)育、植物次生代謝、植物激素應答等重要過程[3-6]。同時,越來越多的研究證明,AP2/ERF 類轉錄因子還參與了干旱、高滲、低溫、高鹽等非生物脅迫和抵御微生物侵染等生物脅迫響應[3-4,7-13]。正因為該類轉錄因子的多重功能,所以其在植物中的數(shù)量巨大。隨著植物基因組測序工作的不斷推進,以及生物信息學技術的不斷進步與完善,極大地促進了AP2/ERF 轉錄因子超級家族的研究工作。目前,模式植物擬南芥、水稻中,分別鑒定出了122、139個AP2/ERF 轉錄因子[1];在玉米中有167 個AP2/ERF 轉錄因子[14];在辣椒中發(fā)現(xiàn)了123 個成員[15];在葡萄、番茄、馬鈴薯中分別鑒定出了149、167、246 個 AP2/ERF 類轉錄因子[16]。

花煙草是屬于茄科煙草屬的一年生草本觀賞花卉,其花色種類繁多、花期較長,是優(yōu)美的花壇、花鏡材料,是我國許多城市的重要的綠化美化材料。研究其ERF 轉錄因子的定位、表達模式及功能等,對于探索花煙草的生長發(fā)育的機制具有重要意義。因此,本研究利用同源克隆的方法,克隆了一個花煙草的ERF基因,采用生物信息方法對該基因進行了鑒定,并分析了其組織表達及響應非生物脅迫的表達模式,以期為花煙草ERF 基因的功能研究奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

以花煙草(Nicotiana alata)為試驗材料。

1.2 方法

1.2.1 植物材料的培養(yǎng)及非生物脅迫處理 材料培養(yǎng):挑選籽粒飽滿且大小一致的種子,用次氯酸鈉溶液表面消毒后,用無菌水清洗數(shù)次,隨后播種于MS 培養(yǎng)基上,并置于恒溫培養(yǎng)室中生長(光照:16 h 光/8 h 暗;溫度:25℃)。

非生物脅迫處理及取材:種子萌發(fā)后,在MS培養(yǎng)基上生長至2 片真葉時,取10 株幼苗,在液氮中速凍,用于目的基因的克隆。同時,挑選長勢一致的煙苗,分別進行低溫(4℃)、干旱(5%PEG6000)、高鹽(200 mmol/L)、低鉀(10 μmol/L)、ABA(1 μmol/L)及H2O2(10 mmol/L)處理。進行低溫處理時,將煙苗置于4℃光照培養(yǎng)箱中;進行其它非生物脅迫處理時,將煙苗分別移至含有5%PEG6000、200 mmol/L Nacl、10 μmol/L 鉀、1 μmol/L ABA 及10 mmol/L H2O2的MS 培養(yǎng)基上,然后置于25℃光照培養(yǎng)箱中。每個處理設3 個重復,每重復15 株煙苗。在處理后0 h、3 h、6 h、12 h、24 h 后,分處理、重復進行整株取樣,并置于液氮中保存,用于總RNA 的提取。

低鉀MS 培養(yǎng)基(鉀離子終濃度為10 μmol/L)的配制,參照張雪微等方法進行[17]。

此外,采用上述種子處理方法,將種子消毒后,播種于塑料盆中進行培養(yǎng)。待煙苗發(fā)育到4葉1心時,分別取煙苗的根、莖、葉及開花期的煙花,保存于液氮中,用于目的基因的組織表達分析。

1.2.2 目的基因克隆 總RNA 的提取及反轉錄:采用Trizol 法提取煙苗的總RNA[18],然后,參照cDNA 合成試劑盒的方法,進行反轉錄及cDNA 合成。

目的基因的克?。簠⒄罩参锏腅RF基因序列,利用Primer Premier 5 軟件設計兼并PCR 引物。在預試驗的基礎上,設計特異引物進行PCR 擴 增。 引 物 序 列 如 下:ERF1-F:5′-GCCC ATGGAACAAGAACAAGTATATGA-3′,ERF1-R :5′-GCCCTAACTAGGACAAAACATTTG-3′。以合成的cDNA 為模板進行PCR 擴增,反應程序為:98℃ 5 min;94℃ 30 s;53℃ 30 s;72℃ 1 min;35 個循環(huán);72℃ 10 min;12℃終止。PCR 反應體系為(25 μL):cDNA 模 板1 μL,Taq Buffer(10x)5 μL,2.5 mol/L dNTP 2 μL,正反引物各1 μL,Taq 酶 1μL,ddH2O 14 μL。PCR 反應結束后,將產(chǎn)物進行凝膠電泳,回收并純化目的片段,連接pEASY-Blunt Simple 克隆載體,轉化Trans1-T1 感受態(tài)細胞,在含有氨芐青霉素抗性平板上篩選,挑取陽性單克隆進行菌液PCR驗證后,送至上海生工生物工程技術有限公司測序。

1.2.3 生物信息學分析 利用DNAMAN 8 軟件對測序正確的序列進行分析,并翻譯成氨基酸序列。用ProtParam(http://web.expasy.org/protparam/) 對 其基本理化性質進行分析,用ProtScale(http://web.expasy.org/protscale/)預測蛋白親/疏水性。用CDD(http://smart.embl-heidelberg.de/)預測蛋白結構域。用Cell-PLoc 2.0(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/Cell-PLoc-2/)進行亞細胞定位分析,用NetPhos 3.1(http://www.cbs.dtu.dk/services/NetPhos/)預測磷酸化位點,用SOPMA(https://npsa-prabi.ibcp.fr/)和Phyre2 分別進行目的蛋白的二級結構和三級結構預測;利用MEGA7 軟件構建系統(tǒng)進化樹。

1.2.4 目的基因的組織表達及響應非生物脅迫的誘導表達分析 引物設計:采用Primer Premier 5軟件,進行引物設計,用于目的基因的組織表達及響應非生物脅迫的誘導表達分析。正向引物:ERF1-qF:5′-GCCTCTGAACCTATTGCC-3′,反 向 引物:ERF1-qR:5′-TGCCACGATAAAGGACTG-3′;內 參 為18S rRNA, 引 物 序 列 為18S-F:5′-CCTACGCTCTGTATACATTAGC-3′ ;18S-R :5′-GTGTTGAGTCAAATTAAGCCGC-3′。

目的基因的組織表達及受誘導表達分析:按上述方法提取樣品的總RNA,并進行反轉錄合成cDNA。以花煙草18S rRNA 為內參,以cDNA 為模板,采用qRT-PCR 的方法,進行目的基因片段的PCR擴增。目的基因相對表達量的計算,采用2-△△Ct的方法進行,并利用EXCEL 軟件進行統(tǒng)計分析及做圖。

“很多問題要等監(jiān)管層的明確批示?!鄙鲜鲢y行資管部門經(jīng)理告訴《中國經(jīng)濟周刊》記者,目前有很多細節(jié)還沒有確認,尤其是涉及到存量產(chǎn)品和存量業(yè)務轉移的具體事宜。此外,缺人也成為眼下成立理財子公司的銀行面臨的主要問題?!扒也徽撔庐a(chǎn)品的開發(fā)和新業(yè)務的展開,僅是目前的存量業(yè)務,原有負責人員肯定不可能全部轉去理財子公司。現(xiàn)在在市場上,權益投資、固收投資等方面的人才,幾家銀行全都在抓緊招聘?!?/p>

2 結果

2.1 目的基因的克隆

以煙草幼苗為材料提取總RNA,反轉錄后進行PCR 擴增,用1%瓊脂糖凝膠電泳,在750 bp-1000 bp 之間有一條清晰明亮的條帶(圖1)。條帶經(jīng)回收純化后送樣測序。將測序結果用DNAMAN8 進行分析并翻譯成蛋白序列。同時,在NCBI 網(wǎng)站上分析其ORF 序列。結果顯示,該基因ORF 長度為819 bp,編碼272 個氨基酸。

在NCBI 上,用BLAST 對目的基因的CDS 序列進行比對,結果表明該基因對多個物種的ERF基因同源性較高。于是,將目的基因命名為NaERF1。

圖1 NaERF1 基因克隆

2.2 NaERF1蛋白的生物信息學分析

2.2.1 理化性質分析 利用Protparam(http://web.expasy.org/protparam/)對NaERF1 蛋白的理化性質進行了分析,結果顯示,NaERF1 編碼272 個氨基酸,該蛋白的分子式為C1339H2064N376O431S13;分子量為30742.16 Da;理論pI 值:6.07;脂肪系數(shù)為57.72,帶負電荷的殘基(Asp+Glu)總數(shù)為31 個,帶正電荷的殘基(Arg+Lys)總數(shù)為27 個。NaERF1 蛋白的平均親水系數(shù)(GRAVY)為-0.659,在該蛋白氨基酸組成中絲氨酸(Ser)和蘇氨酸(Thr)含量較高,分別占氨基酸總數(shù)的10.7%和9.2%;半胱甘酸(Cys)和色氨酸(Trp)含量較低,分別占氨基酸總數(shù)的1.5%和1.8%。

2.2.2 親/ 疏水性分析 利用ExPaSy 網(wǎng)站的ProtScale(http://web.expasy.org/protscale/), 選 擇Hphob./Kyte&Doolittle 算法,對NaERF1 蛋白的親/疏水性進行了分析,結果如圖2 所示。NaERF1 蛋白序列中第13 位氨基酸最高分值為1.144,第266 位氨基酸最低分為-2.322。總體上看,親水性氨基酸均勻分布在整個肽鏈中,且平均分值大于疏水性氨基酸,可推測NaERF1 蛋白屬于親水性蛋白。

圖2 NaERF1 蛋白親/疏水性分析

2.2.3 跨膜結構預測 采用ExPASy 提供的TMHMM Server(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/)軟件,在線對NaERF 的跨膜區(qū)進行預測,結果如圖3 所示。預測結果表明,NaERF1 蛋白沒有跨膜區(qū),不屬于跨膜蛋白。

圖3 NaERF1 蛋白跨膜區(qū)分析

2.2.4 亞細胞定位 利用在線軟件Cell-PLoc 2.0(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/Cell-PLoc-2/),選用Plant-mPLoc,對NaERF1 蛋白進行了亞細胞定位分析。結果顯示,該蛋白位于細胞質的可能性為41.5%,位于過氧化物酶體(Peroxisome)的可能性為28%,位于線粒體基質(Mitochondrial matrix space)的可能性為10%。因此,推測該蛋白可能定位于細胞質中。

圖4 NaERF1 蛋白磷酸化位點預測

2.2.6 功能域與信號肽預測 通過CDD(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi) 網(wǎng) 站,對NaERF1 蛋白進行了保守功能域預測。結果(圖5)顯示,NaERF1 蛋白的第22-83 位氨基酸,存在一個典型的ERF 轉錄因子保守結構域(AP2)。表明NaERF1 蛋白屬于植物的AP2/ERF 家族,推測能夠行使植物AP2/ERF 基因的功能。

通 過SignalP 4.1(http ://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)軟件,對NaERF1 蛋白信號肽進行預測,結果(圖6)顯示,該蛋白不含有信號肽。

2.2.7 二級結構預測與三級結構預測 利用SOPMA在線軟件,對NaERF1 蛋白的二級結構進行了預測,結果如圖7 所示。NaERF1 蛋白主要由51.10%的無規(guī)卷曲(random coil,139 個氨基酸參與),38.97%的α-螺旋(alpha helix,106 個氨基酸參與),7.72%的延伸鏈(extended strand,21 個氨基酸參與),2.21%β-轉角(beta turn,6 個氨基酸參與)所構成。同時,利用Phyre2 軟件預測了NaERF1 蛋白的三級結構。

2.2.8 NaERF1 編碼蛋白的同源性分析 利用NCBI Blast(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) 在 線工具,在數(shù)據(jù)庫中,搜索并選取與NaERF1序列相似度大于70%以上的37 個同源基因,采用MEGA7軟件,選用鄰位相連法、Bootstrap method 選擇1000進行計算,構建了系統(tǒng)發(fā)育樹(圖8)。從分析的結果可以看出,NaERF1與茄科植物的ERF基因親緣關系較近,而與其它植物的ERF基因親緣關系較遠。其中,同源性最高的為普通煙草(Nicotiana tabacum)的ERF基因(XP 016476774.1),同源性最低的為橡膠樹的ERF基因(XP 021640270.1)。

圖5 NaERF1 蛋白功能域的預測

圖6 NaERF1 蛋白的信號肽預測

圖7 NaERF1 蛋白的二級結構與三級結構預測

2.3 NaERF1的組織表達分析

采用qRT-PCR 的方法,對NaERF1在花煙草不同組織與器官中的表達量進行了分析。結果(圖9)顯示,NaERF1基因的表達具有組織特異性,其在花中表達量最高,莖中次之,根和葉中表達量較低。該結果說明,NaERF1廣泛參與了花煙草的生理生化過程,并有可能主要在花中發(fā)揮作用。

2.4 NaERF1響應非生物脅迫的表達模式

為了探究NaERF1在花煙草適應非生物逆境中的作用,分析了NaERF1在PEG、高鹽、低鉀、低溫、ABA 和H2O2處理下,0 h、3 h、6 h、12 h 及24 h 的表達情況。結果(圖10)顯示,NaERF1基因的表達對這6 種非生物脅迫均有所響應。但其響應表達的模式,有明顯不同。例如,隨著脅迫時間的推移,對低溫的響應呈現(xiàn)出先降低后升高的趨勢(圖10-A);對低鉀及ABA 呈現(xiàn)先升高后降低的模式(圖10-B-C);對PEG 脅迫表現(xiàn)為先升高再降低再升高(圖10-D);對H2O2的表現(xiàn)為先降低再升高又降低(圖10-E);而對高鹽脅迫,NaERF1的表達則表現(xiàn)為持續(xù)降低(圖10-F)。本結果表明,NaERF1可能參與了花煙草對干旱、低溫等非生物脅迫的響應過程。

3 討論

植物ERF家族基因,不但數(shù)量眾多,而且所行使的功能也較為復雜,例如參與植物的生長發(fā)育以及生物與非生物脅迫的應答反應等[2-4,16,19-20]。其功能的行使,依靠其保守的AP2/ERF 結構域,該結構域由大約60 個氨基酸所組成[16]。本研究所克隆的NaERF1基因所編碼的蛋白,也包含了一個AP2/ERF 結構域。所以,可以推測,NaERF1隸屬于花煙草的ERF 家族,能夠行使植物ERF家族基因所具有的功能。

在擬南芥[1]、水稻[1]、玉米[14,21]、辣椒[15]及普通煙草[20]上的研究表明,植物的ERF基因,不但成員眾多,而且其亞細胞定位較為復雜,可以在細胞質、細胞核、葉綠體以及線粒體中特異表達。本研究對NaERF1進行的亞細胞定位的預測結果表明,該基因主要定位于細胞質,與前人的研究結果相一致。此外,NaERF1基因具有組織表達特異性,在花中的表達量最高,在莖、根和葉片中也均有表達。該結果與普通煙草ERF的組織表達模式較為一致[20]。這些結果暗示,NaERF1可能廣泛參與了花煙草的生長發(fā)育及其生理進程。

圖8 NaERF1 蛋白的同源性分析

圖9 NaERF1 在花煙草不同組織器官中的表達分析

研究表明,植物的ERF基因廣泛參與了植物響應非生物脅迫的響應過程[16,20]。例如,擬南芥的ERF基因,參與了干旱及冷害的脅迫響應[2]。過量表達TERF2 能夠提高轉基因煙草及番茄植株對低溫脅迫的耐受性[22]。對水稻而言,過量表達OsAP37[23]、OsERF48[24]及OsERF71[25-26],均能夠增強轉基因植物的耐旱性;而SERF1則參與了水稻耐鹽性的調控,當其功能缺失時,水稻植株對鹽脅迫更敏感[27]。番茄的TERF2在水稻中過表達,使得轉基因水稻的耐冷性得到了提高[28]。此外,羊草LcDREB3a在擬南芥中的過量表達,可提高轉基因植物的抗旱和抗鹽能力[29]。本研究分析了NaERF1在PEG、高鹽、低鉀、低溫、ABA 和H2O2處理下的表達情況。結果顯示,NtaERF1基因的表達,受低鉀、ABA 的強烈誘導;同時,也在轉錄水平上對PEG、高鹽、低溫及H2O2的脅迫有較為明顯的響應。具體而言,其響應模式可以分為:(1)先降低后升高型,如在低溫脅迫下的表達;(2)先升高后降低型,如在低鉀及ABA 脅迫下的表達;(3)先升高再降低再升高型,如響應PEG 脅迫的表達;(4)先降低再升高又降低型,如響應H2O2的誘導表達;(5)持續(xù)降低型,如在高NaCl 脅迫下的表達。本研究結果說明,與植物的其它AP2/ERF 家族轉錄因子相類似,NaERF1也可能廣泛參與了非生物逆境脅迫的生理響應。其中的調控機制,尚有待于進一步的探索。

圖10 NaERF1 在非生物脅迫下的表達模式

4 結論

花煙草NaERF1基因所編碼的蛋白具有典型的AP2 家族保守結構域,屬于植物的ERF 家族。該基因的表達具有組織特異性,并且響應非生物脅迫的誘導,能夠在花煙草非生物脅迫響應中行使相應的功能。

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