王剛 曹衛(wèi)剛
具有多向分化潛能的脂肪干細(xì)胞研究的新進(jìn)展
王剛 曹衛(wèi)剛
Friedenstein等[1-2]首先發(fā)現(xiàn)骨髓源性干細(xì)胞并肯定了其多向分化潛能,隨后又在人體其他組織中發(fā)現(xiàn)類似的細(xì)胞。Caplan[3]首先提出,間充質(zhì)干細(xì)胞是機(jī)體中一小部分具有增殖分化能力的細(xì)胞,可以向特定細(xì)胞系分化并構(gòu)建該特定組織。在胚胎期,該細(xì)胞可參與骨與軟骨等組織的構(gòu)建;在成體內(nèi),可參與組織的更新。與造血干細(xì)胞不同的是,該細(xì)胞具有向多個(gè)胚層細(xì)胞系分化的能力,在組織工程化組織構(gòu)建中可以作為種子細(xì)胞,骨髓中的間充質(zhì)干細(xì)胞就是目前應(yīng)用最多的種子細(xì)胞。然而,抽取骨髓會(huì)給患者帶來(lái)痛苦,獲得的細(xì)胞也不多。Zuk等[4]首先發(fā)現(xiàn)的脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞(Adipose-Derived Stem Cells,ADSC)能夠分化為脂肪、骨、軟骨、肌肉、血管內(nèi)皮、肝、胰、神經(jīng)等細(xì)胞系類型,具有易獲得、易擴(kuò)增、不易衰老等特點(diǎn),這使其在細(xì)胞或基因治療中有可能發(fā)揮重要作用。本文就ADSC的生物學(xué)特點(diǎn)與多向分化能力進(jìn)行綜述。
Traktuev等[5]發(fā)現(xiàn)ADSC主要集中于脂肪組織的血管周圍,與血管內(nèi)皮細(xì)胞一樣都可以分泌細(xì)胞因子,保持了彼此在結(jié)構(gòu)與功能上的穩(wěn)定。同時(shí),從脂肪抽吸物中分離ADSC,就混雜入其他的細(xì)胞,如血管平滑肌細(xì)胞、血管內(nèi)皮細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、血細(xì)胞、淋巴細(xì)胞和巨噬細(xì)胞等,經(jīng)過(guò)分離培養(yǎng)后,貼附在培養(yǎng)皿底部、形似成纖維細(xì)胞且經(jīng)多代培養(yǎng)不易衰老的細(xì)胞,即ADSC。但是,其中是否會(huì)摻雜隨血液而來(lái)的骨髓干細(xì)胞(Bone Marrow Stem Cells,BMSC),尚需進(jìn)一步探討[6]。
ADSC的獲取量和和分化能力受供者年齡、取材部位與手術(shù)方式的影響。年齡影響ADSC的增生能力,供者的年齡越小,細(xì)胞的增生能力越好;不同部位的ADSC凋亡的傾向不同,如腹部的ADSC不容易凋亡[7-8];脂肪抽吸手術(shù)不會(huì)影響ADSC的活性,只是吸管的粗細(xì)會(huì)影響脂肪顆粒的大小,進(jìn)而影響分離的難易程度,但在超聲輔助下抽脂獲取的ADSC增生能力降低[9]。
ADSC的免疫標(biāo)志隨著不斷傳代會(huì)發(fā)生變化。其中,間充質(zhì)細(xì)胞表面標(biāo)志CD13、CD29、CD44、CD63、CD73、CD90、CD166等起初表達(dá)低,但隨著不斷的傳代其表達(dá)顯著增加;而干細(xì)胞相關(guān)表面標(biāo)志CD34的表達(dá)一直很高。如果能用這些標(biāo)志對(duì)ADSC進(jìn)行有效分選,可以得到較純的ADSC,將有助于對(duì)ADSC的進(jìn)一步研究[10]。
A DSC也具有分泌功能,會(huì)分泌促進(jìn)血管生成的相關(guān)因子,如血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子、粒細(xì)胞集落刺激因子、間質(zhì)源性因子-1α、肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子,以促進(jìn)血管再生[11]。ADSC也能通過(guò)旁分泌作用于成纖維細(xì)胞,促進(jìn)其分泌Ⅰ、Ⅲ型膠原和纖連蛋白,促進(jìn)皮膚表皮細(xì)胞的成熟以利于創(chuàng)面愈合和瘢痕縮小[12];ADSC分泌的前列腺素E2具有抑制細(xì)胞免疫反應(yīng),降低ADSC免疫原性[13]。ADSC能夠適應(yīng)多種情況,在低糖低氧低谷氨酸等極端情況下仍能保持活性,但是分化能力降低[14]。
ADSC在一系列化學(xué)物質(zhì)與細(xì)胞因子的作用下可以分化為不同的細(xì)胞,包括脂肪、骨、軟骨、心肌、平滑肌、骨骼肌、肝、胰、血管內(nèi)皮、上皮組織及中樞神經(jīng)系統(tǒng)的細(xì)胞等,也可以用作基因治療的載體,甚至能應(yīng)用于血液病的治療,這顯示ADSC在再生醫(yī)學(xué)領(lǐng)域具有潛在的巨大的應(yīng)用前景。
2.1 向脂肪分化
ADSC在體外擴(kuò)增以后,加入誘導(dǎo)液(含異丁基甲基黃嘌呤、吲哚美辛、地塞米松等)后可向脂肪分化,2周左右,經(jīng)油紅染色與熒光染色后可觀察到分化成熟的脂肪細(xì)胞[15]。細(xì)胞在傳代過(guò)程中會(huì)發(fā)生變化,Wall等[16]通過(guò)測(cè)定細(xì)胞內(nèi)的脂蛋白脂肪酶和過(guò)氧化質(zhì)體增殖物激活受體γ2(P eroxisome proliferator-activated receptor gamma2,PPARgamma2)的基因轉(zhuǎn)錄的mRNA的量與細(xì)胞內(nèi)的脂肪滴,發(fā)現(xiàn)在10代以內(nèi),向脂肪分化的細(xì)胞還可以向骨分化,但10代以后細(xì)胞向脂肪分化的可能性減小,主要向骨分化。
Kakudo等[17]先用成纖維生長(zhǎng)因子2(Fibroblast growth factor 2,F(xiàn)GF2)預(yù)處理ADSC,然后向脂肪誘導(dǎo),發(fā)現(xiàn)參與脂肪生成的重要的轉(zhuǎn)錄因子PPARgamma2的mRNA表達(dá)上調(diào),ADSC向脂肪分化的能力增強(qiáng)。另有報(bào)道發(fā)現(xiàn),感染了人腺病毒Ad-36的ADSC可以向脂肪分化,即使在向骨細(xì)胞誘導(dǎo)的培養(yǎng)液里或在沒有誘導(dǎo)劑的情況下,隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng)和病毒劑量的增加,ADSC在脂肪分化時(shí)所產(chǎn)生的特異性的物質(zhì)(如PPARgamma2、脂肪酸結(jié)合蛋白)也增加,同時(shí)細(xì)胞內(nèi)脂肪滴增加,其向脂肪分化的能力顯著增強(qiáng)[18]。
2.2 向骨的分化
ADSC通常在地塞米松、甘油三磷酸與抗壞血酸磷酸酯的誘導(dǎo)下可以向骨細(xì)胞分化,經(jīng)茜素紅染色后可以觀察到分化形成的骨細(xì)胞。Hanson等[19]發(fā)現(xiàn),ADSC在培養(yǎng)中如果受到持續(xù)或間接的拉伸等物理刺激,其成骨能力顯著增強(qiáng)。Al-Salleeh等[20]用骨形成蛋白-1(Osteogenic protein-1,OP1)誘導(dǎo)ADSC分化,21 d后,發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)組形成了鈣化結(jié)節(jié)的能力且成骨能力強(qiáng)于對(duì)照組。也有研究認(rèn)為,骨形態(tài)發(fā)生蛋白2(Bone morphogenetic protein,BMP2)可以誘導(dǎo)ADSC向骨分化,但是,Grewal等[21]等發(fā)現(xiàn)把BMP2加到培養(yǎng)液后,向骨分化的關(guān)鍵基因的轉(zhuǎn)錄因子Cbfa-1減少,細(xì)胞表面的BMP2受體減少且細(xì)胞分泌胞外蛋白基質(zhì)的能力降低,同時(shí)用含有BMP2而不含有ADSC的PLGA材料同樣可以修復(fù)兔子的股骨缺損。BMP2是否可以誘導(dǎo)ADSC向骨細(xì)胞分化,是存在爭(zhēng)議的。還有學(xué)者發(fā)現(xiàn)成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子的配體與受體可以調(diào)節(jié)ADSC向骨分化的能力[22]。
脂肪的來(lái)源部位與供者性別對(duì)ADSC向骨細(xì)胞的分化能力也有影響。來(lái)源于男性的淺層脂肪的細(xì)胞向骨分化能力強(qiáng),表現(xiàn)為分化早、速度快、成功率高;女性的雌激素水平可影響ADSC的分化能力,雌激素水平高則ADSC向脂肪分化的能力強(qiáng)[23]。
2.3 向軟骨的分化
ADSC在含有高濃度的葡萄糖、骨形態(tài)發(fā)生蛋白6、轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β3、地塞米松、抗壞血酸磷酸酯、脯氨酸、丙酮酸、胰島素、牛血清蛋白、亞油酸等的培養(yǎng)基的誘導(dǎo)下,可以向軟骨分化。Jin等[24]用腺病毒介導(dǎo)的人轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β2的基因轉(zhuǎn)染ADSC,可以使細(xì)胞向軟骨分化。Xu等[25]發(fā)現(xiàn)具有立體結(jié)構(gòu)的種植材料,不僅有良好的力學(xué)性能,還有利于細(xì)胞間的信息交流,有利于細(xì)胞向軟骨的分化。
ADSC是否適合作為種子細(xì)胞來(lái)誘導(dǎo)軟骨分化,尚存爭(zhēng)議。Cui等[26]應(yīng)用ADSC-PLGA復(fù)合物來(lái)修復(fù)關(guān)節(jié)非負(fù)重部位的軟骨缺損獲得成功,證明了ADSC可以用于軟骨的修復(fù),但其生物學(xué)性能是否可以長(zhǎng)期滿足活體的功能尚有待于進(jìn)一步研究。
2.4 向內(nèi)皮的分化
在胚胎期,部分來(lái)自中胚層的細(xì)胞分化為內(nèi)皮祖細(xì)胞,這些細(xì)胞聚集成群,融合形成了胚胎期初級(jí)微血管叢。經(jīng)進(jìn)一步發(fā)育,胚胎的動(dòng)靜脈與微血管系統(tǒng)形成,血液循環(huán)系統(tǒng)建立起來(lái)。在成體內(nèi),隨血液流動(dòng)的內(nèi)皮祖細(xì)胞也參與了血管的生成,在血管構(gòu)建過(guò)程中起了重要作用。淋巴內(nèi)皮細(xì)胞起源于胚胎靜脈內(nèi)皮細(xì)胞,由靜脈內(nèi)皮細(xì)胞遷徙構(gòu)建淋巴囊,而后經(jīng)過(guò)出芽、分支、增生、分化與重建,形成淋巴管系統(tǒng)。在分子水平,由Dll4(Delta-like-4 ligand)或JAG1(Jagged1)引發(fā)的Notch信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)控制了血管內(nèi)皮的出芽增生,而轉(zhuǎn)錄因子FOXC1和FOXC2可以增加Notch途徑中Dll4配體的表達(dá),從而加快了Notch信號(hào)途徑,VEGFa也可以作用于Notch信號(hào)途徑;同時(shí),VEGFa作用于VEGFR2或Neuropilin-1,引發(fā)了編碼動(dòng)脈標(biāo)志性蛋白Ephrin-B2的基因表達(dá),配體Ephrin-B2與相應(yīng)因子結(jié)合后,調(diào)節(jié)內(nèi)皮細(xì)胞間的連接及細(xì)胞與基質(zhì)的黏附。在靜脈內(nèi)皮細(xì)胞中,由于存在核受體COUP-TFII,Notch信號(hào)途徑被抑制,但有利于靜脈內(nèi)皮特異性蛋白EphB4的表達(dá)。當(dāng)胚胎靜脈內(nèi)皮細(xì)胞內(nèi)PROX1(Prospero-related homeobox-1 transcription factor)開始表達(dá)時(shí),標(biāo)志著淋巴內(nèi)皮的誕生。此外,酪氨酸激酶和轉(zhuǎn)接蛋白SLP-76也可以用來(lái)區(qū)分血管與淋巴管內(nèi)皮。淋巴管囊形成過(guò)程中,VEGFR3在Neuropilin-2的協(xié)助下可以調(diào)節(jié)整個(gè)過(guò)程,而參與調(diào)節(jié)分化最后階段的因子還有Forkhead box轉(zhuǎn)錄因子、唾液酸糖蛋白Podoplanin、配體Ephrin-B2和Angiopoietin-2,這些因子的改變都會(huì)影響淋巴系統(tǒng)的功能[27]。
在由血管內(nèi)皮向淋巴內(nèi)皮的分化過(guò)程中,PROX1基因產(chǎn)物通過(guò)多種信號(hào)途徑的連鎖反應(yīng)在誘導(dǎo)分化中起主導(dǎo)作用。例如,它可以上調(diào)編碼Integrinα9的基因的表達(dá),而Integrin α9可以改變細(xì)胞形態(tài),抑制內(nèi)皮形成管壁,刺激細(xì)胞開始遷移;同時(shí)PROX1可以增強(qiáng)VEGFR3的表達(dá),此受體可以與VEGFC與VEGFD(淋巴內(nèi)皮的特異生長(zhǎng)因子)特異性的結(jié)合,可以使內(nèi)皮細(xì)胞趨向VEGFC和VEGFD,Integrinα9也具有類似的作用;PROX1可以抑制VEGFR2的表達(dá),該受體與VEGFA特異性結(jié)合,是與血管內(nèi)皮相關(guān)的[28]。
研究發(fā)現(xiàn)間充質(zhì)干細(xì)胞可以分化為內(nèi)皮細(xì)胞。Silva等[29]將提取的BMSC注入到狗的心肌缺血損傷部位,發(fā)現(xiàn)BMSC可以分化為血管內(nèi)皮及血管平滑肌細(xì)胞,分泌Ⅷ因子,并通過(guò)血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子等旁分泌機(jī)制促進(jìn)血管的再生,結(jié)果損傷部位血管密度增加,無(wú)免疫排斥,這使BMSC有可能應(yīng)用于心肌損傷的干細(xì)胞治療,提示缺血缺氧的環(huán)境有可能促進(jìn)BMSC分化為血管內(nèi)皮細(xì)胞。通過(guò)測(cè)定動(dòng)物模型左心室的射血分?jǐn)?shù),發(fā)現(xiàn)移植BMSC后心臟功能改善。Conrad等[30]證明了間充質(zhì)干細(xì)胞可以被誘導(dǎo)獲得淋巴內(nèi)皮細(xì)胞表型并在活體內(nèi)重建淋巴管。他們提取鼠的BMSC,用培養(yǎng)微血管內(nèi)皮細(xì)胞的培養(yǎng)液的上清液、淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞培養(yǎng)液的上清液與純化的血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子誘導(dǎo)分化,間充質(zhì)干細(xì)胞表現(xiàn)出淋巴內(nèi)皮細(xì)胞的表型及向VEGFC的趨化性。鼠淋巴水腫模型在移植誘導(dǎo)過(guò)的BMSC后,病灶區(qū)有淋巴管結(jié)構(gòu)的重建,水腫減輕。
ADSC與BMSC同樣具有向內(nèi)皮分化的能力。Cao等[31]從脂肪組織提取的細(xì)胞中分選到CD31、CD34陰性的細(xì)胞,并培養(yǎng)在含有VEGF與FGFb等生長(zhǎng)因子的培養(yǎng)液中,可以發(fā)現(xiàn)管樣結(jié)構(gòu)形成,內(nèi)皮細(xì)胞表型表達(dá)陽(yáng)性,具有典型的內(nèi)皮細(xì)胞吞噬功能。將其移植到裸鼠缺血損傷部位,2周后發(fā)現(xiàn)組織灌注改善,新生的血管內(nèi)皮均由ADSC分化組成。
2.5 向肌肉的分化
ADSC在白介素3、白介素6等細(xì)胞因子的誘導(dǎo)下可以向心肌細(xì)胞分化。將經(jīng)誘導(dǎo)的ADSC移植到心肌損傷部位,ADSC可以分化為心肌細(xì)胞,修復(fù)變薄的心肌,還可以通過(guò)旁分泌機(jī)制促進(jìn)損傷部位血管再生,改善心功能[32]。在特殊誘導(dǎo)劑的作用下,ADSC也可以向骨骼肌細(xì)胞分化,與骨骼肌細(xì)胞共培養(yǎng),可以增強(qiáng)它向骨骼肌的分化能力。但是,傳代以后的ADSC需要在與骨骼肌細(xì)胞的直接接觸下才能向骨骼肌分化[33]。Vieira等[34]將ADSC與杜興氏肌萎縮患者的處于分化期的肌細(xì)胞進(jìn)行共培養(yǎng),萎縮的肌細(xì)胞開始增生,通過(guò)免疫熒光發(fā)現(xiàn)ADSC可以與病變的肌肉細(xì)胞發(fā)生融合,從而恢復(fù)萎縮肌肉的功能。
2.6 向神經(jīng)的分化
ADSC經(jīng)誘導(dǎo)可向神經(jīng)細(xì)胞分化,形成Ⅲβ微管蛋白[35],分化后的細(xì)胞不僅具有類似于神經(jīng)細(xì)胞的形態(tài),還會(huì)產(chǎn)生GFAP、nestin、Neun等胞內(nèi)產(chǎn)物。Kang等[36]發(fā)現(xiàn)ADSC的向神經(jīng)分化的能力要優(yōu)于BMSC。Aluigi等[37]發(fā)現(xiàn)了細(xì)胞內(nèi)酶的變化,例如乙酰膽堿酯酶與膽堿乙酰轉(zhuǎn)移酶的增加,但目前尚無(wú)證據(jù)說(shuō)明ADSC可以被誘導(dǎo)成具有傳導(dǎo)神經(jīng)沖動(dòng)的神經(jīng)細(xì)胞。
2.7 向內(nèi)分泌腺的分化
Timper等[38]利用誘導(dǎo)分化因子Activin-A、Exendin-4、HGF與Pentagastrin等,使ADSC表達(dá)胰腺細(xì)胞的表型。在誘導(dǎo)過(guò)程中,ADSC可以表達(dá)胰腺細(xì)胞特有的轉(zhuǎn)錄因子Isl-1、Ipf-1和Ngn3等,最終這些細(xì)胞可以分泌胰島素與胰高血糖素。被誘導(dǎo)分化的細(xì)胞除了正常的能量代謝以外,還可以分解脂肪,合成與分泌某些激素。
2.8 向肝細(xì)胞的分化
ADSC在含有肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子及抑瘤素M的誘導(dǎo)下可向肝細(xì)胞分化,表達(dá)肝細(xì)胞表型,并且可以分泌白蛋白與甲胎蛋白,吸收消化低密度脂蛋白并分泌尿苷[39]。
2.9 造血微環(huán)境的創(chuàng)建
ADSC可以短期構(gòu)建造血組織環(huán)境,為血細(xì)胞的分化生長(zhǎng)提供重要因子,協(xié)助造血祖細(xì)胞的分化[40]。
ADSC具有多向分化潛能,易獲得、易擴(kuò)增,但是其分化機(jī)制尚不清楚,亟待進(jìn)一步研究。相信隨著對(duì)ADSC認(rèn)識(shí)的深入,ADSC將會(huì)在細(xì)胞治療和組織工程化組織構(gòu)建等再生醫(yī)學(xué)領(lǐng)域發(fā)揮積極作用,擁有廣闊的應(yīng)用前景。
[1]Friedenstein AJ,Chailakhjan RK,Lalykina KS,etal.The development of fibroblast colonies in monolayer cultures of guinea-pig bone marrow and spleen cells[J].Cell Tissue Kinet,1970,3:393-403.
[2]Friedenstein AJ,Lalykina KS.Thymus cells are inducible to osteogenesis[J].Eur J Immunol,1972,2:602-603.
[3]Caplan AI.Mesenchymal stem cells[J].J Orthop Res,1991,9: 641-650.
[4]Zuk PA,Zhu M,Ashjian P,etal.Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells[J].Mol Biol Cell,2002,13:4279-4295.
[5]Traktuev DO,Merfeld-Clauss S,Li J,et al.A population of multipotent CD34-positive adipose atromal cells share pericyte and mesenchymal surface markers,reside in a periendothelial location,and stabilize endothelial networks[J].Circ Res,2008, 102:77-85.
[6]Crossno JT Jr,Majka SM,Graxia T,et al.Rosiglitazone promotes development of a novel adipocyte population from bone marrowderived criculating progenitor cells[J].J Clin Invest,2006,116: 3220-3228.
[7]Schipper BM,Marra KG,Zhang W,et al.Regional anatomic and age effects on cell function of human adipose-derived stem cells [J].Ann Plast Surg,2008,60:538-544.
[8]Lei L,Liao WM,Sheng PY,et al.Biological character of human adipose-derived adult stem cells and influence of donor age on cellreplication in culture[J].Sci China C Life Sci,2007,50(3):320-328.
[9]Oedayrajsingh-Varma MJ,van Ham SM,Knippenberg M,et al. Adipose tissue-derived mesenchymal stem cell yield and growth characteristics are affected by the tissue-harvesting procedure[J]. Cytotherapy,2006,8:166–177.
[10]Mitchell JB,McIntosh K,Zvonic S,et al.Immunophenotype of human adipose-derived cells:temporalchanges in stromal-associated and stem cell-associated markers[J].Stem cells,2006,24:376-385.
[11]Meliga E,Stream BM,Duckers HJ,et al.Adipose-derived cells[J]. Cell Transplant,2007,16:963-970.
[12]Kim WS,Park BS,Sung JH,et al.Wound healing effect of adipose-derived stem cells:a critical role of secretory factors on human dermal fibroblasts[J].J Dermatol Sci,2007,48:15-24.
[13]Cui L,Yin S,Liu W,et al.Expanded adipose-derived stem cells suppress mixed lymphocyte reaction by secretion of prostaglandin E2[J].Tissue Eng,2007,13:1185-1195.
[14]Mischen BT,Follmar KE,Moyer KE,etal.Metabolic and functional characterization of human adipose-derived stem cells in tissue engineering[J].Plast Reconstr Surg,2008,122:725-738.
[15]Bunnell AB,Mette F,Christine G,et al.Adipose-derived stem cells:isolation,expansion and differentiation[J].Methods,2008, 45:115-120.
[16]Wall ME,Bernacki SH,Loboa EG,etal.Effects ofserial passaging on the adipogenic and osteogenic differentiation potentialofadiposederived human mesenchymal stem cells[J].Tissue Eng,2007,13: 1291-1298.
[17]Kakudo N,Shimotsuma A,Kusumoto K,et al.Fibroblast growth factor-2 stimulates adipogenic differentiation of human adiposederived stem cell[J].Biochem Biophys Res Commun,2007,359: 239-244.
[18]Pasarica M,Mashtalir N,McAllister EJ,et al.Adipogenic human adenovirus Ad-36 induces commitment,differentiation,and lipid accumulation in human adipose-derived stem cells[J].Stem Cells, 2008,26:969-978.
[19]Hanson AD,Marvel SW,Bernacki SH,et al.Osteogenic effects of rest inserted and continuous cyclic tensile strain on hASC lines with disparate osteodifferentiation capabilities[J].Ann Biomed Eng, 2009,37:955-965.
[20]Al-Salleeh F,Beatty MW,Reinhardt RA,et al.Human osteogenic protein-1 induces osteogenic differentiation ofadipose-derived stem cells harvested from mice[J].Arch Oral Biol,2008,53:928-936.
[21]Grewal NS,Gabbay JS,Ashley RK,etal.BMP-2 does notinfluence the osteogenic fate of human adipose-derived stem cells[J].Plast Reconstr Surg,2009,123:158-165.
[22]Quarto N,Longaker MT,et al.Differential expression of specific FGF ligands and receptor isoforms during osteogenic differentiation of mouse adipose-derived stem cells(mASCs)recapitulates the in vivo osteogenic pattern[J].Gene,2008,424:130-140.
[23]Aksu AE,Rubin JP,Jason R,et al.Role of gender and anatomicalregion on induction of osteogenic differentiation of human adiposederived stem cells[J].Ann Plast Surg,2008,60:306-322.
[24]Jin X,Sun Y,Zhang K,et al.Ectopic neocartilage formation from predifferentiated human adipose derived stem cells induced by adenoviral-mediated transfer of hTGF beta2[J].Biomaterials,2007, 28:2994-3003.
[25]Xu Y,Balloch G,Chiou M,etal.Analysis ofthe material properties of early chondrogenic differentiated adipose-derived stem cells using an in vitro three dimensional micromass culture system[J]. Biochem Biophys Res Commun,2007,359:311-316.
[26]Cui L,Wu Y,Cen L,et al.Repair of articular cartilage defect in non-weight bearing areas using adipose derived stem cells loaded polyglycolic acid mesh[J].Biomaterials,2009,30(14):2683-2693.
[27]Adams RH,Alitalo K.Molecular regulation of angiogenesis and lymphangiogenesis[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2007,8:464-478.
[28]Mishima K,Watabe T,Saito A,et al.Prox1 induces lymphatic endothelial differentiation via Integrin alpha9 and other signaling cascades[J].Mol Biol Cell Vol,2007,18:1421-1429.
[29]Silva GV,Litovsky S,Assad JA,et al.Mesenchymal stem cells differentiate into an endothelialphenotype,enhance vascular density, and improve heart function in a canine chronic ischemia model [J].Circulation,2005,111:150-156.
[30]Conrad C,Niess H,Huss R,et al.Multipotent mesenchymal stem cells acquire a lymphendothelial phenotype and enhance lymphatic regeneration in vivo[J].Circulation,2009,119:281-289.
[31]Cao Y,Sun Z,Liao L,et al.Human adipose tissue-derived stem cells differentiate into endothelial cells in vitro and improve postnatal neovascularization in vivo[J].Biochem Biophys Res Commun,2005,332:370-379.
[32]Miyahara Y,Nagaya N,Kataoka M,et al.Monolayered mesenchymal stem cells repair scarred myocardium after myocardial infarction [J].Nat Med,2006,12:459-465.
[33]Di Rocco G,Iachininoto MG,Tritarelli A,et al.Myogenic potential ofadipose-tissue-derived cells[J].JCell Sci,2006,119:2945-2952.
[34]Vieira NM,Brandalise V,Zucconi E,et al.Human multipotent adipose-derived stem cells restore dystrophin expression of Duchenne skeletal-muscle cells in vivo[J].Biol Cell,2008,100:231-241.
[35]Romanov YA,Darevskaya AN,Merzlikina NV,et al.Mesenchymal stem cells from human bone marrow and adipose tissue:Isolation, characterization,and differentiation potentialities[J].Bull Exp Biol Med,2005,140:138-143.
[36]Kang SK,Putnam LA,Ylostalo J,et al.Neurogenesis of Rhesus adipose stromal cells[J].J Cell Sci,2004,117:4289-4299.
[37]Aluigi MG,Coradeghini R,Guida C,et al.Pre-adipocytes commitmentto neurogenesis 1:Preliminary localization ofcholinergic molecules[J].Cell Biol Int,2009,33(5):594-601.
[38]Timper K,Seboek D,Eberhardt M,et al.Human adipose tissuederived mesenchymalstem cells differentiate into insulin,somatostatin, and glucagon expressing cells[J].Biochem Biophys Res Commun, 2006,341:1135-1140.
[39]Seo MJ,Suh SY,Bae YC,et al.Differentiation of human adipose stromal cells into hepatic ineage in vitro and in vivo[J]. Biochem Biophys Res Commun,2005,328:258-264.
[40]Corre J,Barreau C,Cousin B,et al.Human subcutaneous adipose cells support complete differentiation but not self-renewal of hematopoietic progenitors[J].J Cell Physiol,2006;208:282-288.
Q813.1+1
B
1673-0364(2009)03-0173-04
2008年12月8日;
2009年2月13日)
10.3969/j.issn.1673-0364.2009.06.017
200011上海市上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第九人民醫(yī)院整復(fù)外科。