昌睿杰 ,姚雪芹 ,蒙臣 ,陸江 ,李清
(1.湖北省十堰市太和醫(yī)院,湖北 十堰 442000;2.湖北醫(yī)藥學院麻醉學研究所,湖北 十堰 442000)
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不同濃度瑞芬太尼對新生大鼠海馬區(qū)神經(jīng)干細胞內(nèi)鈣濃度及細胞凋亡的影響
昌睿杰1,2,姚雪芹1,2,蒙臣1,2,陸江2,李清1,2
(1.湖北省十堰市太和醫(yī)院,湖北 十堰442000;2.湖北醫(yī)藥學院麻醉學研究所,湖北 十堰442000)
目的探討不同濃度瑞芬太尼對新生大鼠海馬區(qū)神經(jīng)干細胞凋亡及細胞內(nèi)鈣濃度的影響。方法采用已建立的新生SD大鼠海馬區(qū)神經(jīng)干細胞單細胞克隆系細胞株,將5×108個·L-1活細胞的密度均勻地接種到的12孔培養(yǎng)板中,每孔加入1 mL含有10%胎牛血清的DMEM/F12的培養(yǎng)基,放入溫度37℃、5%濃度CO2培養(yǎng)箱中孵育24 h,鏡下觀察細胞球貼壁后,每孔分別加入生理鹽水或不同濃度的瑞芬太尼(R),分為以下4組:(1)對照組,每孔加入生理鹽水;(2)低濃度組,每孔加入瑞芬太尼5 μg·L-1,即R5組;(3)中濃度組,每孔加入瑞芬太尼10 μg·L-1,即R10組;(4)高濃度組,每孔加入瑞芬太尼20 μg·L-1,即R20組。每組重復4次。加藥后培養(yǎng)300、600、900 s用激光掃描共聚焦顯微鏡(LSCM)檢測各組神經(jīng)干細胞內(nèi)游離鈣濃度的動態(tài)變化,24 h后流式細胞儀檢測各組神經(jīng)干細胞的凋亡情況。結果(1)各組細胞內(nèi)鈣濃度變化情況:與對照組比較,R5組細胞內(nèi)鈣濃度差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);R10、R20組細胞內(nèi)鈣濃度明顯升高(其中R10組P<0.05 ,R20組P<0.01)。(2)各組神經(jīng)干細胞凋亡變化情況:與對照組比較,R5組神經(jīng)干細胞凋亡差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);R10、R20組神經(jīng)干細胞凋亡明顯升高(其中R10組P<0.05 ,R20組P<0.01)。結論低濃度的臨床有效血藥濃度的瑞芬太尼對新生大鼠海馬區(qū)神經(jīng)干細胞內(nèi)鈣濃度、細胞凋亡沒有影響,中高濃度的臨床有效血藥濃度的瑞芬太尼應用使細胞內(nèi)鈣濃度顯著升高,從而誘發(fā)細胞大量凋亡。
瑞芬太尼;海馬;神經(jīng)干細胞;細胞凋亡;鈣;大鼠,Sprague-Dawley
隨著現(xiàn)在小兒(新生兒和嬰幼兒)手術的開展越來越廣泛,全麻藥物瑞芬太尼在小兒手術的應用日益普遍,“瑞芬太尼是否影響小兒腦發(fā)育”逐漸成為麻醉關注的熱點[1]。神經(jīng)干細胞(neural stem cells,NSCs)存在于中樞神經(jīng)系統(tǒng),其與腦發(fā)育密切相關。瑞芬太尼的鎮(zhèn)痛作用主要集中在中樞的邊緣系統(tǒng),其臨床推薦使用劑量范圍廣[2],其有效血藥濃度為1~20 μg·L-1,瑞芬太尼對小兒神經(jīng)發(fā)育的影響目前尚不清楚。本實驗擬觀察不同臨床有效血藥濃度的瑞芬太尼對新生大鼠海馬區(qū)神經(jīng)干細胞內(nèi)鈣離子濃度的變化及其存活、凋亡的影響,探討小兒臨床麻醉用藥的安全性、合理性。
1.1細胞株接種(1)采用湖北醫(yī)藥學院麻醉學研究所提供的新生SD大鼠海馬區(qū)神經(jīng)干細胞單細胞克隆系細胞株的細胞球懸液吸入30 mL滅菌離心管中加蓋直立靜放10 min。(2)待細胞球完全下沉至管底后(必要時離心),輕輕吸去4/5上清液,加入神經(jīng)干培養(yǎng)液定容至10 mL,用毛細吸管輕輕吹打神經(jīng)球機械分離克隆,相差顯微鏡下觀察制備成單細胞或多細胞球懸液。(3)用臺盼藍染色后進行細胞計數(shù), 5×108個·L-1活細胞的密度接種于不放蓋玻片多聚賴氨酸包被的12孔培養(yǎng)板中,每孔加1.0 mL含 10%胎牛血清+DMEM/F12誘導分化的培養(yǎng)基,放入5% CO2、飽和濕度的37 ℃培養(yǎng)箱中孵育使細胞貼壁。
1.2藥物處理與分組(1)上述細胞孵育6~8 h鏡下觀察完全貼壁后,分隨機組后每孔加入不同藥物處理(對照組記為C,低濃度瑞芬太尼記為R5,低濃度瑞芬太尼記為R10,低濃度瑞芬太尼記為R20)。(2)分為4組(每組3孔細胞):C組:加入生理鹽水;R1組:加入瑞芬太尼5 μg·L-1;R2組:加入瑞芬太尼10 μg·L-1;R3組:加入瑞芬太尼20 μg·L-1。
1.3指標檢測
1.3.1激光掃描共聚焦技術(LSCM) 檢測神經(jīng)細胞內(nèi)內(nèi)Ca2+濃度的動態(tài)變化
(1) NSCs于室溫下培養(yǎng)24 h,吸棄培養(yǎng)液,用Lock’s 液洗二遍,加入100 μL Lock’s 液(含5 μmol ·L-1的Fluo-3 /AM 存儲液,F(xiàn)luo-3 /AM 為可以穿透細胞膜的高親鈣熒光染料)。(2)NSCs置于細胞培養(yǎng)箱中孵育45 min后吸去熒光染料,用Lock’s液洗2遍,每孔加入100 μL的Lock’s液后使用激光掃描共聚焦顯微鏡對細胞進行掃描。掃描開始3 min后,分別使用10 μL的生理鹽水和5、10、20 μg·L-1的瑞芬太尼處理NSCs。每隔10 s掃描一次,持續(xù)15 min。(3)將所得熒光圖像用Leica SP2 Confocal 軟件進行分析。掃描30個未經(jīng)處理NSCs,統(tǒng)計其細胞內(nèi)Ca2+熒光信號強度平均值作為基礎值并設置為1,將藥物處理后300、600、900 s的細胞內(nèi)Ca2+熒光信號強度與基礎值進行比較。
1.3.2流式細胞技術檢測細胞凋亡[3]
細胞按上述分組加藥,培養(yǎng)30 min后按以下步驟進行:(1)吸去培養(yǎng)孔培養(yǎng)液,先用PBS緩沖液清洗2次,用0.125%胰酶消化細胞5 min;(2)鏡下觀察細胞松動收縮或懸浮變圓后,用無鈣PBS緩沖液終止消化,輕輕吹打成細胞懸液;(3)500 r·min-1低速離心5 min后吸除上清液,再無鈣PBS緩沖液清洗2次;(4)收集上述處理各組細胞于無鈣PBS中重懸,并將調(diào)整細胞密度為5×108個·L-1;(5)分別取上述各組細胞懸液1ml于對應編號的小試管中,在避光環(huán)境里分別加入終濃度Fluo2-AM 10 μmol·L-1,在CO2培養(yǎng)箱中孵育1 h(避光,37 ℃)并間斷輕輕振蕩幾次;(6)取出上述染色后各組細胞懸液再離心,用無鈣PBS緩沖液清洗3次以去除多余的染料;(7)再用無鈣PBS緩沖液重懸上述各組細胞至1 mL,按分組于流式細胞儀上進行檢測,設置發(fā)射波長為526 nm,激發(fā)波長為506 nm;隨機取1萬個細胞測定每個細胞熒光強度值,其各組測定值為熒光強度值的平均值。
表1 不同濃度瑞芬太尼對NSCs內(nèi)Ca2+水平的影響
注:a表示與Ca2+基礎水平比較;b表示與相同時間點的對照組比較。
2.1各組細胞內(nèi)鈣濃度變化情況由表1可見:與C組比較,R5組細胞內(nèi)鈣濃度差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);R10、R20組細胞內(nèi)鈣濃度明顯升高(其中R10組P<0.05 ,R20組P<0.01)。
2.2各組神經(jīng)干細胞凋亡變化情況見圖1,與C組比較,R5組神經(jīng)干細胞凋亡差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);R10、R20組神經(jīng)干細胞凋亡明顯升高(其中R10組P<0.05 ,R20組P<0.01)。
NSCs經(jīng)生理鹽水(A,Control)及5 μg·L-1(B,R5)、10 μg·L-1(C,R10)、20 μg·L-1(D,R20)的瑞芬太尼處理24 h,使用Annexin-Ⅴ和PI標記細胞并用流式細胞技術檢測。(E)流式細胞技術結果統(tǒng)計。
圖1 不同濃度瑞芬太尼對NSCs凋亡的影響
在本實驗中,我們通過使用不同濃度的瑞芬太尼處理新生大鼠海馬區(qū)的神經(jīng)干細胞,發(fā)現(xiàn)低濃度的瑞芬太尼對新生大鼠海馬區(qū)神經(jīng)干細胞內(nèi)鈣濃度、細胞凋亡沒有影響,而中高濃度的瑞芬太尼使細胞內(nèi)鈣濃度顯著升高,且細胞大量凋亡。
麻醉藥物如氟烷、N2O、異氟醚、丙泊酚等對實驗動物快速發(fā)育期的大腦都有敏感的神經(jīng)毒性,可誘發(fā)未成熟大腦神經(jīng)細胞死亡及發(fā)育后學習認知功能受損,且損害程度與劑量成正相關[4-5]。瑞芬太尼是新型超短效型的阿片受體激動藥,其對發(fā)育期大腦的影響目前還不十分清楚。目前,臨床上已普遍使用瑞芬太尼作為小兒麻醉鎮(zhèn)痛,且推薦使用的有效血藥濃度橫跨1~20 μg·L-1的廣泛區(qū)間[2],因此,該實驗選取了該區(qū)間范圍內(nèi)的低(5 μg·L-1)、中(10 μg·L-1)、高(20 μg·L-1)三種不同劑量進行干預。瑞芬太尼主要作用于中樞神經(jīng)的邊緣系統(tǒng)[2],而海馬組織是邊緣系統(tǒng)的重要組成部分,其結構特殊,是調(diào)控大腦學習認知功能的關鍵區(qū)域,而且在腦內(nèi)對損傷也最為敏感[6]。因此,本實驗選取新生海馬區(qū)域的細胞作為研究靶點。
研究已證實,海馬中的內(nèi)源性神經(jīng)干細胞與學習記憶和認知功能有極密切的關系[7]。神經(jīng)干細胞是神經(jīng)元的前體細胞,在發(fā)育期,海馬中有大量的神經(jīng)干細胞分化為神經(jīng)元細胞,這些新生的神經(jīng)元細胞直接影響認知功能(包括學習和記憶)的構建。而當神經(jīng)干細胞受損如發(fā)生凋亡壞死時,大腦的認知功能發(fā)育也會明顯受限[7]。因此,為了探討瑞芬太尼對發(fā)育期大腦認知功能的潛在影響,我們選取海馬齒狀回的神經(jīng)干細胞作為研究對象。
在本實驗中,我們觀察到,低濃度的瑞芬太尼對神經(jīng)干細胞的凋亡沒有明顯影響,而經(jīng)中高臨床濃度的瑞芬太尼處理后,神經(jīng)干細胞發(fā)生了明顯凋亡。這說明,在使用的臨床對應劑量中,中高濃度的瑞芬太尼會對體外培養(yǎng)的海馬區(qū)神經(jīng)干細胞產(chǎn)生明顯的毒性作用。這提示我們,在臨床小兒麻醉中,使用較低有效濃度的瑞芬太尼對神經(jīng)發(fā)育是比較安全的,而使用高濃度的瑞芬太尼除了導致痛覺敏化等副作用外,還使小兒面臨著學習認知功能發(fā)育受損的風險,這將指導我們設計嚴密的臨床實驗作詳細證實。
在進一步的實驗檢測中,我們發(fā)現(xiàn)中高臨床濃度的瑞芬太尼能夠引起海馬區(qū)神經(jīng)干細胞內(nèi)的Ca2+濃度顯著升高,而低濃度瑞芬太尼對細胞內(nèi)Ca2+水平?jīng)]有影響,這很可能是中高濃度瑞芬太尼誘導神經(jīng)干細胞凋亡的主要原因。研究發(fā)現(xiàn),細胞內(nèi)Ca2+濃度與凋亡反應密切相關[8-9]。游離鈣離子作為細胞內(nèi)外信號轉導通路的信使,廣泛參與了神經(jīng)干細胞的生理過程。正常情況下,細胞內(nèi)Ca2+維持在較低水平,其濃度在生理范圍內(nèi)的升高可以促進細胞增殖分化與合成分解代謝等正常生理過程[10-11];而細胞內(nèi)游離Ca2+濃度升高至鈣超載時將觸發(fā)一系列病理生理變化,其典型表現(xiàn)為誘導細胞凋亡[12]。研究已證實,阿片類藥物可以刺激神經(jīng)細胞的鈣內(nèi)流,細胞內(nèi)Ca2+濃度越高,細胞凋亡越明顯[13],本實驗結果與完全吻合。
綜上所述中高濃度的瑞芬太尼使新生大鼠神經(jīng)干細胞細胞內(nèi)鈣濃度顯著升高,細胞大量凋亡;低濃度的瑞芬太尼對神經(jīng)干細胞內(nèi)鈣濃度、細胞凋亡沒有影響。因此在小兒圍手術期推薦使用低濃度的瑞芬太尼是安全合理的。
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Effect of different clinical doses of remifentanil on the intracellular Ca2+concentration and apoptosis in newborn rat hippocampal neural stem cells
CHANG Ruijie1,2,YAO Xueqin1,2,MENG Chen1,2,et al
(1.TaiheHospital,Shiyan,Hubei442000,China;2.AnesthesiologyResearchInstituteofHubeiUniversityofMedicine,Shiyan,Hubei442000,China)
ObjectiveTo investigate the effect of different clinical doses of remifentanil on the apoptosis and the related intracellular Ca2+concentration([Ca2+]i) in newborn rat hippocampal neural stem cells(NSCs).MethodsThe hippocampal monoclonal NSCs strains of newborn SD rat were seeded into 12-well plates at the density of 5×105cells/well,and cultured with 1 mL of DMEM/F12 medium containing 10% fetal bovine serum.NSCs were incubated in humidified incubator at 37 °C with 5% CO2for 24 hours.Cells were assigned into four groups by different treatments as follows:(1) control group:NSCs were treated by saline;(2) low dose group(R5group):NSCs were stimulated with 5 μg·L-1of remifentanil;(3) middle dose group(R10group):NSCs were incubated in 10 μg·L-1of remifentanil;(4) high dose group(R20group):NSCs were stimulated with 20 μg·L-1of remifentanil.In every group the treatment was repeated for four times.Laser scanning confocal microscope(LSCM) scanning was used after 300 s,600 s and 900 s of remifentanil treatment for detection of [Ca2+]i.NSCs apoptosis was assayed by flow cytometry 24 hours after the treatment of remifentanil.ResultsCompared with control group,R5group showed no significant changes in [Ca2+]i(P>0.05) and the concentrations of [Ca2+]iof NSCs in R10and R20group were increased markedly (P<0.05 andP<0.01,respectively).Compared with control group,NSCs in R5group were almost not impaired,while the apoptosis of NSCs was significantly increased in R10and R20group(P<0.05 andP<0.01,respectively).ConclusionsLow clinical dose of remifentanil has little effect on NSC apoptosis and the related [Ca2+]i,while the middle and high doses of clinical remifentanil notably increase the level of [Ca2+]i,resulting in significant apoptosis in NSCs.
Remifentanil;Hippocampus;Neural stem cells;Apoptosis;Calcium;Rats,sprague-dawley
湖北省自然科學基金項目(2012FFC060);湖北省省級重點學科項目(2014XKJSSJ04)
李清,教授,碩士研究生導師,研究方向:麻醉學,E-mail:liqing8801@163.com
10.3969/j.issn.1009-6469.2016.09.006
2016-03-09,
2016-06-20)