王慧芳,趙飛燕,劉勇軍,趙潤(rùn)柱,王 曼,姚 英,張恒慧
(1.太原工業(yè)學(xué)院化學(xué)與化工系,山西 太原 030008;2.渾源一中化學(xué)組,山西 大同 037400;3.太原工業(yè)學(xué)院環(huán)境與安全工程系,山西 太原 030008)
黃酮又稱(chēng)黃堿素,是一種以2-苯基色原酮為基本結(jié)構(gòu)的化合物,常在植物體內(nèi)與糖結(jié)合成苷[1],大多數(shù)植物都含有此類(lèi)化合物,具有調(diào)節(jié)動(dòng)物激素、防治心血管疾病、提高機(jī)體免疫力、促進(jìn)機(jī)體健康等功效[2-3],關(guān)于其抗氧化、抑菌活性的報(bào)道也很多[4-6]。課題組前期采用HP-20 型大孔樹(shù)脂對(duì)提取得到的陳皮黃酮進(jìn)行分離提純后,測(cè)定它對(duì)3 種革蘭氏菌的抑制作用,發(fā)現(xiàn)對(duì)大腸桿菌的效果最佳[7]。
文冠果Xanthoceras sorbifoliaBunge 為無(wú)患子科文冠果屬木本落葉小喬木或灌木,原產(chǎn)于我國(guó)西北部,是一種食用油料樹(shù)種,壽命可超過(guò)200 年,具有很高的經(jīng)濟(jì)價(jià)值[8-10],其葉中也含有大量黃酮類(lèi)化合物[11]。目前,對(duì)文冠果的研究主要集中在育苗、種植[12-13]、不同部位揮發(fā)油提取、理化性質(zhì)、成分分析等方面[14-18],而關(guān)于黃酮提取及其生物活性方面的報(bào)道相對(duì)較少。因此,本實(shí)驗(yàn)進(jìn)行微波輔助酶提取文冠果葉總黃酮,通過(guò)響應(yīng)面法優(yōu)化該成分提取工藝,并對(duì)其抗氧化、抑菌活性進(jìn)行初步探索,旨在為油料作物多重開(kāi)發(fā)提供理論依據(jù)。
文冠果葉采自山東,經(jīng)山西中醫(yī)藥大學(xué)中醫(yī)學(xué)院裴香萍副教授鑒定為正品。蘆丁對(duì)照品(純度>98%)購(gòu)自上海金穗生物科技有限公司;纖維素酶(活性1.5 萬(wàn)U/g)購(gòu)自上海如吉生物科技有限公司;茶多酚(純度>98%)購(gòu)自上海今品化學(xué)技術(shù)有限公司。DPPH·、ABTS·購(gòu)自美國(guó)Sigma 公司;大腸桿菌、枯草芽孢桿菌、金黃色葡萄球菌株購(gòu)自中國(guó)普通微生物菌種保藏管理中心。VIS-7220型光度計(jì)購(gòu)自上海棱光科技有限公司;XH-10A 型微波儀購(gòu)自北京祥鵠科技有限公司;DHP-9082 型恒溫培養(yǎng)箱購(gòu)自上海雷韻實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;HB-10 型旋蒸儀購(gòu)自德國(guó)IKA 公司;FA-2104 型數(shù)顯電子分析天平購(gòu)自上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司。氫氧化鈉、氯化鈉、亞硝酸鈉、硝酸鋁、無(wú)水乙醇、磷酸、濃鹽酸等均為分析純,購(gòu)自天津化學(xué)試劑有限公司。
2.1 總黃酮提取 采用微波輔助酶法。將文冠果葉烘干、粉碎、過(guò)60 目篩后,稱(chēng)取0.5 g 粉末于50 mL 圓底燒瓶中,加入3 mL 磷酸鹽緩沖液(pH=4.5)和適量纖維素酶,55 ℃下水浴酶解60 min后沸水浴滅酶,冷卻10 min,加入適量乙醇室溫浸泡0.5 h,微波提取,2 000 r/min 離心10 min,取上層清液,洗滌后合并濾液,抽濾,濃縮,即得提取物。
2.2 總黃酮含有量測(cè)定
2.2.1 線性關(guān)系考察[19]以吸光度為縱坐標(biāo)(A),溶液質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X)進(jìn)行回歸,得方程為A=8.517 0X+0.006 2(R2=0.999 2),在0~70 μg/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
2.2.2 提取率測(cè)定 公式為提取率=(黃酮含有量/樣品粉末量)×100%。
2.2.3 重復(fù)性試驗(yàn)[20]配制0.1 mg/mL 蘆丁對(duì)照品溶液,于0、2、4、6、8、10 h 測(cè)定吸光度,測(cè)得其RSD 為0.198%,表明該方法重復(fù)性良好。
2.2.4 精密度試驗(yàn) 取0.1 mg/L 蘆丁對(duì)照品溶液,連續(xù)測(cè)定吸光度6 次,測(cè)得其RSD 為0.346%,表明儀器精密度良好。
2.2.5 加樣回收率試驗(yàn) 取0.050 6 mg/L 提取液10 mL,共9 份,置于50 mL 量瓶中,加入0.063 2、0.050 6、0.042 2 mg/L 蘆丁對(duì)照品溶液10 mL,共3 份,75%乙醇定容,測(cè)定吸光度,計(jì)算加樣回收率。結(jié)果,3 份溶液回收率分別為98.7%、99.5%、101.0%,RSD 為1.58%。
2.3 單因素試驗(yàn)
2.3.1 微波功率 固定樣品粉末用量0.5 g,纖維素酶用量0.15%,乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,料液比1∶10,微波提取時(shí)間3 min,選擇微波功率400、500、600、700、800 W,按“2.1”項(xiàng)下方 法提取。
2.3.2 微波提取時(shí)間 固定樣品粉末用量0.5 g,纖維素酶用量0.15%,乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,料液比1∶10,微波功率600 W,選擇微波時(shí)間1、3、5、7、9 min,按“2.1”項(xiàng)下方法提取。
2.3.3 料液比 固定樣品粉末用量0.5 g,纖維素酶用量0.15%,乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,微波功率600 W,微波提取時(shí)間5 min,選擇料液比1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30,按“2.1”項(xiàng)下方法提取。
2.3.4 乙醇體積分?jǐn)?shù) 固定樣品粉末用量0.5 g,纖維素酶用量0.15%,料液比1∶20,微波功率600 W,微波提取時(shí)間5 min,選擇乙醇體積分?jǐn)?shù)50%、60%、70%、80%、90%,按“2.1”項(xiàng)下方法提取。
2.3.5 纖維素酶用量 固定樣品粉末用量0.5 g,乙醇體積分?jǐn)?shù)70%,料液比1∶20,微波功率600 W,微波提取時(shí)間5 min,選擇纖維素酶用量0.05%、0.10%、0.15%、0.20%、0.25%,按“2.1”項(xiàng)下方法提取。
2.4 響應(yīng)面法優(yōu)化 在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,選擇微波功率(A)、微波提取時(shí)間(B)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(C)作為影響因素進(jìn)行試驗(yàn),因素水平見(jiàn)表1。
表1 因素水平Tab.1 Factors and levels
2.5 抗氧化活性測(cè)定
2.5.1 藥液配制 將最優(yōu)條件下得到的提取液在50~55 ℃下濃縮至2.01 mg/mL,75%乙醇依次稀釋至5.00、10.00、15.00、20.00、25.00 μg/mL,并配制相同質(zhì)量濃度維生素C、蘆丁溶液作為對(duì)照,冷藏備用。
2.5.2 對(duì)DPPH·的清除能力[20]公式為清除率=,其中Ai為樣品組(提取液+DPPH 溶液)吸光度,Aj為等體積無(wú)水乙醇代替DPPH 溶液的對(duì)照組吸光度,A0為等體積蒸留水代替提取液的空白組吸光度。
2.5.3 對(duì)ABTS·的清除能力(對(duì)文獻(xiàn)[20]稍作改動(dòng))精密稱(chēng)取0.040 g ABTS 加入1.0 mg/mL K2S2O8溶液8.0 mL,密封避光反應(yīng)16 h,置于250 mL 量瓶中,加入32 mL 去離子水,95% 乙醇定容,靜置10 h,作為ABTS 工作液。然后,精密吸取不同質(zhì)量濃度提取液(或蘆丁、維生素溶液)各0.50 mL,加入0.80 mL ABTS 工作液,再加入2.70 mL 80%乙醇,反應(yīng)6 min 后在734 nm 波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,參比液為75%乙醇與無(wú)水乙醇(1∶1)混合液,按“2.5.2”項(xiàng)下公式計(jì)算。
2.6 抑菌活性測(cè)定
2.6.1 被測(cè)菌種擴(kuò)培 參考文獻(xiàn)[21]方法進(jìn)行操作。
2.6.2 抑菌實(shí)驗(yàn) 將提取液按“2.5.1”項(xiàng)下方法濃縮后,室溫下晾干冷藏。50%乙醇配制總黃酮粗提物、茶多酚供試液,藥液質(zhì)量濃度分別為8.56、4.28、2.14 mg/mL。濾紙片法[22]測(cè)定粗提物、茶多酚抑菌活性,方法為將培養(yǎng)基在37 ℃恒溫箱中保溫48 h 后,測(cè)定抑菌圈直徑(十字交叉測(cè)2 次,取平均值),公式為抑菌圈直徑=抑菌圈外徑-濾紙片直徑。
3.1 單因素試驗(yàn)
3.1.1 微波功率[23]圖1 顯示,總黃酮提取率隨著微波功率升高而先增后減,其原因是微波離子傳導(dǎo)作用可隨其功率增大而加強(qiáng),促使文冠果葉細(xì)胞膜膨化、破裂,總黃酮,于功率為600 W 時(shí)全部溶出;繼續(xù)增大微波功率時(shí),不但損耗能量,而且過(guò)剩的熱效應(yīng)會(huì)促使總黃酮分解[24],故確定微波功率為600 W。
圖1 微波功率對(duì)總黃酮提取率的影響Fig.1 Effect of microwave power on the extraction rate of total flavonoids
3.1.2 微波提取時(shí)間 圖2 顯示,當(dāng)微波提取時(shí)間小于5 min時(shí),總黃酮提取率隨著時(shí)間延長(zhǎng)熱效應(yīng)逐漸加強(qiáng),釋放量隨之增大,在5 min 時(shí)最高,表明該成分已完全釋放;在7 min 時(shí),提取率略有下降;在9 min 時(shí),提取率迅速下降,主要是由于過(guò)量熱效應(yīng)可使總黃酮分解,故確定微波時(shí)間為5 min。
圖2 微波提取時(shí)間對(duì)總黃酮提取率的影響Fig.2 Effect of microwave time on the extraction rate of total flavonoids
3.1.3 料液比 圖3 顯示,隨著料液比中乙醇用量增加,總黃酮逐漸被溶出,提取率逐漸增加;但其過(guò)量時(shí),反而會(huì)因雜質(zhì)溶出而導(dǎo)致總黃酮提取率下降,故確定料液比為1∶20。
圖3 料液比對(duì)總黃酮提取率的影響Fig.3 Effect of solid-liquid ratio on the extraction rate of total flavonoids
3.1.4 乙醇體積分?jǐn)?shù) 圖4 顯示,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)小于70%時(shí),總黃酮提取率隨著其升高而增加,并在70% 時(shí)達(dá)到溶解平衡,提取率最高;大于70%時(shí),過(guò)量滲透壓會(huì)將文冠果葉中雜質(zhì)溶出,導(dǎo)致提取率反而下降,故確定乙醇體積分?jǐn)?shù)為70%。
圖4 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)總黃酮提取率的影響Fig.4 Effect of ethanol concentration on the extraction rate of total flavonoids
3.1.5 纖維素酶用量[25]圖5 顯示,當(dāng)纖維素酶用量在0.05%~0.20%之間時(shí),隨著文冠果葉細(xì)胞壁被逐漸破壞,總黃酮被逐漸釋放出,其提取率也隨之增加;在0.20%~0.25%之間時(shí),提取率卻在下降,這是因?yàn)檫^(guò)度破壞細(xì)胞壁會(huì)增加雜質(zhì)溶出,故確定纖維素酶用量為0.20%。
3.2 響應(yīng)面法優(yōu)化 通過(guò)Design-Expert 8.0.5 軟件,以總黃酮提取率為評(píng)價(jià)指標(biāo)(Y)進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果見(jiàn)表2,回歸方程為Y=9.86-0.14A+0.46B-0.065C-0.167AB+0.34AC-0.063BC-0.21A2-0.28B2-0.21C2。
圖5 纖維素酶用量對(duì)總黃酮提取率的影響Fig.5 Effect of cellulase consumption on the extraction rate of total flavonoids
表2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Tab.2 Design and results of tests
方差分析見(jiàn)表3。由此可知,模型P<0.000 1,表明模型顯著;失擬項(xiàng)P>0.05,表明模型失擬性不顯著;R2為0.999 6,表明模型回歸顯著,準(zhǔn)確度高;為0.999 0,表明總黃酮提取率與各因素之間相關(guān)度較高;CV 僅為0.72%,表明模型可靠性高;模型F值與變量對(duì)響應(yīng)值影響呈正比[26],故各因素影響程度依次為微波提取時(shí)間(B)>微波功率(A)>乙醇體積分?jǐn)?shù)(C),與單因素試驗(yàn)結(jié)果一致;兩因素相互作用影響程度依次為AC>BC>AB。響應(yīng)面分析見(jiàn)圖6。
3.3 驗(yàn)證試驗(yàn) 最優(yōu)工藝為纖維素酶用量0.20%,乙醇體積分?jǐn)?shù)70.10%,料液比1∶20,微波功率597.19 W,提取時(shí)間6.49 min,總黃酮提取率為9.92%,結(jié)合實(shí)際生產(chǎn)操作,將其修正為微波功率600 W,提取時(shí)間6 min,乙醇體積分?jǐn)?shù)70%,其他條件不變。然后,進(jìn)行3 批驗(yàn)證試驗(yàn),測(cè)得總黃酮平均提取率為9.90%,接近預(yù)測(cè)值9.92%,表明模型擬合情況良好。
圖6 各因素響應(yīng)面圖Fig.6 Response surface plots for various factors
表3 方差分析Tab.3 Analysis of variance
3.4 抗氧化活性
3.4.1 對(duì)DPPH·的清除能力 圖7顯示,各樣品對(duì)DPPH·的清除能力依次為維生素C>總黃酮>蘆丁,并均在被測(cè)質(zhì)量濃度范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系,R2在0.959 6~0.982 2 之間,IC50分別為3.82、12.23、49.36 μg/mL,其中維生素C、總黃酮清除能力均隨著其質(zhì)量濃度升高而增強(qiáng),而蘆丁受其影響相對(duì)較小。另外,總黃酮質(zhì)量濃度為15.00 μg/mL時(shí)清除能力較小,可能是由于實(shí)驗(yàn)誤差所致,需作進(jìn)一步研究。
圖7 各樣品對(duì)DPPH·的清除能力Fig.7 Scavenging abilities of various samples on DPPH·
3.4.2 對(duì)ABTS·的清除能力 圖8顯示,各樣品隨著其質(zhì)量濃度升高對(duì)ABTS·的清除能力也隨之加強(qiáng),其中總黃酮在低質(zhì)量濃度下與維生素C 差距較大,而與蘆丁接近,但進(jìn)一步升高時(shí)逐漸接近維生素C,同時(shí)三者均在被測(cè)質(zhì)量濃度范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系,R2在0.972 0~0.984 8 之間,IC50分別為1.59、14.59、42.90 μg/mL。與DPPH·比較,總黃酮對(duì)ABTS·的清除能力相對(duì)較弱,質(zhì)量濃度均為25.00 μg/mL 時(shí)低了2.60%。
圖8 各樣品對(duì)ABTS·的清除能力Fig.8 Scavenging abilities of various samples on ABTS·
3.5 抑菌活性 表4 顯示,總黃酮、茶多酚對(duì)3種革蘭氏菌的抑制作用隨著其質(zhì)量濃度升高而加強(qiáng),程度依次為大腸桿菌>金黃色葡萄球菌>枯草芽孢桿菌,其中總黃酮質(zhì)量濃度為8.56、4.28、2.14 mg/mL 時(shí)抑菌圈直徑分別比茶多酚大了1.12、0.38、0.06 mm,比95% 乙醇大了0.42、1.04、0.80 mm;對(duì)金黃色葡萄球菌的抑制作用相對(duì)較弱,僅其質(zhì)量濃度為8.56 mg/mL 時(shí)抑菌圈直徑比茶多酚大0.30 mm,但整體上仍比95% 乙醇強(qiáng);在質(zhì)量濃度8.56 mg/mL 下對(duì)枯草芽孢桿菌的抑制作用比茶多酚強(qiáng),而在8.56、4.28 mg/mL 下強(qiáng)于95%乙醇。
表4 各樣品抑菌活性測(cè)定結(jié)果()Tab.4 Results of bacteriostasis activity determination of various samples()
表4 各樣品抑菌活性測(cè)定結(jié)果()Tab.4 Results of bacteriostasis activity determination of various samples()
本實(shí)驗(yàn)所得最優(yōu)文冠果葉總黃酮微波輔助酶提取工藝為磷酸緩沖液(pH=4.5)3 mL,纖維素酶用量0.20%,乙醇體積分?jǐn)?shù)70%,料液比1∶20,微波功率600 W,提取時(shí)間6 min,總黃酮提取率為9.90%,接近于預(yù)測(cè)值,表明工藝準(zhǔn)確可靠,比郝倩[11]等報(bào)道的超聲法提高了2.44 倍??傸S酮提取液對(duì)DPPH·、ABTS·均有較強(qiáng)的清除能力,對(duì)前者作用更強(qiáng),雖然略低于維生素C,但明顯高于蘆??;對(duì)3 種革蘭氏菌均有較強(qiáng)的抑制作用,程度依次為大腸桿菌>金黃色葡萄球桿菌>枯草芽孢桿菌,并且對(duì)大腸桿菌的抑菌活性明顯強(qiáng)于茶多酚,而對(duì)后兩者則相對(duì)較弱。
綜上所述,文冠果葉總黃酮不但具有較強(qiáng)的抗氧化能力,還有著良好的抑菌活性(尤其是對(duì)大腸桿菌),表明該植物可作為天然抗氧化劑和抑菌劑應(yīng)用于食品、保健品等行業(yè),開(kāi)發(fā)前景廣闊。