吳雄偉 鄭永霞 藺紅梅 陳宇婷 黃興望 黃珍婷 徐琴 林敏 肖燕萍
(嘉興學(xué)院醫(yī)學(xué)院,浙江 嘉興 314001)
?
肝再生機(jī)制的研究進(jìn)展*
吳雄偉鄭永霞藺紅梅陳宇婷黃興望黃珍婷徐琴林敏肖燕萍△
(嘉興學(xué)院醫(yī)學(xué)院,浙江 嘉興314001)
摘要肝再生(Liver regeneration,LR)是肝臟損傷后,殘余肝細(xì)胞受到各種反饋信號(hào)的刺激下,通過(guò)迅速增值來(lái)代償受損肝細(xì)胞以及恢復(fù)肝臟的正常的生理功能。肝臟再生分為肝實(shí)質(zhì)細(xì)胞再生以及肝臟組織結(jié)構(gòu)的重建。再生的過(guò)程中,包括啟動(dòng)階段、增值階段以及終止階段都有多種細(xì)胞因子參與調(diào)控。本文就近幾年對(duì)肝臟再生的調(diào)控機(jī)制做一綜述。
關(guān)鍵詞:肝臟;再生;調(diào)控;機(jī)制
1前言
我國(guó)肝臟疾病發(fā)病率越來(lái)越高,而肝臟疾病失代償后會(huì)發(fā)展成為肝硬化或者進(jìn)一步發(fā)展為肝癌。雖然現(xiàn)在的外科肝臟切除手術(shù)的科技手段在不斷進(jìn)步,但是由于我國(guó)的肝癌患者多合并有肝炎或者一些其他的肝臟疾病,使得切除后的肝臟自我再生能力差,難以維持正常的肝臟生理功能,這也大大的限制了臨床對(duì)于手術(shù)治療肝病。在體外動(dòng)物模型的肝臟損傷后的切除模型中發(fā)現(xiàn)一些原來(lái)靜止?fàn)顟B(tài)的早期基因表達(dá)活躍,這些基因的表達(dá)產(chǎn)物參與了正常的代謝以及參與細(xì)胞的增值與分化。因此,對(duì)于肝再生機(jī)制的調(diào)控的研究能夠豐富我們對(duì)肝臟再生機(jī)制的認(rèn)識(shí)以及為肝臟終末期患者的肝臟移植帶來(lái)新的前景。
2肝臟再生的特點(diǎn)
硬化后的肝臟再生的過(guò)程非常緩慢。有研究顯示,當(dāng)肝硬化大鼠的肝臟被切除70%時(shí),一般需要30d才能恢復(fù)到原來(lái)肝臟的大小。并且,這些再生的肝細(xì)胞有時(shí)難以發(fā)育成熟,并且有些可以發(fā)生變性壞死。Nishie等[1]將大鼠的肝臟硬化的組織提取肝細(xì)胞轉(zhuǎn)移到正常的健康的大鼠個(gè)體中發(fā)現(xiàn)這些肝細(xì)胞能增殖,說(shuō)明這些硬化后的肝臟細(xì)胞具有再生能力,可見(jiàn)這些肝細(xì)胞并沒(méi)有失去再生能力,而是被抑制其再生的能力。
3肝臟的再生調(diào)控
肝臟再生是一個(gè)由多種因素共同調(diào)節(jié)控制的肝細(xì)胞群 “靜止—增殖—再靜止”的復(fù)雜精密過(guò)程。再生過(guò)程主要包括三個(gè)階段:(1)啟動(dòng)階段:通過(guò)白細(xì)胞介素-6(Interleukin-6,IL-6)和腫瘤壞死因子-α(Tumor necrosis factor-α,TNF-α)等細(xì)胞因子的作用下進(jìn)入G1期。(2)增殖階段:IL-6/STAT3信號(hào)通路和一些表皮生長(zhǎng)因子(Epidermal growth factor,EGF)、肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子(Human growth factor,HGF)和轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-α(Transforming growth factor-α,TGF-α)等在肝細(xì)胞的增殖生長(zhǎng)中發(fā)揮著重要作用。其中STAT3能控制細(xì)胞周期從G1期向?yàn)镾期的進(jìn)展[2]。(3)終止階段:細(xì)胞停止生長(zhǎng)。主要通過(guò)腫瘤壞死因子-β(Tumor necrosis factor-β,TNF-β)和一些細(xì)胞因子信號(hào)通路的反饋抑制和許多抑制因子對(duì)肝臟再生的負(fù)性調(diào)控從而使細(xì)胞停止生長(zhǎng)。
3.1肝再生階段的啟動(dòng)調(diào)控
體內(nèi)多種細(xì)胞因子和生長(zhǎng)因子通過(guò)不同機(jī)制進(jìn)行調(diào)控肝再生。TNF-α及IL-6可激活G0期的肝細(xì)胞。當(dāng)前認(rèn)為肝臟再生的啟動(dòng)是由于TNF-α及IL-6的共同作用[3]。TNF-α通過(guò)結(jié)合TNF-αI型受體(TNFR-I)受體后,順序誘導(dǎo)NF-κB→IL-6→STAT3,從而影響核內(nèi)眾多基因表達(dá),激活肝臟再生的啟動(dòng)。
3.1.1IL-6
部分肝切除術(shù),許多立即早期基因轉(zhuǎn)錄因子激活潛伏于靜止的肝臟[3]。IL-6是一種單鏈蛋白質(zhì),大約負(fù)責(zé)40%轉(zhuǎn)錄基因的激活,氨基酸的排列順序與細(xì)胞集落刺激因子G-CSF(Granulocyte colony-stimulating factor,G-CSF)同源性最大。IL-6被TNF-α所控制,無(wú)數(shù)的研究提供了相關(guān)的證據(jù)這一途徑的起始肝臟再生。IL-6在肝再生包括多種功能在急性期反應(yīng),其保護(hù)肝臟作用和有絲分裂發(fā)生。許多基因敲除小鼠的研究已經(jīng)證實(shí)IL-6需要正常肝臟再生。受體亞基gp130對(duì)IL-6和IL-6R沒(méi)有可測(cè)量的親和力[4]。因此,IL-6只能綁定和刺激細(xì)胞,表達(dá)IL-6R[5]。在綁定后,gp130亞基被激活導(dǎo)致酪氨酸激酶活性。這導(dǎo)致的STAT3允許易位激活和二聚核激活靶基因的轉(zhuǎn)錄[6]。IL-6 / STAT3通路調(diào)節(jié)肝細(xì)胞擴(kuò)散中扮演關(guān)鍵的角色,至少在急性肝肝部分切除術(shù)后反應(yīng)后的嚙齒動(dòng)物研究[7]。小鼠肝臟特異性以PH為例,IL-6信使RNA在PH后6-12 h也都保持在相當(dāng)?shù)偷乃疁?zhǔn),之后才緩慢上升,直到72 h后才達(dá)高峰。但是IL-6也并非沒(méi)有壞處,譬如長(zhǎng)期的IL-6表達(dá)和骨髓來(lái)源的抑制性細(xì)胞(Myeloid-derived suppressor cells,MDSCs)積累在肝臟可能負(fù)面影響在促進(jìn)肝臟疾病進(jìn)展如肝纖維化和肝細(xì)胞癌的發(fā)展[8]。
3.1.2TNF-α
TNF-α被認(rèn)為是肝切除和損傷后的肝再生的初始相位的調(diào)節(jié)器,因?yàn)樗軌蛟黾拥母渭?xì)胞中的DNA聚合酶-α的活性和胸腺嘧啶的摻入[9]。IL-1和TNF-α,這是由活化的Kupffer細(xì)胞和肝竇內(nèi)皮細(xì)胞產(chǎn)生[10]。在PH值后,TNF和IL-6等細(xì)胞因子啟動(dòng),緊隨其后的是刺激肝細(xì)胞增殖的生長(zhǎng)因子。TNF-αI與TNFRI在肝內(nèi)非實(shí)質(zhì)細(xì)胞相結(jié)合,這導(dǎo)致激活NF-κB和促使IL-6釋放,IL-6繼而激活STAT3以及細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶1和2(ERK1/2)通路。而TNFR1脫落被認(rèn)為調(diào)節(jié)TNF信號(hào),平衡抗細(xì)菌感染和隨后的炎癥[11]。在表達(dá)的細(xì)胞因子調(diào)節(jié)PH值后30~120 min,通過(guò)核轉(zhuǎn)錄因子激活κB(NF-κB)并啟動(dòng)NF-κB-STAT信號(hào)通路,使核因子從細(xì)胞質(zhì)轉(zhuǎn)位到細(xì)胞核,從而啟動(dòng)“及早應(yīng)答基因”(c-jun、c-fos、c-myc等)的表達(dá),使G0期的肝細(xì)胞激活進(jìn)入G1期,開(kāi)始細(xì)胞分裂。若沒(méi)有激活NF-κB,TNF能導(dǎo)致肝細(xì)胞凋亡。目前的概念,NF-κB抑制的程度決定了肝細(xì)胞凋亡細(xì)胞死亡的敏感性。TNF-α和EGF聯(lián)合能促進(jìn)體內(nèi)肝再生過(guò)程中DNA的復(fù)制。抑制細(xì)胞因子SOCS3,能促進(jìn)TNF-α誘導(dǎo)[12]。
3.2肝再生階段的增殖調(diào)控
影響肝細(xì)胞細(xì)胞周期的主要為促有絲分裂的生長(zhǎng)因子,主要包括表皮生長(zhǎng)因子(Epidermal growth factor,EGF)、腫瘤壞死因子-α(Tumor necrosis factor-α,TNF-α)和轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-α(Transforming growth factor-α,TGF-α)。在生理狀態(tài)下,肝臟為相對(duì)靜止的器官。但是在肝葉部分切除或者某些其他原因所產(chǎn)生的殘缺肝細(xì)胞后,余下的肝實(shí)質(zhì)細(xì)胞及非實(shí)質(zhì)細(xì)胞(包括內(nèi)皮細(xì)胞、枯否氏細(xì)胞、成纖維細(xì)胞等)將會(huì)按一定的先后順序依次進(jìn)入增值狀態(tài)以此來(lái)補(bǔ)充肝細(xì)胞的數(shù)量及代償肝臟的功能[13,14]。輔有絲分裂原也參與再生增殖階段的調(diào)節(jié),如血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(Vascular endothelial growth factor,VEGF)、肝再生增強(qiáng)因子(Augmenter of liver regeneration,ALR)等。
3.2.1促有絲分裂的生長(zhǎng)因子
HGF是一種強(qiáng)效生長(zhǎng)因子,它主要來(lái)自于活化的肝星狀細(xì)胞HSC(Hepatic stellate cell,HSC),以旁分泌的方式來(lái)促進(jìn)肝細(xì)胞的增值和DNA合成[15]。據(jù)有關(guān)結(jié)果表明,HGF表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞可破壞肝細(xì)胞的再生潛能[16]。肝臟再生調(diào)控中另一個(gè)重要的生長(zhǎng)因子為T(mén)GF-α,它可以通過(guò)直接刺激的方式來(lái)促進(jìn)肝細(xì)胞DNA合成[17]。TGF-α是表皮生長(zhǎng)因子(Epidermal growth factor,EGF)家族中的一份子,由肝細(xì)胞分泌產(chǎn)生的,主要通過(guò)自分泌和旁分泌的方式來(lái)發(fā)揮功效的。HGF能促進(jìn)肝細(xì)胞的產(chǎn)生和TGF-α的分泌。與c-Met類(lèi)似,表皮生長(zhǎng)因子受體(Epidermal growth factor receptor,EGFR)也可以作為酪氨酸激酶受體促進(jìn)細(xì)胞的增殖及其生長(zhǎng)。EGF作為組織修復(fù)和細(xì)胞保護(hù)作用的內(nèi)源性物質(zhì),在人類(lèi)的胃腸道、十二指腸粘膜潰瘍愈合過(guò)程中扮演者十分重要的角色[18]。EGF具有促進(jìn)細(xì)胞增殖和上皮細(xì)胞再生的功能,可以促進(jìn)細(xì)胞的有絲分裂及糖、蛋白質(zhì)、DNA、RNA的合成,在臨床上與免疫性皮膚病、創(chuàng)面組織修復(fù)及牙周炎等許多疾病的治療密切相關(guān)[19]。
3.2.2輔有絲分裂原
輔有絲分裂原包括VEGF、ALR等。ALR除了能刺激肝細(xì)胞的增殖外,還能通過(guò)抑制肝內(nèi)NK細(xì)胞的活性來(lái)促進(jìn)肝細(xì)胞的再生。研究表明內(nèi)源性和外源性VEGF可以促進(jìn)肝血竇內(nèi)皮細(xì)胞的增殖、分裂以及啟動(dòng)血管再生。而血管再生是肝再生過(guò)程中的一個(gè)重要組成部分[20]。因此,VEGF在肝再生過(guò)程中起著非常重要的作用。通過(guò)阻止VEGF與內(nèi)皮細(xì)胞表面的VEGFR-1和VEGFR-2兩種受體結(jié)合的方式來(lái)降低內(nèi)源化VEGF的生物活性從而達(dá)到抑制內(nèi)皮細(xì)胞分裂,進(jìn)一步來(lái)達(dá)到抑制新生兒血管的生成和降低血管通透性的目的[21]。在調(diào)節(jié)VEGF的表達(dá)方面中NO也發(fā)揮著重要作用。當(dāng)阻滯NO合成時(shí),VEGF蛋白的表達(dá)能力下降,而且還具有與VEGF協(xié)調(diào)調(diào)節(jié)肝竇內(nèi)皮細(xì)胞分裂與增殖的作用[22,23]。當(dāng)切除大鼠70%到90%的肝臟術(shù)后,若發(fā)現(xiàn)通路被ERK/MEK阻滯劑阻斷那么會(huì)導(dǎo)致肝臟的再生速度下降[24]。核受體PXR(Pregnane X receptor,PXR)是外源性誘導(dǎo)基因表達(dá)的、與各種肝功能相關(guān)的關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子。PXR通過(guò)顯性激活FOXO3(Forkhead box O3,F(xiàn)OXO3)在體外表達(dá)的抑制作用來(lái)介導(dǎo)肝細(xì)胞增殖從而使其增強(qiáng)。目前的結(jié)果表明,PXR的活化刺激生長(zhǎng)因子介導(dǎo)的小鼠肝細(xì)胞的增殖,至少部分通過(guò)抑制FOXO3來(lái)加速細(xì)胞周期進(jìn)程[25]。
3.2.3miRNA及代謝
RNA基因是一類(lèi)非編碼的高度保守的非編碼基因大家族。各種miRNA都能在其他種系中找到同源體,可以調(diào)控肝再生。據(jù)相關(guān)研究表明miRNA-21和miRNA-378均具有促進(jìn)DNA合成的功能。其中miRNA-21是大部分肝被切除后,合成肝細(xì)胞DNA所必須的,miRNA-378 則以抑制鳥(niǎo)氨酸脫羧酶(或odcl)的方式來(lái)促進(jìn)DNA的合成。由于肝部分被切除后,其再生過(guò)程需要有足夠的能量來(lái)滿足DNA復(fù)制以及細(xì)胞的分裂。mTOR作為關(guān)鍵的調(diào)控蛋白,調(diào)控著許多促進(jìn)細(xì)胞周期進(jìn)程的蛋白質(zhì)的翻譯。mTOR信號(hào)通路協(xié)同磷脂酰肌醇3-激酶(Phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)信號(hào)通路,兩者根據(jù)能量需求來(lái)調(diào)節(jié)細(xì)胞的體積和增殖等從而來(lái)調(diào)節(jié)肝再生[26]。
3.3終止階段的調(diào)控
由于目前對(duì)肝硬化再生的終止階段調(diào)控的研究較少,因此,據(jù)現(xiàn)研究得此階段主要涉及TGF-β和細(xì)胞因子信號(hào)通路的反饋抑制以及一些負(fù)性抑制因子。任何肝臟損傷在肝臟修復(fù)愈合的過(guò)程中都有肝纖維化的過(guò)程。肝纖維化發(fā)生的核心和始動(dòng)環(huán)節(jié)是HSC的激活[27]。據(jù)研究表明,細(xì)胞周期素抑制因子、細(xì)胞周期依賴(lài)性激酶抑制素(CDK inhibitor,CKI)以及下調(diào)IL-6/STAT3信號(hào)通路活性的抑制劑(Suppressor of cytokine signaling,SOCS)等在肝再生的進(jìn)程中均作為負(fù)性調(diào)節(jié)信號(hào)[28]。
3.3.1TGF-β和SOCS
肝硬化進(jìn)展中一個(gè)關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子為T(mén)GF-β,它可以誘導(dǎo)上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化及成纖維細(xì)胞的激活、細(xì)胞外基質(zhì)(Extracellular matrix,ECM)沉積從而影響肝硬化進(jìn)展[29]。TGF-β可通過(guò)以調(diào)節(jié)細(xì)胞周期蛋白D1(Cyclin D1)、細(xì)胞周期蛋白E(Cyelin E)的表達(dá)的方式來(lái)阻斷生長(zhǎng)因子信號(hào)傳導(dǎo)的,進(jìn)而達(dá)到抑制細(xì)胞DNA合成的目的[30]。因此,可認(rèn)為T(mén)GF-β可以抑制肝細(xì)胞的增殖。TGF-β抗體經(jīng)過(guò)預(yù)處理后,可觀察到明顯增加部分肝切除后的肝細(xì)胞DNA復(fù)制[31]。有研究發(fā)現(xiàn)β-catenin信號(hào)也可能和酒精性肝病相關(guān),Wnt/β-catenin信號(hào)通路在對(duì)肝癌細(xì)胞的生長(zhǎng)和滅活中也發(fā)揮重要作用[32]。Wnt信號(hào)通路的抑制物組氨酸三聚體核苷酸結(jié)合蛋白-1,通過(guò)引起 Smad7和β-catenin/cyclin D1的基因表達(dá)水平的改變,降低肝臟組織中α-SMA從而改善肝硬化及其進(jìn)程[33]。Wnt信號(hào)通路能促進(jìn)成纖維細(xì)胞生長(zhǎng),參與HSC活化以及通過(guò)調(diào)控TGF-β從而影響肝硬化的發(fā)生。據(jù)采用帶有抗病毒蛋白的質(zhì)粒進(jìn)行基因轉(zhuǎn)染 CCl-4誘導(dǎo)的肝纖維化大鼠的研究表明β-catenin信號(hào)的下調(diào)能明顯改善肝硬化的進(jìn)展[34]。SOCS對(duì)細(xì)胞因子信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)級(jí)聯(lián)反應(yīng)的調(diào)控為負(fù)調(diào)控。
3.3.2其他調(diào)控因子
研究還表明,Hippo信號(hào)通路可以通過(guò)YAP(Yes-associated protein,YAP)所誘導(dǎo)的miR-29來(lái)抑制PTEN(Phosphatase and tensin homolog deleted on chromosome ten,PTEN),從而激活PI3K-TOR通路來(lái)達(dá)到調(diào)控細(xì)胞大小的目的,而在此前Hippo信號(hào)通路都僅僅只是作為發(fā)現(xiàn)能夠調(diào)控細(xì)胞數(shù)量[35]。活化的 HSC 轉(zhuǎn)化為成纖維細(xì)胞在肝硬化的發(fā)生及發(fā)展過(guò)程中的作用[36]?;罨蟮母涡切渭?xì)胞具有高增殖和遷移能力,表達(dá)兩類(lèi)蛋白即α-平滑肌肌動(dòng)蛋白和各種細(xì)胞外信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路蛋白,并產(chǎn)生了大量以膠原為主的細(xì)胞外基質(zhì)成、細(xì)胞因子,從而導(dǎo)致肝組織微環(huán)境及結(jié)構(gòu)的改變[37,38]。IL-10在肝臟的再生中也扮演著一個(gè)抑制劑的角色,它可以以限制炎癥應(yīng)答和調(diào)節(jié)肝臟 STAT3 的活性的方式起到抑制作用。在臨床上各種類(lèi)型的肝病患者的血清和其肝組織中均可發(fā)現(xiàn)有 IL-10的升高現(xiàn)象[39,40]。因此,IL-10可不僅有降低肝臟炎癥的作用,還可參與調(diào)控由于炎癥應(yīng)答而導(dǎo)致的肝臟的過(guò)度增生。在肝硬化動(dòng)物模型實(shí)驗(yàn)中表明,成纖維細(xì)胞因子(Fibroblast growth factor-4,F(xiàn)GF4)轉(zhuǎn)導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞為肝再生通過(guò)移植的微環(huán)境提供可能性[41]。
4總結(jié)
肝臟再生的調(diào)控機(jī)制非常復(fù)雜,是由多步驟,多種細(xì)胞因子以及多種信號(hào)通路共同調(diào)控的結(jié)果。近年來(lái)對(duì)肝臟再生的研究也為臨床上的治療肝病患者提供了理論依據(jù),但是由于對(duì)其調(diào)控機(jī)制的研究還未具體了解,也限制了臨床上用肝臟細(xì)胞增殖治療肝硬化的廣泛應(yīng)用。因此,對(duì)肝再生機(jī)制的調(diào)控研究和其治療的方案仍需繼續(xù)探討。
參考文獻(xiàn)
1Nishie M, Tateno C, Utoh R, et al. Hepatocytes from fibrotic liver possess high growth potential in vivo[J]. Cell Transplant, 2009, 308(5): 665-675.
2Terui K, Ozaki M. The role of STAT3 in liver regeneration[J]. Drugs Today (Barc), 2005, 41(7): 4614-4619.
3Ankoma-Sey V. Hepatic regeneration-revisiting the myth of prometheus[J]. News Physiol Sci, 1999, 14(9): 149-155.
4Jostock T, Müllberg J, ?zbek S, et al. Soluble gp130 is the natural inhibitor of soluble IL-6R transsignaling responses[J]. Eur J Biochem, 2001, 268(1): 160-167.
5Rose-John S. IL-6 trans-signaling via the soluble IL-6 receptor: importance for the pro-inflammatory activities of IL-6[J]. Int J Biol Sci, 2012, 8(9): 1237-1247.
6Heinrich PC, Behrmann I, Haan S, et al. Principles of interleukin (IL)-6-type cytokine signalling and its regulation[J]. Biochem J, 2003, 374(0): 1-20.
7Lee SC, Jeong HJ, Lee SK, et al. Lipopolysaccharide preconditioning of adipose-derived stem cells improves liver-regenerating activity of the secretome[J]. Stem Cell Res Ther, 2015, 6(1): 6-75.
8Cheng L, Wang J, Li X, et al. Interleukin-6 induces Gr-1+CD11b+myeloid cells to suppress CD8+T cell-mediated liver injury in mice[J]. PLoS One, 2011, 6(3): e17631.
9Martino RB, Coelho AM, Kubrusly MS, et al. Kubrusly MS, Pentoxifylline improves liver regeneration through down-regulation of TNF-α synthesis and TGF-β1 gene expression[J]. World J Gastrointest Surg, 2012, 4(6): 146-151.
10Lin XM, Liu YB, Zhou F, et al. Expression of tumor necrosis factor-alpha converting enzyme in liver regeneration after partial hepatectomy[J]. World J Gastroenterol, 2008, 14(9): 1353-1357.
11Xanthoulea S, Pasparakis M, Kousteni S, et al. Tumor necrosis factor (TNF) receptor shedding controls thresholds of innate immune activation that balance opposing TNF functions in infectious and inflammatory diseases[J]. J Exp Med, 2004, 200(3): 367-376.
12Thagia I, Shaw EJ, Smith E, et al. Intestinal epithelial suppressor of cytokine signaling 3 enhances microbial-induced inflammatory tumor necrosis factor-α, contributing to epithelial barrier dysfunction[J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2015, 308(1): 25-31.
13陳棟,吳力群,曹景玉,等. 大鼠肝切除術(shù)后肝損傷程度與肝再生狀態(tài)的動(dòng)態(tài)對(duì)比研究[J]. 中華肝膽外科雜志, 2002, 8(6): 354-357.
14Jones LD, Nielsen MK, Britton RA. Genetic variation in liver mass, body mass, and liver: body mass in mice[J]. Anim Sci, 1992, 70(10): 2999-3006.
15Huh CG, Factor VM, Sánchez A, et al. Hepatocyte growth factor/c-met signaling pathway is required for efficient liver regeneration and repair[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2004, 101(13): 4477-4482.
16Jang YH, You DH, Nam MJ, et al. Protective effects of HGF gene-expressing human mesenchymal stem cells in acetaminophen-treated hepatocytes[J]. Growth Factors, 2015, 33(5): 319-325.
17Scheving LA, Stevenson MC, Taylormoore JM, et al. Integral role of the EGF receptor in HGF-mediated hepatocyte proliferation[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2002, 290(1): 197-203.
18江德龍,燕善軍. 表皮生長(zhǎng)因子與胃腸道疾病[J]. 胃腸病學(xué)和肝病學(xué)雜志, 2010, 19(3): 278-280.
19Hom DB. Growth factors in wound healing[J]. Otolaryngol Clin North Am, 1995, 28(5): 933-953.
20Taniguchi T1, Azuma H, Okada Y, et al. Endothelin-1-endothelin receptor type A mediates closure of rat ductus arteriosus at birth[J]. J Physiol, 2001, 537(Pt2): 579-585.
21張翠薇,莫?jiǎng)潘?劉旭陽(yáng),等.貝伐單抗玻璃體腔注射術(shù)并發(fā)癥的臨床分析[J]. 國(guó)際眼科雜志, 2013, 13(18): 1654-1656.
22Ronco MT, Frances D, Quiroga A. Vascular endothelial growth factor and nitric oxide in rat liver regeneration[J]. Life Sci, 2007, 81(9): 750-755.
23Yoshida D, Akahoshi T, Kawanaka H, et al. Roles of vascular endothelial growth factor and endothelial nitric oxide synthase during revascularization and regeneration after partial hepatectomy in a rat model[J].Surg Today, 2011, 41(12): 1622-1629.
24Ninomiya M, Shirabe K, Terashi T, et al. Deceleration of regenerative response improves the outcome of rat with massive hepatectomy[J]. Am J Transplant, 2010, 10(7): 1580-1587.
25Shizu R, Abe T, Benoki S, et al. PXR stimulates growth factor-mediated hepatocyte proliferation by cross-talk with FOXO transcription factor[J]. Biochem J, 2016, 473(3): 257-266.
26Martin KA, Blenis J. Coordinate regulation of translation by the PI 3-kinase and mTOR pathways[J]. Adv Cancer Res, 2002, 86(10): 1-39.
27付玲珠,鄭婷,張永生. TGF-β/Smad信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)道路與肝纖維化研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)臨床藥理學(xué)與治療學(xué), 2014, 19(10): 1189-1195.
28Sakuda S, Tamum S, Yamada A, et al. Activation of signal transducer and activator transcription 3 and expression of suppressor of cytokine signal 1 during liver regeneration in rats[J]. J Hepatol, 2002, 36(3): 378-384.
29Dooley S, Dijke PT. TGF-β in progression of liver disease[J]. Cell Tissue Res, 2012, 347(1): 245-256.
30Miwa Y, Harrison PM, Farzaneh Fet al. Plasma levels and hepatic mRNA expression of transforming growth factor-beta l in patients with fulminant hepatic failure[J]. J Hepatol, 1997, 27(5): 780-788.
31Enami Y, Kato H, Murakami M, et al. Anti-transforming growth factor-beta1 antibody transiently enhances DNA synthesis during liver regeneration after partial hepatectomy in rats[J]. J Hepatoliliary Pancreat Surg, 2001, 8(3): 250-258.
32Lade AG, Monga SP. Beta-catenin signaling in hepatic development and progenitors: which way does the WNT blow?[J]. Dev Dyn, 2011, 240(3): 486 -500.
33Wu F, Huang S, Zhu N, et al.Recombinant human histidine triad nucleotide-binding protein 1 attenuates liver fibrosis induced by carbon tetrachloride in rats[J]. Mol Med Rep, 2013, 8(4): 1023-1028.
34Li W, Zhu C, Chen X, et al. Pokeweed antiviral protein down-regulates Wnt/β-catenin signalling to attenuate liver fibrogenesis in vitro and in vivo[J]. Dig Liver Dis, 2011, 43(7): 559-566.
35Tumaneng K, Schlegelmilch K, Russell RC, et al. YAP mediates crosstalk between the Hippo and PI(3)K-TOR pathways by suppressing PTEN via miR-29[J]. Nat Cell Biol, 2012, 14(12): 1322-1329.
36Mallat A, Lotersztajn S. Cellular mechanisms of tissue fibrosis. 5. Novel insights into liver fibrosis[J]. Am J Physiol Cell Physiol, 2013, 305(8): 789-799.
37Safadi R, Friedman SL. Hepatic fibrosis-role of hepatic stellate cell activation[J]. Med Gen Med, 2002, 4(3): 27-32.
38Benyon RC, Iredale JP. Is liver fibrosis reversible?[J]. Gut, 2000, 46(4): 443-446.
39Wu JF, Wu TC, Chen CH, et al. Serum levels of interleukin-10 and interleukin-12 predict early, spontaneous hepatitis B virus e antigen seroconversion[J]. Gastroenterology, 2010, 138(1): 165-172.
40Abel M, Sene D, Pol S, et al. Intrahepatic virus-specific IL-10-producing CD8 T cells prevent liver damage during chronic hepatitis C virus infection[J]. Hepatology, 2006, 44(6): 1607-1616.
41Wang J, Xu L, Chen Q, Zhang Y, et al. Bone mesenchymal stem cells overexpressing FGF4 contribute to liver regeneration in an animal model of liver cirrhosis[J]. Int Clin Exp Med, 2015, 8(8): 12774-12782.
Study progress on the mechanism of liver regeneration*
Wu Xiong-wei,Zheng Yong-xia, Lin Hong-mei, Chen Yu-ting,Huang Xing-wang, Huang Zhen-ting, Xu Qin, Lin-min, Xiao Yan-ping△
(MedicalCollege, Jiaxing University, Zhejiang Jiaxing 314001)
基金項(xiàng)目:國(guó)家大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)計(jì)劃(編號(hào):201510354024);嘉興學(xué)院大學(xué)生SRT項(xiàng)目(編號(hào):SRT2015B004)。
作者簡(jiǎn)介:吳雄偉,男,嘉興學(xué)院醫(yī)學(xué)院臨床醫(yī)學(xué)醫(yī)本134班,Email:675799083@qq.com。 △通訊作者:肖燕萍,女,講師,主要從事肝再生機(jī)制的研究,Email:zhengyongxia@163.com。
(收稿日期:2016-4-20)