翁晨虹,張亞洲,李佑杰,許燕燕,周秋白
(1.江西農(nóng)業(yè)大學(xué) 生物科學(xué)與工程學(xué)院,江西 南昌 330045;2.江西農(nóng)業(yè)大學(xué) 動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,江西 南昌 330045)
【研究意義】黃鱔(Monopterus albus),是我國特色淡水魚養(yǎng)殖品種。根據(jù)中國漁業(yè)年鑒的數(shù)據(jù)統(tǒng)計,2007—2018 年的12 年間,黃鱔養(yǎng)殖產(chǎn)量由19.619 萬t 增長至31.9 萬(t最高產(chǎn)量為38.613 7 萬t),在我國的經(jīng)濟(jì)水產(chǎn)養(yǎng)殖種類扮中演著越來越重要的角色。然而,黃鱔的高密度集約化養(yǎng)殖和高脂飼料的大量投喂導(dǎo)致其代謝紊亂和肝膽疾病頻發(fā),危害極大,給該養(yǎng)殖業(yè)造成重大的經(jīng)濟(jì)損失。瘦素(leptin,Lep)是一種蛋白質(zhì)類激素,最初是在小鼠被鑒定到的[1],后來在哺乳動物中得到了廣泛的研究。其在哺乳動物中主要由脂肪組織產(chǎn)生,在食欲、能量穩(wěn)態(tài)、繁殖、免疫反應(yīng)和骨形成等生理過程的調(diào)控中發(fā)揮重要作用[2]。大量報道顯示Lep/LepR 系統(tǒng)在魚類的攝食和能量穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)方面發(fā)揮重要功能。通過對黃鱔Lep/LepR系統(tǒng)基因的分子克隆及組織表達(dá)特性分析,為硬骨魚瘦素系統(tǒng)進(jìn)化提供新見解,給黃鱔生殖及營養(yǎng)代謝研究提供一定的基礎(chǔ)。【前人研究進(jìn)展】在硬骨魚類中最先是在河豚(Takifugu rubripes)中鑒定到了Lep的存在,并且主要在肝臟中表達(dá)[3]。隨后在其他很多硬骨魚中對Lep進(jìn)行的廣泛的研究,發(fā)現(xiàn)其與哺乳動物L(fēng)ep 的同源性很低,但是其預(yù)測的蛋白的三維結(jié)構(gòu)卻在哺乳動物和硬骨魚中是保守的[4-7]。到目前為止,所有研究顯示在的哺乳動物和兩棲動物都只表達(dá)了一種Lep 的同源物,然而在硬骨魚似乎主要有兩種Lep基因即LepA和LepB基因。目前已經(jīng)在多種魚類同時鑒定到LepA和LepB基因,包括斑馬魚(Danio rerio)[8]、石斑魚(Epinephelus coioides)[4]、鯉魚(Cyprinus carpio var.Jian)[9]、大西洋鮭魚(Salmo salar)[10]、虹鱒魚(Oncorhynchus mykiss)[11]及半滑舌鰨(Cynoglossus semilaevis)[12]等,而在河豚[3]、銀花鱸魚(Morone saxatilis)[13]及海馬(Hippocampus erectus)[5]卻只發(fā)現(xiàn)了一種LepA基因。Lep 的生理作用是由膜相關(guān)的瘦素受體(leptin receptor,LepR)介導(dǎo)的,在哺乳動物已知至少有6 種LepR 亞型,而只有長亞型具有細(xì)胞內(nèi)功能域。硬骨魚的LepR基因已經(jīng)在多種魚中被鑒定出來,值得注意的是,在大西洋鮭魚,歐洲鰻魚(Anguilla anguilla)和日本鰻魚(Anguilla japonica)同時鑒定到了兩個不同的LepR 類型(LepRa1/Lepra2或LepRa/LepRb),它們之間的功能差異還需要進(jìn)一步的研究?!颈狙芯壳腥朦c】目前,雖然已經(jīng)在哺乳動物及多種硬骨魚類中克隆到了Lep和LepR基因,但在合鰓目魚類中還未見其基因克隆于表達(dá)方面的研究報道?!緮M解決的關(guān)鍵問題】通過克隆分別獲得Lep和LepR基因ORF序列,并對其進(jìn)行生物信息學(xué)分析和組織分布表達(dá)分析,為探明黃鱔Lep/LepR系統(tǒng)在生殖及營養(yǎng)代謝的分子調(diào)控機(jī)制提供參考。
所有動物試驗均經(jīng)江西農(nóng)業(yè)大學(xué)動物保護(hù)與利用專業(yè)委員會批準(zhǔn)。實驗用魚為約1 冬齡的未成熟雌性黃鱔,取自江西農(nóng)業(yè)大學(xué)水產(chǎn)養(yǎng)殖基地。在室外水塘中網(wǎng)箱中飼養(yǎng),自然光照,每天18:00用商品化黃鱔飼料飽食投喂1次。
采用Vazyme 公司的RNA-easy Isolation Reagent 試劑盒提取總RNA,操作過程所用耗材均為無RNA酶耗材,其它用品均用DEPC 水處理。總RNA提取的具體步驟參考試劑盒操作手冊進(jìn)行。第一條cDNA模板鏈的合成參考HiScript Ⅲ1stStrand cDNA Synthesis Ki(tVazyme)逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書操作步驟進(jìn)行。
從NCBI 數(shù)據(jù)庫黃鱔基因組數(shù)據(jù)庫搜索包含完整開放閱讀框(ORF)的黃鱔Leptin和LeptinR基因cDNA序列(XM_020613040、XM_020602810),利用Primer Premier 5在ORF上下游分別設(shè)計2對基因特異性引物(表1),引物有生工生物工程(上海)股份有限公司合成。以黃鱔肝臟第一鏈cDNA 為模板,用高保真PCR 試劑盒2×Phanta Max Master Mix(Vazyme)進(jìn)行PCR 擴(kuò)增。擴(kuò)增程序如下:95 ℃預(yù)變形5 min;95 ℃,15 s,56 ℃,20 s,72 ℃,1 min,進(jìn)行35個循環(huán);72 ℃,5 min;4 ℃保存。PCR 產(chǎn)物分別用1.0%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳,利用膠回收/DNA 純化試劑盒FastPure Gel DNA Extraction Mini Ki(tVazyme)將目標(biāo)條帶回收、純化,再用TA 克隆連接試劑盒5min Universal Ligation Mix(Vazyme)將目標(biāo)片段連接到pUCm-T 載體(上海生工),然后轉(zhuǎn)化到感受態(tài)細(xì)胞DH5α中進(jìn)行藍(lán)白斑篩選。挑取白色菌落進(jìn)行菌液PCR鑒定,選取陽性克隆送生工生物工程(上海)股份有限公司測序。
使用ORF Finder 服務(wù)器(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/orffinder/)確定ORF 位置,并推導(dǎo)出氨基酸序列;利用SignalP5.0 Server(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)預(yù)測信號肽;使用TMHMM Server v.2.0(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/)預(yù)測跨膜域。使用Clustal Omega(http://www.ebi.ac.uk/Tools/msa/clustalo/)進(jìn)行序列比對,并手動修改。用ExPASy(http://web.expasy.org/compute_pi/)分析蛋白的分子質(zhì)量和等電點。二級和三級蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)由自動化蛋白質(zhì)建模服務(wù)器的ProModII(http://www.expasy.org/swissmod/SWISS-MODEL)進(jìn)行估算。氨基酸序列通過ClustalW2(https://www.ebi.ac.uk/Tools/msa/clustalw2/)進(jìn)行分析,并用MEGA6.0構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。
利用Applied Biosystems StepOneTM Real-Time PCR System 對黃鱔中Leptin和LeptinR在各個組織中的表達(dá)情況進(jìn)行實時熒光定量分析。熒光染料為ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix(Vazyme)。目的基因和內(nèi)參基因引物見表1。采用10μL 反應(yīng)體系:5μL ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix、上下游引物各0.5μL、1μL cDNA 模板、3μL ddH2O。序為:95 ℃預(yù)變性1 min;95 ℃10 s,58 ℃15 s,72 ℃20 s,40個循環(huán);熔解階段95 ℃15 s,65 ℃1 min、95 ℃15 s、0.5 ℃/20 s,每個樣品3個重復(fù),待反應(yīng)結(jié)束后進(jìn)行熒光值變化曲線和溶解曲線分析。利用2-ΔΔCT方法分析數(shù)據(jù)最終結(jié)果。
以黃鱔肝臟組織總cDNA 為模板,通過特異性引物(表1)進(jìn)行巢式PCR 的方法進(jìn)行目的片段的克隆。用第一輪PCR 特異性引物擴(kuò)增后得到多條彌散條帶(圖1A、C),將第一輪PCR 產(chǎn)物稀釋100 倍后,用第二輪PCR 特異性引物擴(kuò)增分別得到600 bp 左右(圖1B)和3 000 bp 左右(圖1D)的特異性條帶。將目的條帶回收后,連接到pUCm-T 載體上送生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行測序,結(jié)果顯示其序列和基因組預(yù)測的序列一致。
圖1 黃鱔肝臟巢式PCR特異性擴(kuò)增試驗結(jié)果Fig.1 Results of nested PCR specific amplification test in the Monopterus albus liver
表1 研究所用引物序列Tab.1 Sequence of primers in this research
分析結(jié)果如圖2A所示,Lep基因ORF長度為486 bp,編碼161個氨基酸。利用SignalP 5.0 Server預(yù)測Lep 前體由20 氨基酸信號肽和140 氨基酸的成熟肽組成。成熟Lep 蛋白的預(yù)測分子量為15.62 ku,等電點為5.57,此外,還含有兩個保守的特征半胱氨酸殘基參與二硫鍵的形成。三維結(jié)構(gòu)模型預(yù)測顯示黃鱔Lep蛋白由4個α-螺旋組成(圖3C),并且和人Lep蛋白有很高的三級結(jié)構(gòu)一致性(圖3A、B)。
結(jié)果如圖2B 所示,LepR基因ORF 長度為3 537 bp,編碼1 178 個氨基酸。深入分析發(fā)現(xiàn),LepR蛋白預(yù)測含有1 個38 氨基酸的信號肽、1 個775 氨基酸胞外片段、1 個23 氨基酸單跨膜結(jié)構(gòu)域和1 個342-氨基酸胞內(nèi)片段。黃鱔LepR 的Lep 結(jié)合域估計為第401~609 個氨基酸殘基。另外,黃鱔LepR 也包含脊椎動物L(fēng)epR 中一些重要的功能域,包括3 個纖連蛋白III 型結(jié)構(gòu)域、1 個免疫球蛋白結(jié)構(gòu)域。
圖2 黃鱔Lep(A)及LepR(B)的核苷酸序列及推斷氨基酸序列Fig.2 The nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of Monopterus albus Lep(A)and LepR(B)
不同物種的Lep 蛋白的多個氨基酸序列比對如圖3C 所示。在蛋白質(zhì)水平上,黃鱔Lep 蛋白與斜帶石斑魚(90.68%)、條紋鱸(80.75%)、尼羅羅非魚(79.50%)、半滑舌鰨(65.00%)、青斑河豚(52.50%)、和紅鰭東方鲀(52.35%)具有較高的同源性,然而與其他魚類中報道的Lep 蛋白序列同源性下降到相對較低的水平(16.33%~29.33%)(表2)。
表2 黃鱔Lep氨基酸序列與其他物種百分比一致性比較Tab.2 Percent amino acid sequence identities among leptin of Monopterus albus and other species
圖3 黃鱔Lep的分子特征Fig.3 Molecular characterization of Monopterus albus leptin
此外,黃鱔LepR 與大黃魚(78.55%)、斜帶石斑魚(78.08%)、大菱鲆(74.57%)、尼羅羅非魚(70.11%)序列同源性較高,其次是半滑舌鰨(61.87%)、紅鰭東方鲀(62.65%)、青鳉(55.52%)和大西洋鮭(50.23%),而與其他非魚類物種的同源性很低,都通常低30%(表3)。
表3 黃鱔LepR氨基酸序列與其他物種百分比一致性比較Tab.3 Percent amino acid sequence identities among leptin receptor of Monopterus albus and other species
Lep 和LepR 蛋白的系統(tǒng)發(fā)育樹被構(gòu)建了出來,其中包含克隆到的黃鱔Lep 和LepR 序列。系統(tǒng)發(fā)育上,黃鱔Lep 與硬骨魚棘鰭總目報道的Lep 親緣關(guān)系較近,與鮭形目和鯉形目的親緣關(guān)系較遠(yuǎn)(圖4A)。同樣,黃鱔LepR也屬于硬骨魚棘鰭總目LepR分支,與鮭形目和鯉形目分支較遠(yuǎn)(圖4 B)。
圖4 Lep(A)和LepR(B)在脊椎動物中的系統(tǒng)發(fā)育分析Fig.4 Phylogenetic analysis of Lep(A)and LepR(B)in vertebrates
通過熒光定量PCR 技術(shù)研究了黃鱔Lep和LepR基因在14種組織中的表達(dá)情況。結(jié)果顯示,Lep基因主要在下丘腦、大腦、胃、后腸、皮膚以及卵巢中表達(dá),并且在胃中表達(dá)量最高(圖5A),在其他所檢測的組織中表達(dá)量很低或不表達(dá)。Lep基因除腎臟和前腸以外的大部分組織均有明顯表達(dá),且在下丘腦、大腦、肝臟、胃以及卵巢中有著較高的表達(dá)量(圖5B)。
圖5 Lep(A)及LepR(B)mRNA在黃鱔各組織中的相對表達(dá)量Fig.5 Relative expression of Lep(A)and LepR(B)mRNAs in various tissues of Monopterus albus
從黃鱔的肝臟中分離了編碼Lep和LepR的ORF序列,這是第一次在合鰓目魚類中鑒定到Lep/LepR系統(tǒng)的存在。生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn)盡管與其他脊椎動物中Lep的氨基酸序列差異很大(表1),但從預(yù)測三維結(jié)構(gòu)來看,黃鱔Lep 與包括人類在內(nèi)的其他已確認(rèn)的Lep 之間的三級結(jié)構(gòu)具有很強(qiáng)的保守性(圖3A),包含4個a-螺旋結(jié)構(gòu)域,該序列和結(jié)構(gòu)特征與其他所有報道的魚類相一致[4-5,11,14-15]。說明這種保守的Lep晶體結(jié)構(gòu)可能對Lep/LepR結(jié)合親和性起到重要作用。有意思的是,目前已經(jīng)在多種魚類(如斑馬魚[8]、石斑魚[4]、鯉魚[9]、大西洋鮭魚[10]、虹鱒魚[11]及半滑舌鰨[12]等)同時鑒定到兩種Lep基因,分別命名為LepA和LepB,這可能起源于魚類進(jìn)化早期的基因組復(fù)制。但在黃鱔中卻只發(fā)現(xiàn)了一種Lep基因,這與河豚[3]、銀花鱸魚[13]及海馬[5]等魚類相似,并且分析發(fā)現(xiàn)黃鱔的Lep基因與魚類的LepA同源性更高,且在進(jìn)化上也屬于同一分支,因此推測黃鱔Lep基因可能屬于LepA亞型家族。
黃鱔與其他脊椎動物一樣都只發(fā)現(xiàn)單一的LepR基因,預(yù)測蛋白結(jié)構(gòu)分析顯示LepR為一種單次跨膜受體,包含一些重要的功能域包括3個纖連蛋白III型結(jié)構(gòu)域、1個免疫球蛋白結(jié)構(gòu)域以及Lep結(jié)合域,在于在半滑舌鰨[12]、日本鯖[6]等魚類中的研究一致。說明LepR 除介導(dǎo)Lep的生理功能外還可能發(fā)揮更加豐富的生理作用。有研究發(fā)現(xiàn)重組LepA 比LepB 對尼羅羅非魚的LepR 有更高的親和力[7],暗示LepR 在魚體內(nèi)主要介導(dǎo)LepA 的生理作用,而LepB基因的生理功能和意義仍然未知。另外,在大西洋鮭魚[22]和尼羅羅非魚[7]中報道了多個LepR剪接變異體的存在。然而,黃鱔中并沒有檢測到剪接變異體。
在脊椎動物中,LepmRNA的組織分布差異很大。哺乳動物的Lep主要在脂肪組織中合成[7]。與哺乳動物不同,LepA主要在河豚[3]、鯉魚[16]、青鳉[14]、虹鱒魚[17]、條紋鱸魚[13]、白云山鰷魚[18]、異齒裂腹魚[19]、大黃魚[20]及大口黑鱸[21]等魚的肝臟中表達(dá),這表明肝臟是Lep在這些物種中表達(dá)的主要部位,這也可能是肝臟富含脂質(zhì)的原因。在其他硬骨魚中,在石斑魚[4]、大西洋鮭魚[22]、海馬[5]和半滑舌鰨[12]的大腦中可以檢測到相當(dāng)程度的LepAmRNA,而在外周組織中,LepAmRNA主要在卵巢中表達(dá)[4-5,12,22]。Lepb的表達(dá)廣度要遠(yuǎn)低于LepA,僅在腦、眼睛及卵巢有較高量的表達(dá)[4-5,14]。同樣,在黃鱔的腦和卵巢中也觀察到高水平的LepmRNA 表達(dá),這暗示Lep可能和其他魚類一樣在生殖過程中起重要生理作用。出乎意料的是LepmRNA的最高表達(dá)量出現(xiàn)在黃鱔的胃中,這可能和黃鱔獨(dú)特的攝食習(xí)性有關(guān)。另外,在之前的報道中LepRmRNA 在大西洋鮭魚[22]、歐洲鰻魚[23]、歐洲鱸魚[24]和海馬[5]以及半滑舌鰨[12]的卵巢中表達(dá)最為豐富。在黃鱔中也觀察到了相似的情況,卵巢中的LepR表達(dá)豐度很高僅次于下丘腦。
綜上所述Lep和LepR在魚卵巢中都有表達(dá)量較高,而在黃鱔中的表達(dá)模式與其他報道的魚類高度相似,提示Lep/LepR系統(tǒng)可能在黃鱔的生殖及營養(yǎng)代謝方面發(fā)揮重要作用。到目前為止,對魚類Lep 的研究多集中在能量代謝方面,而關(guān)于魚類Lep 生殖功能的報道有限[25]。在黃鱔中對Lep/lepr系統(tǒng)的研究結(jié)果,將有助于魚類瘦素系統(tǒng)在生殖及營養(yǎng)代謝功能方面作用的探索。
致謝:江西省教育廳科技計劃項目(GJJ200449)同時對本研究給予了資助,謹(jǐn)致謝意!