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多參數(shù)流式細(xì)胞術(shù)在多發(fā)性骨髓瘤微小殘留病變檢測中的應(yīng)用進(jìn)展

2018-01-02 12:13:29靳小可黃東平
安徽醫(yī)藥 2018年7期
關(guān)鍵詞:流式漿細(xì)胞骨髓瘤

靳小可,黃東平

(皖南醫(yī)學(xué)院弋磯山醫(yī)院血液內(nèi)科,安徽 蕪湖 241000)

多發(fā)性骨髓瘤(Multiple myeloma, MM)是臨床常見的血液系統(tǒng)腫瘤,以漿細(xì)胞惡性增殖伴有分泌單克隆免疫球蛋白或輕鏈為特征,全世界每年新發(fā)病例數(shù)約86 000例,占所有新發(fā)腫瘤病例的1%,占血液系統(tǒng)腫瘤的13%[1],中位生存期4~5年[2]。隨著各種診療手段的出現(xiàn)和診療水平的提升,多數(shù)患者的生存期得到明顯延長,但經(jīng)過現(xiàn)有的治療病情最終依然會進(jìn)展,部分原因?yàn)閷颊卟∏榘l(fā)展階段評估不準(zhǔn)確,導(dǎo)致在治療過程中對治療種類、劑量及時(shí)間點(diǎn)的選擇難以確定。近些年隨著科技的發(fā)展,流式細(xì)胞術(shù)、聚合酶鏈反應(yīng)技術(shù)、基因測序等檢測手段在臨床的應(yīng)用越來越多,特別是流式細(xì)胞術(shù)因其高效、高敏感度、相對廉價(jià)等優(yōu)點(diǎn)在血液病微小病變檢測中應(yīng)用范圍最廣,對臨床的治療有著一定指導(dǎo)意義。

1 MM的診療現(xiàn)狀及預(yù)后評價(jià)

近幾十年來,硼替佐米、來那度胺等新藥的開發(fā)及造血干細(xì)胞移植技術(shù)的應(yīng)用,使得患者的緩解率和生存時(shí)間得到了明顯的提高[3-5],然而個(gè)體差異較大,即便是治療后達(dá)到緩解,多數(shù)患者依然面臨著疾病進(jìn)展和復(fù)發(fā)[6],進(jìn)一步治療則需要建立在對患者病情精確評估基礎(chǔ)上。一直以來,完全緩解(complete remission, CR)作為骨髓瘤患者治療后病情達(dá)到相對穩(wěn)定的評價(jià)標(biāo)準(zhǔn)被廣泛應(yīng)用,患者表現(xiàn)為血清、尿免疫固定電泳陰性,不存在任何軟組織漿細(xì)胞瘤,同時(shí)骨髓中的漿細(xì)胞數(shù)小于等于5 %,但這難以精確反映疾病控制的深度和狀態(tài),隨著患者緩解率的提高,為了滿足臨床診療需求又出現(xiàn)了免疫表型的CR,分子生物學(xué)的CR等概念,一定程度上可以對患者體內(nèi)惡性漿細(xì)胞狀態(tài)描述得更加準(zhǔn)確,但這些概念涉及到不同的方法學(xué)標(biāo)準(zhǔn),給臨床治療方案選擇帶來一定困擾。

近年的研究認(rèn)為微小殘留病變(minimal residual disease,MRD)陽性,即治療后形態(tài)學(xué)等傳統(tǒng)方法緩解,但患者體內(nèi)依然存在腫瘤細(xì)胞的免疫表型、分子生物或細(xì)胞基因?qū)W的表達(dá)是血液腫瘤復(fù)發(fā)的根本原因[7]。傳統(tǒng)檢測手段判定達(dá)到緩解的患者,骨髓中依然存在約109個(gè)腫瘤細(xì)胞,被認(rèn)為是MM患者復(fù)發(fā)的根源,為了更加準(zhǔn)確地評估患者的疾病狀態(tài),選用更恰當(dāng)?shù)闹委?,在現(xiàn)有技術(shù)手段下需要對患者體內(nèi)腫瘤負(fù)荷進(jìn)行精確的監(jiān)測。在傳統(tǒng)的檢測手段中,形態(tài)學(xué)是最常用的方法,但骨髓瘤細(xì)胞往往成簇集分布,并且形態(tài)與正常漿細(xì)胞難以嚴(yán)格區(qū)分,這使得形態(tài)學(xué)難以精確反映漿細(xì)胞的比例和性質(zhì)。骨髓瘤細(xì)胞分泌的單克隆免疫球蛋白的多少有較大的個(gè)體差異,并且有寡分泌型或不分泌型,使得血、尿蛋白電泳及免疫固定電泳等檢測免疫球蛋白的方法使用受限。這就需要更加有效的檢測手段對患者腫瘤負(fù)荷狀態(tài)進(jìn)行評估,防止治療過度或治療不足。

2 各種MRD檢測手段在血液病中的應(yīng)用對比

自MRD概念提出以來,國內(nèi)外研究者均積極地將各種方法MRD的檢測用于臨床研究[8-10],以驗(yàn)證其可行性和有效性,多數(shù)研究表明基于多參數(shù)流式細(xì)胞術(shù)(multiparameter flow cytometry,MFC),等位基因特異性寡核苷酸-聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Allele-specific oligonucleotide PCR,ASO-PCR)和二代測序/下一代測序(Next-generation sequencing, NGS)的MRD檢測對臨床治療具有指導(dǎo)意義。這三種方法均有較高的敏感度和特異度,在急性髓系白血病,急性淋巴細(xì)胞白血病、MM等血液病中均有相關(guān)應(yīng)用研究,各有優(yōu)劣。ASO-PCR敏感度可達(dá)10-6,但其檢測依賴于融合基因、基因突變、和高表達(dá)的基因,對于無明顯基因異常的惡性腫瘤難以檢出,檢測體系和技術(shù)要求相對高。NGS為近些年迅猛發(fā)展的檢測手段,敏感度在三種方法中最高,但成本高,需要一定平臺,目前在我國大多數(shù)醫(yī)院難以全面開展。MFC檢測覆蓋面廣,結(jié)果直觀,雖然各指標(biāo)未完全標(biāo)準(zhǔn)化,但依然為現(xiàn)今臨床最為普及的方法。而經(jīng)過多年的技術(shù)更迭,現(xiàn)有的MFC發(fā)展到多激光多色,可通過同時(shí)標(biāo)記多個(gè)抗體,根據(jù)不同的表型來區(qū)分正常漿細(xì)胞及異常克隆漿細(xì)胞[11],其檢測敏感度最高可達(dá)到10-5(0.001%),不受漿細(xì)胞分布、單克隆球蛋白多寡等情況的影響。所以對于MM的MRD檢測,MFC為各實(shí)驗(yàn)室最常用的使用方法。

3 MFC在MM患者M(jìn)RD檢測中的應(yīng)用

3.1MFC檢測方案及臨界值選擇在漿細(xì)胞的鑒定中,CD38、CD138的表達(dá)最具特異性,而異常的單克隆漿細(xì)胞表型通常有有以下特征:(1)CD19,CD27,CD38或CD45低表達(dá);(2)CD56過表達(dá);(3)CD117的異常表達(dá)[12]。國內(nèi)流式檢測惡性漿細(xì)胞的抗體組合中除了CD38(或CD138)外一般要包括CD45、CD56和CD19,各實(shí)驗(yàn)室設(shè)門方法不一致,但多基于CD38、CD138、SSC和CD45聯(lián)合設(shè)門,常根據(jù)初診免疫表型采用兩組四色抗體組合CD38/CD138/CD45/CD19和CD38/CD56/(或CD117等抗原)/CD45/CD19,進(jìn)行檢測[13]。國外各實(shí)驗(yàn)室的檢測方案亦未統(tǒng)一。為了解MM患者骨髓MRD的MFC檢測情況,2013年Flanders發(fā)表了對美國30家主要醫(yī)療機(jī)構(gòu)進(jìn)行問卷調(diào)查結(jié)果,該課題組向每家機(jī)構(gòu)負(fù)責(zé)人發(fā)送包含14個(gè)相關(guān)問題的郵件,得到26家機(jī)構(gòu)反饋,其中有11家開展此項(xiàng)目,獲取細(xì)胞數(shù)從10萬到4百萬不等,敏感度和判斷MRD的最低克隆也在較大范圍波動,所使用的方案多包括CD38、CD138、CD45、CD19,也有包括單克隆輕鏈,CD27等其他方案[14]。目前國內(nèi)外各實(shí)驗(yàn)室在MM患者M(jìn)RD的多參數(shù)流式檢測方面尚未有統(tǒng)一方案。而對于MRD臨界值的確定,Rawstron[15]等的研究數(shù)據(jù)表示,將10-4定為陰性臨界值對患者體內(nèi)腫瘤負(fù)荷狀態(tài)進(jìn)行定量評判要比單純的陰性和陽性更確切,目前國內(nèi)外多使用10-4作為臨界值,而隨著八色多參數(shù)流式細(xì)胞術(shù)的不斷發(fā)展,其敏感度較四色流式明顯提高,理論上只要能夠獲取足夠的細(xì)胞數(shù),就可達(dá)到10-5[16]。

3.2MFC在MM患者M(jìn)RD的檢測應(yīng)用情況盡管方案未統(tǒng)一,MFC在MM的 MRD中的檢測研究依然較多,具有重要的臨床價(jià)值。早在2002年,就有Rawstron AC和San MJF兩個(gè)課題組分別研究MFC在傳統(tǒng)化療后MM患者的MRD監(jiān)測中的臨床意義[17-18]。之后有研究通過MFC檢測229例新發(fā)MM移植后的MRD,再次證明了MFC檢測的MRD是最有價(jià)值的預(yù)后評判方法[19]。來自英國醫(yī)學(xué)研究會一項(xiàng)臨床試驗(yàn)中,MM患者造血干細(xì)胞移植后100 d檢測MRD為陰性時(shí),其無進(jìn)展生存期(progression-free survival,PFS)和總生存期(overall survival,OS)均顯著提高[20]。一項(xiàng)來自歐洲骨髓瘤臨床試驗(yàn)研究報(bào)告提示高危組患者經(jīng)過治療達(dá)到MFC檢測MRD陰性,其預(yù)后與標(biāo)危組患者類似[21]。在一項(xiàng)臨床Ⅱ期試驗(yàn)中,研究者同樣證明了七色流式在MM患者M(jìn)RD監(jiān)測中的應(yīng)用價(jià)值[22],反映四色以上的MFC對MRD的檢測更加靈敏。對于高敏感度的MRD檢測方法如MFC、PCR和NGS的選擇方面,Paiva B 等[23]研究認(rèn)為三者敏感度均較高,但MFC的應(yīng)用范圍更廣,相對廉價(jià),所需時(shí)間短,效率高。2014年兩個(gè)研究均對比了MFC和PCR在MM患者M(jìn)RD檢測中的有效性,兩者結(jié)果有較好的相關(guān)性[24-25]。就應(yīng)用范圍而言,MFC相對于NGS更適合進(jìn)行MM患者的MRD檢測,但也有相當(dāng)多的研究顯示,MFC的敏感度在多數(shù)情況下低于PCR和NGS[26-27],且MFC和NGS均存在未能標(biāo)準(zhǔn)化問題[28]。 最近的一項(xiàng)臨床試驗(yàn)研究介紹了新一代流式技術(shù)(Next Generation flow, NGF)及相應(yīng)新的分析軟件,通過檢測110份達(dá)到非常好的部分緩解(VGPR)或CR的 MM患者骨髓樣本,對比其與傳統(tǒng)八色流式檢測結(jié)果,有25%的樣本在傳統(tǒng)八色MFC中為MRD陰性,而NGF測得MRD為陽性,如果治療后能夠達(dá)到NGF檢測MRD陰性的患者可以有更佳的PFS[29],提出NGF檢測在敏感度上有很大進(jìn)步。

3.3MFC的優(yōu)缺點(diǎn)及技術(shù)進(jìn)展MFC在檢測MM患者骨髓標(biāo)本的過程中有明顯優(yōu)勢:(1)可以通過多種抗體組合鑒定出目的細(xì)胞;(2)可以短時(shí)間檢測大量細(xì)胞;(3)可以對不同細(xì)胞群進(jìn)行定量并對明確其相關(guān)抗原表達(dá)水平;(4)可以檢測細(xì)胞表面抗原也可以檢測細(xì)胞內(nèi)抗原;(5)對患者骨髓中紅系,B系,髓系或其他細(xì)胞比例有直觀的檢測結(jié)果。但也有不少研究提出基于MFC的MM MRD檢測也有其缺陷:(1)MFC可能忽略部分原始程度較高、表型未曾明確但有發(fā)展成病理性漿細(xì)胞潛力的干細(xì)胞[30],這些表型不成熟而缺乏某些抗原難以檢出,從而導(dǎo)致假陰性;(2)分析MFC數(shù)據(jù)需要大量專業(yè)知識和經(jīng)驗(yàn);(3)傳統(tǒng)流式的敏感度依然小于PCR和NGS;(4)目前MFC檢測MRD方案未能標(biāo)準(zhǔn)化。最近有研究表明MM患者骨髓內(nèi)原始程度較高的這類干細(xì)胞數(shù)量極少,多超出檢測范圍[31],對檢測結(jié)果不造成可觀的影響。MFC分析對檢測人員的經(jīng)驗(yàn)性要求較高,使得不同實(shí)驗(yàn)人員的檢測結(jié)果可能出現(xiàn)差異。新的計(jì)算機(jī)工具、軟件或分析方法不斷面世,使其有更高的可操作性和同行一致性[32],相對于傳統(tǒng)的四色MFC,現(xiàn)在多數(shù)實(shí)驗(yàn)室正在更多地使用八色甚至十色的MFC,其敏感度有了一定提高。而對于標(biāo)準(zhǔn)化的問題,一方面國際骨髓瘤基金會開展的黑天鵝計(jì)劃正對其標(biāo)準(zhǔn)化進(jìn)行相關(guān)研究和制定,另一方面,NGF在相關(guān)研究中對漿細(xì)胞的鑒定顯得更易標(biāo)準(zhǔn)化,相對于傳統(tǒng)MFC表現(xiàn)出了明顯的優(yōu)勢。

4 小結(jié)

MM的MRD檢測方法多樣,MFC作為一種高效、高通量、高靈敏的技術(shù)已在全世界范圍內(nèi)多家機(jī)構(gòu)得到應(yīng)用,其針對患者治療后體內(nèi)正常及克隆性漿細(xì)胞的檢測,可以一定程度上彌補(bǔ)傳統(tǒng)檢測方法的不足。近年隨著技術(shù)發(fā)展,八色及十色的MFC逐漸替代四色以下的儀器,使其在實(shí)驗(yàn)室檢測中更加便捷高效,靈敏度更高。但目前國內(nèi)外基于MFC的MRD檢測還沒有完全標(biāo)準(zhǔn)化,要想全面用于MM患者治療后病情評估及危險(xiǎn)度分層,仍需要加強(qiáng)國內(nèi)外各實(shí)驗(yàn)室交流,積極進(jìn)行技術(shù)革新,對相關(guān)檢測指標(biāo)如抗體及檢測時(shí)間點(diǎn)的選擇進(jìn)行統(tǒng)一,現(xiàn)已有相關(guān)機(jī)構(gòu)進(jìn)行此類研究,相信在不久的將來,MM基于MFC的MRD檢測能夠在MM患者治療中得到更加有效的應(yīng)用。

[1] PHILIPPE M, MICHEL A, THIERRY F. Frontline therapy of multiple myeloma[J]. Blood,2015,125(20):3076-3084.

[2] KORDE N, KRISTINSSON SY, LANDGREN O. Monoclonal gammopathy of undetermined significance (MGUS) and smoldering multiple myeloma (SMM): novel biological insights and development of early treatment strategies [J]. Blood,2011,117(21):5573-5581.

[3] LANDGREN O, KORDE N. Treating myeloma: the future is already here[J]. Blood,2012,120(9):1754-1756.

[4] KUMAR SK, DISPENZIERI A, LACY MQ, et al. Continued improvement in survival in multiple myeloma: changes in early mortality and outcomes in older patients[J]. Leukemia, 2014,28(5):1122-1128.

[5] 張穎穎, 夏瑞祥. 減低與標(biāo)準(zhǔn)劑量硼替佐米聯(lián)合地塞米松治療多發(fā)性骨髓瘤的療效對比分析[J].安徽醫(yī)藥,2015,19(5):966-968.

[6] USMANI SZ, CROWLEY J, HOERING A, et al. Improvement in long-term outcomes with successive total therapy trials for multiple myeloma: are patients now being cured ? [J]. Leukemia, 2013, 27(1): 226-232.

[7] ALMAWALI A,GILLIS D,LEWIS I. The role of multiparameter flow cytometry for detection of minimal residual disease in acute myeloid leukemia[J]. Am J Clin Pathol, 2009, 131(1): 16-26.

[8] OMMEN HB. Monitoring minimal residual disease in acute myeloid leukaemia: a review of the current evolving strategies[J]. Ther Adv Hematol, 2016,7(1):3-16.

[9] HOKLAND P, OMMEN HB, MULE MP, et al. Advancing the Minimal Residual Disease Concept in Acute Myeloid Leukemia[J]. Semin Hematol, 2015,52(3):184-192.

[10] RAWSTRON AC, FAZI C, AGATHANGELIDIS A, et al. A complementary role of multiparameter flow cytometry and high-throughput sequencing for minimal residual disease detection in chronic lymphocytic leukemia: an European Research Initiative on CLL study[J]. Leukemia, 2016,30(4):929-936.

[11] VAN DONGEN JJ, LHERMITTE L, BOTTCHER S, et al. EuroFlow antibody panels for standardized n-dimensional flow cytometric immunophenotyping of normal, reactive and malignant leukocytes[J]. Leukemia, 2012,26(9):1908-1975.

[12] PAIVA B, PUIG N, GARCIA -SANZ R, et al. Is this the time to introduce minimal residual disease in multiple myeloma clinical practice[J]. Clin Cancer Res, 2015,21(9):2001-2008.

[13] 劉艷榮. 實(shí)用流式細(xì)胞術(shù):血液病篇[M]. 北京:北京大學(xué)醫(yī)學(xué)出版社,2010: 9.

[14] FLANDERS A, STETLER-STEVENSON M, LANDGREN O. Minimal residual disease testing in multiple myeloma by flow cytometry: major heterogeneity[J]. Blood, 2013,122(6):1088-1089.

[15] RAWSTRON AC, GREGORY WM, DE TUTE RM, et al. Minimal residual disease in myeloma by flow cytometry: independent prediction of survival benefit per log reduction[J]. Blood, 2015,125(12):1932-1935.

[16] RAWSTRON AC, DE TUTE RM, HAUGHTON J, et al. Measuring disease levels in myeloma using flow cytometry in combination with other laboratory techniques: Lessons from the past 20 years at the Leeds Haematological Malignancy Diagnostic Service[J]. Cytometry B Clin Cytom, 2016,90(1):54-60.

[17] RAWSTRON AC, DAVIES FE, DASGUPTA R, et al. Flow cytometric disease monitoring in multiple myeloma: the relationship between normal and neoplastic plasma cells predicts outcome after transplantation[J]. Blood, 2002,100(9):3095-3100.

[18] SAN MJF, ALMEIDA J, MATEO G, et al. Immunophenotypic evaluation of the plasma cell compartment in multiple myeloma: a tool for comparing the efficacy of different treatment strategies and predicting outcome[J]. Blood, 2002,99(5):1853-1856.

[19] PAIVA B, VIDRIALES MB, CERVERO J, et al. Multiparameter flow cytometric remission is the most relevant prognostic factor for multiple myeloma patients who undergo autologous stem cell transplantation[J]. Blood, 2008,112(10):4017-4023.

[20] RAWSTRON AC, CHILD JA, DETUTE RM, et al. Minimal residual disease assessed by multiparameter flow cytometry in multiple myeloma: impact on outcome in the Medical Research Council Myeloma IX Study[J]. J Clin Oncol, 2013,31(20):2540-2547.

[21] RAWSTRON AC, ORFAO A, BEKSAC M, et al. Report of the European Myeloma Network on multiparametric flow cytometry in multiple myeloma and related disorders[J]. Haematologica, 2008,93(3):431-438.

[22] ROUSSEL M, LAUWERS-CANCES V, ROBILLARD N, et al. Front-line transplantation program with lenalidomide, bortezomib, and dexamethasone combination as induction and consolidation followed by lenalidomide maintenance in patients with multiple myeloma: a phase Ⅱ study by the Intergroupe Francophone du Myélome[J]. J Clin Oncol, 2014,32(25):2712-2717.

[23] PAIVA B, VAN DONGEN JJ, ORFAO A. New criteria for response assessment: role of minimal residual disease in multiple myeloma[J]. Blood, 2015,125(20):3059-3068.

[24] PUIG N, SARASQUETE ME, BALANZATEGUI A, et al. Critical evaluation of ASO RQ-PCR for minimal residual disease evaluation in multiple myeloma. A comparative analysis with flow cytometry [J]. Leukemia, 2014, 28(2): 391-397.

[25] SILVENNOINEN R, LUNDAN T, KAIRISTO V, et al. Comparative analysis of minimal residual disease detection by multiparameter flow cytometry and enhanced ASO RQ-PCR in multiple myeloma [J]. Blood Cancer J, 2014, 4(10): e250.

[26] MARTINEZ-LOPEZ J, FERNANDEZ-REDONDO E, GARCIA-SANZ R, et al. Clinical applicability and prognostic significance of molecular response assessed by fluorescent-PCR of immunoglobulin genes in multiple myeloma. Results from a GEM/PETHEMA study[J]. Br J Haematol, 2013,163(5):581-589.

[27] SARASQUERE ME, GARCIA-SANZ R, GONZALEZ D, et al. Minimal residual disease monitoring in multiple myeloma: a comparison between allelic-specific oligonucleotide real-time quantitative polymerase chain reaction and flow cytometry[J]. Haematologica, 2005,90(10):1365-1372.

[28] VAN DONGEN JJ, VAN DER VELDEN VH, BRUGGEMANN M, et al. Minimal residual disease diagnostics in acute lymphoblastic leukemia: need for sensitive, fast, and standardized technologies[J]. Blood, 2015,125(26):3996-4009.

[29] FLORES-MONTERO J, SANOJA-FLORES L, PAIVA B, et al. Next Generation Flow for highly sensitive and standardized detection of minimal residual disease in multiple myeloma[J]. Leukemia, 2017,31(10):2094-2103.

[30] HUFF CA, MATSUI W. Multiple myeloma cancer stem cells[J]. J Clin Oncol, 2008,26(17):2895-2900.

[31] THIAGO LS, PEREZ-ANDRES M, BALANZATEGUI A, et al. Circulating clonotypic B cells in multiple myeloma and monoclonal gammopathy of undetermined significance[J]. Haematologica, 2014,99(1):155-162.

[32] NI WM, HU BL, ZHENG CP, et al. Automated analysis of acute myeloid leukemia minimal residual disease using a support vector machine [J]. Oncotarget, 2016, 7(44): 71915-71921.

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