国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

急性低氧脅迫對(duì)翹嘴鱖抗氧化酶、呼吸相關(guān)酶活性及相關(guān)基因表達(dá)的影響

2020-05-11 06:06徐暢丁煒東曹哲明邴旭文張晨光谷心池劉雨
關(guān)鍵詞:抗氧化酶

徐暢 丁煒東 曹哲明 邴旭文 張晨光 谷心池 劉雨

摘要:【目的】從酶活性和基因表達(dá)水平分析低氧脅迫對(duì)翹嘴鱖(Siniperca chuatsi)應(yīng)激的生理響應(yīng)過程,為其健康養(yǎng)殖及耐低氧品種選育提供科學(xué)依據(jù)?!痉椒ā窟x取體表無損傷、體重450±20 g/尾、體長(zhǎng)24.0±0.7 cm的健康翹嘴鱖進(jìn)行低氧(溶解氧含量2.8±0.2 mg/L)脅迫,設(shè)常氧(溶解氧含量6.5±0.2 mg/L)為對(duì)照組,分別在低氧脅迫0、6、12、24、48和96 h時(shí)采集翹嘴鱖的肝臟和鰓組織樣品,進(jìn)行抗氧化酶、呼吸相關(guān)酶活性及低氧誘導(dǎo)反應(yīng)相關(guān)基因表達(dá)測(cè)定?!窘Y(jié)果】在整個(gè)急性低氧脅迫過程中,翹嘴鱖肝臟過氧化氫酶(CAT)活性、還原型谷胱甘肽(GSH)含量及谷丙轉(zhuǎn)氨酶(GPT)活性均呈先升高后降低的變化趨勢(shì),GSH含量從低氧脅迫6 h起顯著高于對(duì)照組(P<0.05,下同),CAT和GPT活性從低氧脅迫12 h起顯著高于對(duì)照組。鰓組織乳酸脫氫酶(LDH)活性先升高后降低再升高,在脅迫6 h時(shí)達(dá)最高值(849.67 U/mg),顯著高于對(duì)照組;超微量總ATP酶(ATPase)活性呈降低—升高—降低的變化趨勢(shì),且顯著低于對(duì)照組。低氧脅迫組翹嘴鱖肝臟HIF-1α基因的相對(duì)表達(dá)量在脅迫48 h后顯著上調(diào);EPO基因的相對(duì)表達(dá)量先升高后降低,在脅迫12 h時(shí)顯著上調(diào);HSP90α基因的相對(duì)表達(dá)量在脅迫6和48 h分別出現(xiàn)峰值,其他時(shí)間點(diǎn)與對(duì)照組持平。【結(jié)論】急性低氧脅迫對(duì)翹嘴鱖肝臟抗氧化酶、鰓組織呼吸相關(guān)酶及低氧誘導(dǎo)反應(yīng)相關(guān)基因表達(dá)均產(chǎn)生顯著影響。雖然翹嘴鱖能通過自我調(diào)節(jié)抗氧化酶和呼吸相關(guān)酶活性及上調(diào)低氧誘導(dǎo)反應(yīng)相關(guān)基因表達(dá),促使機(jī)體適應(yīng)低氧環(huán)境,但溶解氧降至2.8 mg/L以下即對(duì)其產(chǎn)生不利影響,因此在實(shí)際養(yǎng)殖過程中須密切關(guān)注養(yǎng)殖水體溶解氧變化。

關(guān)鍵詞: 翹嘴鱖;低氧脅迫;抗氧化酶;呼吸相關(guān)酶;低氧誘導(dǎo)反應(yīng)相關(guān)基因

0 引言

【研究意義】溶解氧(Dissolved oxygen,DO)是影響魚類生存和生長(zhǎng)的重要環(huán)境因子。在水產(chǎn)養(yǎng)殖過程中,影響水體溶解氧的因素很多,包括天氣、水流和水溫等(Wu et al.,2020)。大多數(shù)魚類具有適應(yīng)溶解氧波動(dòng)的能力,但溶解氧長(zhǎng)期處于較低水平,則會(huì)對(duì)魚類造成不可逆損傷,甚至導(dǎo)致死亡(Abdel-Tawwab et al.,2019),給水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)帶來嚴(yán)重?fù)p失。因此,探究低氧脅迫下魚類生理生化指標(biāo)及相關(guān)基因的表達(dá)變化規(guī)律,明確魚類對(duì)低氧的效應(yīng)及耐受限度,對(duì)科學(xué)指導(dǎo)魚類高密度養(yǎng)殖具有重要意義。【前人研究進(jìn)展】隨著養(yǎng)殖水體中溶解氧水平的降低,魚類的呼吸和攝食活動(dòng)會(huì)隨之降低,其生理和代謝活動(dòng)也受到不利影響(Wedemeyer,1996)。魚類響應(yīng)低氧脅迫是一個(gè)復(fù)雜的生理過程,是多種因素相互作用的結(jié)果(熊向英等,2016),通常需要在基因水平、信號(hào)通路及低氧信號(hào)途徑網(wǎng)絡(luò)調(diào)控等不同層面進(jìn)行深入探討。Pichavant等(2002)研究表明,在嚴(yán)重低氧條件下魚類的有氧呼吸速率受到影響,腺苷三磷酸(ATP)產(chǎn)生減慢,導(dǎo)致肌肉組織中乳酸含量發(fā)生變化;Rinaldi等(2005)研究發(fā)現(xiàn),在輕度低氧條件下歐洲鱸(Dicentrarchus labrax)的鰓組織結(jié)構(gòu)會(huì)受到影響;Omlin和Weber(2010)在研究虹鱒(Oncorhynchus mykiss)時(shí)發(fā)現(xiàn),由低氧引起的乳酸增加在降低循環(huán)中乳酸負(fù)荷具有戰(zhàn)略性作用;狄治朝等(2018)研究表明,斑馬魚(Danio rerio)在低氧脅迫下Hsp90ab1基因相對(duì)表達(dá)量呈上調(diào)趨勢(shì);Sun等(2020)研究表明,大嘴鱸(Micropterus salmoides)受低氧脅迫時(shí)其肝臟的過氧化氫酶(CAT)和谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)活性明顯升高;張凱強(qiáng)等(2020)研究發(fā)現(xiàn),HIF-1α基因在花鱸的低氧應(yīng)答中發(fā)揮重要作用。此外,在團(tuán)頭魴(Megalobrama amblycephala)(王慧娟,2015)、卵形鯧鲹(Trachinotus ovatus)(陳世喜等,2016)、河川沙塘鱧(Odontobutis potamophila)(賈秀琪等,2017)、花鱸(常志成等,2018)、黃顙魚(Pelteobagrus fulvidraco)(孫俊霄等,2019)的相關(guān)研究中均發(fā)現(xiàn)低氧脅迫能誘導(dǎo)抗氧化酶呈規(guī)律性變化。【本研究切入點(diǎn)】翹嘴鱖(Siniperca chuatsi)是人工養(yǎng)殖鱖魚的主要品種,但其耐低氧能力較弱,尤其隨著養(yǎng)殖規(guī)?;图s化的發(fā)展,養(yǎng)殖水體中的溶解氧水平已成為翹嘴鱖養(yǎng)殖不可忽視的重要環(huán)境因素之一。至今,有關(guān)鱖魚耐氧能力的研究主要集中在窒息點(diǎn)和耗氧率探析(楊春等,2003)及利用池塘微孔增氧進(jìn)行生態(tài)高效養(yǎng)殖(蔡建中等,2011;劉林,2011;章愛華,2017)等方面,而針對(duì)翹嘴鱖的耐低氧機(jī)制研究尚無報(bào)道?!緮M解決的關(guān)鍵問題】探究急性低氧脅迫下翹嘴鱖抗氧化酶、呼吸相關(guān)酶活性及低氧誘導(dǎo)反應(yīng)相關(guān)基因表達(dá)的變化規(guī)律,從酶活性和基因表達(dá)水平分析低氧脅迫對(duì)翹嘴鱖應(yīng)激的生理響應(yīng)過程,為其健康養(yǎng)殖及耐低氧品種選育提供科學(xué)依據(jù)。

1 材料與方法

1. 1 試驗(yàn)用魚

供試翹嘴鱖取自南京農(nóng)業(yè)大學(xué)無錫漁業(yè)學(xué)院南泉養(yǎng)殖基地,選取體表無損傷、體重450±20 g/尾、體長(zhǎng)24.0±0.7 cm的健康成魚,暫養(yǎng)于室內(nèi)控溫循環(huán)水養(yǎng)殖系統(tǒng)(450 L)內(nèi)。暫養(yǎng)期間以鯪魚(體長(zhǎng)4.0±1.0 cm)為餌料,每2 d投餌1次,投喂量為翹嘴鱖體重的2倍;同時(shí)保持水體溶解氧含量6.5±0.2 mg/L、pH 7.55±0.20,水溫(22.0±0.5)℃。暫養(yǎng)14 d后進(jìn)行低氧脅迫試驗(yàn)。

1. 2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)及樣品采集

根據(jù)司亞東等(1995)、熊向英等(2016)的相關(guān)研究可知,魚類的飽和溶解氧濃度為7.0 mg/L,缺氧臨界值為4.0 mg/L,鱖魚成魚的溶解氧窒息點(diǎn)在l.0 mg/L左右??紤]到實(shí)際生產(chǎn)過程中,低于魚類缺氧臨界值可能會(huì)給翹嘴鱖養(yǎng)殖帶來影響,故設(shè)常氧對(duì)照組(溶解氧含量6.5±0.2 mg/L)和低氧試驗(yàn)組(溶解氧含量2.8±0.2 mg/L),每組設(shè)3個(gè)平行,即6個(gè)450 L的養(yǎng)殖桶,桶內(nèi)水體積約320 L。通過調(diào)節(jié)充入水中的氮?dú)夂涂諝馑俾矢淖兤淙芙庋鹾浚肏ACH-LDO溶氧儀檢測(cè)溶解氧變化情況,使溶解氧含量維持在預(yù)設(shè)值上。待對(duì)照組和試驗(yàn)組的水體溶解氧降至預(yù)設(shè)值并保持穩(wěn)定時(shí),將180尾翹嘴鱖隨機(jī)平均放養(yǎng)到6個(gè)養(yǎng)殖桶內(nèi)(每桶30尾)。試驗(yàn)期間每2 h用HACH-LDO溶氧儀檢測(cè)并調(diào)整水體溶解氧含量,保持水體靜止,停止進(jìn)食,水溫(22.0±0.5)℃,pH 7.55±0.20。分別在低氧脅迫0、6、12、24、48和96 h時(shí),每桶隨機(jī)選取3尾翹嘴鱖,以100 mg/L MS-222麻醉后解剖采集肝臟和鰓組織樣本,經(jīng)液氮速凍后置于-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

1. 3 酶活性檢測(cè)

過氧化氫酶(CAT)、還原型谷胱甘肽(GSH)、谷丙轉(zhuǎn)氨酶(GPT)、乳酸脫氫酶(LDH)及超微量總ATP酶(ATPase)均采用南京建成生物工程研究所研發(fā)的試劑盒進(jìn)行測(cè)定。取0.1 g肝臟、鰓組織按重量體積比1∶9加入生理鹽水,制成10.0%組織勻漿,離心收集上清液制備待測(cè)溶液。其中,鰓組織再加10和100倍生理鹽水分別制成1.0%和0.1%組織勻漿,然后按試劑盒說明進(jìn)行測(cè)定。使用BioTek EonTM微孔板分光光度計(jì)進(jìn)行檢測(cè)讀數(shù)。

1. 4 總RNA提取及實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)

取0.1 g翹嘴鱖肝臟置于RNAiso Plus[寶生物工程(大連)有限公司]中勻漿,按說明提取總RNA。以微量紫外分光光度計(jì)和1.5%瓊脂糖凝膠電泳分別檢測(cè)總RNA純度及完整性后,使用HiFiScript cDNA Synthesis Kit試劑盒(北京康為世紀(jì)生物科技有限公司)將其反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,-20 ℃保存?zhèn)溆?。在NCBI中檢索HIF-1α(Hypoxia inducible factor-1alpha)、EPO(Erythropoietin)和HSP90α(Heat shock protein 90 alpha)基因序列,以β-actin為管家基因,利用Primer-BLAST程序設(shè)計(jì)引物(表1),委托生工生物工程(上海)股份有限公司合成。實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng)體系20.0 μL:2×UltraSYBR Mixture 10.0 μL,上、下游引物各0.4 μL,cDNA模板0.8 μL,ddH2O 8.4 μL。擴(kuò)增程序:95 ℃預(yù)變性10 min;95 ℃ 10 s,60 ℃ 30 s,72 ℃ 32 s,進(jìn)行39個(gè)循環(huán);60 ℃ 30 s,95 ℃ 15 s。以2-ΔΔCt法換算目的基因的相對(duì)表達(dá)量。

1. 5 統(tǒng)計(jì)分析

試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Excel 2013進(jìn)行統(tǒng)計(jì)整理,并以SPSS 22.0分別進(jìn)行單因素方差分析(One-way ANOVA)和Duncans多重比較。

2 結(jié)果與分析

2. 1 急性低氧脅迫對(duì)翹嘴鱖肝臟抗氧化酶活性的影響

由圖1可知,對(duì)照組翹嘴鱖肝臟CAT活性無顯著變化(P>0.05,下同),試驗(yàn)組翹嘴鱖在整個(gè)急性低氧脅迫過程中其肝臟CAT活性呈先升高后降低的變化趨勢(shì)。試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟CAT活性在低氧脅迫初期持續(xù)升高但與對(duì)照組相比無顯著差異,至脅迫12 h時(shí)顯著升高(P<0.05,下同),CAT活性達(dá)最高值(40.13 U/mg),是對(duì)照組的1.70倍;隨后呈逐漸下降趨勢(shì),但至脅迫96 h時(shí)CAT活性仍顯著高于對(duì)照組。

由圖2可知,對(duì)照組翹嘴鱖肝臟GSH含量無顯著變化,試驗(yàn)組翹嘴鱖在整個(gè)急性低氧脅迫過程中其肝臟GSH含量變化趨勢(shì)與CAT活性相似,均呈先升高后降低的變化趨勢(shì),但較CAT活性變化更明顯。低氧脅迫6 h時(shí)試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟GSH含量顯著高于對(duì)照組,且呈持續(xù)升高趨勢(shì);至脅迫12 h時(shí)GSH含量達(dá)最高值(22.65 μmol/g),是對(duì)照組的6.24倍;隨后開始下降,但直至脅迫96 h時(shí)試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟GSH含量仍顯著高于對(duì)照組。

由圖3可知,對(duì)照組翹嘴鱖肝臟GPT活性無顯著變化,試驗(yàn)組翹嘴鱖在整個(gè)急性低氧脅迫過程中其肝臟GPT活性變化也呈先升高后降低的變化趨勢(shì)。在低氧脅迫6 h時(shí),試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟GPT活性與對(duì)照組間無顯著差異;至脅迫12 h時(shí)GPT活性顯著高于對(duì)照組,至脅迫48 h時(shí)GPT活性達(dá)最高值(12.93 U/g),是對(duì)照組的2.26倍;隨后開始下降,但直至脅迫96 h時(shí)GPT活性仍顯著高于對(duì)照組。

2. 2 急性低氧脅迫對(duì)翹嘴鱖鰓組織呼吸相關(guān)酶活性的影響

由圖4可知,對(duì)照組翹嘴鱖鰓組織LDH活性無顯著變化,試驗(yàn)組翹嘴鱖在整個(gè)急性低氧脅迫過程中其鰓組織LDH活性呈先升高后降低再升高的變化趨勢(shì)。低氧脅迫6 h時(shí)試驗(yàn)組翹嘴鱖鰓組織LDH活性達(dá)最高值(849.67 U/mg),是對(duì)照組的1.34倍,顯著高于對(duì)照組;隨后開始下降,至脅迫24 h時(shí)LDH活性達(dá)最低值(380.32 U/mg),顯著低于對(duì)照組;至脅迫96 h時(shí)LDH活性略有回升,但仍顯著低于對(duì)照組。

由圖5可知,對(duì)照組翹嘴鱖鰓組織ATPase活性無顯著變化,試驗(yàn)組翹嘴鱖在整個(gè)急性低氧脅迫過程中其鰓組織ATPase活性呈降低—升高—降低的變化趨勢(shì)。低氧脅迫6 h時(shí),試驗(yàn)組翹嘴鱖鰓組織ATPase活性顯著低于對(duì)照組,至脅迫24 h時(shí)達(dá)最低值(0.35 U/mg),僅為對(duì)照組的16%;隨后ATPase活性略有回升,但仍顯著低于對(duì)照組。

2. 3 急性低氧脅迫對(duì)翹嘴鱖低氧誘導(dǎo)反應(yīng)相關(guān)基因表達(dá)的影響

如圖6所示,在整個(gè)急性低氧脅迫過程中,試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟HIF-1α基因的相對(duì)表達(dá)量呈逐漸升高趨勢(shì)。低氧脅迫24 h內(nèi),試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟HIF-1α基因的相對(duì)表達(dá)量與對(duì)照組的差異均不顯著;從脅迫48 h起HIF-1α基因的相對(duì)表達(dá)量顯著高于對(duì)照組,至脅迫96 h時(shí)其相對(duì)表達(dá)量達(dá)最高值,是對(duì)照組的9.57倍。

如圖7所示,在整個(gè)急性低氧脅迫過程中,試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟EPO基因的相對(duì)表達(dá)量呈先升高后降低的變化趨勢(shì)。低氧脅迫12 h時(shí),試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟EPO基因的相對(duì)表達(dá)量達(dá)最高值,顯著高于對(duì)照組;隨后呈下調(diào)趨勢(shì),但至脅迫24 h時(shí)EPO基因的相對(duì)表達(dá)量仍顯著高于對(duì)照組;從脅迫48 h起,試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟EPO基因的相對(duì)表達(dá)量與對(duì)照組相比無顯著差異。

如圖8所示,在整個(gè)急性低氧脅迫過程中,試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟HSP90α基因的相對(duì)表達(dá)量呈升高—降低—升高—降低的波動(dòng)變化趨勢(shì)。低氧脅迫6 h時(shí),試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟HSP90α基因的相對(duì)表達(dá)量達(dá)最高值,顯著高于對(duì)照組;隨后開始下調(diào),至脅迫12 h時(shí)其相對(duì)表達(dá)量開始與對(duì)照組持平;至脅迫48 h時(shí)試驗(yàn)組翹嘴鱖肝臟HSP90α基因的相對(duì)表達(dá)量又出現(xiàn)一個(gè)峰值,且顯著高于對(duì)照組,但至脅迫96 h時(shí)HSP90α基因的相對(duì)表達(dá)量又降至對(duì)照組水平。

3 討論

3. 1 翹嘴鱖肝臟抗氧化酶活性對(duì)急性低氧脅迫的響應(yīng)

需氧生物的正常新陳代謝均會(huì)產(chǎn)生少量活性氧自由基(ROS),參與其體內(nèi)的各種生理活動(dòng)。當(dāng)機(jī)體受到逆境脅迫時(shí),體內(nèi)產(chǎn)生的ROS大量積累而造成氧化損傷??寡趸割愒谇宄嘤郣OS的過程中發(fā)揮重要作用(亢玉靜等,2013),CAT和GSH是抗氧化酶類的重要組成部分,是反映機(jī)體健康與否的重要指標(biāo)(梁俊平等,2019)。本研究結(jié)果表明,低氧脅迫下翹嘴鱖肝臟的CAT活性和GSH含量均呈先升高后降低的變化趨勢(shì)。低氧脅迫6 h時(shí)翹嘴鱖肝臟GSH含量升高顯著高于對(duì)照組,至脅迫12 h時(shí)GSH含量達(dá)最高值;與此同時(shí),翹嘴鱖肝臟CAT活性升高,至脅迫12 h時(shí)顯著高于對(duì)照組。說明低氧脅迫致使翹嘴鱖體內(nèi)的ROS含量升高,從而引起抗氧化酶系統(tǒng)誘導(dǎo)CAT活性和GSH含量升高,以清除體內(nèi)過多的ROS,將ROS誘導(dǎo)的脂質(zhì)過氧化程度控制在其生理可耐受范圍內(nèi)(Lushchak et al.,2001),保護(hù)機(jī)體不受損害,與陳世喜等(2016)的研究結(jié)果相似。至脅迫24 h時(shí),翹嘴鱖肝臟CAT活性和GSH含量分別出現(xiàn)下降趨勢(shì),可能是因低氧脅迫時(shí)間過長(zhǎng),翹嘴鱖體內(nèi)的ROS得不到及時(shí)清除而大量積累,超過體內(nèi)抗氧化酶系統(tǒng)的耐受極限,致使抗氧化酶活性下降,與常志成等(2018)的研究結(jié)果相似。至脅迫96 h時(shí),翹嘴鱖肝臟CAT活性和GSH含量雖然顯著高于對(duì)照組,但相對(duì)于脅迫12 h時(shí)明顯降低,其原因可能是翹嘴鱖體內(nèi)ROS含量已超過體內(nèi)抗氧化酶系統(tǒng)的耐受極限,導(dǎo)致抗氧化系統(tǒng)受損,但仍具有抗氧化作用??梢姡脱趺{迫前期翹嘴鱖體內(nèi)抗氧化酶系統(tǒng)被激活,隨著脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),其抗氧化酶系統(tǒng)雖然受到影響,但仍然繼續(xù)行使抗氧化功能。

GPT能催化氨基從丙氨酸向α-酮戊二酸轉(zhuǎn)移,形成谷氨酸和丙酮酸(劉沛,2014),其活性反映蛋白合成與分解代謝的狀況(李開放和徐奇友,2019),是判斷肝細(xì)胞損傷的重要指標(biāo)之一(羅莎等,2016)。本研究結(jié)果表明,低氧脅迫下翹嘴鱖肝臟GPT活性呈先升高后降低的變化趨勢(shì)。低氧脅迫12 h時(shí)翹嘴鱖肝臟GPT活性顯著高于對(duì)照組,表明低氧脅迫導(dǎo)致翹嘴鱖體內(nèi)的ROS含量升高,雖然激活了抗氧化酶系統(tǒng),但由于未能及時(shí)清除過多的ROS,致使肝細(xì)胞受損傷,GPT活性升高,與陳靜怡等(2018)的研究結(jié)果一致;同時(shí)說明CAT和GSH的協(xié)同作用對(duì)GPT的影響具有滯后性。在脅迫48 h時(shí),GPT活性升高至最高值,表明隨著脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),大量ROS在體內(nèi)積累而得不到及時(shí)清除,嚴(yán)重影響抗氧化酶系統(tǒng)。至脅迫96 h時(shí),可能是機(jī)體進(jìn)行自我調(diào)節(jié)后稍有恢復(fù),GPT活性有所下降,但仍顯著高于對(duì)照組。

3. 2 翹嘴鱖鰓組織呼吸相關(guān)酶活性對(duì)急性低氧脅迫的響應(yīng)

LDH的功能是催化乳酸氧化形成丙酮酸,在糖酵解與有氧氧化的轉(zhuǎn)換過程中起關(guān)鍵作用(毛瑞鑫等,2009;揭小華等,2015),其活性反映機(jī)體的無氧呼吸代謝水平。鰓組織是魚類的呼吸器官,是溶解氧進(jìn)行氣體交換的場(chǎng)所(王曉雯等,2016)。本研究結(jié)果表明,低氧脅迫6 h時(shí)試驗(yàn)組翹嘴鱖鰓組織LDH活性顯著高于對(duì)照組,但隨后呈逐漸下降趨勢(shì),與李根瑞(2016)的研究結(jié)果相似。說明在低氧脅迫下,翹嘴鱖通過無氧代謝為機(jī)體提供能量,并進(jìn)行自我生理調(diào)節(jié)恢復(fù)。無氧呼吸代謝能力增強(qiáng),促進(jìn)乳酸積累,而積累的乳酸誘導(dǎo)LDH活性上升,形成一種調(diào)節(jié)機(jī)制。脅迫24~96 h,試驗(yàn)組翹嘴鱖鰓組織LDH活性略有回升但仍顯著低于對(duì)照組,與區(qū)又君等(2017)的研究結(jié)果基本吻合,可能是低氧脅迫時(shí)間過長(zhǎng),機(jī)體為應(yīng)對(duì)低氧脅迫帶來的影響而將乳酸轉(zhuǎn)化為葡萄糖,以維持機(jī)體酸堿平衡及葡萄糖供應(yīng)(Oliveira et al.,2004),從而引起乳酸含量下降;也可能是低氧脅迫已超出機(jī)體LDH的調(diào)節(jié)范圍,使其不能發(fā)揮調(diào)節(jié)功能。

ATPase能將三磷酸腺苷(ATP)催化水解為二磷酸腺苷(ADP)和磷酸根離子,釋放能量供給生命活動(dòng),但ATPase的合成及活性均受外界溶解氧變化的影響(王曉雯等,2016)。本研究結(jié)果表明,低氧脅迫下翹嘴鱖鰓組織ATPase活性呈降低—升高—降低的變化趨勢(shì),且顯著低于對(duì)照組,與王春枝等(2014)的研究結(jié)果相似。王春枝等(2014)認(rèn)為在低氧條件下魚類能通過自我調(diào)節(jié)作用,促使ATPase活性升高,但溶解氧降至一定程度時(shí),可能超過魚類自我調(diào)節(jié)的范圍,因此ATPase活性呈急速下降趨勢(shì)。在整個(gè)急性低氧脅迫過程中,LDH活性顯著低于對(duì)照組,可能也影響ATPase活性,究其原因可能是急性低氧脅迫時(shí)間過長(zhǎng)造成翹嘴鱖線粒體或線粒體內(nèi)膜的損傷,從而影響ATPase活性。

3. 3 翹嘴鱖低氧誘導(dǎo)反應(yīng)相關(guān)基因?qū)毙缘脱趺{迫的響應(yīng)

在缺氧條件下,基因表達(dá)變化主要由缺氧誘導(dǎo)因子(HIF alpha)介導(dǎo)(Kalle et al.,2007)。其中,HIF-1α是低氧信號(hào)傳導(dǎo)途徑中的關(guān)鍵因子,對(duì)調(diào)控低氧信號(hào)傳導(dǎo)途徑起重要作用,在多數(shù)高低等動(dòng)物體內(nèi)均有表達(dá)(肖武漢,2014)。孫俊霄等(2019)在黃顙魚低氧(溶解氧含量1.48±0.27 mg/L)脅迫24 h、張凱強(qiáng)等(2020)在花鱸低氧(溶解氧含量1.56±0.24 mg/L)脅迫12 h的研究中發(fā)現(xiàn)HIF-1α基因呈上調(diào)表達(dá),但Geng等(2014)研究表明斑點(diǎn)叉尾鮰在低氧(溶解氧含量1.0 mg/L)脅迫下,HIF-1α基因在脅迫1.5 h時(shí)呈下調(diào)表達(dá),至脅迫5.0 h時(shí)則上調(diào)表達(dá);Mu等(2015)研究發(fā)現(xiàn)許氏平鲉在低氧條件下其肝臟HIF-1α基因表達(dá)無顯著差異。本研究結(jié)果表明,低氧脅迫48 h時(shí)翹嘴鱖肝臟HIF-1α基因的相對(duì)表達(dá)量開始顯著上調(diào),可能是本研究的溶解氧含量較高,翹嘴鱖肝臟HIF-1α信號(hào)通路在低氧脅迫前期未被激活,直至低氧脅迫48 h時(shí)才引起轉(zhuǎn)錄因子HIF累積,HIF-1α基因上調(diào)表達(dá)促使翹嘴鱖能量代謝由有氧向無氧轉(zhuǎn)變(王國善等,2014),以適應(yīng)低氧環(huán)境。

EPO是一種糖蛋白激素,具有促紅細(xì)胞生成的調(diào)節(jié)功能(Chu et al.,2007)。周智涓等(2016)研究證實(shí)缺氧環(huán)境能影響B(tài)MSCs細(xì)胞EPO蛋白的表達(dá)。本研究結(jié)果也表明,低氧脅迫12 h時(shí)翹嘴鱖肝臟EPO基因的相對(duì)表達(dá)量顯著上調(diào),說明低氧誘導(dǎo)了機(jī)體低氧應(yīng)激反應(yīng),通過上調(diào)EPO基因表達(dá)以促進(jìn)翹嘴鱖肝臟紅細(xì)胞的生成,進(jìn)而應(yīng)對(duì)缺氧導(dǎo)致的血氧能力下降,提高機(jī)體的低氧耐受能力。隨后EPO基因表達(dá)持續(xù)下調(diào),至低氧脅迫48 h時(shí)與對(duì)照組差異不顯著,可能是翹嘴鱖通過上調(diào)EPO基因表達(dá)而促使機(jī)體對(duì)氧氣的獲取能力和利用率有所提高,同時(shí)通過反饋機(jī)制抑制EPO基因生成,維持紅細(xì)胞正常水平,以獲得生命活動(dòng)需要的氧氣,使機(jī)體適應(yīng)低氧環(huán)境,進(jìn)而導(dǎo)致EPO基因表達(dá)下調(diào),與趙永麗等(2018)的研究結(jié)論一致。HIF-1α基因和EPO基因具有協(xié)同作用,但在急性低氧脅迫下的應(yīng)激反應(yīng)不同步,可能是二者的響應(yīng)過程及承擔(dān)功能不同,也可能是存在一定的組織特異性,具體原因有待進(jìn)一步探究。

HSP(熱休克蛋白)是一整套高度保守的蛋白,除熱應(yīng)激外,缺氧、局部缺血、毒素等均會(huì)促使其上調(diào)表達(dá)(Roberts et al.,2010)。HSP90家族是HSP最重要的基因家族,常被用作環(huán)境脅迫因子的分子生物標(biāo)志物(劉童,2015)。本研究結(jié)果表明,低氧脅迫后翹嘴鱖肝臟HSP90α基因的相對(duì)表達(dá)量顯著上調(diào),說明肝臟在低氧脅迫下受到影響,機(jī)體通過上調(diào)HSP90α基因表達(dá)而發(fā)揮對(duì)細(xì)胞的保護(hù)作用;隨后其相對(duì)表達(dá)量下調(diào),可能是HSP90α基因表達(dá)上調(diào)發(fā)揮作用,使機(jī)體能適應(yīng)低氧環(huán)境,與徐賀(2015)的研究結(jié)果相似。至脅迫48 h時(shí)HSP90α基因的相對(duì)表達(dá)量又出現(xiàn)一個(gè)峰值,且顯著高于對(duì)照組,可能是隨低氧脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),再次激活機(jī)體氧化應(yīng)激效應(yīng),保護(hù)肝臟細(xì)胞,與王曉雯等(2019)研究發(fā)現(xiàn)急性熱應(yīng)激下西伯利亞鱘幼魚肝臟受到影響但脅迫96 h后能恢復(fù)的結(jié)果相似。

4 結(jié)論

急性低氧脅迫對(duì)翹嘴鱖肝臟抗氧化酶、鰓組織呼吸相關(guān)酶及低氧誘導(dǎo)反應(yīng)相關(guān)基因表達(dá)均產(chǎn)生顯著影響。雖然翹嘴鱖能通過自我調(diào)節(jié)抗氧化酶和呼吸相關(guān)酶活性及上調(diào)低氧誘導(dǎo)反應(yīng)相關(guān)基因表達(dá),促使機(jī)體適應(yīng)低氧環(huán)境,但養(yǎng)殖水體溶解氧降至2.8 mg/L以下即對(duì)翹嘴鱖產(chǎn)生不利影響,因此在實(shí)際養(yǎng)殖過程中須密切關(guān)注養(yǎng)殖水體溶解氧變化。

參考文獻(xiàn):

蔡建中,李洪進(jìn),唐玉華. 2011. 魚蝦蟹池塘微孔增氧高產(chǎn)高效養(yǎng)殖技術(shù)初探[J]. 漁業(yè)致富指南,(1):55-57. [Cai J Z,Li H J,Tang Y H. 2011. Preliminary study on microporous oxygenation and high yield and high efficient aquaculture technology for fish,prawn and crab ponds [J]. Fishery Guide to be Rich,(1):55-57.]

常志成,溫海深,張美昭,李吉方,李昀,張凱強(qiáng),王偉,劉陽,田源,王曉龍. 2018. 溶解氧水平對(duì)花鱸幼魚氧化應(yīng)激與能量利用的影響及生理機(jī)制[J]. 中國海洋大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),48(7):20-28. [Chang Z C,Wen H S,Zhang M Z,Li J F,Li Y,Zhang K Q,Wang W,Liu Y,Tian Y,Wang X L. 2018. Effects of dissolved oxygen levels on oxidative stress response and energy utilization of juvenile Chinese sea bass(Lateolabrax maculatus) and associate physiological mechanisms[J]. Periodical of Ocean University of China,48(7):20-28.]

陳靜怡,王曉雯,朱華,馬國慶. 2018. 不同水溫下低氧脅迫對(duì)西伯利亞鱘生理狀態(tài)的影響[J]. 水產(chǎn)科技情報(bào),45(2):70-76. [Chen J Y,Wang X W,Zhu H,Ma G Q. 2018. Effects of hypoxia stress on the physiological status of Siberian cormorants at different water temperatures[J]. Fisheries Science and Technology Information,45(2):70-76.]

陳世喜,王鵬飛,區(qū)又君,溫久福,李加兒,王雯,謝木嬌. 2016. 急性和慢性低氧脅迫對(duì)卵形鯧鲹幼魚肝組織損傷和抗氧化的影響[J]. 動(dòng)物學(xué)雜志,51(6):1049-1058. [Chen S X,Wang P F,Ou Y J,Wen J F,Li J E,Wang W,Xie M J. 2016. The Effect of acute and chronic hypoxia stress on liver tissue structure and oxidation in juvenile Golden Pompano(Trachinotus ovatus)[J]. Chinese Journal of Zoology,51(6):1049-1058.]

狄治朝,周濤,許強(qiáng)華. 2018. 低氧脅迫與常氧條件下斑馬魚鰓中熱休克蛋白基因家族的表達(dá)差異比較[J]. 大連海洋大學(xué)學(xué)報(bào),33(6):690-695. [Di Z C,Zhou T,Xu Q H. 2018. Expression comparisons of heat shock proteins gene in gills of zebrafish exposed to both normoxia and hypoxia[J]. Journal of Dalian Ocean University,33(6):690-695.]

賈秀琪,張宏葉,王麗,于興達(dá),王佩佩,張國松,尹紹武. 2017. 低氧脅迫對(duì)河川沙塘鱧抗氧化酶及ATP酶活性的影響[J]. 海洋漁業(yè),39(3):306-313. [Jia X Q,Zhang H Y,Wang L,Yu X D,Wang P P,Zhang G S,Yin S W. 2017. Effect of hypoxia stress on the antioxidant enzyme and ATP enzyme activity in tissues of Odontobutis potamophila[J]. Marine Fisheries,39(3):306 -313.]

揭小華,彭雄,黃波,肖影群,羅達(dá)亞. 2015. 乳酸脫氫酶編碼基因在腫瘤中表達(dá)及其轉(zhuǎn)錄調(diào)控機(jī)制的研究進(jìn)展[J]. 腫瘤,35(11):1271-1277. [Jie X H,Peng X,Huang B,Xiao Y Q,Luo D Y. 2015. Progress in research on expression and transcriptional regulation of lactate dehydrogenase coding genes in cancer[J]. Tumor,35(11):1271-1277.]

亢玉靜,郎明遠(yuǎn),趙文. 2013. 水生生物體內(nèi)抗氧化酶及其影響因素研究進(jìn)展[J]. 微生物學(xué)雜志,33(3):75-80. [Kang Y J,Lang M Y,Zhao W. 2013. Advance in antioxi-dant enzymes and its effect factors in aquatic organisms[J]. Journal of Microbiology,33(3):75-80.]

李根瑞. 2016. 仿刺參對(duì)環(huán)境低氧脅迫的生理生化響應(yīng)研究[D]. 上海:上海海洋大學(xué). [Li G R. 2016. Study on the physiological and biochemical responses of Apostichopus japonicus to environmental hypoxia stress[D]. Shanghai:Shanghai Ocean University.]

李開放,徐奇友. 2019. 白藜蘆醇對(duì)松浦鏡鯉生長(zhǎng)性能、腸道消化酶活性、肝臟抗氧化指標(biāo)和血清生化指標(biāo)的影響[J]. 動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)學(xué)報(bào),31(4):1833-1841. [Li K F,Xu Q Y. 2019. Effects of resveratrol on growth performance,intestinal digestive enzyme activities,liver antioxidant indices and serum biochemical indices of Songpu mirror carp[J]. Chinese Journal of Animal Nutrition,31(4):1833-1841.]

梁俊平,張靜,覃寶利,王宣朋,藺玉華,丁辰龍,吳學(xué)軍. 2019. 維生素C對(duì)氨氮脅迫下大鱗鲃?dòng)佐~存活及鰓抗氧化酶活性的影響[J]. 河南農(nóng)業(yè)科學(xué),49(1):157-164. [Liang J P,Zhang J,Qin B L,Wang X P,Lin Y H,Ding C L,Wu X J. 2019. Effects of vitamin C on the survival and antioxidant enzyme activities of juvenile Barbus ca-pito under ammonia-N stress[J]. Journal of Henan Agricultural Sciences,49(1):157-164.]

劉林. 2011. 蟹、鱖池塘微孔增氧高效生態(tài)混養(yǎng)技術(shù)[J]. 漁業(yè)致富指南,(18):47-48. [Liu L. 2011. High efficiency ecological mixed culture technology of micro hole oxygena-tion for Eriocheir sinensis H. Milne-Edwards and Siniperca chuatsi[J]. Fishery Guide to be Rich,(18):47-48.]

劉沛. 2014. 光學(xué)核酸分子探針信號(hào)放大策略用于生化分析的研究[D]. 長(zhǎng)沙:湖南大學(xué). [Liu P. 2014. Reaserch of signal amplification methods of nucleic acid molecular optical probes in biochemical analysis[D]. Changsha:Hunan University.]

劉童. 2015. 基于菲律賓蛤仔的近海多環(huán)芳烴生物監(jiān)測(cè)技術(shù)的研究[D]. 青島:中國海洋大學(xué). [Liu T. 2015. Biological monitoring technology research of offshore PAHs in the clam Ruditapes philippinarum[D]. Qingdao:Ocean University of China.]

羅莎,王秋舉,鞠雪,厲菲菲,高永生,張東鳴. 2016. 氧化魚油對(duì)草魚幼魚磷酸酶和轉(zhuǎn)氨酶活性的影響[J]. 吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),38(3):357-363. [Luo S,Wang Q J,Ju X,Li F F,Gao Y S,Zhang D M. 2016. Effects of oxidized fish oil on activities of phosphatase and aminotransferase in juvenile grass carp(Ctenopharyngodon idella)[J]. Journal of Jilin Agricultural University,38(3):357-363.]

毛瑞鑫,劉福軍,張曉峰,張研,曹頂臣,魯翠云,梁利群,孫效文. 2009. 鯉魚乳酸脫氫酶活性的QTL檢測(cè)[J]. 遺傳,31(4):407-411. [Mao R X,Liu F J,Zhang X F,Zhang Y,Cao D C,Lu C Y,Liang L Q,Sun X W. 2009. Studies on quantitative trait loci related to activity of lactate dehydrogenase in common carp(Cyprinus carpio)[J]. Gene-tics,31(4):407-411.]

區(qū)又君,陳世喜,王鵬飛,李加兒,溫久福,王雯,謝木嬌. 2017. 低氧環(huán)境下卵形鯧鲹的氧化應(yīng)激響應(yīng)與生理代謝相關(guān)指標(biāo)的研究[J]. 南方水產(chǎn)科學(xué),13(3):120-124. [Ou Y J,Chen S X,Wang P F,Li J E,Wen J F,Wang W,Xie M J. 2017. Study on oxidative stress response and physiological metabolism related indices of Trachinotus ovatus under hypoxic stress[J]. South China Fisheries Science,13(3):120-124.]

司亞東,陳英鴻,曾繼參. 1995. 鱖魚的耗氧率及其池塘養(yǎng)殖[J]. 水生生物學(xué)報(bào),19(4):327-332. [Si Y D,Chen Y H,Zeng J S.1995. The oxygen consumption and cultivation of mandarin fish,Siniperca chuatsi[J]. Acta Hydrobiolo-gica Sinica,19(4):327-332.]

孫俊霄,韓廣坤,劉婭,李明波,袁勇超,樊啟學(xué),王銀海,楊賀舒,莫愛杰. 2019. 雜交黃顙魚與普通黃顙魚幼魚生長(zhǎng)性能及耐低氧能力的比較[J]. 水生生物學(xué)報(bào),43(6):1271-1279. [Sun J X,Han G K,Liu Y,Li M B,Yuan Y C,F(xiàn)an Q X,Wang Y H,Yang H S,Mo A J. 2019 .The crowth characteristics and hypoxia tolerant ability of ye-llow catfish and hybrid catfish[J]. Acta Hydrobiologica Sinica,43(6):1271-1279.]

王春枝,李忠,梁宏偉,王丹,吳奎,鄒桂偉. 2014. 低氧脅迫對(duì)鰱線粒體ATP酶活性及F1-δ基因表達(dá)的影響[J]. 中國水產(chǎn)科學(xué),21(3):454-463. [Wang C Z,Li Z,Liang H W,Wang D,Wu K,Zou G W. 2014. The effects of hypoxia stress on mitochondrial ATPase activity and the expression of F1-δ in Hypophthalmichthys molitrix[J]. Journal of Fishery Sciences of China,21(3):454-463.]

王國善,甄毓,王敏曉,王建艷,石巖,米鐵柱,孫松,于志剛. 2014. 急性低氧脅迫下海月水母HIF-1α基因的表達(dá)[J]. 科學(xué)通報(bào),59(18):1715-1722. [Wang G S,Zhen Y,Wang M X,Wang J Y,Shi Y,Mi T Z,Sun S,Yu Z G. 2014. Hypoxia induced gene expression under acute hypoxic stress in Aurelia sp.1[J]. Chinese Science Bulletin,59(18):1715-1722.]

王慧娟. 2015. 低氧對(duì)團(tuán)頭魴生理生化指標(biāo)及低氧應(yīng)答基因表達(dá)的影響[D]. 武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué). [Wang H J. 2015. Hypoxia effect on changes of biochemical and physiolo-gical parameters and the expression of hypoxia response genes in Megalobrama amblycephala[D]. Wuhan:Huazhong Agricultural University.]

王曉雯,張蓉,朱建亞,劉麗麗,馬國慶,朱華. 2019. 急性熱應(yīng)激對(duì)西伯利亞鱘肝功指標(biāo)及肝臟熱休克蛋白表達(dá)的影響[J]. 四川農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),37(1):122-128. [Wang X W,Zhang R,Zhu J Y,Liu L L,Ma G Q,Zhu H. 2019. Effects of acute heat stress on hepatic biochemical index and gene expression of heat shock proteins in Acipenser baeri[J]. Journal of Sichuan Agricultural University,37(1):122-128.]

王曉雯,朱華,胡紅霞,馬國慶. 2016. 低氧脅迫對(duì)西伯利亞鱘幼魚生理狀態(tài)的影響[J]. 水產(chǎn)科學(xué),35(5):459-465. [Wang X W,Zhu H,Hu H X,Ma G Q. 2016. Effects of hypoxia on physiological status of Siberian sturgeon Acipenser baeri juvenile[J]. Fisheries Science,35(5):459-465.]

肖武漢. 2014. 低氧信號(hào)傳導(dǎo)途徑與魚類低氧適應(yīng)[J]. 中國科學(xué):生命科學(xué),44(12):1227-1235. [Xiao W H. 2014. Hypoxia signaling pathway and hypoxia adaptation of fishes[J]. Science China:Life Science,44(12):1227-1235.]

熊向英,黃國強(qiáng),彭銀輝,劉旭佳. 2016. 低氧脅迫對(duì)鯔幼魚生長(zhǎng)、能量代謝和氧化應(yīng)激的影響[J]. 水產(chǎn)學(xué)報(bào),40(1):73-82. [Xiong X Y,Huang G Q,Peng Y H,Liu X J. 2016. Effect of hypoxia on growth performance,energy metabolism and oxidative stress of Mugil cephalus[J]. Journal of Fisheries of China,40(1):73-82.]

徐賀. 2015. 丙氨酰—谷氨酰胺和γ-氨基丁酸對(duì)建鯉生長(zhǎng)、免疫和抗低氧脅迫的影響[D]. 長(zhǎng)春:吉林農(nóng)業(yè)大學(xué). [Xu H. 2015. Effect of Ala-Gln and γ-GABA on growth,immunity and resistance to hypoxia stress of Cyprinus carpio var. jian[D]. Changchun:Jilin Agricultural University.]

楊春,李達(dá),徐光龍,張力. 2003. 鄱陽湖鱖魚窒息點(diǎn)與耗氧率的初步研究[J]. 江西農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),10(4):96-98. [Yang C,Li D,Xu G L,Zhang L. 2003. Preliminary study on asphyxiation point and oxygen consumption rate of Siniperca chuatsi[J]. Acta Agriculturae Jiangxi,10(4):45-48.]

張凱強(qiáng),常志成,溫海深,李吉方,齊鑫,張曉燕,李昀. 2020. 花鱸低氧誘導(dǎo)因子基因(hifs)的序列分析及低氧誘導(dǎo)表達(dá)[J]. 中國海洋大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),50(1):39-47. [Zhang K Q,Chang Z C,Wen H S,Li J F,Qi X,Zhang X Y,Li Y. 2020. Sequence analysis and hypoxia-induced expression of hypoxia inducible factor gene(hifs) in La-teolabrax maculatus[J]. Periodical of Ocean University of China,50(1):39-47.]

章愛華. 2017. 蟹、鱖池塘微孔增氧生態(tài)高效養(yǎng)殖技術(shù)[J]. 河北漁業(yè),(3):39-41. [Zhang A H. 2017. Microporous aera-tion and ecological high-efficiency aquaculture technology for Eriocheir sinensis H. Milne-Edwards and Siniperca chuatsi[J]. Hebei Fisheries,(3):39-41.]

趙永麗,吳蓉蓉,晁燕,陳祺昌,夏明哲,祁得林. 2018. 花斑裸鯉Epo和Epor基因克隆及其低氧誘導(dǎo)的mRNA表達(dá)[J]. 動(dòng)物學(xué)雜志,53(2):220-233. [Zhao Y L,Wu R R,Chao Y,Chen Q C,Xia M Z,Qi D L. 2018. cDNA cloning and hypoxia-induced mRNA expression of Epo and Epor genes in Gymncypris eckloni[J]. Chinese Journal of Zoo-logy,53(2):220-233.]

周智涓,伍衛(wèi),黃穗花,劉茂,陳劍. 2016. 低氧環(huán)境對(duì)大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞交感神經(jīng)重構(gòu)相關(guān)因子表達(dá)的影響[J]. 中西醫(yī)結(jié)合心腦血管病雜志,14(6):599-603. [Zhou Z J,Wu W,Huang S H,Liu M,Chen J. 2016. Effect of hypoxic environment on expression of sympathetic nerve remodeling related factors in rat bone marrow mesenchymal stem cells[J]. Chinese Journal of Integrative Medicine on Cardio-Cerebrovascular Disease,14(6):599-603.]

Abdel-Tawwab M,Monier M N,Hoseinifar S H,F(xiàn)aggio C. 2019. Fish response to hypoxia stress:Growth,physiolo-gical,and immunological biomarkers[J]. Fish Physiology and Biochemistry,45(3):997-1013.

Chu C Y,Cheng C H,Chen G D,Chen Y C,Hung C C,Huang K Y,Huang C J. 2007. The zebrafish erythropoietin:Functional identification and biochemical characte-rizations[J]. FEBS Letters,581(22):4265-4271.

Geng X,F(xiàn)eng J B,Liu S K,Wang Y P,Arias C,Liu Z J. 2014. Transcriptional regulation of hypoxia inducible factors alpha(HIF-α) and their inhibiting factor(FIH-1) of channel catfish(Ictalurus punctatus) under hypoxia[J]. Comparative Biochemistry and Physiology. Part B:Biochemistry and Molecular Biology,169:38-50.

Kalle T R,Vuori K A M,Primmer C R,Nikinmaa M. 2007. Comparison of hypoxia-inducible factor-1 alpha in hypo-xia-sensitive and hypoxia-tolerant fish species[J]. Compa-rative Biochemistry and Physiology. Part D: Genomics and Proteomics,2(2):177-186.

Lushchak V I,Lushchak L P,Mota A A,Hermes-Lima M. 2001. Oxidative stress and antioxidant defenses in goldfish Carassius auratus during anoxia and reoxygenation[J]. American Journal of Physiology Regulatory,Integrative and Comparative Physiology,280(1):R100-R107.

Mu W J,Wen H S,Li J F,He F. 2015. HIFs genes expression and hematology indices responses to different oxygen treatments in an ovoviviparous teleost species Sebastes schlegelii[J]. Marine Environmental Research,110:142-151.

Oliveira G T,Eichler P,Rossi I C,Da Silva R S M. 2004. Hepatopancreas gluconeogenesis during anoxia and post-ano-xia recovery in Chasmagnathus granulata crabs maintained on high-proteinor carbohydrate-rich diets[J]. Journal of Experimental Zoology. Part A:Comparative Experi-mental Biology,301(3):240-248.

Omlin T,Weber J M. 2010. Hypoxia stimulates lactate dispo-sal in rainbow trout[J]. Journal of Experimental Biology,213(22):3802-3809.

Pichavant K,Maxime V,Thébault M T,Ollivier H,Garnier J P,Bousquet B,Diouris M,Boeuf G,Nonnotte G. 2002. Effects of hypoxia and subsequent recovery on turbot Scophtalmus maximus:Hormonal changes and anaerobic metabolism[J]. Marine Ecology Progress Series,225:275-285.

Rinaldi L,Basso P,Tettamanti G,Grimaldi A,Terova G,Saroglia M,de Eguileor M. 2005. Oxygen availability causes morphological changes and a different VEGF/FIk-1/HIF-2 expression pattern in sea bass gills[J]. Italian Journal of Zoology,72(2):103-111.

Roberts R J,Agius C,Saliba C,Bossier P,Sung Y Y. 2010. Heat shock proteins(chaperones) in fish and shellfish and their potential role in relation to fish health:A review[J]. Journal of Fish Diseases,33(10):789-801.

Sun J L,Zhao L L,Liao L,Tang X H,Cui C,Liu Q,He K,Ma J D,Jin L,Yan T,Zhou J,Yang S. 2020. Interactive effect of thermal and hypoxia on largemouth bass(Micropterus salmoides) gill and liver:Aggravation of oxidative stress,inhibition of immunity and promotion of cell apoptosis[J]. Fish & Shellfish Immunology,98:923-936.

Wedemeyer G A. 1996. Interactions with water quality conditions[J]. Physiology of Fish in Intensive Culture Systems,4:60-110.

Wu C B,Zheng G D,Zhao X Y,Zhou S,Zou S M. 2020. Hypoxia tolerance in a selectively bred F4 population of blunt snout bream(Megalobrama amblycephala) under hypoxic stress[J]. Aquaculture,518:734484. doi:10.1016/ j.aquaculture.2019.734484.

(責(zé)任編輯 蘭宗寶)

猜你喜歡
抗氧化酶
牡荊苷對(duì)腦缺血再灌注損傷小鼠抗氧化酶的影響
外源氯化鈣對(duì)大蒜幼苗鹽脅迫傷害的緩解作用
[CX2]NaCl脅迫對(duì)萌發(fā)期甜高粱和春小麥生理生化特性的影響
[CX2]NaCl脅迫對(duì)萌發(fā)期甜高粱和春小麥生理生化特性的影響
低溫脅迫對(duì)不同豇豆品種抗寒性生理特性的影響
模擬酸雨和富營(yíng)養(yǎng)化復(fù)合脅迫對(duì)水葫蘆抗氧化酶的影響
重金屬鎘脅迫對(duì)油橄欖幼苗生長(zhǎng)的影響
不同養(yǎng)殖環(huán)境中的中華絨螯蟹組織抗氧化劑水平和抗氧化酶活力
不同預(yù)處理對(duì)PEG脅迫下水稻幼苗抗氧化系統(tǒng)的影響
ABA對(duì)匍枝筋骨草防御酶活性及蛻皮激素合成的影響
清镇市| 临海市| 景泰县| 调兵山市| 淮北市| 延长县| 宜城市| 延边| 北海市| 湖州市| 临城县| 云梦县| 洱源县| 冀州市| 呼玛县| 开封市| 淮滨县| 阳山县| 恩平市| 达州市| 武城县| 启东市| 方正县| 临汾市| 庆阳市| 三都| 大英县| 青田县| 龙里县| 高安市| 沙田区| 千阳县| 耒阳市| 黔西| 扎鲁特旗| 泽普县| 东乌珠穆沁旗| 东城区| 长白| 渭源县| 平远县|