彭 昊,李 軍,陶 立,陳澤祥,韋志鋒,許力干,楊 威
隱孢子蟲?。╟ryptosporidiosis)是由隱孢子蟲感染而引起的以腹瀉為主要臨床癥狀的一種人獸共患的寄生蟲?。?]。隱孢子蟲主要引起幼齡動物的消化道和呼吸道疾病,導(dǎo)致其生產(chǎn)性能下降或死亡。傳統(tǒng)方法如糞便濃集、改良抗酸染色和免疫熒光染色法等檢測卵囊步驟繁瑣,敏感性低,目前使用的分子生物學(xué)方法檢測隱孢子蟲方法為Xiao等[2]建立的巢式-PCR-RFLP,特點是通用性好,可檢測目前發(fā)現(xiàn)的所有隱孢子蟲種類,但需要兩輪PCR以及酶切鑒定的過程方能定種,較為耗時。本研究在國外牛微小隱孢子蟲COWP基因[3]和本室安氏隱孢子蟲ITS-1基因單一PCR技術(shù)的基礎(chǔ)上,建立多重PCR的檢測方法,優(yōu)化適宜條件,建立多重PCR快速檢測方法。
1.1.1 蟲株 安氏隱孢子蟲、貝氏隱孢子蟲由本實驗室分離鑒定,微小隱孢子蟲為河南農(nóng)業(yè)大學(xué)張龍現(xiàn)教授惠贈;牛泰勒氏蟲、牛巴貝斯蟲、伊氏錐蟲、食道口線蟲為廣西大學(xué)寄生蟲研究室李健老師惠贈。
1.1.2 試劑 糞便DNA提取試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司;2×TaqPCR Master Mix、DNA Marker 1購自廣東東盛生物科技有限公司。
1.2.1 引物的設(shè)計與合成 根據(jù)前人研究及本室研究情況,設(shè)計合成兩對引物,引物序列為引物由廣州Invitrogen公司合成。微小隱孢子蟲引物靶基因為COWP基因,引物序列為:上游引物 C.parvum P1:5′-CCCAACATTCCTGGTGTAGCTTCC -3′,下游引物 C.parvum P2:5′-GAA CGCACCTGTTCCCACTCAATG-3′,預(yù)期擴增片段長度為1 033bp。安氏隱孢子蟲引物靶基因為ITS-1基因,上游引物 C.a(chǎn)ndersoni P1:5′-ATTGAACCTGAACTTGCCTA -3′,下 游 引 物 C.a(chǎn)ndersoni P2:5′ – AAAAGTCGGCAAATAACAA-3′,預(yù)計擴增片段長度為263bp。
1.2.2 DNA模板的制備 取待檢牛的新鮮糞便20.0g~50.0g,置滅菌燒杯充分攪勻,稱取攪拌后的糞便樣本180~220mg至2mL離心管中,反復(fù)凍融處理3次后,按糞便基因組DNA提取說明書提取模板DNA。
1.2.3 多重PCR擴增條件的優(yōu)化 在微小隱孢子蟲和安氏隱孢子蟲單重PCR穩(wěn)定的基礎(chǔ)上,將微小隱孢子蟲和安氏隱孢子蟲的DNA等量混勻物作為模板,對多重PCR中的退火溫度(55℃(下同)、57、59、61、63)、引物濃度(50pmol/50pmol、50pmol/25pmol、25pmol/25pmol、25pmol/50 pmol)等條件進行優(yōu)化,篩選多重PCR擴增的最佳反應(yīng)體系和程序。
1.2.4 特異性試驗 分別用分別以經(jīng)傳統(tǒng)鏡檢及Nest-PCR-RFLP鑒定后定種確定的微小隱孢子蟲與安氏隱孢子蟲混合物、微小隱孢子蟲、安氏隱孢子蟲、貝氏隱孢子蟲、牛泰勒氏蟲、牛巴貝斯蟲、伊氏錐蟲、食道口線蟲為模板,進行PCR擴增檢測,PCR反應(yīng)結(jié)束后取20μL產(chǎn)物用于1%瓊脂糖凝膠電泳分析。
1.2.5 敏感性試驗 測定敏感度時,將經(jīng)過計數(shù)的微小隱孢子蟲與安氏隱孢子蟲混合卵囊加入牛糞中,濃度分別為5×106、5×105、5×104、5×103、5×102、5×101、5個卵囊/g糞,用天根糞便基因組DNA試劑盒分別提取DNA后,進行多重PCR擴增。
1.2.6 重復(fù)性試驗 應(yīng)用建立的多重PCR方法,重復(fù)檢測微小隱孢子蟲、安氏隱孢子蟲單一DNA或混合DNA樣品3次,以確定其穩(wěn)定性。
1.2.7 多重PCR對臨床樣品的檢測 采用多重PCR方法對采自廣西不同地區(qū)一些規(guī)?;膛黾吧B(yǎng)戶的1613份牛糞樣進行牛隱孢子蟲流行病學(xué)調(diào)查,并與經(jīng)典的巢式PCR方法進行比較分析。
2.1 多重PCR條件的確立 按照對 Multi-PCR反應(yīng)的退火溫度,見圖1、引物濃度,見圖2。
2.2 Multi-PCR反應(yīng)特異性檢測結(jié)果 瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果顯示,見圖3,微小隱孢子蟲與安氏隱孢子蟲混合物、微小隱孢子蟲、安氏隱孢子蟲均擴增出相應(yīng)特征性的片段,而貝氏隱孢子蟲、牛泰勒氏蟲、牛巴貝斯蟲、伊氏錐蟲、食道口線蟲無特征性條帶,證實本方法有良好的特異性。
2.3 Multi-PCR反應(yīng)敏感性檢測結(jié)果 通過對7個不同濃度的隱孢子蟲模板進行擴增,結(jié)果表明本方法在5×102個/g孔處仍可見清晰度較高的目的條帶,見圖4。所以本方法最低可檢測每g牛糞中500個隱孢子蟲卵囊。
2.4 重復(fù)性試驗 應(yīng)用建立的多重PCR方法,重復(fù)檢測微小隱孢子蟲、安氏隱孢子蟲單一DNA或混合DNA樣品3次,結(jié)果均一致。
2.5 多重PCR對臨床樣品的檢測 采用多重PCR方法對采自廣西不同地區(qū)一些規(guī)?;膛黾吧B(yǎng)戶的1 613份牛糞樣進行牛隱孢子蟲多重PCR方法與經(jīng)典的巢式PCR方法的平行比較分析。。兩種方法檢測結(jié)果均為安氏隱孢子蟲陽性糞樣189份,微小隱孢子蟲陽性糞樣1份,符合率為100%。表明建立的多重PCR方法特異性和敏感性較好,可用于臨床檢測。
常規(guī)隱孢子蟲病原學(xué)檢測主要通過小腸黏膜活檢法、糞便集卵法及抗酸染色法等鏡檢觀察,均需要進行隱孢子蟲的純化,費時費力、檢出率低且主觀性強。而采用分子生物學(xué)方法檢測往往也要先進行隱孢子蟲的分離純化、超聲破碎等前處理過程,而本研究通過直接用試劑盒,僅凍融處理即可快速、簡便提取糞便中的隱孢子蟲卵囊DNA做為模板,較前人方法[4]省略了從糞便中卵囊分離、純化的繁瑣步驟,大為減輕了工作量。
單一PCR 1次只能檢測一種病原,當對幾種病原進行檢測時,需進行多次PCR反應(yīng)。而多重PCR技術(shù)具有單一PCR技術(shù)無可比擬的優(yōu)越性:方便快捷和經(jīng)濟,減輕了工作量,一次反應(yīng)可以檢測多個基因型,可最大限度減少取樣錯誤和交叉污染。具體到隱孢子蟲的檢測方面。相較Xiao等[2]建立的通過兩輪PCR擴增隱孢子蟲18SrRNA特異性DNA片段后再選取不同的限制性內(nèi)切酶進行RFLP鑒定該隱孢子蟲蟲種的經(jīng)典方法,本研究建立的多重PCR方法能在一次反應(yīng)中對糞樣中的微小隱孢子蟲和安氏隱孢子蟲進行檢測,而敏感性方面與向飛宇[5]、Benigno[6]等報道應(yīng)用經(jīng)典方法最低檢測500個卵囊的水平相當,證實本方法特異、敏感、快速、簡便,具有良好的應(yīng)用性。
當然,經(jīng)典方法經(jīng)過不斷改進可以用于區(qū)分幾乎所有的隱孢子蟲種類,在種的鑒別和基因型分型方面仍然具有不可替代的優(yōu)勢。近來國外雖有Santin[7]等多重PCR方法鑒別微小隱孢子蟲、安氏隱孢子蟲、牛隱孢子蟲/賴氏隱孢子蟲的報道,但該方法檢測微小隱孢子蟲和安氏隱孢子蟲的目的條帶差異僅為50bp(微小隱孢子蟲為400bp,安氏隱孢子蟲目的條帶350bp)因此在電泳鑒定時對所用Maker、瓊脂糖及結(jié)果辨識區(qū)分能力上均有較高要求,且牛隱孢子蟲和賴氏隱孢子蟲被認為并不導(dǎo)致宿主產(chǎn)生疾病或影響其生理[8-9],臨床鑒定意義相對較低。本研究針對公共衛(wèi)生學(xué)意義和臨床危害較嚴重的微小隱孢子蟲和安氏隱孢子蟲,針對性和實用性較高。
應(yīng)用建立的多重PCR方法對采自廣西不同地區(qū)一些規(guī)?;膛黾吧B(yǎng)戶的1 613份牛糞樣進行牛隱孢子蟲流行病學(xué)調(diào)查并與巢式-PCR-RFLP方法做平行比較,兩種方法檢出的結(jié)果吻合。此次調(diào)查發(fā)現(xiàn)主要流行蟲種為安氏隱孢子蟲,微小隱孢子很少。究其原因主要是微小隱孢子蟲主要感染斷奶前乳牛,而此次調(diào)查主要為斷奶后乳牛,此時的優(yōu)勢蟲種應(yīng)為安氏隱孢子蟲,與Kvác等人[10]的研究情況相似,也進一步證實了隱孢子蟲種類與日齡緊密相關(guān)。多重PCR方法的臨床使用效果表明,本方法可用于隱孢子蟲的流行病學(xué)調(diào)查研究及臨床診斷。
[1]Xu QM,Li GQ,Ye YJ,et al.Development of RT-PCR-ELISA assay for detectingCryptosporidiumhominis[J].Chin J Zoonoses,2010,26(2):150-153.(in Chinese)徐前明,李國清,葉亦見,等.人隱孢子蟲RT-PCR-ELISA檢測方法的建立[J].中國人獸共患病學(xué)報,2010,26(2):150-153.
[2]Xiao LH,Morgan UM,Limor J,et al.Genetic diversity withinCryptosporidiumparvumand relatedCryptosporidiumspecies[J].Appl Environ Microbiol,1999,65(8):3386-3391.
[3]Spano F,Putignani L,Crisanti A,et al.Multilocus genotypic analysis ofCryptosporidiumparvumisolates from different hosts and geographical origins[J].J Clin Microbiol,1998,36(11):3255-3259.
[4]Li W,Wu K,Zhang XC,et al.Detection ofCryptosporidiumby nested PCR assay[J].Chin J Vet Sci,2010,30(6):779-783.(in Chinese)李巍,吳康,張西臣,等.應(yīng)用巢式PCR檢測隱孢子蟲[J].中國獸醫(yī)學(xué)報,2010,30(6):779-783.
[5]Xiang FY,Li GQ,Xiao SM,et al.Establishment of PCR detec-ting method ofCryptosporidiumandersoni[J].Chin J Prev Vet Med,2004,26(3):231-233.(in Chinese)向飛宇,李國清,肖淑敏,等.安氏隱孢子蟲PCR檢測方法的建立[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報,2004,26(3):231-233.
[6]Balatbat BA,Jordan GW,Tang YJ,et al.Detection ofCryptosporidiumparvum DNA in human feces by nested PCR[J].J Clin Microbiol,1996,34:1769-1772.
[7]Santin M,Zarlenga DS.A multiplex polymerase chain reaction assay to simultaneously distinguishCryptosporidiumspecies of veterinary and public health concern in cattle[J].Vet Parasitol,2009,166:32-37.DOI:10.1016/j.vetpar.2009.07.039
[8]Fayer R,Santin M,Xiao L,Cryptosporidiumbovisn.sp.(Apicomplexa:Cryptosporidiidae)in cattle(Bostaurus)[J].J Parasitol,2005,91:624-629.DOI:10.1645/GE-3435
[9]Fayer R,Santin M,Trout JM,Cryptosporidiumryanaen.sp.(Apicomplexa:Cryptosporidiidae)in cattle(Bostaurus)[J].Vet Parasitol,2008,156:191-198.DOI:10.1016/j.vetpar.2008.05.024
[10]Kvác M,Kouba M,Vitovec J.Age-related and housing-dependence ofCryptosporidiuminfection of calves from dairy and beef herds in South Bohemia,Czech Republic[J].Vet Parasitol,2006,137(3-4):202-209.DOI:10.1016/j.vetpar.2006.01.027