阮成群,肖永杰,李記天△
骨肉瘤(osteosarcoma,OS)是兒童和青少年最常見的原發(fā)惡性骨腫瘤,其發(fā)病率逐年升高[1]。目前常采用手術(shù)切除結(jié)合化療來(lái)控制腫瘤轉(zhuǎn)移,其中局部OS患者的5年生存率約為70%,而轉(zhuǎn)移或復(fù)發(fā)性患者的總體生存時(shí)間不足12個(gè)月[2]。所以,尋求新的治療策略及治療靶點(diǎn)至關(guān)重要。長(zhǎng)鏈非編碼RNA(long noncoding RNA,LncRNA)是一類新發(fā)現(xiàn)的非編碼RNA分子,可作為癌基因或抑癌因子發(fā)揮作用,從而調(diào)節(jié)癌細(xì)胞的生長(zhǎng)增殖等行為。其中Linc00891參與調(diào)控多種細(xì)胞因子-細(xì)胞因子受體相互作用的信號(hào)通路[3]。LncRNA和微小RNA(miRNA)可相互調(diào)控,影響腫瘤的發(fā)生發(fā)展[4]。miR-27a-3p在OS細(xì)胞系中的表達(dá)顯著高于人正常成骨細(xì)胞[5],且miR-27a-3p能夠通過(guò)激活Wnt/β-連環(huán)素(β-catenin)通路促進(jìn)結(jié)直腸癌的進(jìn)展[6]。但是,Linc00891能否通過(guò)競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合并抑制miR-27a-3p在OS中發(fā)揮抑癌作用,目前相關(guān)研究較少。本研究通過(guò)檢測(cè)Linc00891在不同OS細(xì)胞系及人成骨細(xì)胞系中的表達(dá)情況并分析過(guò)表達(dá)Linc00891對(duì)OS細(xì)胞系增殖、克隆形成、遷移、上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化的影響,同時(shí)探討Linc00891和miR-27a-3p的結(jié)合位點(diǎn)以及過(guò)表達(dá)Linc00891和上調(diào)miR-27a-3p對(duì)Wnt/β-catenin信號(hào)通路的影響,以期為OS的治療提供參考。
1.1 材料 人成骨細(xì)胞系hFOB 1.19(目錄號(hào):GNHu14)和OS細(xì)胞系U-2 OS(目錄號(hào):SCSP-5030)、Saos-2(目錄號(hào):TCHu114)、MG-63(目錄號(hào):TCHu124)、SW 1353(目錄號(hào):TCHu128)均購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院典型培養(yǎng)物保藏委員會(huì)細(xì)胞庫(kù)。DMEM/F12培養(yǎng)基和10%胎牛血清(FBS)均購(gòu)自美國(guó)Giboc公司;CCK-8檢測(cè)試劑盒購(gòu)自北京索萊寶生物科技有限公司;RNA提取試劑盒購(gòu)自北京天根生化科技有限公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒購(gòu)自美國(guó)Genecopoeia公司;實(shí)時(shí)熒光定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(qPCR)檢測(cè)試劑盒、Linc00891過(guò)表達(dá)陰性對(duì)照載體(pcDNA-NC)和Linc00891過(guò)表達(dá)載體(pcDNALinc00891)以及Linc00891、β-actin引物均購(gòu)自生工生物工程(上海)股份有限公司;miR-27a-3p模擬物(miR-27a-3p mimic)購(gòu)自上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司;Lipofectamine 3000轉(zhuǎn)染試劑盒購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司;PVDF膜購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;ECL顯色試劑盒和BCA蛋白定量試劑盒均購(gòu)自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;鈣黏著蛋白E(E-cadherin,E-cad)、鈣黏著蛋白N(N-cad)、GAPDH小鼠單克隆抗體和辣根過(guò)氧化物酶(HRP)標(biāo)記山羊抗小鼠IgG二抗均購(gòu)自英國(guó)Abcam公司;RNA pulldown試劑盒購(gòu)自廣州賽誠(chéng)生物科技有限公司;鏈霉親和素磁珠購(gòu)自美國(guó)CST公司;TCF/LEF報(bào)告試劑盒購(gòu)自北京啟為益成科技有限公司;尼康SMZ745光學(xué)顯微鏡購(gòu)自上海普赫生物科技有限公司;TL988 qPCR儀購(gòu)自西安天隆科技有限公司;全能型凝膠成像分析系統(tǒng)ChemiDoc-MP購(gòu)自山東三瑞科技有限公司。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) hFOB 1.19、U-2 OS、Saos-2、MG-63、SW 1353細(xì)胞系均使用含10%FBS的DMEM/F12培養(yǎng)基并置于37℃、5%CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每隔2~3 d傳代1次。
1.2.2 qPCR檢測(cè)不同OS細(xì)胞系和人成骨細(xì)胞系中Linc00891的表達(dá)水平 使用RNA提取試劑盒提取各種細(xì)胞總RNA,使用反轉(zhuǎn)錄試劑盒得到cDNA并置于-20℃冰箱中保存待用。反應(yīng)程序:94℃10 min;94℃30 s,62℃30 s,62℃30 s,40個(gè)循環(huán)。反應(yīng)體系參照qPCR試劑盒說(shuō)明書。以β-actin為內(nèi)參,采用2-ΔΔCt計(jì)算不同細(xì)胞中Linc00891的相對(duì)表達(dá)水平。引物序列見表1。將Linc00891表達(dá)水平較低的2細(xì)胞系進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
Tab.1 qPCR primer sequences表1 qPCR引物序列
1.2.3 細(xì)胞轉(zhuǎn)染及分組 將1.2.2實(shí)驗(yàn)篩選的細(xì)胞接種于含10%FBS的DMEM培養(yǎng)基中,置于37℃、5%CO2的恒溫培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng),待細(xì)胞長(zhǎng)滿培養(yǎng)基后進(jìn)行傳代。將Saos-2細(xì)胞、MG-63細(xì)胞分組為:blank組(不轉(zhuǎn)染)、NC組(轉(zhuǎn)染pcDNA-NC)和OE組(轉(zhuǎn)染pcDNA-Linc00891)。當(dāng)細(xì)胞生長(zhǎng)至50%~60%時(shí),使用Lipfectamine 3000轉(zhuǎn)染試劑盒將pcDNA-NC、pcDNA-Linc00891分別轉(zhuǎn)染至Saos-2和MG-63細(xì)胞。轉(zhuǎn)染24 h后進(jìn)行各指標(biāo)檢測(cè)。
1.2.4 CCK-8檢測(cè)細(xì)胞增殖能力 分別調(diào)整各組細(xì)胞濃度至3×104個(gè)/mL并取100μL細(xì)胞懸液接種于96孔板,于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2、24、48、72 h后分別加入CCK-8溶液10μL,繼續(xù)培養(yǎng)2 h,在酶標(biāo)儀上測(cè)定450 nm波長(zhǎng)的光密度(OD)值。
1.2.5 平板克隆法檢測(cè)細(xì)胞克隆形成能力 收集培養(yǎng)24 h后的各組細(xì)胞,胰蛋白酶消化后,配制成濃度為1×106個(gè)/L細(xì)胞懸液,取6孔板,每孔接種1 mL后,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)14 d,至形成肉眼可見的克隆時(shí)(克隆細(xì)胞數(shù)100左右),終止培養(yǎng);棄去培養(yǎng)基,PBS清洗2次后,每孔加入1 mL甲醇固定15 min,以流水緩慢沖洗,每孔再加入1 mL吉姆薩染液染色30 min。流水緩慢沖洗,于通風(fēng)櫥干燥,顯微鏡下計(jì)數(shù),計(jì)算細(xì)胞克隆形成相對(duì)水平。
1.2.6 Transwell小室檢測(cè)細(xì)胞遷移能力 取各組細(xì)胞,用不含F(xiàn)BS的DMEM/F12培養(yǎng)基,制成細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞濃度為1×108個(gè)/mL,取100μL細(xì)胞懸液接種到Transwell小室上室,取600μL含20%FBS的DMEM/F12培養(yǎng)基至下室,37℃培養(yǎng)24 h后,下室用4%多聚甲醛室溫固定20 min,PBS洗滌3次,甲醇固定15 min,0.1%結(jié)晶紫室溫染色40 min。沖洗多余染液,晾干后光學(xué)顯微鏡下觀察并計(jì)數(shù)穿過(guò)微孔膜的細(xì)胞,計(jì)算細(xì)胞遷移相對(duì)水平。
1.2.7 Western blot檢測(cè)E-cad、N-cad蛋白表達(dá) 各組細(xì)胞采用蛋白抽提試劑盒提取總蛋白,BCA蛋白定量試劑盒對(duì)蛋白進(jìn)行定量。依次進(jìn)行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳、轉(zhuǎn)PVDF膜,脫脂奶粉封閉,1∶1 000濃度稀釋后的E-cad、N-cad和GAPDH小鼠單克隆抗體4℃過(guò)夜孵育、TBST緩沖液洗膜,HRP標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG二抗(1∶2 000)中室溫孵育2 h,洗膜,用ECL試劑盒顯色,全能型凝膠成像分析系統(tǒng)拍照,以GAPDH為內(nèi)參,分析各組蛋白表達(dá)水平。
1.2.8 RNA pulldown實(shí)驗(yàn)檢測(cè)Saos-2細(xì)胞中Linc00891和miR-27a-3p的結(jié)合關(guān)系 取3×106個(gè)細(xì)胞接種在10 cm培養(yǎng)皿上過(guò)夜培養(yǎng),以終濃度100 nmol/L生物素標(biāo)記的miR-27a-3p mimic(探針由Ribobio定制)轉(zhuǎn)染Saos-2細(xì)胞,對(duì)照組采用生物素標(biāo)記的NC序列進(jìn)行轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染48 h后收集細(xì)胞,在冰上加細(xì)胞裂解液,于4℃下旋轉(zhuǎn)孵育4 h;將50μL鏈霉親和素磁珠加入上述細(xì)胞裂解液后,在4℃下旋轉(zhuǎn)平衡30 min,離心并清洗收集磁珠,以Trizol法分別提取磁珠pulldown下的總RNA,反轉(zhuǎn)錄為cDNA,以cDNA為模板,進(jìn)行PCR反應(yīng),總體系20μL包括10μL 2×EasyPfu PCR SuperMix、上下游引物各1μL,cDNA 1μL、ddH2O 7μL,反應(yīng)程序:95℃5 min;94℃20 s,58℃20 s,72℃2 min,35個(gè)循環(huán),檢測(cè)其中Linc00891水平,以GAPDH作為內(nèi)參(上游引物5'-AAGTTCAACGGCACAGTCA-3';下 游 引 物5'-GTCATA?AGTCCCTCCACGAT-3')。以未經(jīng)RNA pulldown的50μL細(xì)胞裂解液作為input對(duì)照。
1.2.9 TCF/LEF報(bào)告試劑盒檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)Wnt/β-catenin通路激活情況 TCF/LEF報(bào)告載體上載有由TATA box和TCF/LEF響應(yīng)元件所調(diào)控的綠色熒光蛋白(GFP)基因,可通過(guò)檢測(cè)GFP蛋白表達(dá)水平間接反映β-catenin的轉(zhuǎn)錄活性,進(jìn)而反映Wnt/β-catenin通路激活情況。野生型或Linc00891過(guò)表達(dá)細(xì)胞以2×104個(gè)細(xì)胞/孔的密度接種于96孔板,以反向轉(zhuǎn)染方法將50 ng TCF/LEF報(bào)告載體和50 ng miR-27a-3p mimic以Lipofectamine 3000進(jìn)行共轉(zhuǎn)染,對(duì)照組僅轉(zhuǎn)染報(bào)告載體。轉(zhuǎn)染16 h后更換新鮮培養(yǎng)液體,轉(zhuǎn)染24 h后細(xì)胞以50 mmo/L氯化鋰處理,并以酶標(biāo)儀在488/515 nm ex/em下檢測(cè)各孔熒光強(qiáng)度。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用Graphpad Prism(Ver.8)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。除標(biāo)注外,各實(shí)驗(yàn)均設(shè)置6個(gè)重復(fù)(3個(gè)生物學(xué)重復(fù)×2個(gè)技術(shù)重復(fù)),并將所有數(shù)據(jù)納入統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。各組數(shù)據(jù)均以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。2組數(shù)據(jù)間采用t檢驗(yàn)進(jìn)行比較,多組數(shù)據(jù)間采用單因素方差分析進(jìn)行比較,組間多重比較采用SNK-q檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 Linc00891表達(dá)水平 qPCR結(jié)果表明,hFOB 1.19、U-2 OS、Saos-2、MG-63和SW 1353細(xì)胞系中Linc00891的相對(duì)表達(dá)水平分別為1.00±0.11、0.62±0.08、0.53±0.11、0.43±0.09和0.55±0.11。各OS細(xì)胞系Linc00891表達(dá)水平均明顯低于正常成骨細(xì)胞hFOB 1.19細(xì)胞系(n=6,F(xiàn)=28.541,P<0.05)。其中,Saos-2和MG-63中Linc00891相對(duì)表達(dá)水平較低,因此選擇Saos-2和MG-63 OS細(xì)胞系進(jìn)行后續(xù)研究。
2.2 CCK-8實(shí)驗(yàn)檢測(cè)過(guò)表達(dá)Linc00891對(duì)OS細(xì)胞增殖的影響 結(jié)果顯示,Saos-2細(xì)胞在48 h和72 h時(shí),與NC組和blank組比較,OE組細(xì)胞增殖能力顯著降低(P<0.05);MG-63細(xì)胞在24 h、48 h和72 h時(shí),與NC組和blank組比較,OE組細(xì)胞增殖能力顯著降低(P<0.05),見表2。
Tab.2 Proliferation of Saos-2 and MG-63 cells at different time points in the three groups表2 各組Saos-2、MG-63細(xì)胞不同時(shí)間點(diǎn)增殖能力(n=6,OD450±s)
Tab.2 Proliferation of Saos-2 and MG-63 cells at different time points in the three groups表2 各組Saos-2、MG-63細(xì)胞不同時(shí)間點(diǎn)增殖能力(n=6,OD450±s)
*P<0.05,**P<0.01;a與blank組比較,b與NC組比較,P<0.05
?
2.3 平板克隆實(shí)驗(yàn)檢測(cè)過(guò)表達(dá)Linc00891對(duì)OS細(xì)胞克隆形成能力的影響 結(jié)果顯示,與NC組和blank組比較,OE組Saos-2和MG-63細(xì)胞克隆形成能力顯著降低(P<0.05),見表3、圖1。
Tab.3 Comparison of colony forming ability of Saos-2 and MG-63 cells between the three groups表3 各組Saos-2和MG-63細(xì)胞克隆形成能力比較(n=6,±s)
Tab.3 Comparison of colony forming ability of Saos-2 and MG-63 cells between the three groups表3 各組Saos-2和MG-63細(xì)胞克隆形成能力比較(n=6,±s)
**P<0.01;a與blank組比較,b與NC組比較,P<0.05
?
2.4 Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)過(guò)表達(dá)Linc00891對(duì)OS細(xì)胞遷移能力的影響 結(jié)果顯示,與NC組和blank組比較,OE組Saos-2和MG-63細(xì)胞遷移能力顯著降低(P<0.05),見圖2、表4。
Fig.1 Clone formation of Saos-2 and MG-63 cells in each group圖1 各組Saos-2和MG-63細(xì)胞克隆形成情況
Fig.2 Migration levels of Saos-2 and MG-63 cells in each group(crystal violet stain,×200)圖2 各組Saos-2和MG-63細(xì)胞遷移水平(結(jié)晶紫染色,×200)
Tab.4 Comparison of migration ability of Saos-2 and MG-63 cells between the three groups表4 各組Saos-2和MG-63細(xì)胞遷移能力比較(n=6,±s)
Tab.4 Comparison of migration ability of Saos-2 and MG-63 cells between the three groups表4 各組Saos-2和MG-63細(xì)胞遷移能力比較(n=6,±s)
**P<0.01;a與blank組比較,b與NC組比較,P<0.05
?
2.5 各組細(xì)胞上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化相關(guān)蛋白表達(dá)水平比較 Western blot實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,與NC組和blank組比較,OE組Saos-2和MG-63細(xì)胞N-cad/E-cad比值顯著降低(P<0.05),見圖3、表5。
2.6 OS細(xì)胞Saos-2中Linc00891和miR-27a-3p的結(jié)合關(guān)系 RNA pulldown結(jié)果顯示,input-bio-N、pulldown-bio-NC、input-bio-miR-27a-3p和pull?down-bio-miR-27a-3p組中Linc00891相對(duì)值分別為1.00±0.10、0.01±0.00、1.00±0.12和0.92±0.09。與pulldown-bio-NC組比較,其余各組Linc00891相對(duì)值顯著升高(n=6,F(xiàn)=172.375,P<0.05)。見圖4。
Fig.3 The N-cad and E-cad protein expression levels in Saos-2 and MG-63 cells in each group圖3 各組Saos-2、MG-63細(xì)胞N-cad、E-cad蛋白表達(dá)水平
Tab.5 N-cad/E-cad ratio in Saos-2 and MG-63 cells ineach group表5 各組Saos-2和MG-63細(xì)胞N-cad/E-cad比值(n=6,±s)
Tab.5 N-cad/E-cad ratio in Saos-2 and MG-63 cells ineach group表5 各組Saos-2和MG-63細(xì)胞N-cad/E-cad比值(n=6,±s)
**P<0.01;a與blank組比較,P<0.05,b與NC組比較,P<0.05
?
Fig.4 Binding relationship between Linc00891 and miR-27a-3p圖4 Linc00891和miR-27a-3p的結(jié)合關(guān)系
2.7 過(guò)表達(dá)Linc00891和上調(diào)miR-27a-3p對(duì)Wnt/β-catenin信號(hào)通路的影響 TCF/LEF報(bào)告試劑盒檢測(cè)結(jié)果顯示,與野生型細(xì)胞中GFP熒光強(qiáng)度(1.00±0.10)比較,過(guò)表達(dá)Linc00891細(xì)胞中GFP熒光強(qiáng)度(0.40±0.04)顯著降低(n=6,t=13.646,P<0.05),轉(zhuǎn)染miR-27a-3p mimic細(xì)胞中GFP熒光強(qiáng)度(3.87±0.34)顯著升高(n=6,t=19.836,P<0.05);與過(guò)表達(dá)Linc00891細(xì)胞中GFP熒光強(qiáng)度比較,過(guò)表達(dá)Linc00891同時(shí)轉(zhuǎn)染miR-27a-3p mimic細(xì)胞中GFP熒光強(qiáng)度(2.01±0.37)顯著升高(n=6,t=10.597,P<0.05)。見圖5。
Fig.5 Effects of overexpression of Linc00891 and up regulation of miR-27a-3p on Wnt/β-catenin signaling pathway圖5 過(guò)表達(dá)Linc00891和上調(diào)miR-27a-3p對(duì)Wnt/β-catenin信號(hào)通路的影響
OS的發(fā)病率最高年齡段為15~19歲,且具有高轉(zhuǎn)移率這一顯著特點(diǎn)[7]。雖然近年來(lái)關(guān)于OS的基礎(chǔ)和臨床研究均取得了一定的進(jìn)展,但相關(guān)分子生物學(xué)機(jī)制尚不清楚,因此缺乏有效的特異性生物靶向治療藥物。探討OS細(xì)胞潛在的分子機(jī)制是研究的熱點(diǎn)。
LncRNA是多種生物過(guò)程的重要調(diào)控因子[8],其中LncRNA-miRNA-mRNA軸在OS的發(fā)展中起關(guān)鍵作用,可為癌癥的診斷和治療提供新的途徑[9]。本研究發(fā)現(xiàn)Linc00891在OS細(xì)胞中的表達(dá)水平顯著低于正常骨細(xì)胞,且過(guò)表達(dá)Linc00891可顯著抑制OS細(xì)胞在體外的增殖、克隆形成、遷移能力以及降低N-cad/E-cad比值,進(jìn)而抑制細(xì)胞上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化,提示其可能在OS中發(fā)揮抑癌作用。袁建敏等[10]研究發(fā)現(xiàn)化療藥物順鉑可顯著抑制OS細(xì)胞U-2 OS增殖,促進(jìn)其凋亡,然而OS易對(duì)鉑類藥物產(chǎn)生耐藥性,單一鉑類用藥會(huì)促進(jìn)耐藥細(xì)胞的生長(zhǎng),因此順鉑、阿霉素、甲氨蝶呤聯(lián)合用藥或阿霉素和甲氨蝶呤聯(lián)合用藥是OS治療中常見的化療方案。梁宏彬等[11]研究發(fā)現(xiàn)激活Wnt/β-catenin通路可顯著提高卵巢癌細(xì)胞對(duì)鉑類組合藥物化療耐藥性,與腫瘤進(jìn)展和患者的不良預(yù)后具有顯著相關(guān)性。本研究發(fā)現(xiàn)過(guò)表達(dá)Linc00891可顯著抑制Wnt/β-catenin信號(hào)通路,提示Linc00891可能通過(guò)抑制Wnt/β-catenin通路,降低OS細(xì)胞對(duì)鉑類組合藥物的化療耐藥性。此外,Wnt/β-catenin信號(hào)通路的激活對(duì)OS的進(jìn)展起到關(guān)鍵作用:Wnt信號(hào)的異常激活可促進(jìn)OS細(xì)胞的生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)移[12],抑制Wnt/β-catenin信號(hào)通路可廣泛抑制OS細(xì)胞的生長(zhǎng),并誘導(dǎo)凋亡[13]。
LncRNA參與腫瘤細(xì)胞中諸生物學(xué)過(guò)程的最主要機(jī)制是競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合miRNA并抑制后者的功能[14]。本研究前期通過(guò)ENCORI網(wǎng)站檢索了有AGO CLIPseq數(shù)據(jù)支持的可能與Linc00891發(fā)生相互作用的miRNA,發(fā)現(xiàn)Linc00891和miR-27a-3p可發(fā)生相互作用,并且通過(guò)進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)Linc00891和已知對(duì)OS進(jìn)展有明確促進(jìn)作用的miR-27a-3p存在直接的相互作用,且miR-27a-3p mimic轉(zhuǎn)染可克服過(guò)表達(dá)Linc00891對(duì)OS細(xì)胞中Wnt/β-catenin通路的抑制作用,提示Linc00891可能抑制miR-27a-3p在OS細(xì)胞中的功能。miR-27a-3p可在卵巢癌[15]、乳腺癌[16]、膠質(zhì)瘤[17]和胰腺導(dǎo)管腺癌[18]中提高Wnt/β-catenin通路的激活水平,這一點(diǎn)也在本研究的OS細(xì)胞中得到證實(shí),因此筆者推斷Linc00891可能是通過(guò)競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合miR-27a-3p并抑制其對(duì)Wnt/β-catenin通路的激活作用。除此之外,miR-27b-3p在乳腺癌細(xì)胞中可通過(guò)CBLB/GRB2途徑促進(jìn)癌細(xì)胞的增殖并提高多藥耐藥性[19],在結(jié)直腸癌細(xì)胞中通過(guò)靶向HOXA10促進(jìn)癌細(xì)胞的遷移和侵襲[20]。Linc00891是否對(duì)上述途徑發(fā)揮類似的作用以及Linc00891與OS的臨床相關(guān)性值得進(jìn)一步研究,其在其他腫瘤中可能發(fā)揮的作用亦值得探索。本研究未對(duì)Linc00891對(duì)OS的抑癌作用進(jìn)行體內(nèi)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,也未驗(yàn)證Linc00891是否通過(guò)其他途徑發(fā)揮抑癌作用。
綜上,本研究揭示了Linc00891在OS中的抑癌作用,而其發(fā)揮抑癌作用的機(jī)制可能是通過(guò)競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合miR-27a-3p并抑制其對(duì)Wnt/β-catenin通路的激活,進(jìn)而抑制癌細(xì)胞增殖、遷移和上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化。