国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

下調(diào)組蛋白賴氨酸特異性脫甲基酶1的表達(dá)引起人白血病Molt-4細(xì)胞的凋亡

2015-02-26 06:55:54許可珍黃軼群黃秀旺馬旭東
中國(guó)藥理學(xué)通報(bào) 2015年11期
關(guān)鍵詞:急性白血病乙?;?/a>甲基化

許可珍,黃軼群,黃秀旺,馬旭東

(福建醫(yī)科大學(xué)附屬漳州市醫(yī)院1.藥學(xué)部、2.血液內(nèi)科,福建漳州 363000;3.福建醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,福建福州 350004)

下調(diào)組蛋白賴氨酸特異性脫甲基酶1的表達(dá)引起人白血病Molt-4細(xì)胞的凋亡

許可珍1,黃軼群2,黃秀旺3,馬旭東2

(福建醫(yī)科大學(xué)附屬漳州市醫(yī)院1.藥學(xué)部、2.血液內(nèi)科,福建漳州 363000;3.福建醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,福建福州 350004)

中國(guó)圖書分類號(hào):R341.27;R341.7;R329.25;R733.7;R977.4;R977.6

摘要:目的 觀察LSD1基因?qū)θ祟惣毙訲淋巴母細(xì)胞性白血病Molt-4細(xì)胞增殖和凋亡的影響。方法 設(shè)計(jì)并篩選出針對(duì)LSD1基因的最佳siRNA片段,將其轉(zhuǎn)染入Molt-4細(xì)胞后,MTS法觀察LSD1 siRNA對(duì)Molt-4細(xì)胞增殖的影響;流式細(xì)胞術(shù)分析細(xì)胞凋亡;Western blot檢測(cè)LSD1 siRNA作用后組蛋白H3K4、H3K9甲基化及組蛋白H3乙?;癄顟B(tài),以及p15、DNA甲基化酶1(DNMT1)和凋亡相關(guān)蛋白Bcl-2、pro-caspase-3的表達(dá)變化。結(jié)果 沉默LSD1基因可抑制細(xì)胞增殖,LSD1 siRNA濃度為0、30、60、120 nmol·L-1作用48 h后,Molt-4細(xì)胞的增殖率分別為(99.65±1.21)%、(83.02± 1.69)%、(65.72±2.16)%、(41.15±2.23)%,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);LSD1 siRNA以60 nmol·L-1的濃度轉(zhuǎn)染細(xì)胞0、24、48、72 h,增殖率分別為(99.86± 1.35)%、(65.72±2.16)%、(48.26±1.92)%、(37.86± 1.66)%,P<0.05,提示LSD1 siRNA可以抑制Molt-4細(xì)胞的增殖。LSD1 siRNA 0、30、60、120 nmol·L-1作用48 h后,細(xì)胞凋亡率分別為(3.35±1.26)%、(12.16±1.74)%、(32.74±2.47)%、(54.64±2.58)%,P<0.05,凋亡率隨著LSD1 siRNA濃度的增加逐漸上升;同時(shí)出現(xiàn)凋亡相關(guān)蛋白Bcl-2、procaspase-3的表達(dá)下降;LSD1 siRNA抑制LSD1蛋白及LSD1 mRNA,上調(diào)組蛋白H3K4一甲基化、二甲基化及組蛋白H3的乙?;?,H3K4三甲基化、H3K9甲基化水平無明顯變化;LSD1 siRNA下調(diào)DNA去甲基化酶DNMT1的表達(dá),上調(diào)p15的表達(dá)。結(jié)論 LSD1 siRNA能抑制Molt-4細(xì)胞的增殖并誘導(dǎo)其凋亡,其機(jī)制可能與表觀遺傳學(xué)調(diào)控有關(guān),有望成為白血病治療的一個(gè)新的靶點(diǎn)。

關(guān)鍵詞:急性白血病;LSD1;組蛋白;甲基化;乙?;?;表觀遺傳學(xué)

網(wǎng)絡(luò)出版時(shí)間:2015-10-16 9:52 網(wǎng)絡(luò)出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20151016.0952.048.html

賴氨酸特異性組蛋白去甲基化酶1(lysine spe-cific demethylase 1,LSD1)是2004年被人們發(fā)現(xiàn)的第1個(gè)組蛋白賴氨酸去甲基化酶。LSD1定位于細(xì)胞核內(nèi),調(diào)控著基因轉(zhuǎn)錄的激活和抑制,在腫瘤發(fā)生和胚胎發(fā)育過程中起著重要的作用。它是一個(gè)黃素腺嘌呤二核苷酸(flavin adenine dinulcleotide,F(xiàn)AD)依賴性胺氧化酶,能夠特異性地脫去組蛋白H3第4位賴氨酸(H3K4)和H3K9位點(diǎn)上的單甲基化和二甲基化甲基基團(tuán)[1]。有研究發(fā)現(xiàn),LSD1可通過多種途徑參與腫瘤的發(fā)生,例如LSD1可能廣

泛地調(diào)控基因表達(dá)并且參與前列腺癌的進(jìn)展及惡化[2],與乳腺癌、卵巢癌、肝癌的發(fā)展也密切相關(guān)[3-5]。

目前H3K4去基化酶LSD1的研究不多,特別是用對(duì)RNAi沉默技術(shù)研究LSD1后腫瘤細(xì)胞的增殖及凋亡以及對(duì)組蛋白調(diào)控及DNA甲基化影響的報(bào)告少見。本研究通過RNAi沉默LSD1基因,探討LSD1基因?qū)毙訲淋巴母細(xì)胞性白血病Molt-4細(xì)胞增殖、凋亡及組蛋白甲基化、乙酰化及DNA甲基化的影響,探討LSD1基因在白血病靶向治療中的可能性。

1 材料與方法

1.1試劑 RPMI 1640培養(yǎng)基(美國(guó)Gibco公司),胎牛血清(杭州四季青生物制品公司),siRNA及PCR引物委托上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司合成,Li-pofectamineTM2000轉(zhuǎn)染試劑、Opti-MEM RT-PCR試劑盒、DNA Marker試劑購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司,細(xì)胞增殖檢測(cè)(MTS)試劑盒(Promega公司),Annex-in V-FITC/PI雙染試劑盒(BD公司),一抗:p15、Bcl-2、procaspase-3(美國(guó)Santa Cruz公司),Anti-ac-etyl-Histone H3、Anti-acetyl-Histone H4、Anti-trimeth-yl-Histone H3(Lys9)、Anti-acetyl-Histone H3 (Lys9)、Anti-acetyl-Histone H3(Lys14)、Anti-acetyl-Histone H3(Lys27)購(gòu)自美國(guó)Upsate公司。羊抗兔、羊抗鼠二抗(Santa Cruz公司)。

1.2Molt-4細(xì)胞培養(yǎng) Molt-4細(xì)胞購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù)。Molt-4細(xì)胞培養(yǎng)條件:含10%胎牛血清的RPMI 1640細(xì)胞培養(yǎng)基(含青霉素105U· L-1+鏈霉素100 mg·L-1)并在37℃、5%CO2飽和濕度的孵育箱中培養(yǎng)。將Molt-4細(xì)胞復(fù)蘇后,2~3 d規(guī)律傳代。轉(zhuǎn)染前選擇對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞,離心收集并接種于6孔培養(yǎng)板中,細(xì)胞數(shù)為2×106個(gè)/孔。

1.3靶序列的選擇 siRNA的有關(guān)序列由上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司設(shè)計(jì)及合成,為了避免只選擇一個(gè)序列可能出現(xiàn)無效或低效的情況,我們根據(jù)確定序列的原則選擇4條靶序列,并用RT-PCR法篩選最佳LSD1基因的siRNA片段為:上游5′-CCAC-GAGUCAAACCUUUAUTT-3′;下游5′-AUAAAGGU UUGACUCGUGGTT-3′。

1.4RT-PCR法觀察LSD1 siRNA對(duì)Molt-4細(xì)胞LSD1 mRNA表達(dá)的影響 設(shè)定陰性對(duì)照組、0、30、60、120 nmol·L-1LSD1 siRNA處理組。每孔總體積為2 mL。37℃、5%CO2飽和濕度下培養(yǎng)48 h后,根據(jù)TRIzol試劑盒說明書提取總RNA,紫外分光光度法鑒定、定量,A260/A280比值均為1.8~2.0,經(jīng)逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。以反應(yīng)所得cDNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增。將β-actin(上游引物:5′-GAGACCTTCA AGAC-CCCAGCC-3′,下游引物:5′-TCGGGGCATCGGAAC-CGCTCA-3′)與LSD1引物按1∶2的比例混合。PCR反應(yīng)條件:95℃5 min(預(yù)變性),95℃45 s(變性),61℃45 s(退火),72℃45 s(延伸),40個(gè)循環(huán),最終延伸72℃10 min。將PCR產(chǎn)物與上樣緩沖液以5∶1混合后,16 g·L-1瓊脂糖凝膠電泳,于凝膠圖像分析儀上自動(dòng)分析成像,觀察效果最佳LSD1 siRNA片段對(duì)Molt-4細(xì)胞LSD1 mRNA表達(dá)的影響。

1.5MTS法繪制細(xì)胞的生長(zhǎng)曲線 取3個(gè)96孔板,每個(gè)96孔板中接種Molt-4細(xì)胞2×104個(gè)/孔,分別加入適量的LSD1 siRNA使終濃度分別為0、30、60、120 nmol·L-1,終體積為100 μL。每組設(shè)6個(gè)平行孔,轉(zhuǎn)染后置于5%CO2飽和濕度、37℃的孵箱中繼續(xù)培養(yǎng)。于24、48、72 h分別收獲一個(gè)板內(nèi)的4組細(xì)胞。將MTS和PMS按20∶1的體積比混合成混合液,每孔加20 μL的上述混合液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,震蕩10 min,充分溶解結(jié)晶物,在酶標(biāo)儀上測(cè)吸光度即OD值(單波長(zhǎng)492 nm),記錄試驗(yàn)結(jié)果,并計(jì)算細(xì)胞增殖率。細(xì)胞增殖率/%=(OD實(shí)驗(yàn)-OD空白)/(OD對(duì)照-OD空白)×100%。以細(xì)胞增殖率為縱軸、時(shí)間為橫軸繪制細(xì)胞增殖曲線。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.6流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞早期凋亡 LSD1 siRNA使終濃度分別為0、30、60、120 nmol·L-1,分別培養(yǎng)48 h后離心收集細(xì)胞,在流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡率,方法及步驟參照BD公司試劑盒說明書進(jìn)行。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.7Western blot檢測(cè)干擾后LSD1蛋白、凋亡相關(guān)蛋白、p15蛋白、組蛋白H3K4一、二甲基化、H3K9甲基化、H3乙酰化狀態(tài)及DNA甲基化酶DNMT1的表達(dá) 用不同濃度的LSD1 siRNA處理Molt-4細(xì)胞48 h后,收集細(xì)胞,用PBS洗滌后,調(diào)整細(xì)胞數(shù)為1×106的濃度,加入裂解液與酶抑制劑(100∶1)100 μL充分裂解細(xì)胞;低溫(4℃)12 000 r ·min-1離心15 min,吸取中間清亮層,收集蛋白,BCA法進(jìn)行蛋白定量,-20℃保存?zhèn)溆?。取備用蛋白,?2%SDS-PAGE電泳分離,電轉(zhuǎn)移法轉(zhuǎn)膜,室溫下?lián)u床封閉1 h;加入用TBS稀釋的一抗4℃過夜,TBS洗滌液洗膜后分別加入二抗,室溫下孵育1 h,TBS洗膜后加入化學(xué)發(fā)光工作液,在X射線膠片(KODAK)上曝光,以β-actin為內(nèi)參,用AlphaDigi-Doc圖像分析軟件進(jìn)行分析比較。

1.8統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS 13.5統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)

行結(jié)果處理,常規(guī)進(jìn)行方差齊性檢驗(yàn)、正態(tài)性檢驗(yàn)。計(jì)量資料實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用±s表示,并進(jìn)行單因素方差分析。

2 結(jié)果

2.1LSD1 siRNA下調(diào)LSD1 mRNA及其蛋白的表達(dá) 分別將濃度為0、30、60、120 nmol·L-1的LSD1-2045 RNAi片段轉(zhuǎn)染Molt-4細(xì)胞,48 h后提取細(xì)胞的mRNA進(jìn)行RT-PCR試驗(yàn)。如Fig 1A所示,LSD1 siRNA轉(zhuǎn)染后LSD1 mRNA受到抑制,且與濃度相關(guān)。各組LSD1 mRNA條帶灰度值與β-actin比值分別為:0.967±0.124、0.302±0.083、0.153± 0.082、0.091±0.024,各組與β-actin比值統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,P<0.05(Fig 1A)。與對(duì)照組相比,經(jīng)LSD1 RNA干擾后,LSD1蛋白的表達(dá)量隨著siRNA作用濃度的增加而逐漸減少,其中120 nmol·L-1組減少最明顯,下降了67.67%(Fig 1B)。

Fig 1 Transfection of LSD1 siRNA in Molt-4 cells

2.2LSD1 siRNA抑制Molt-4細(xì)胞增殖 經(jīng)終濃度分別為0、30、60、120 nmol·L-1的LSD1 siRNA作用24、48、72 h后,Molt-4細(xì)胞的增殖率變化見Fig 2,隨LSD1 siRNA濃度的增加和時(shí)間的延長(zhǎng),增殖率逐漸下降,呈現(xiàn)濃度和時(shí)間依賴性。

2.3LSD1 siRNA誘導(dǎo)Molt-4細(xì)胞凋亡 經(jīng)30、60、120 nmol·L-1的LSD1 siRNA處理48 h后,Molt-4細(xì)胞的凋亡率分別為(12.16±1.74)%、(32.74±2.47)%、(54.64±2.58)%,而對(duì)照組為(3.35±1.26)%,細(xì)胞的凋亡率隨著LSD1 siRNA濃度的增加逐漸上升(P<0.05)。LSD1 siRNA濃度與凋亡率有明顯的量效關(guān)系(Fig 3)。

2.4LSD1 siRNA對(duì)Molt-4細(xì)胞的凋亡相關(guān)蛋白、DNMT1及p15的影響 經(jīng)終濃度分別為0、30、60、120 nmol·L-1的LSD1的siRNA轉(zhuǎn)染Molt-4細(xì)胞48 h后,抗凋亡蛋白Bcl-2的表達(dá)隨著LSD1 siRNA終濃度的增加而逐漸減少,分別比對(duì)照組減少33.70%、55.62%、79.78%;procaspase-3隨著siRNA處理濃度的增加表達(dá)量也逐漸下降,分別比對(duì)照組減少33.69%、54.35%、77.17%;同時(shí),隨著siRNA處理濃度的增加,抑癌基因p15的表達(dá)量逐漸增加,分別比對(duì)照組增加1.21倍、2.71倍、4.58倍;而DNMT1蛋白的表達(dá)則逐漸減弱,分別比對(duì)照組減少22.47%、71.35%、88.76%(P<0.05)(Fig 4)。

Fig 2 Deceased cell proliferation of Molt-4 cells after transfected with LSD1 siRNA in different concentrations and in different time

Fig 3 Induction of cells apoptosis after transfected with LSD1 siRNA Molt-4 cells for 48 hours

2.5LSD1 RNAi對(duì)Molt-4細(xì)胞組蛋白甲基化和乙?;挠绊?LSD1 siRNA終濃度為30、60、120 nmol·L-1處理Molt-4細(xì)胞48 h后,組蛋白H3K4

一甲基化和二甲基化表達(dá)隨siRNA濃度增加而增強(qiáng);組蛋白H3K4三甲基化水平不變;組蛋白H3K9一甲基化和二甲基化水平也幾乎不變;組蛋白H3乙?;诫SsiRNA濃度增加而表達(dá)增強(qiáng)(Fig 5)。

Fig 4 Alteration of apoptosis-related protein and DNMT1,p15 protein in Molt-4 cells after transfected with indicated concentrations of LSD1 siRNA for 24 h

3 討論

一般認(rèn)為,腫瘤的發(fā)生與癌基因的異常激活或過度表達(dá)有關(guān),而抑癌基因的失活也可能使細(xì)胞向惡性轉(zhuǎn)化。表觀遺傳學(xué)的改變對(duì)腫瘤的發(fā)生和發(fā)展起了重要的作用。組蛋白H3K4去基化酶LSD1在表觀遺傳學(xué)中發(fā)揮了重要作用,其在多種腫瘤表達(dá)異常,說明它對(duì)腫瘤的發(fā)生有關(guān)。本研究以RNA干擾技術(shù)削減急性淋巴細(xì)胞白血病Molt-4細(xì)胞的LSD1表達(dá),觀察白血病細(xì)胞的表觀遺傳學(xué)的變化及增殖、凋亡的影響,探討LSD1作為抗腫瘤靶點(diǎn)的可能性。

特異性地誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡已經(jīng)成為治療惡性腫瘤的主要策略之一。2010年Kontaki等[6]首先報(bào)告當(dāng)DNA損傷時(shí),set和LSD1分別對(duì)E2F1-K185me進(jìn)行去甲基化修飾,使其更遠(yuǎn)的乙?;土姿峄饕饔糜诩?xì)胞周期的G1期到S期的過渡,并通過激活p53、p73等輔助因子,即p53依賴和非p53依賴細(xì)胞凋亡通路,激活大量凋亡前基因。本研究結(jié)果顯示,LSD1 siRNA干擾LSD1基因后可促進(jìn)Molt-4細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白Bcl-2、procaspase-3裂解,觸發(fā)細(xì)胞凋亡,細(xì)胞凋亡率隨著LSD1 siRNA濃度的增加逐漸上升(P<0.05);Wang等[7]鑒定出DN-MT1是LSD1的新底物。DNMT1可被LSD1去甲基化,引起DNA甲基化的失衡。p15(Ink4b)基因?qū)儆谝职┗蛑兄芷诘鞍滓蕾囆约っ敢种埔蜃樱–K-Is)第二大家族,通過抑制CDK4/6,從而抑制Rb蛋白磷酸化,阻止細(xì)胞由G1期進(jìn)入S期,從而減少細(xì)胞的異常生長(zhǎng)及變異,阻止腫瘤發(fā)生和發(fā)展。沉默LSD1基因可下調(diào)DNA甲基轉(zhuǎn)移酶1(DNMT1),使抑癌基因p15去甲基化而表達(dá)上調(diào),從而抑制腫瘤細(xì)胞增殖。

Fig 5 Alteration of histone methylation and acetylation modification of Molt-4 cells after transfection with indicated concentrations of LSD1 siRNA for 24 h

本研究還發(fā)現(xiàn)沉默LSD1后,H3K4的一甲基化和二甲基化水平逐漸增強(qiáng),組蛋白H3乙?;缴险{(diào),而H3K4的三甲基化及H3K9的一甲基化和二甲基化未發(fā)生改變。Shi等[1]和Nicholson等[8]的實(shí)驗(yàn)顯示在FAD的參與下,LSD1在體外可以特異去除組蛋白H3第4位賴氨酸(H3K4)的二甲基和一甲基修飾。而三甲基則需要亞胺陽離子中間體才能介導(dǎo)對(duì)H3K4三甲基的去甲基化反應(yīng)。LSD1不

是H3K9去甲基化酶,但有文獻(xiàn)報(bào)告LSD1可在體內(nèi)才能去除H3K9的二甲基和一甲基修飾[9]。Miao等[10]研究發(fā)現(xiàn):組蛋白H3-K4Me2、H3-K4Me3、H3-K36Me2和H3-K79Me2與高度乙酰化和基因激活都有關(guān)系。因此,可以推導(dǎo)出:當(dāng)組蛋白H3-K4Me2表達(dá)增加時(shí),可引起組蛋白高度乙酰化,從而使組蛋白H3乙?;黾印?/p>

本研究提示干擾LSD1基因后腫瘤細(xì)胞發(fā)生表觀遺傳學(xué)改變,進(jìn)而促使細(xì)胞凋亡,腫瘤細(xì)胞受到抑制,有望成為腫瘤治療的靶點(diǎn)。

(致謝:本文實(shí)驗(yàn)在閩南師范大學(xué)生物科學(xué)院中心實(shí)驗(yàn)室完成,感謝實(shí)驗(yàn)室的老師對(duì)本實(shí)驗(yàn)的支持。)

參考文獻(xiàn):

[1] Shi Y,Lan F,Matson C,et al.Histone demethylation mediated by the nuclear amine oxidase homolog LSD1[J].Cell,2004,119 (7):941-53.

[2] Naqasawa S,Sedukhina A S,Nakaqawa Y,et al.Relationship be-tween LSD1 expression and E-cadherin expression in prostate canc-er[J].J Int Urol Nephrol,2015,47(3):485-90.

[3] Naqasawa S,Sedukdina A S,Nakaqawa I,et al.LSD1 overex-pression is associated with poor prognosis in basal-like breast canc-er,and sensitivity to PARP inhibition[J].PLos One,2015,10 (2):e0118002.

[4] Chen C,Ge J,Lu Q,et al.Expression of Lysine-specific demeth-ylase 1 in human epithelial ovarian cancer[J].J Ovarian Res,2015,8(1):28.

[5] Lei Z J,Wang J,Xiao H L,et al.Lysine-specific dem ethylase 1 promotes the stemness and chemoresistance of Lgr5+liver cancer initiating cells by suppressing negative regulators of β-catenin sig-naling[J].J Oncogene,2015,34:3188-98.

[6] Kontaki H,Talianidis I.Lysine methylation regulates E2F1-in-duced cell death[J].J Molell,2010,39(1):152-60.

[7] Wang J,Hevi S,Kurash J K,et al.The lysine demethylase LSD1 (KDM1)is required for maintenance of global DNA methylation [J].J Nat Genet,2009,41(1):125-9.

[8] Nicholson T B,Chen T.LSD1 demethylates histone and non-his-tone proteins[J].J Epigenetics,2009,4(3):129-32.

[9] Lan F,Nottke A C,Shi Y.Mechanisms involved in the regulation of histone lysine demethylases[J].J Curr Opin Cell Biol,2008,20 (3):316-25.

[10]Miao F,Natarajan R.Mapping global histone methylation patterns in the coding regions of human genes[J].J Mol Cell Biol,2005,25(11):4650-61.

Effects of silencing LSD1 gene on Molt-4 cells apoptosis

XU Ke-zhen1,HUANG Yi-qun2,HUANG Xiu-wang3,MA Xu-dong2
(1.Dept of Pharmacy,2.Dept of Hematology,Zhangzhou Affiliated Hospital of Fujian Medical University,Zhangzhou Fujian 363000,China;3.School of Pharmacy,F(xiàn)ujian Medical University,F(xiàn)uzhou 350004,China)

Abstract:Aim To observe the effect of the LSD1 gene on the proliferation and apoptosis of Molt-4 cells,a kind of human acute T-lymphoblastic leukemia cells.Methods siRNA fragment based on LSD1 gene was designed,filtered out and then transfected into Molt-4 cells.The effects of LSD 1 siRNA on Molt-4 cell prolif-eration were observed by the method of MTS.The cell apoptosis was analyzed by flow cytometry.The states of histone H3K4,H3K9 methylation,histone H3 acetyla-tion,p15,DNA methyltransferase 1(DNMT1),and apoptosis-related proteins like Bcl-2,procaspase-3 were evaluated by Western blot.Results Silencing LSD1 gene inhibited cell proliferation.Molt-4 cell pro-liferation rate was(99.65±1.21)%,(83.02± 1.69)%,(65.72±2.16)%,and(41.15±2.23)% respectively after the treatment of Molt-4 cells with 0,30,60,120 nmol·L-1of LSD1 siRNA after 48 hours (P<0.05).Cell proliferation rate was(99.86± 1.35)%,(65.72±2.16)%,(48.26±1.92)%,and (37.86±1.66)%respectively after the transfection of Molt-4 cells with 60 nmol·L-1of LSD1 siRNA after 0,24,48,72 hours(P<0.05).Cell apoptosis rate was(3.35±1.26)%,(12.16±1.74)%,(32.74 ±2.47)%,(54.64±2.58)%respectively after transfection of LSD1 siRNA in indicated concentrations for 48 hours(P<0.05).At the same time,the ex-pression levels of apoptosis-related proteins like Bcl-2,procaspase-3 decreased.LSD1 siRNA inhibited LSD1 and LSD1 mRNA,and accumulated histone mono-,and di-methylation H3K4 and histone H3 acetylation.However,alteration of H3K4 trimethylation,H3K9 methylation was not detected.LSD1 siRNA downregu-lated DNA demethylase DNMT1 and upregulated p15.Conclusions LSD1 siRNA can inhibit Molt-4 cell proliferation and induce apoptosis.Its mechanism may be associated with epigenetic regulation.In addition,it is expected to become a new target for leukemia treat-ment.

Key words:acute leukemia;LSD1;histone;methyla-tion;acetylation;epigenetics

作者簡(jiǎn)介:許可珍(1979-),女,碩士,主管藥師,研究方向:臨床藥學(xué),Tel:0596-2082381,E-mail:xkz868@163.com;馬旭東(1957-),女,碩士,主任醫(yī)師,教授,博士生導(dǎo)師,研究方向:血液腫瘤學(xué),通訊作者,Tel:0596-2082021,F(xiàn)ax:0596-2593904,E-mail:maxudong005@hotmail.com

基金項(xiàng)目:福建省自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No 2012J01420);漳州市科學(xué)研究發(fā)展計(jì)劃基金資助項(xiàng)目(No 20100080);福建省引進(jìn)重大項(xiàng)目計(jì)劃基金(No 2012I2004);福建醫(yī)科大學(xué)重點(diǎn)科研項(xiàng)目(No FZS13004Z);福建省醫(yī)學(xué)創(chuàng)新課題(No 2012-CX-32)

收稿日期:2015-06-13,修回日期:2015-07-15

文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A

文章編號(hào):1001-1978(2015)11-1603-05

doi:10.3969/j.issn.1001-1978.2015.11.024

猜你喜歡
急性白血病乙?;?/a>甲基化
抑癌蛋白p53乙?;揎椀恼{(diào)控網(wǎng)絡(luò)
血液分析儀檢驗(yàn)急慢性白血病的臨床應(yīng)用
分析沙利度胺聯(lián)合常規(guī)化療治療急性白血病的療效
血漿置換治療血栓性血小板減少性紫癜22例臨床研究
美羅培南治療急性白血病合并重癥肺部感染臨床效果觀察
慢性支氣管哮喘小鼠肺組織中組蛋白H3乙?;揎椩鰪?qiáng)
組蛋白去乙?;敢种苿┑难芯窟M(jìn)展
鼻咽癌組織中SYK基因啟動(dòng)子區(qū)的甲基化分析
胃癌DNA甲基化研究進(jìn)展
基因組DNA甲基化及組蛋白甲基化
遺傳(2014年3期)2014-02-28 20:58:49
砀山县| 将乐县| 金沙县| 改则县| 成安县| 贵定县| 成武县| 鄂托克旗| 南京市| 贵南县| 浙江省| 陆河县| 承德县| 滕州市| 郧西县| 大邑县| 兰州市| 乐东| 来宾市| 佛山市| 汤阴县| 南城县| 图们市| 蕲春县| 绥化市| 阜康市| 青铜峡市| 筠连县| 奉贤区| 乌鲁木齐县| 连山| 云和县| 宽甸| 嘉善县| 金阳县| 牡丹江市| 雅江县| 江孜县| 新巴尔虎左旗| 长沙市| 登封市|