楊丙章,任 鋒,段鐘平,師水生
1.山西醫(yī)科大學(xué)第二臨床醫(yī)學(xué)院,山西 太原 030001;2.北京市肝病研究所;3.首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京佑安醫(yī)院
內(nèi)質(zhì)網(wǎng)(endoplasmic reticulum,ER)是哺乳細(xì)胞中一種重要的亞細(xì)胞器,是分泌性蛋白合成與折疊、蛋白質(zhì)糖基化修飾、蛋白質(zhì)分泌的場(chǎng)所,同時(shí)也是貯存和釋放鈣離子的場(chǎng)所。在生理或病理?xiàng)l件下,如分泌蛋白的翻譯增加、折疊和蛋白酶體降解能力下降、氧化還原狀態(tài)和鈣離子水平的改變、ATP的耗竭以及錯(cuò)誤的翻譯后修飾都會(huì)干擾ER的穩(wěn)態(tài),將會(huì)造成未折疊蛋白在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)內(nèi)的聚集,影響內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的正常功能,稱為內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激(endoplasmic reticulum stress,ERS)[1-2]。大量的研究證明,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激能夠誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,而最新的研究表明內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激還能夠誘導(dǎo)炎癥反應(yīng),并且影響著炎癥性疾病的進(jìn)展。本文就內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激與炎癥反應(yīng)的關(guān)系,以及其在病毒性乙型肝炎和丙型肝炎致病機(jī)制中作用的最新研究進(jìn)展作一綜述。
1.1 未折疊蛋白反應(yīng) 為了確保蛋白折疊的正確性以及預(yù)防非折疊或錯(cuò)誤折疊蛋白在細(xì)胞內(nèi)的聚集,抵抗內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的不利作用,細(xì)胞呈現(xiàn)出保護(hù)性的未折疊蛋白反應(yīng)(unfold protein response,UPR),其改變細(xì)胞的轉(zhuǎn)錄和翻譯程序以緩解內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激,因此一定程度的ERS能激活細(xì)胞保護(hù)機(jī)制[3]。但嚴(yán)重的或長(zhǎng)時(shí)間的應(yīng)激損傷內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的功能時(shí),則引發(fā)細(xì)胞內(nèi)的凋亡,細(xì)胞死亡程序最終誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[4]。位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的幾種跨膜蛋白保持著內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的穩(wěn)態(tài),監(jiān)測(cè)著蛋白的折疊情況以及內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔結(jié)構(gòu)域細(xì)胞膜的完整性,這些感應(yīng)蛋白分別是Ⅰ型ER跨膜蛋白激酶(type-1 ER transmembrane protein kinase,IRE1)、雙鏈RNA依賴的蛋白激酶樣ER激酶(double-stranded RNA-dependent protein kinase(PKR)-like ER kinase,PERK)和活化轉(zhuǎn)錄因子6(activating transcription factor 6,ATF6)。通常情況下,這幾個(gè)蛋白與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔內(nèi)的伴侶蛋白結(jié)合而保持著被抑制的非活性狀態(tài),尤其是葡萄糖調(diào)節(jié)蛋白78(glucose-regulated protein-78,GRP78)。在 UPR期間,GRP78從與IRE1α、ATF6和PERK的結(jié)合中分離,去結(jié)合未折疊蛋白處理其暴露的疏水區(qū)域,通過ATP水解所引起的ATP酶結(jié)構(gòu)域構(gòu)象變化來促進(jìn)蛋白的正確折疊。GRP78脫離后釋放出的 IRE1α、PERK和ATF6反而引發(fā)UPR:IRE1α和PERK通過二聚化和/或自體磷酸化而自身激活,ATF6轉(zhuǎn)移到高爾基體中,通過調(diào)節(jié)性膜內(nèi)蛋白水解過程而被激活[5],它們激活后促進(jìn)UPR的發(fā)生。
1.2 未折疊蛋白反應(yīng)信號(hào)通路及其功能 IRE1α-XBP-1信號(hào)通過提高折疊蛋白的能力并減少蛋白生成負(fù)荷來提高蛋白折疊能力,減少未折疊蛋白。IRE1α被激活后呈現(xiàn)出核酶功能,剪切X盒結(jié)合蛋白1(XBP-1)mRNA,由此產(chǎn)生的sXBP-1通過控制ER相關(guān)降解(ER-associated degradation,ERAD)的基因啟動(dòng)子UPR元件而激活轉(zhuǎn)錄,提高折疊蛋白能力[6]。IRE1α作為核酶活性的另外一種功能是降解編碼分泌性的mRNA(例如胰島素mRNA)和膜蛋白基因,以減少新合成的、需要被折疊的蛋白質(zhì)[7]。
ATF6信號(hào)通路通過調(diào)節(jié)UPR的轉(zhuǎn)錄以提高蛋白的折疊能力。研究發(fā)現(xiàn),ATF6是一個(gè)UPR的共同激活子,可以結(jié)合幾乎UPR反應(yīng)基因啟動(dòng)子的所有元件,ATF6影響了大約 10% ~20%的 UPR調(diào)節(jié)基因[8]。經(jīng)過一定的膜內(nèi)蛋白水解的調(diào)節(jié),ATF6轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核內(nèi),與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激反應(yīng)元件相互作用,上調(diào)伴侶蛋白/折疊酶,如 GRP78、GRP94、IRE1α、蛋白質(zhì)二硫鍵異構(gòu)酶(PDI)、ERp72、GRP58/ERp57、calnexin 和鈣網(wǎng)蛋白等,這些蛋白都增加了內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中的蛋白折疊能力[9]。
PERK-eIF2a信號(hào)通路減少了蛋白mRNA的翻譯。激活的PERK使真核翻譯起始因子2α亞基(eukaryotic translation initiation factor 2α,eIF2α)磷酸化,從而關(guān)閉蛋白質(zhì)的翻譯,阻止蛋白質(zhì)負(fù)荷增加,同時(shí)選擇性地增加某些mRNA的翻譯水平,例如ATF4,從而促進(jìn)伴侶蛋白的上調(diào)[10]。此外,最近的研究表明,UPR通過誘導(dǎo)自噬,可能通過早期c-Jun氨基末端激酶(JNK)的激活或TOR-ATG信號(hào)通路,快速去除多余的或者受損的細(xì)胞器和細(xì)胞質(zhì)成分從而保護(hù)應(yīng)激細(xì)胞[11]。
綜上所述,當(dāng)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)環(huán)境受到干擾,分泌蛋白或者膜蛋白積聚于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)內(nèi),內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激分別通過激活I(lǐng)RE1α、PERK和ATF6信號(hào)通路,減少新生蛋白質(zhì)負(fù)荷、增加蛋白折疊能力或者清理受損的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)成分,從而緩解細(xì)胞的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激狀態(tài)。
越來越多的證據(jù)表明,UPR信號(hào)通路和炎癥信號(hào)通路通過各種機(jī)制相互聯(lián)系,包括活性氧(ROS)的產(chǎn)生、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣離子的釋放、轉(zhuǎn)錄因子核因子-κB(NF-κB)、有絲分裂原激活蛋白激酶(MAPK)的激活等,因此內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導(dǎo)和/或協(xié)同促進(jìn)了炎癥反應(yīng)的發(fā)生和程度。
2.1 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激促進(jìn)活性氧的聚集引發(fā)炎癥反應(yīng)活性氧是炎癥反應(yīng)的重要調(diào)節(jié)子,最近的研究發(fā)現(xiàn),內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激與細(xì)胞內(nèi)活性氧的產(chǎn)生和聚集密切相關(guān)。在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中,蛋白質(zhì)折疊形成正確構(gòu)象是一個(gè)耗能的過程,因?yàn)檠趸瘲l件是分子內(nèi)和分子間的二硫鍵形成所必需的。在二硫鍵形成的過程中,通過蛋白中轉(zhuǎn)驅(qū)動(dòng)電子的運(yùn)輸,而這涉及到位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中的兩種酶:蛋白質(zhì)二硫鍵異構(gòu)酶(PDI)和ER氧化還原酶1(ERO1)[12]。PDI直接接收電子,引起半胱氨酸殘基氧化和二硫鍵的形成。ERO1依靠四羥酮醇依賴性反應(yīng)將電子從PDI轉(zhuǎn)移到分子氧上,從而使PDI氧化。雖然它提供了二硫鍵形成的強(qiáng)大動(dòng)力,但作為終端電子接受體的分子氧的利用導(dǎo)致了ROS的產(chǎn)生[13]。因此,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中蛋白質(zhì)折疊的負(fù)荷增加,導(dǎo)致ROS的積累,從而引發(fā)炎癥反應(yīng)。
2.2 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激導(dǎo)致NF-κB的活化 NF-κB是一個(gè)關(guān)鍵的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)子,在炎癥的發(fā)生方面起到核心作用。在缺乏炎癥刺激的情況下,NF-κB通過結(jié)合NF-κB的抑制子(IκB)而保持失活狀態(tài),IκB是一種結(jié)構(gòu)性表達(dá)的蛋白。NF-κB的活化過程是由信號(hào)誘導(dǎo)IκB的磷酸化來啟動(dòng)的,磷酸化的IκB隨后被降解。IκB降解后暴露出NF-κB的核定位信號(hào),使NF-κB轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核,在那里引起了許多炎癥反應(yīng)基因的轉(zhuǎn)錄。研究已經(jīng)證明,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中蛋白質(zhì)折疊負(fù)荷增加(例如在病毒感染期間)導(dǎo)致了NF-κB激活[14]。研究表明,利用鈣離子螯合劑和抗氧化劑誘導(dǎo)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激狀態(tài),有助于NF-κB的激活,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激導(dǎo)致的NF-κB激活可能是由于超負(fù)荷的蛋白質(zhì)折疊而引起的氧化應(yīng)激和/或內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)的鈣離子泄露到細(xì)胞質(zhì)中所引起的[15]。此外,對(duì)于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激反應(yīng),UPR可直接通過PERK-eIF2α通路介導(dǎo)的翻譯減弱而促進(jìn)NF-κB的激活:由于IκB的半衰期比NF-κB要短,逐漸衰減的翻譯增加了 NF-κB/IκB 的比例,從而釋放 NF-κB,在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的條件下,轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核中。這種效應(yīng)已經(jīng)在誘導(dǎo)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激藥物處理的細(xì)胞中,以及紫外線照射的細(xì)胞中被觀察到,它們都啟動(dòng)了UPR的PERK激活[16]。
在哺乳動(dòng)物中,IRE1α在整合內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激信號(hào)途徑與炎癥反應(yīng)信號(hào)途徑方面起到重要作用。在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的條件下,IRE1α自體磷酸化誘導(dǎo)了其胞漿域構(gòu)象的變化,然后結(jié)合腫瘤壞死因子-α(TNF-α)受體相關(guān)因子2(TRAF2)。IRE1α-TRAF2復(fù)合體可以募集IκB 激酶(IKK),其可使 IκB 磷酸化,導(dǎo)致 IκB 的降解和NF-κB向細(xì)胞核內(nèi)的轉(zhuǎn)移。與這些觀察結(jié)果相一致,對(duì)于缺乏IRE1α的小鼠胚胎成纖維細(xì)胞,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導(dǎo)的NF-κB激活和TNF-α的產(chǎn)生被明顯消弱。IRE1α-TRAF2復(fù)合體也可以募集蛋白激酶JNK,導(dǎo)致JNK的活化。被激活的JNK通過磷酸化轉(zhuǎn)錄因子激活蛋白1(AP1)而誘導(dǎo)炎癥因子基因的表達(dá)[17]。
3.1 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激與丙型病毒性肝炎 丙型肝炎病毒感染的細(xì)胞會(huì)產(chǎn)生高水平病毒蛋白,這一方面引起了針對(duì)病毒蛋白的UPR,限制病毒的翻譯;另一方面,為了抵抗內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導(dǎo)的細(xì)胞調(diào)亡而發(fā)揮的自我保護(hù)作用使得病毒蛋白持續(xù)存在而呈現(xiàn)出不利作用。來自細(xì)胞培養(yǎng)和轉(zhuǎn)基因鼠模型的證據(jù)表明,丙型肝炎病毒復(fù)制子的一些成分既誘導(dǎo)UPR基因的表達(dá),也引發(fā)肝損傷。例如,在Huh-7細(xì)胞中,HCV復(fù)制子誘導(dǎo)了sXBP-1的表達(dá)而抑制ERAD;在表達(dá)亞基因組復(fù)制子的細(xì)胞中,HCV基因表達(dá)與ATF6從細(xì)胞質(zhì)轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核中有密切關(guān)系[18]。通過上調(diào) XBP-1的轉(zhuǎn)錄,ATF6激活UPR的IRE1-XBP-1信號(hào)途徑,而在HCV復(fù)制子表達(dá)的細(xì)胞中,雖然XBP-1的剪切mRNA和sXBP-1蛋白升高,但 sXBP-1的反式激活活性在某種程度上在丙型肝炎病毒感染細(xì)胞中被壓制,防止了內(nèi)質(zhì)網(wǎng)降解增強(qiáng)甘露糖苷酶樣蛋白(EDEM)轉(zhuǎn)錄誘導(dǎo)并且抑制了 ERAD[19]。Joyce 等[20]動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究表明,HCV 通過誘導(dǎo)應(yīng)激及促凋亡的BAX阻止抗凋亡的NF-κB及BCL-xL的產(chǎn)生,使得肝細(xì)胞對(duì)凋亡更敏感,從而造成肝細(xì)胞的損害和凋亡。在細(xì)胞中表達(dá)的HCV蛋白誘導(dǎo)的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激也可以導(dǎo)致鈣離子從內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中釋放,從而激活cAMP反應(yīng)元件結(jié)合蛋白(CREB),激活的CREB能夠上調(diào)蛋白磷酸酶2Ac(PP2Ac),導(dǎo)致凋亡和肝癌的發(fā)生[21]。不僅如此,HCV核心蛋白在Huh-7或者HepG2細(xì)胞的表達(dá)可誘導(dǎo)C/EBP同源蛋白(C/EBP homologous protein,CHOP)表達(dá),促進(jìn) BAX轉(zhuǎn)移到線粒體及細(xì)胞色素 C的釋放,激活 Caspase-3和PARP的活性,促進(jìn)細(xì)胞死亡[22];在HCV結(jié)構(gòu)蛋白基因的轉(zhuǎn)基因小鼠中,Cleaved Caspase-3和CHOP的表達(dá)增高,促進(jìn)肝細(xì)胞凋亡[23]。
HCV感染細(xì)胞中引發(fā)的UPR并不能去除HCV過量的病毒蛋白;HCV復(fù)制子也同時(shí)壓制UPR所產(chǎn)生的保護(hù)性作用,這樣會(huì)導(dǎo)致病毒的持續(xù)產(chǎn)生,逃避免疫清除。例如,NS3和NS5B與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜相關(guān)的核糖核蛋白(RNP)形成復(fù)合體來指導(dǎo)并促進(jìn)病毒的復(fù)制。NS4B誘導(dǎo)ATF6和IRE1有利于HCV亞復(fù)制子并促進(jìn)HCV病毒復(fù)制[24-25]。最新細(xì)胞研究表明,被激活的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激促進(jìn)了HCV的復(fù)制,其機(jī)理是因?yàn)镠CV激活內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激,而內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激再激活細(xì)胞自噬體的形成,而HCV利用自噬體進(jìn)行大量的病毒復(fù)制[26-27]。
然而,以上研究?jī)H僅局限于HCV的細(xì)胞模型和轉(zhuǎn)基因動(dòng)物模型,這對(duì)HCV復(fù)制有很大的限制,因?yàn)檫@些模型中的HCV復(fù)制并不能釋放出HCV顆粒,這與臨床患者HCV復(fù)制特征存在較大的差異;除此以外,在丙型肝炎疾病進(jìn)展過程中,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激發(fā)揮著怎樣的作用,目前還是一片空白。目前為止,僅有一篇文獻(xiàn)簡(jiǎn)單介紹了內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激在丙型肝炎疾病進(jìn)展中的作用[28]。該研究表明,未經(jīng)治療的慢性丙肝患者肝臟組織中內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激敏感元件ATF-6、IRE1和PERK均被激活,而三個(gè)敏感元件并不激活UPR所誘導(dǎo)的保護(hù)性基因,因此這與以細(xì)胞和動(dòng)物模型為對(duì)象的研究結(jié)果有很大的區(qū)別。因此,以丙型肝炎患者為研究對(duì)象的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激研究更具有現(xiàn)實(shí)意義。
3.2 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激和乙型病毒肝炎 目前為止,關(guān)于乙型肝炎致病過程中內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的國(guó)外研究不多,僅僅局限于HBV的細(xì)胞模型研究,國(guó)內(nèi)研究報(bào)道也寥寥無幾。體外細(xì)胞研究結(jié)果表明,當(dāng)感染HBV后,HBV表面抗原的大、中、小3種形式的包膜蛋白中,大表面蛋白過表達(dá),使大、中、小蛋白的比例不能達(dá)到恰當(dāng)水平,三者無法結(jié)合成可分泌的病毒顆粒,結(jié)果是一方面導(dǎo)致亞病毒和病毒顆粒的分泌受阻而積聚,造成肝細(xì)胞的毛玻璃樣變性和以及對(duì)細(xì)胞炎性因子的高敏感性,從而造成肝臟實(shí)質(zhì)損傷,另一方面變異蛋白的表達(dá)還會(huì)妨礙內(nèi)質(zhì)網(wǎng)內(nèi)正??烧郫B蛋白的活性,進(jìn)一步促進(jìn)UPR[29-30]。HBV 的 HBX(hepatitis B virus X)蛋白是一種多功能的調(diào)節(jié)器,可誘導(dǎo)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的發(fā)生。HBX蛋白一方面誘導(dǎo)未折疊蛋白反應(yīng)的ATF-6和IRE1-XBP1信號(hào)途徑誘導(dǎo)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激;另一方面通過內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導(dǎo)ATF-4促進(jìn)環(huán)氧合酶2的表達(dá),從而促進(jìn)炎癥反應(yīng)的發(fā)生[31]。在細(xì)胞中表達(dá)的HBV蛋白誘導(dǎo)的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激也可以導(dǎo)致鈣離子從內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中釋放,從而激活cAMP反應(yīng)元件結(jié)合蛋白(CREB),激活的CREB能夠上調(diào)蛋白磷酸酶2Ac(PP2Ac),進(jìn)一步削弱細(xì)胞循環(huán)的調(diào)節(jié)導(dǎo)致凋亡和肝癌的發(fā)生[21]。此外,HBX降低參與線粒體脂肪酸β-氧化及線粒體內(nèi)膜電位酶的表達(dá),因HBX引起的ATP水平的降低通過eIF2α/ATF4通路誘導(dǎo)未折疊蛋白反應(yīng)以及COX2表達(dá)[32]。其他研究也證明 HBX誘導(dǎo) UPR,是 ATF6及IRE1-XBP1通路的重要激活物:HBX介導(dǎo)的這些通路可能促進(jìn)HBV在肝細(xì)胞中的復(fù)制和表達(dá),從而引起肝病甚至可能促進(jìn)肝癌的發(fā)生[33]。
在丙型病毒性肝炎和乙型病毒性肝炎疾病進(jìn)展中,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激發(fā)揮著重要的作用,而未折疊蛋白反應(yīng)則可緩解內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激引起的損傷,起到一定的保護(hù)作用,但過度的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激發(fā)生可引起炎癥反應(yīng)和細(xì)胞凋亡,從而對(duì)宿主造成傷害。目前丙型病毒性肝炎研究較多,而乙型病毒性肝炎的研究較少,尤其在臨床患者研究方面關(guān)于兩者研究均甚少,并且內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激在兩者發(fā)病中的詳細(xì)機(jī)制仍不明了。因此內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激在乙型肝炎病毒和丙型肝炎病毒致病進(jìn)展中的作用及機(jī)制研究是我們今后的研究方向之一。
[1]Ron D,Walter P.Signal integration in the endoplasmic reticulum unfolded protein response [J].Nat Rev Mol Cell Biol,2007,8(7):519-529.
[2]Kaplowitz N,Than TA,Shinohara M,et al.Endoplasmic reticulum stress and liver injury[J].Semin Liver Dis,2007,27(4):367-377.
[3]Szegezdi E,Logue SE,Gorman AM,et al.Mediators of endoplasmic reticulum stress-induced apoptosis[J].EMBO Rep,2006,7(9):880-885.
[4]Inki K,Wenjie X,John CR.Cell death and endoplasmic reticulum stress:disease relevance and therapeutic opportunities[J].Nat Rev Drug Discov,2008,7(12):1013-1030.
[5]Rao RV,Ellerby HM,Bredesen DE.Coupling endoplasmic reticulum stress to the cell death program[J].Cell Death Differ,2004,11(4):372-380.
[6]Lee A-H,Iwakoshi NN,Glimcher LH.XBP-1 regulates a subset of endoplasmic reticulum resident chaperone genes in the unfolded protein response[J].Mol Cell Biol,2003,23(21):7448-7459.
[7]Hollien J,Weissman JS.Decay of endoplasmic reticulum-localized mRNAs during the unfolded protein response[J].Science,2006,313(5783):104-107.
[8]Wu J,Rutkowski DT,Dubois M,et al.ATF6α optimizes long-term endoplasmic reticulum function to protect cells from chronic stress[J].Dev Cell,2007,13(3):351-364.
[9]Adachi Y,Yamamoto K,Okada T,et al.ATF6 is a transcription factor specializing in the regulation of quality control proteins in the endoplasmic reticulum[J].Cell Struct Funct,2008,33(1):75-89.
[10]Cullinan SB,Diehl JA.Coordination of ER and oxidative stress signaling:the PERK/Nrf2 signaling pathway[J].Int J Biochem Cell Biol,2006,38(3):317-332.
[11]Ullman E,F(xiàn)an Y,Stawowczyk M,et al.Autophagy promotes necrosis in apoptosis-defcient cells in response to ER stress[J].Cell Death Differ,2008,15(2):422-425.
[12]Tu BP,Weissman JS.The FAD-and O(2)-dependent reaction cycle of Ero1-mediated oxidative protein folding in the endoplasmic reticulum[J].Mol Cell,2002,10(5):983-994.
[13]Cuozzo JW,Kaiser CA.Competition between glutathione and protein thiols for disulphide-bond formation [J].Nature Cell Biol,1999,1(3):130-135.
[14]Hu P,Han Z,Couvillon AD,et al.Autocrine tumor necrosis factor α links endoplasmic reticulum stress to the membrane death receptor pathway through IRE1α-mediated NF-κB activation and down-regulation of TRAF2 expression [J].Mol Cell Biol,2006,26(8):3071-3084.
[15]Deniaud A,Sharaf el dein O,Maillier E,et al.Endoplasmic reticulum stress induces calcium-dependent permeability transition,mitochondrial outer membrane permeabilization and apoptosis[J].Oncogene,2008,27(3):285-299.
[16]Rius J,Guma M,Schachtrup C,et al.NF-κB links innate immunity to the hypoxic response through transcriptional regulation of HIF-1α [J].Nature,2008,453(7196):807-811.
[17]Urano F,Wang X,Bertolotti A,et al.Coupling of stress in the ER toactivation of JNK protein kinases by transmembrane protein kinase IRE1[J].Science,2000,287(5453):664-666.
[18]Tardif KD,Mori K,Kaufman RJ,et al.Hepatitis C virus suppresses the IRE1-XBP1 pathway of the unfolded protein response[J].J Biol Chem,2004,279(17):17158-17164.
[19]Piazzolla G,Nuzzaci M,Vitti A,et al.Apoptotic effects of a chimeric plant virus carrying a mimotope of the hepatitis C virus hypervariable region 1:role of caspases and endoplasmic reticulum-stress[J].J Clin Immunol,2012,32(4):866-876.
[20]Joyce MA,Walters KA,Lamb SE ,et al.HCV induces oxidative and ER stress,and sensitize infected cells to apoptosis in SCID/Alb-uPA mice[J].PLoS Pathog,2009,5(2):e1000291.
[21]Christen V,Treves S,Duong FH,et al.Activation of endoplasmic reticulum stress response by hepatitis viruses up-regulates protein phosphatase 2A[J].Hepatology,2007,46(2):558-565.
[22]Benali-Furet N,Chami M,Houel L,et al.Hepatitis C virus core triggers apoptosis in liver cells by inducing ER stress and ER calcium depletion[J].Oncogene,2005,24(31):4921-4933.
[23]Merquiol E,Uzi D,Mueller T,et al.HCV causes chronic endoplasmic reticulum stress leading to adaptation and interference with the unfolded protein response[J].PLoS One,2011,6(9):e24660.
[24]Funaoka Y,Sakamoto N,Suda G,et al.Analysis of interferon signaling by infectious hepatitis C virus clones with substitutions of core amino acids 70 and 91 [J].J Virol,2011,85(12):5986-5994.
[25]Von dem Bussche A,Machida R,Li K,et al.Hepatitis C virus NS2 protein triggers endoplasmic reticulum stress and suppresses its own viral replication[J].J Hepatol,2010,53(5):797-804.
[26]Donna S,Wenling C,Jinah C,et al.Induction of incomplete autophagic response by hepatitis C virus via the unfolded protein response[J].Hepatology,2008,48(4):1054-1061.
[27]Ke PY,Chen SS.Activation of the unfolded protein response and autophagy after hepatitis C virus infection suppresses innate antiviral immunity in vitro[J].J Clin invest,2011,121(1):37-56.
[28]Asselah T,Bièche I,Mansouri A,et al.In vivo hepatic endoplasmic reticulum stress in patients with chronic hepatitis C [J].J Pathol,2010,221(3):264-274.
[29]Xu Z,Jensen G,Yen TS.Activation of hepatitis B virus S promoter by the viral large surface protein via induction of stress in the endoplasmic reticulum[J].J Virol,1997,71(10):7387-7392.
[30]Wang HC,Wu HC,Chen CF,et al.Different types of ground glass hepatocytes in chronic hepatitis B virus infection contain specific Pre-S mutants that may induce endoplasmic reticulum stress[J].Am J Pathol,2003,163(6):2441-2449.
[31]Su IJ,Wang HC,Wu HC,et al.Ground glass hepatocytes contain pre-S mutants and represent preneoplastic lesions in chronic hepatitis B virus infection[J].J Gastroenterol Hepatol,2008,23(8 Pt 1):1169-1174.
[32]Cho HK,Cheong KJ,Kim HY,et al.Endoplasmic reticulum stress induced by hepatitis B virus X protein enhances cyclo-oxygenase 2 expression via activating transcription factor 4 [J].Biochem J,2011,435(2):431-439.
[33]Li B,Gao B,Ye L,et al.Hepatitis B virus X protein(HBx)activates ATF6 and IRE1-XBP1 pathways of unfolded protein response[J].Virus Res,2007,124(1-2):44-49.