袁 蕓,張洪銘,黃 慧
上海交通大學醫(yī)學院附屬第九人民醫(yī)院·口腔醫(yī)學院口腔修復科,國家口腔疾病臨床醫(yī)學研究中心,上海市口腔醫(yī)學重點實驗室,上海市口腔醫(yī)學研究所,上海200011
牙周炎是發(fā)生于牙周支持組織的炎癥反應,常伴發(fā)結(jié)合上皮的退縮、附著喪失、牙周袋形成,以及牙槽骨吸收。隨著病變逐漸向根方發(fā)展,患牙可出現(xiàn)松動移位、咀嚼困難等臨床表現(xiàn),最終導致牙齒缺失的嚴重后果[1]。流行病學調(diào)查[2]顯示,牙周炎在成年人中的患病率高達90%,是我國成年人失牙的首要原因。
牙周致病菌主要包括牙齦卟啉單胞菌、福塞坦菌、伴放線聚集桿菌等[3-4]。這些病原菌及其毒素在入侵牙周組織時,可激活局部免疫環(huán)境中的固有免疫應答和特異性免疫應答。其中,輔助性T(helper T, Th)細胞介導的細胞免疫應答是特異性免疫應答的重要組成部分。根據(jù)Th 細胞在炎性疾病中的作用,可將其分為Th1、Th2、Th17 及調(diào)節(jié)性T(T-regulatory, Treg) 4 種細胞亞型[5]。這4 種細胞通過分泌不同的細胞因子來介導牙周炎局部的組織損傷。Th1 細胞主要分泌細胞因子干擾素-γ(interferon-γ,IFN-γ);Th2 細胞主要分泌白細胞介素-4(interleukin-4,IL-4);Th17 細胞產(chǎn)生的細 胞因子以IL-17A 為 主;Treg細胞主要產(chǎn)生IL-10[6-7]。研究[8]表明,在牙周炎病損處,IFN-γ 濃度升高,IL-10 的表達量降低,且在重度牙周炎和急性進展性牙周炎患者中更加明顯。IL-17A 在牙周炎患者牙齦組織和齦溝液中的表達水平均高于正常對照 組[9]。
牙周致病菌在激活局部免疫應答的同時,也引起全身免疫應答。有學者發(fā)現(xiàn)慢性牙周炎患者與正常人相比,外周血中Th1、Th17 及Treg 細胞的比例明顯升高[10-11]。類似的現(xiàn)象也出現(xiàn)在模型動物中,IFN-γ 在實驗性牙周炎大鼠外周血清中的表達顯著升高,Th17 細胞、Treg 細胞及兩者的比值在牙周炎大鼠外周血中也明顯升高[12-13]。但是,也有學者[14-15]認為在牙周炎患者與正常人外周血中,Th17細胞并無明顯變化,且IL-17A+T 細胞、IFN-γ+T 細胞均無明顯變化。目前,關(guān)于牙周炎對全身免疫環(huán)境中Th 細胞分群的影響尚無一致定論。因此,本研究通過建立大鼠牙周炎模型,對比牙周炎與健康大鼠外周血中Th 細胞各亞群的比例,探討牙周炎對外周血中Th 細胞分群的影響,為牙周炎的免疫學研究提供依據(jù)。
RPMI1640 培養(yǎng)液(Sigma 公司,美國),胎牛血清(浙江天杭生物科技股份有限公司),杜氏磷酸鹽緩沖液(Dulbecco's phosphate buffered saline,DPBS;江蘇凱基生物技術(shù)股份有限公司);FITC 標記的CD3、BUV395標記的CD4、BV480 標記的CD8、BV421 標記的CD25、AF647 標記的IFN-γ、PE 標記的IL-4 抗體、APC-CY7 標記的死活染料、抗原封閉劑、刺激劑/蛋白轉(zhuǎn)運抑制劑、破胞膜劑、紅細胞裂解液、緩沖液、流式細胞儀,均購自美國BD 公司;PE-Cyanine 標記的IL-17A、PE-eFluor 標記的叉頭狀螺旋轉(zhuǎn)錄因子3(transcription factor forkhead box P3,F(xiàn)oxp3)抗體、破核膜劑,均購自美國eBioscience 公司;細胞培養(yǎng)箱購自美國Thermo 公司,顯微CT 掃描儀(micro-CT Skyscan1176)購自比利時布魯克公司。
6 周齡SPF 級SD 雄性大鼠10 只,由上海交通大學醫(yī)學院附屬第九人民醫(yī)院動物實驗中心提供,體質(zhì)量為(180±20)g,無牙周疾病,健康狀況良好。將大鼠隨機分為牙周炎組和對照組,每組各5 只。牙周炎組:稱重后以1%的戊巴比妥鈉溶液腹腔注射麻醉大鼠(0.6 mL/100 g),分離雙側(cè)下頜第一磨牙(M1)頸部牙齦組織,采用3-0縫合線結(jié)扎M1 牙頸部,每日檢查結(jié)扎絲,如有松動則重新結(jié)扎。對照組:大鼠麻醉后分離牙齦,不結(jié)扎,其余均與牙周炎組相同。實驗期間給予實驗動物清潔飼料和純凈水,按時更換墊料,環(huán)境溫度25 ℃,光照12 h/d。術(shù)后2 周,采用牙周探針分別檢查牙周炎組與對照組大鼠下頜M1 牙周狀況,記錄探診深度。實驗獲得上海交通大學醫(yī)學院附屬第九人民醫(yī)院實驗動物倫理委員會審批(批準號HKDL-2017-249)。
處死大鼠,每組隨機選擇3 只,取下頜骨,去除軟組織,經(jīng)4%多聚甲醛固定24 h 后,進行顯微CT 掃描檢測。掃描參數(shù)設(shè)置為:電壓65 kV,電流280 μA,1.0 mm 鋁箔過濾,旋轉(zhuǎn)步長0.55°,像素為18 μm×18 μm×18 μm。掃描后利用NRecon 軟件進行三維重建。選取M1 頰側(cè)近中、中間、遠中及舌側(cè)近中、中間、遠中,共6 個位點,測量釉牙骨質(zhì)界(cementoenamel junction,CEJ)至牙槽嵴頂(alveolar bone crest,ABC)的垂直距離(CEJ-ABC)作為牙槽骨吸收高度。每個樣本測量3 次,取平均值作為最終結(jié)果。
1.4.1 外周血采集 采用心臟采血法獲取大鼠外周血,將外周血收集至含有EDTA-K2 抗凝劑的采血管中。取1.0 mL 外周血用于Th1、Th2 及Th17 細胞流式細胞術(shù)檢測,另取1.0 mL 外周血用于Treg 細胞流式檢測。
1.4.2 Th1、Th2、Th17 細胞樣本制備 將1.0 mL 外周血加入到六孔板中,每孔中加入1.0 mL 含10%胎牛血清、1%雙抗的RPMI1640 培養(yǎng)液及2 μL 刺激劑/蛋白轉(zhuǎn)運抑制劑,培養(yǎng)4 ~6 h(37 ℃,5% CO2)。紅細胞裂解液去除紅細胞,DPBS 重懸,轉(zhuǎn)移至流式管中,死活染料染色,緩沖液清洗2 次,抗原封閉,用FITC 標記的CD3及BV480 標記的CD8 抗體進行胞外因子染色。經(jīng)破胞膜劑固定破膜后,用AF647 標記的IFN-γ、PE 標記的IL-4、PE-Cyanine 標記的IL-17A 抗體進行胞內(nèi)因子染色。緩沖液洗滌重懸,上機檢測。
1.4.3 Treg 細胞樣本制備 按1.4.2 中的方法去除紅細胞、死活染料染色、抗原封閉。用FITC 標記的CD3、BUV395 標記的CD4 及BV421 標記的CD25 抗體進行胞外因子染色。經(jīng)破核膜劑固定破膜后,用PE-eFluor 標記的Foxp3 抗體進行核內(nèi)因子染色。緩沖液洗滌重懸,上機檢測。
1.4.4 流式細胞術(shù)分析 利用FlowJo 10.5.3 軟件分析Th1、Th2、Th17、Treg 細胞的比例。
采用Graphpad Prism 8.0 軟件包進行數(shù)據(jù)分析。定量數(shù)據(jù)以x—±s 表示,定性數(shù)據(jù)以n(%)表示。牙槽骨吸收高度及Th1、Th2、Th17、Treg 細胞的百分比在2 組之間的比較均采用獨立樣本t 檢驗。P<0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。
牙周探診結(jié)果見圖1,結(jié)果顯示:牙周炎組大鼠下頜M1 周圍牙齦組織紅腫,頰側(cè)牙齦明顯增生,探診深度約為1.0 mm。對照組大鼠下頜M1 周圍牙齦組織呈淡粉色,未見明顯腫脹、增生,探診深度小于0.5 mm。
圖1 牙周探診結(jié)果Fig 1 Results of periodontal probing
牙槽骨吸收高度測量結(jié)果見圖2。頰側(cè)近中CEJ-ABC在牙周炎組和對照組中分別為(1 271.0±59.2)μm 和(833.7±59.2)μm,牙周炎組高于對照組,差異有統(tǒng)計學意義(P=0.006);頰側(cè)中間CEJ-ABC 在牙周炎組和對照組中分別為(1 303.7±23.8)μm 和(870.3±40.8)μm,牙周炎組高于對照組,差異有統(tǒng)計學意義(P=0.001);頰側(cè)遠中CEJ-ABC 在牙周炎組和對照組中分別為(1 019.7±62.8)μm 和(442.0±12.1)μm,牙周炎組高于對照組,差異具有統(tǒng)計學意義(P=0.001)。舌側(cè)近中CEJ-ABC在牙周炎組和對照組中分別為(1 084.0±13.0)μm 和(931.3±84.3)μm,牙周炎組高于對照組,但差異無統(tǒng)計學意義(P=0.148);舌側(cè)中間CEJ-ABC 在牙周炎組和對照組中分別為(987.7±18.2)μm 和(769.7±58.1)μm,牙周炎組高于對照組,差異有統(tǒng)計學意義(P=0.023);舌側(cè)遠中CEJ-ABC 在牙周炎組和對照組中分別為(885.7±15.6)μm 和(696.0±27.2)μm,牙周炎組高于對照組,差異有統(tǒng)計學意義(P=0.004)。牙槽骨吸收高度測量結(jié)果表明,牙周炎組M1 頰舌側(cè)牙槽骨均發(fā)生明顯吸收。
流式細胞術(shù)檢測結(jié)果見圖3。Th1 細胞在牙周炎組大鼠外周血中的比例明顯高于對照組(P=0.002),Th17 細胞在牙周炎組大鼠外周血中的比例也明顯升高(P=0.028);而Treg 細胞在牙周炎組大鼠外周血中的比例明顯降低(P=0.002);Th2 細胞在牙周炎組大鼠外周血中的比例也低于對照組,但差異無統(tǒng)計學意義。
圖3 流式細胞術(shù)檢測結(jié)果Fig 3 Results of flow cytometry
牙周炎是以牙齦紅腫、牙周袋形成、牙槽骨吸收為典型臨床表現(xiàn)的慢性炎癥破壞性疾病。本研究采用大鼠下頜第一磨牙牙頸部結(jié)扎的方法建立實驗性牙周炎大鼠模型。術(shù)后2 周,牙周炎組大鼠出現(xiàn)牙齦紅腫、探診出血,頰側(cè)探診深度達1.0 mm;而對照組大鼠未見牙齦紅腫出血,探診無牙周袋形成,頰側(cè)探診深度明顯小于牙周炎組。牙槽骨吸收高度測量結(jié)果顯示,除了舌側(cè)近中CEJ-ABC 在2組間無明顯差異外,牙周炎組在其余5 個位點的測量值均顯著高于對照組,表明牙周炎組M1 周圍牙槽骨發(fā)生明顯吸收。以上結(jié)果表明,結(jié)扎第一磨牙牙頸部2 周可誘導形成實驗性牙周炎大鼠模型。
牙周致病菌及其代謝產(chǎn)物激活病變局部的單核細胞、巨噬細胞,產(chǎn)生大量促炎性細胞因子,如白細胞介素-1β、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、細胞間黏附分子-1(intercellular adhesion molecule-1,ICAM-1)和前列腺素E2 等[16]。這些細胞因子可通過血液循環(huán)進行擴散,從而引起外周血中Th 細胞分群的改變。本研究通過流式細胞術(shù)檢測實驗性牙周炎大鼠與對照組大鼠外周血中Th 細胞各亞群的比例,結(jié)果發(fā)現(xiàn)牙周炎組大鼠外周血中促炎型Th1、Th17 細胞的比例升高,炎癥調(diào)節(jié)型Treg細胞的比例降低。
然而,關(guān)于牙周炎對外周血中Th 細胞分群的影響,目前尚無一致結(jié)論。王琳源等[17]采用口腔涂抹牙齦卟啉單胞菌的方法建立小鼠牙周炎模型,4 周后檢測發(fā)現(xiàn)牙周炎小鼠外周血中Th17 細胞在總CD4+T 細胞中的比例和數(shù)量顯著高于對照組,且牙周炎組IL-17A 的表達增加。Chen 等[10]對68 例慢性牙周炎患者和43 例健康者外周血樣本進行檢測,發(fā)現(xiàn)牙周炎患者外周血中Th1 和Th17 細胞的比例明顯高于健康者。Gao 等[13]采用牙周結(jié)扎+涂抹牙齦卟啉單胞菌的方法建立大鼠牙周炎模型,通過流式細胞術(shù)發(fā)現(xiàn)牙周炎大鼠外周血中Th17 細胞比例升高,且Th17 與Treg 細胞的比值升高。而Sabarish 等[11]研究發(fā)現(xiàn),慢性牙周炎患者外周血中Treg 細胞的比例明顯高于健康者;Cheng 等[18]研究發(fā)現(xiàn)牙周炎患者與健康者相比,外周血中Th17 及Treg 細胞的比例未見明顯變化,并認為牙齦局部的炎癥反應不會引起血液中主要的免疫細胞亞群發(fā)生改變。以上研究結(jié)果存在差異的原因可能有:①實驗動物的物種差異,大部分動物實驗均發(fā)現(xiàn)牙周炎能顯著影響嚙齒類動物外周血中Th 細胞的分群,而臨床研究結(jié)果的差異性較大。②病變程度不同,早、中、晚期牙周炎可能對外周血中Th 細胞的分群產(chǎn)生不同的影響。③個體差異,牙周炎引起的T 細胞免疫反應在不同個體之間的程度不同。
既往研究[19]認為Th1 細胞是造成牙周炎中牙周支持組織損傷的主要細胞,Th1 細胞通過分泌IFN-γ、TNF 等促炎性細胞因子破壞牙周組織。IFN-γ 可以提高黏附因子和趨化因子的含量,促使炎癥細胞向感染部位聚集,在牙周炎癥反應、骨吸收、附著組織喪失上都起著重要的作用[8]。近年來研究發(fā)現(xiàn)Th17 細胞的浸潤與牙周炎的病變輕重有著密切關(guān)系,IL-17A 水平升高在炎癥過程中起到重要作用,牙周炎組織的破壞緣于IL-17A 分泌增加[20-21]。Th2 細胞通過分泌IL-4 抑制T 細胞向Th1 細胞分化,抑制巨噬細胞的功能,抑制破骨細胞的生成,控制炎癥的進展[22]。Treg 細胞能通過接觸或分泌IL-10 和轉(zhuǎn)化生長因子抑制T 細胞的增殖和活化,對自身免疫性疾病和炎癥反應起負調(diào)控作用。因此,目前認為Th1 和Th17 細胞是主要的促炎型Th 細胞亞群,而Th2 和Treg 細胞是主要的炎癥調(diào)節(jié)型Th 細胞亞群。
綜上,本研究結(jié)果表明,牙周炎可促進大鼠外周血中促炎型Th 細胞亞群的分化,抑制炎癥調(diào)節(jié)型Th 細胞亞群的分化。而牙周炎引起Th 細胞各亞群比例變化的具體作用機制,仍有待進一步闡明。
參·考·文·獻
[1] Hajishengallis G. Periodontitis: from microbial immune subversion to systemic inflammation[J]. Nat Rev Immunol, 2015, 15(1): 30-44.
[2] 李昆蔓, 代靜, 任靜, 等. CD4 陽性T 淋巴細胞亞群與牙周炎的關(guān)系[J]. 中華口腔醫(yī)學研究雜志(電子版), 2017, 11(3): 178-183.
[3] Leira Y, Iglesias-Rey R, Gómez-Lado N, et al. Porphyromonas gingivalis lipopolysaccharide-induced periodontitis and serum amyloid-β peptides[J]. Arch Oral Biol, 2019, 99: 120-125.
[4] Zhang LP, Gao L, Xu CR, et al. Porphyromonas gingivalis lipopolysaccharide promotes T- helper 17 cell differentiation from human CD4+na?ve T cells via toll-like receptor-2 in vitro[J]. Arch Oral Biol, 2019, 107: 104483.
[5] Chen TH, Arra M, Mbalaviele G, et al. Inflammatory responses reprogram TREGS through impairment of neuropilin-1[J]. Sci Rep, 2019, 9(1): 10429.
[6] Bunte K, Beikler T. Th17 cells and the IL-23/IL-17 axis in the pathogenesis of periodontitis and immune-mediated inflammatory diseases[J]. Int J Mol Sci, 2019, 20(14): 3394.
[7] Bi CS, Sun LJ, Qu HL, et al. The relationship between T-helper cell polarization and the RANKL/OPG ratio in gingival tissues from chronic periodontitis patients[J]. Clin Exp Dent Res, 2019, 5(4): 377-388.
[8] Garlet GP, Martins Jr W, Ferreira BR, et al. Patterns of chemokines and chemokine receptors expression in different forms of human periodontal disease[J]. J Periodontal Res, 2003, 38(2): 210-217.
[9] Ohyama H, Kato-Kogoe N, Kuhara A, et al. The involvement of IL-23 and the Th17 pathway in periodontitis[J]. J Dent Res, 2009, 88(7): 633-638.
[10] Chen XT, Chen LL, Tan JY, et al. Th17 and Th1 lymphocytes are correlated with chronic periodontitis[J]. Immunol Invest, 2016, 45(3): 243-254.
[11] Sabarish R, Rao SR, Lavu V. Natural T regulatory cells (n treg) in the peripheral blood of healthy subjects and subjects with chronic periodontitis: a pilot study[J]. J Clin Diagn Res, 2016, 10(3): ZC36-ZC39.
[12] 王中秀, 楊嵐, 譚靜怡, 等. 輔助性T 細胞1 和17 細胞特征性分泌因子在大鼠實驗性牙周炎模型中的表達及意義[J]. 中華口腔醫(yī)學雜志, 2017, 52(12): 740-746.
[13] Gao L, Zhao YJ, Wang PP, et al. Detection of Th17/Treg cells and related factors in gingival tissues and peripheral blood of rats with experimental periodontitis[J]. Iran J Basic Med Sci, 2017, 20(3): 294-300.
[14] Suárez LJ, Vargas DE, Rodríguez A, et al. Systemic Th17 response in the presence of periodontal inflammation[J]. J Appl Oral Sci, 2020, 28: e20190490.
[15] Okada K, Fujimura T, Kikuchi T, et al. Effect of interleukin (IL)-35 on IL-17 expression and production by human CD4+T cells[J]. PeerJ, 2017, 5: e2999.
[16] Ramadan DE, Hariyani N, Indrawati R, et al. Cytokines and chemokines in periodontitis[J]. Eur J Dent, 2020, 14(3): 483-495.
[17] 王琳源, 關(guān)寧, 林曉萍. 輔助性T17細胞在牙周炎小鼠中的免疫狀態(tài)研究[J]. 華西口腔醫(yī)學雜志, 2015, 33(2): 125-129.
[18] Cheng WC, Saleh F, Abuaisha Karim B, et al. Comparative analysis of immune cell subsets in peripheral blood from patients with periodontal disease and healthy controls[J]. Clin Exp Immunol, 2018, 194(3): 380-390.
[19] Taylor JJ. Cytokine regulation of immune responses to Porphyromonas gingivalis[J]. Periodontol 2000, 2010, 54(1): 160-194.
[20] Dutzan N, Kajikawa T, Abusleme L, et al. A dysbiotic microbiome triggers TH17 cells to mediate oral mucosal immunopathology in mice and humans[J]. Sci Transl Med, 2018, 10(463): eaat0797.
[21] Cheng WC, Hughes FJ, Taams LS. The presence, function and regulation of IL-17 and Th17 cells in periodontitis[J]. J Clin Periodontol, 2014, 41(6): 541-549.
[22] Palmqvist P, Lundberg P, Persson E, et al. Inhibition of hormone and cytokinestimulated osteoclastogenesis and bone resorption by interleukin-4 and interleukin-13 is associated with increased osteoprotegerin and decreased RANKL and RANK in a STAT6-dependent pathway[J]. J Biol Chem, 2006, 281(5): 2414-2429.