徐 思,李 野
(四川師范大學(xué) 體育學(xué)院,四川 成都610100)
運(yùn)動誘導(dǎo)的線粒體生成是運(yùn)動性適應(yīng)的主要標(biāo)志(Little et al.,2011),也是運(yùn)動訓(xùn)練促使運(yùn)動能力增強(qiáng)的生理基礎(chǔ)(鄭莉芳 等,2018)。運(yùn)動應(yīng)激適應(yīng)性線粒體生成依賴組織細(xì)胞對運(yùn)動誘導(dǎo)的細(xì)胞氧化應(yīng)激狀態(tài)的感知,并啟動下游調(diào)控線粒體生成因子的激活(Margaritelis et al.,2018),但其分子機(jī)制目前尚無定論。
長非編碼RNA(long non-coding RNA,lncRNA)是真核細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)的一類長度大于200 nt的RNA分子,一般不編碼蛋白質(zhì),多數(shù)具有mRNA樣結(jié)構(gòu)(經(jīng)過剪切,具有PolyA尾巴,與啟動子有結(jié)合能力),是基因表達(dá)調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的不可或缺的組成部分(Hung et al.,2010),調(diào)控作用范圍涉及轉(zhuǎn)錄水平、轉(zhuǎn)錄后水平及表觀遺傳水平(Salmena et al.,2011),以信號分子、誘餌分子、引導(dǎo)分子、骨架分子等方式在細(xì)胞增殖、分化、應(yīng)激適應(yīng)、自噬以及死亡過程中呈現(xiàn)多重調(diào)控機(jī)制(Mercer et al., 2009)。氧化應(yīng)激是調(diào)控應(yīng)激適應(yīng)發(fā)生的基本信號通路(Araki et al.,2016; Bisht et al.,2017; Kandola et al.,2015; Schieber et al.,2014),LncRNA在多個層次參與應(yīng)激適應(yīng)相關(guān)的氧化應(yīng)激信號通路調(diào)控(Chen et al.,2014; Fuschi et al., 2019; Tehrani et al.,2018),是調(diào)節(jié)應(yīng)激適應(yīng)性組織結(jié)構(gòu)與功能重塑的主要調(diào)控分子(史華俊 等,2012; Mercer et al.,2013; Valadkhan et al., 2016),而LncRNA在運(yùn)動應(yīng)激誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激應(yīng)答與涉及線粒體生成的正性適應(yīng)調(diào)控通路和機(jī)制上的相關(guān)分子及其作用仍然有待闡明。
GABPB1-AS1是核呼吸因子2β1亞基(GABPB1)(Hayashi et al.,2013)的反義RNA,全長4 139 nt,僅見于人類基因組。GABPB1-AS1是定位于細(xì)胞質(zhì)的短壽LncRNA,一般狀態(tài)下半衰期很短,因而在細(xì)胞質(zhì)中含量很低(Tani et al.,2013)。在多種因素導(dǎo)致的細(xì)胞氧化應(yīng)激狀態(tài)下,GABPB1-AS1在細(xì)胞質(zhì)中積累,積累程度與氧化應(yīng)激刺激強(qiáng)度成正比(Tani et al.,2014),并且與細(xì)胞生存率呈正相關(guān)(Alkhateeb et al.,2019)。目前尚不清楚GABPB1-AS1這一表達(dá)特征的生理意義以及分子機(jī)制。
本研究檢測人源細(xì)胞氧化應(yīng)激模型中GABPB1-AS1在應(yīng)激因素消除后的表達(dá)特征及其對線粒體生成調(diào)控通路關(guān)鍵因子的調(diào)控作用,探討其在應(yīng)激適應(yīng)性線粒體生成過程中的調(diào)控信號通路和作用機(jī)制。
人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVEC)由本實(shí)驗(yàn)室保存。
雙氧水購買于上海阿拉丁生化科技股份有限公司;DMEM(dulbecco minimum essential medium)培養(yǎng)基和0.25%胰蛋白酶(美國Hyclone公司);胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)(美國Gibco公司);Lipofectamine 2000(Thermo Scientific);ribo FECTTM CP轉(zhuǎn)染試劑(廣州銳博生物科技有限公司);逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Thermo Scientific);實(shí)時定量PCR(real time quantitative PCR,qRT-PCR)試劑(美國Kapa Biosystems公司);miR-101 mimic和inhibitor以及對應(yīng)的negative control(廣州銳博生物科技有限公司);RiboLock RNase Inhibitor(100 U/ml)、RNase A+T、RNA提取試劑盒、蛋白定量試劑盒、體外轉(zhuǎn)錄試劑(Thermo Scientific);ACTIN抗體和辣根過氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)標(biāo)記羊抗兔/小鼠二抗、GABPB1、PCG-1α抗體(ProteinTech);膠回收試劑盒(美國Promega公司);本研究使用的引物及寡聚核酸均由上海吉瑪生物科技有限公司設(shè)計(jì)并合成(表1)。
表1 本研究使用的引物和寡聚核酸序列 Table 1 Primers and Oligonucleic Acid Sequences
HUVEC細(xì)胞采用DMEM培養(yǎng)基(含10% FBS、100 U/ ml penicillin、100 μg/ml streptomycin),于CO2培養(yǎng)箱(37℃,5% CO2)中培養(yǎng)。使用0.25%胰蛋白酶消化細(xì)胞,進(jìn)行傳代培養(yǎng)或其他實(shí)驗(yàn)。
采用終濃度200 μM的H2O2處理HUVEC細(xì)胞3 h,構(gòu)建細(xì)胞氧化應(yīng)激模型。作用3 h后洗脫H2O2,更換培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),分別于2 h、4 h、8 h、16 h、24 h收集細(xì)胞用于核酸及蛋白質(zhì)檢測等試驗(yàn)。以正常培養(yǎng)HUVEC細(xì)胞作為對照,記為0 h。
GABPB1-AS1的小干擾RNA(small interfering RNA,siRNA)和對照組NC序列見表1。GABPB1-AS1過表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建方法:使用GABPB1-AS1序列引物對(表1)從HUVEC細(xì)胞cDNA中擴(kuò)增片段,使用NheI 與BamHI酶切質(zhì)粒后將片段插入pcDNA3.1載體中。
取生長狀態(tài)良好的HUVEC細(xì)胞均勻鋪于6孔板,將細(xì)胞密度控制在30%左右,12 h后進(jìn)行轉(zhuǎn)染操作,miR-101 mimic和inhibitor以及對應(yīng)的negative control使用ribo FECTTM CP轉(zhuǎn)染試劑按照說明書步驟進(jìn)行轉(zhuǎn)染操作,GABPB1-AS1 siRNA和過表達(dá)質(zhì)粒使用Lipofectamine 2000進(jìn)行轉(zhuǎn)染。
轉(zhuǎn)染48~72 h后,收集各組細(xì)胞。按照試劑盒說明書提取細(xì)胞總RNA,用分光光度計(jì)檢測OD260/D280得到RNA濃度,再按逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書操作得到cDNA。qRT-PCR檢測按照說明書操作,反應(yīng)體系20 μl,反應(yīng)程序:94℃ 3 min,94℃ 10 s,60℃ 15 s,72℃ 20 s,40個循環(huán)。數(shù)據(jù)分析采用相對定量法(2-ΔΔCT)。GAPDH基因作為定量實(shí)驗(yàn)的內(nèi)參,引物序列見表1。
收集轉(zhuǎn)染的各組細(xì)胞,用預(yù)冷的PBS清洗細(xì)胞2次,加入蛋白酶抑制劑(PIC,Roche)的細(xì)胞裂解液在冰上裂解20 min,渦旋5次,每次10 s。4℃、13 000 rpm/min 離心10 min,收集上清液,BCA法測定蛋白濃度。將得到的蛋白溶液和上樣緩沖液按5:1混合,煮沸10 min,得到細(xì)胞總蛋白樣品。采用10% SDS-PAGE分離膠電泳分離細(xì)胞總蛋白,濕轉(zhuǎn)法將蛋白從SDS-PAGE膠轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜,電轉(zhuǎn)結(jié)束后,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,將硝酸纖維素膜分別置于抗體稀釋液中,4℃孵育過夜。使用PBST(PBS+0.2% Tween20)漂洗5次,每次5 min,再將洗脫后的膜置于HRP標(biāo)記的二抗稀釋液(稀釋比例1:10 000),室溫孵育1 h,再漂洗5次,每次5 min,顯影。以ACTIN作為內(nèi)參蛋白。
GABPB1-AS1(包含miR-101結(jié)合位點(diǎn)區(qū)域)序列克隆至載體pcDNA3.1,PCR引物序列見表1,將構(gòu)建好的載體用BamH I酶切后,使用Roche體外轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行體外轉(zhuǎn)錄和生物素標(biāo)記。轉(zhuǎn)錄結(jié)束后,加入DNase I消化轉(zhuǎn)錄模板,使用TRIzol抽提體外轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物,定量后取3 ug RNA與HUVEC細(xì)胞提取液混合進(jìn)行RNA pull down實(shí)驗(yàn)。反應(yīng)體系為25 mM Tris-Cl [pH 7.4],150 mM NaCl,0.5% NP-40,0.5 mM DTT and 1×complete protease inhibitors(Roche),室溫孵育2~4 h后加入鏈霉素偶聯(lián)的T1 beads(Roche),孵育30 min后,洗脫5次,抽提RNA,逆轉(zhuǎn)錄后qRT-PCR檢測吸附的miR-101。
分別將GABPB1第1外顯子正義方向序列(1~447 nt)和反義方向序列(1~447 nt)按1.7方法體外轉(zhuǎn)錄和生物素標(biāo)記,轉(zhuǎn)錄結(jié)束后,加入DNase I消化轉(zhuǎn)錄模板,使用TRIzol抽提體外轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物,定量后各取3 ug RNA分別與HUVEC細(xì)胞提取液混合進(jìn)行RNA pull down實(shí)驗(yàn)。用于檢測GABPB1-AS1對GABPB1的親和作用的HUVEC細(xì)胞提取液(反應(yīng)體系同前)加入100 U/ml的RNase-inhibitor,室溫孵育1 h后加入鏈霉素偶聯(lián)的T1 beads(Roche),孵育30 min后,洗脫5次,抽提RNA,逆轉(zhuǎn)錄后qRT-PCR檢測吸附的GABPB1序列。
如前所述的HUVEC細(xì)胞分離的RNA置于37℃ 1 h,然后用RNase A+T 37℃處理30 min。RNase A+T能降解單鏈RNA,但不能降解雙鏈RNA。RNase A+T處理后,用TRIzol提取RNA,生成cDNA,進(jìn)行qRT-PCR檢測。
數(shù)據(jù)用SPSS17.0軟件處理,以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)確定兩組間均值差異的顯著性,顯著性水平差異為P<0.05。
HUVEC細(xì)胞經(jīng)200 μM的H2O2作用3 h后細(xì)胞邊界略見皺縮,數(shù)量減少約10%,其他未見顯著異常(圖1A)。
qRT-PCR檢測H2O2作用后繼續(xù)培養(yǎng)2 h、4 h、8 h和16 h的HUVEC細(xì)胞的GABPB1-AS1的表達(dá)水平,結(jié)果顯示,H2O2處理的GABPB1-AS1在2 h和4 h表達(dá)水平增高至3.468倍和3.640倍,均顯著高于正常培養(yǎng)的HUVEC細(xì)胞(P<0.01),8 h和16 h表達(dá)水平略下降,分別為2.77倍和2.20倍,顯著高于正常培養(yǎng)的HUVEC細(xì)胞中GABPB1-AS1(P<0.01,P<0.05)。采用western bloting檢測對應(yīng)時段PGC-1α蛋白表達(dá),結(jié)果顯示,與正常培養(yǎng)的HUVEC細(xì)胞中PGC-1α蛋白水平相比,2~16 h PGC-1α蛋白水平均顯著提高(圖1B)。
采用siRNA敲低HUVEC細(xì)胞的GABPB1-AS1,western bloting檢測其對PGC-1α蛋白水平的影響。結(jié)果表明,敲低GABPB1-AS1后PGC-1α蛋白水平下降(圖1C)。
構(gòu)建GABPB1-AS1過表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HUVEC細(xì)胞,western bloting檢測其對PGC-1α蛋白水平的影響。結(jié)果表明,過表達(dá)GABPB1-AS1后PGC-1α蛋白水平升高(圖1D)。
圖1 H2O2氧化應(yīng)激誘導(dǎo)高表達(dá)的GABPB1-AS1調(diào)控PGC-1α蛋白水平上調(diào) Figure 1.The Overexpression of GABPB1-AS1 which was Induced by H2O2 Oxidative Stress Up-regulates the Protein Level of PGC-1α
生物信息分析顯示,miR-101種子區(qū)與GABPB1-AS1在chr15:50655684-50655705位置存在強(qiáng)結(jié)合點(diǎn),同時miR-101種子區(qū)在PGC-1α的3'UTR有結(jié)合位點(diǎn)(http:// www.targetscan.org/cgi-bin/targetscan/vert_72)(圖2A)。
采用RNA pull down實(shí)驗(yàn),利用體外轉(zhuǎn)錄的GABPB1-AS1結(jié)合HUVEC細(xì)胞中內(nèi)源miR-101,qRT-PCR檢測與GABPB1-AS1結(jié)合的miR-101。結(jié)果顯示,與GABPB1-AS1結(jié)合的miR-101顯著高于對照組(P<0.01,圖2B)。
分別采用miR-101的mimic和inhibitor轉(zhuǎn)染HUVEC細(xì)胞,western bloting檢測轉(zhuǎn)染mimic和inhibitor的 HUVEC細(xì)胞中PGC-1α蛋白水平。結(jié)果表明,轉(zhuǎn)染miR-101 mimic的HUVEC細(xì)胞中PGC-1α蛋白水平低于空白對照組;轉(zhuǎn)染inhibitor的HUVEC細(xì)胞中PGC-1α蛋白水平高于空白對照組(圖2C)。
以上結(jié)果提示,存在GABPB1-AS1/miR-101/PGC-1α調(diào)控軸,在氧化應(yīng)激刺激下,GABPB1-AS1半衰期延長,在細(xì)胞質(zhì)內(nèi)含量升高,通過“海綿效應(yīng)”競爭性結(jié)合miR-101,解除miR-101結(jié)合于PGC-1α mRNA的3'UTR區(qū)域的翻譯抑制作用,促進(jìn)PGC-1α mRNA翻譯,提高PGC-1α蛋白水平(圖2D)。
圖2 GABPB1-AS1競爭結(jié)合miR-101上調(diào)PGC-1α蛋白質(zhì)翻譯 Figure 2.GABPB1-AS1 Competitively Binds to miR-101 to Up-regulate the Translation of PGC-1α
采用200 μM的H2O2處理3 h后,去除H2O2,繼續(xù)培養(yǎng)細(xì)胞,qRT-PCR檢測2 h、4 h、8 h、16 h、24 h的GABPB1-AS1及其正義鏈的RNA水平,western bloting檢測對應(yīng)的GABPB1蛋白水平。結(jié)果顯示,GABPB1-AS1與其正義鏈mRNA表達(dá)水平協(xié)同性改變,2~4 h維持高表達(dá)水平,但GABPB1蛋白水平降低,8~24 h GABPB1正反義鏈mRNA均逐漸降低至基線水平左右,而GABPB1蛋白升高(圖3A)。
構(gòu)建載體在HUVEC細(xì)胞中直接過表達(dá)GABPB1-AS1,結(jié)果表明,GABPB1 mRNA和蛋白質(zhì)水平均顯著下降(圖3B)。
生物信息學(xué)分析表明,GABPB1-AS1與其正義鏈的前端有449 nt的互補(bǔ)序列,其中包含GABPB1基因的第一外顯子序列全長(1~424 nt)(圖3C)(https://www.ncbi.nlm.nih. gov/gene/100129387),提示,GABPB1-AS1可能與其正義鏈在細(xì)胞質(zhì)中以互補(bǔ)結(jié)合的二聚體形式存在,并調(diào)節(jié)其正義鏈的穩(wěn)定性和表達(dá)行為。
采用RNA pull down實(shí)驗(yàn),利用體外轉(zhuǎn)錄的生物素標(biāo)記的GABPB1-AS1 mRNA的前端1~447 nt序列結(jié)合內(nèi)源GABPB1以驗(yàn)證二者的結(jié)合關(guān)系,同時用RPA試驗(yàn)檢測正反義鏈重疊聚合狀態(tài)對RNaseA+T降解GABPB1 mRNA的保護(hù)作用,分析GABPB1-AS1與GABPB1 mRNA的結(jié)合性、結(jié)合位點(diǎn)以及對mRNA穩(wěn)定性的影響。結(jié)果表明,體外轉(zhuǎn)錄的GABPB1-AS1與內(nèi)源GABPB1 mRNA可以在1~447 nt區(qū)域直接結(jié)合,結(jié)合反義鏈的GABPB1 mRNA水平與加入RNase抑制劑的GABPB1 mRNA水平無顯著差異,而單鏈GABPB1 mRNA被RNase降解而顯著降低。證明內(nèi)源性正反義鏈也處于結(jié)合狀態(tài),GABPB1 mRNA與其反義鏈形成二聚體結(jié)構(gòu)可以促進(jìn)其穩(wěn)定性,防止被RNase降解(圖3D)。
以上結(jié)果提示,氧化應(yīng)激誘導(dǎo)GABPB1-AS1及其正義鏈mRNA高表達(dá),二者重疊區(qū)域互補(bǔ)結(jié)合,維持GABPB1 mRNA穩(wěn)定,應(yīng)激結(jié)束后,GABPB1-AS1半衰期恢復(fù),加速降解,釋放GABPB1 mRNA翻譯,上調(diào)其蛋白水平(圖3E)。
圖3 氧化應(yīng)激狀態(tài)GABPB1-AS1結(jié)合GABPB1 mRNA保持其穩(wěn)定并調(diào)控其應(yīng)激后表達(dá) Figure 3.GABPB1-AS1 Binds to GABPB1 mRNA to Maintain its Stability and Regulate its Expression after Oxidative Stress
本研究實(shí)驗(yàn)證據(jù)表明,氧化應(yīng)激誘導(dǎo)高表達(dá)的LncRNA GABPB1-AS1在應(yīng)激結(jié)束后調(diào)控適應(yīng)階段的PGC-1α翻譯水平上調(diào),其機(jī)制是通過海綿作用吸附miR-101,解除其對PGC-1α mRNA翻譯的抑制作用。同時,本研究顯示,LncRNA GABPB1-AS1是核質(zhì)互作信號分子。氧化應(yīng)激條件下GABPB1-AS1維持其正義鏈mRNA穩(wěn)定,應(yīng)激結(jié)束后釋放正義鏈mRNA表達(dá)蛋白,其生理意義為調(diào)控GABPB1 mRNA翻譯和NRF2入核,協(xié)同PGC-1α調(diào)節(jié)適應(yīng)性線粒體生成。這是人類特有的應(yīng)激適應(yīng)性線粒體生成機(jī)制。
細(xì)胞氧化應(yīng)激狀態(tài)是運(yùn)動應(yīng)激的直接結(jié)果和基本狀態(tài)(Thirupathi et al.,2017),運(yùn)動應(yīng)激誘導(dǎo)的活性氧(ROS)是運(yùn)動適應(yīng)性調(diào)控的重要信號途徑(Radak et al.,2013),線粒體生成和抗氧化適應(yīng)是運(yùn)動性適應(yīng)的標(biāo)志性特征(Perry, 2017)。PGC-1α是調(diào)控線粒體生物合成的關(guān)鍵調(diào)節(jié)蛋白,能夠激活大量線粒體代謝功能與抗氧化功能相關(guān)蛋白的表達(dá)(Petr et al.,2018),運(yùn)動應(yīng)激可以通過上調(diào)PGC-1α途徑啟動線粒體生成(孫易 等 2017)。研究表明,多種因素導(dǎo)致的氧化應(yīng)激及化學(xué)損傷性應(yīng)激均可以顯著上調(diào)GABPB1-AS1細(xì)胞含量,上調(diào)程度與應(yīng)激強(qiáng)度和持續(xù)時間成正比(Alkhateeb et al.,2019)。我們研究了應(yīng)激因素消除后GABPB1-AS1的表達(dá)行為及其對適應(yīng)性線粒體生成的調(diào)控作用。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,氧化應(yīng)激誘導(dǎo)高表達(dá)的GABPB1-AS1含量在應(yīng)激因素消除后逐漸下降,最終恢復(fù)至基線水平,在此過程中,PGC-1α蛋白水平增高。過表達(dá)GABPB1-AS1具有相同的作用,而敲低GABPB1-AS1則抑制PGC-1α蛋白水平。前期試驗(yàn)結(jié)果表明:200 μM的H2O2刺激HUVEC細(xì)胞3 h對PGC-1α的mRNA水平?jīng)]有顯著影響,提示,GABPB1-AS1在轉(zhuǎn)錄后水平促進(jìn)PGC-1α的表達(dá)。生物信息學(xué)分析表明,miR-101在GABPB1-AS1序列及PGC-1α mRNA的3'UTR上均有結(jié)合位點(diǎn)。已有研究表明,miR-101參與神經(jīng)細(xì)胞氧化應(yīng)激應(yīng)答(Li et al.,2015)。本研究采用RNA pull-down實(shí)驗(yàn)證明,GABPB1-AS1與miR-101可以互補(bǔ)結(jié)合。并且證明,上調(diào)miR-101表達(dá)可以下調(diào)PGC-1α蛋白水平,抑制miR-101水平則PGC-1α蛋白水平上調(diào)。綜合以上結(jié)果認(rèn)為,miR-101可以通過結(jié)合于PGC-1α mRNA的3'UTR抑制其翻譯過程,GABPB1-AS1是定位于細(xì)胞質(zhì)的RNA,與miR-101互補(bǔ)結(jié)合,應(yīng)激狀態(tài)下細(xì)胞質(zhì)內(nèi)高水平的GABPB1-AS1競爭性吸附miR-101,解除其對PGC-1α翻譯的抑制作用,上調(diào)其蛋白水平。
GABPB1-AS1的正義鏈編碼核呼吸因子-2β1亞基(NRF-2β1,又稱為GA結(jié)合蛋白β1亞基,即GABPB1)促進(jìn)線粒體基因表達(dá)(Ongwijitwat et al.,2006)并引導(dǎo)NRF-2入核(Hayashi et al.,2013)與PGC-1α蛋白共同調(diào)節(jié)多數(shù)線粒體能量代謝基因的表達(dá),促進(jìn)線粒體生物合成(Goffart et al.,2003),直接影響人體有氧運(yùn)動能力(He et al.,2015; Maciejewska-Kar?owska et al.,2012),是重要的線粒體核質(zhì)互作調(diào)控因子。研究表明,多種因素引起的氧化應(yīng)激均可以引起GABPB1-AS1顯著高表達(dá)(Tani et al.,2014)。本研究證實(shí),氧化應(yīng)激條件下GABPB1-AS1與GABPB1表達(dá)水平協(xié)同上調(diào),并在應(yīng)激因素消除后協(xié)同下降,但僅過表達(dá)GABPB1-AS1則會下調(diào)GABPB1的mRNA和蛋白質(zhì)表達(dá)水平。這一結(jié)果提示,GABPB1-AS1作為信號分子參與細(xì)胞核質(zhì)互作機(jī)制對氧化應(yīng)激的應(yīng)答,維持GABPB1 表達(dá)水平與線粒體功能狀態(tài)相協(xié)調(diào)。
LncRNA反義鏈通常會通過互補(bǔ)結(jié)合對其正義鏈及其表達(dá)產(chǎn)物產(chǎn)生調(diào)控作用,影響其mRNA的穩(wěn)定性以及翻譯行為(Canzio et al.,2019)。生物信息分析顯示,GABPB1-AS1與其正義鏈在頭部有449個堿基互補(bǔ)(chr15:50354959~50355408),二者可以通過堿基互補(bǔ)配對形成二聚體結(jié)構(gòu)。本研究RNA pull down實(shí)驗(yàn)和RPA實(shí)驗(yàn)結(jié)果證實(shí),GABPB1-AS1與其正義鏈前端1~447 nt互補(bǔ)重疊形成二聚體結(jié)構(gòu),這一結(jié)構(gòu)防止GABPB1 mRNA被RNase降解,維持其在氧化應(yīng)激狀態(tài)下的穩(wěn)定性。相比于應(yīng)激結(jié)束后從頭表達(dá)GABPB1,這一方式更有利于快速調(diào)節(jié)線粒體適應(yīng)(de Nadal et al.,2011)。
本研究結(jié)果顯示,H2O2刺激后2~8 h,GABPB1-AS1和GABPB1 mRNA水平均顯著增高,但GABPB1蛋白水平下降,16~24 h GABPB1-AS1和GABPB1 mRNA水平下降,而GABPB1蛋白水平顯著增高。這一結(jié)果提示我們,GABPB1-AS1與其正義鏈的二聚體結(jié)構(gòu)在穩(wěn)定GABPB1 mRNA的同時也阻止其翻譯,其生理意義可能是在細(xì)胞受氧化應(yīng)激影響導(dǎo)致內(nèi)環(huán)境尚未恢復(fù)穩(wěn)態(tài)的條件下儲備mRNA的同時,防止蛋白質(zhì)發(fā)生修飾或折疊錯誤。當(dāng)內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)恢復(fù)后,GABPB1-AS1半衰期逐漸恢復(fù),加速降解,釋放出正義鏈mRNA結(jié)合核糖體進(jìn)行翻譯,使GABPB1蛋白水平顯著提高,促進(jìn)NRF-2入核,協(xié)同PGC-1α調(diào)節(jié)線粒體生成。氧化應(yīng)激適應(yīng)過程中GABPB1-AS1半衰期調(diào)節(jié)及其對GABPB1 mRNA的釋放作用的具體機(jī)制,還有待進(jìn)一步闡明。
氧化應(yīng)激誘導(dǎo)高表達(dá)的LncRNA GABPB1-AS1在應(yīng)激適應(yīng)階段通過GABPB1-AS1/miR-101/PGC-1α軸上調(diào)PGC-1α蛋白水平,調(diào)控應(yīng)激適應(yīng)性線粒體生成,GABPB1-AS1作為核質(zhì)互作信號分子參與氧化應(yīng)激適應(yīng)性應(yīng)答,調(diào)控其正義鏈編碼蛋白GABPB1協(xié)同促進(jìn)這一過程。GABPB1-AS1參與調(diào)控的線粒體生成調(diào)控機(jī)制是人類特有的應(yīng)激適應(yīng)機(jī)制。