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吉西他濱對(duì)小鼠實(shí)驗(yàn)性自身免疫性心肌炎的影響

2019-04-29 02:09倪道斌呂宏祥陳蓉田雨張士清蘇兆亮許化溪
關(guān)鍵詞:吉西心肌炎炎性

倪道斌,呂宏祥,陳蓉,田雨,張士清,蘇兆亮,許化溪

(江蘇大學(xué)醫(yī)學(xué)院,江蘇 鎮(zhèn)江212013)

實(shí)驗(yàn)性自身免疫性心肌炎(experimental autoimmune myocarditis,EAM)是模擬自身免疫性炎癥的疾病模型,Th17細(xì)胞在心肌炎的發(fā)生中起重要作用[1-2]。骨髓來源的抑制性細(xì)胞(myeloid-derived suppressor cell,MDSC)是一群異質(zhì)性細(xì)胞,為樹突狀細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和粒細(xì)胞的前體,生理情況下能迅速分化為成熟的樹突狀細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和粒細(xì)胞,并進(jìn)入相應(yīng)的器官、組織,發(fā)揮正常免疫功能[3-4]。研究顯示,MDSC在炎癥、腫瘤和自身免疫疾病中增殖和聚集,參與疾病的進(jìn)展[5]。但是,MDSC和Th17細(xì)胞在EAM中的相互作用尚不清楚。吉西他濱是阿糖胞苷類似物,是一種新型的細(xì)胞周期抗代謝物,可以阻止細(xì)胞從G1期向S期的進(jìn)展致細(xì)胞死亡[6-7],多應(yīng)用于腫瘤和炎癥的治療[8-10]。研究發(fā)現(xiàn),吉西他濱可通過減少M(fèi)DSC的數(shù)量從而抑制腫瘤的進(jìn)展[11]。但是,吉西他濱在EAM中的作用尚不清楚。本研究擬探討吉西他濱在EAM模型中的作用以及MDSC和Th17細(xì)胞的相互關(guān)系。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)對(duì)象

21只6~8 周齡雄性Balb/c小鼠購自揚(yáng)州大學(xué)比較醫(yī)學(xué)中心,動(dòng)物合格證編號(hào):201807105。SPF條件下適應(yīng)飼養(yǎng)1周,15只用于構(gòu)建EAM小鼠模型,6只用于分選Na?ve CD4+T細(xì)胞和MDSC。本實(shí)驗(yàn)動(dòng)物方案均經(jīng)過江蘇大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物保護(hù)與使用委員會(huì)批準(zhǔn)。

1.2 主要儀器和試劑

qRT-PCR擴(kuò)增儀(美國(guó)ABI公司);流式細(xì)胞儀(美國(guó)BD公司);酶標(biāo)儀(美國(guó)Bio-Rad公司);Triozol試劑(美國(guó)Invitrogen公司);反轉(zhuǎn)錄試劑盒,SYBR Green PCR 試劑盒(大連TaKaRa公司);ELISA試劑盒(杭州聯(lián)科生物技術(shù)股份有限公司);MDSC分離試劑盒,Na?ve CD4+T細(xì)胞分離試劑盒(德國(guó)Miltenyi Biotec公司);IL-17A,Gr-1,CD11b流式抗體(美國(guó)BD公司);豬心肌肌球蛋白(上海生工生物公司);吉西他濱(江蘇豪森藥業(yè)股份有限公司);IL-17A引物由上海生工生物公司合成。

1.3 EAM小鼠模型的建立和處理

取1.5 mg豬心肌肌球蛋白,溶于75μL乙腈和150μL冰醋酸,用雙蒸水定容至1.5 mL;將溶液與弗氏完全佐劑按照1∶1體積混合,乳化為1號(hào)均勻的乳濁液,用于建立EAM小鼠模型。分別取50μL乙腈、100μL冰醋酸、850μL雙蒸水,共1 mL,與弗氏完全佐劑按照1∶1體積混合,乳化為2號(hào)均勻的乳濁液,用于注射對(duì)照組小鼠。

將15只Balb/c小鼠分為對(duì)照組,EAM組,EAM+吉西他濱組,每組5只。對(duì)照組:于第1天和第7天背部皮下多點(diǎn)注射2號(hào)乳濁液,每只200μL。EAM組和EAM+吉西他濱組于第1天和第7天背部皮下多點(diǎn)注射1號(hào)乳濁液,每只200μL。EAM+吉西他濱組于第1天開始,給予吉西他濱腹腔注射(50 mg/kg),每3 d注射1次。在第21天,取眼球血,頸椎脫臼處死3組小鼠,取心臟和脾臟組織用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

1.4 Na?ve CD4+T細(xì)胞和MDSC分選及共培養(yǎng)

于超凈臺(tái)中取6只Balb/c小鼠脾臟,經(jīng)篩網(wǎng)研磨得到脾細(xì)胞懸液;用無菌滴管吸入無菌離心管中,經(jīng)ACK裂解紅細(xì)胞后,行500×g離心5 min,棄上清液。按照Na?ve CD4+T細(xì)胞磁珠分選試劑盒說明書操作,先加適量MACS緩沖液稀釋混勻,加入CD4+T細(xì)胞生物素抗體混勻,4℃孵育5 min;再加入CD4+T微磁珠4℃孵育10 min;用MACS緩沖液濕潤(rùn)柱子,將細(xì)胞懸液加入柱子,收集通過柱子的細(xì)胞,即為Na?ve CD4+T細(xì)胞;標(biāo)記CD4流式抗體,用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)分選的Na?ve CD4+T細(xì)胞純度。

按照MDSC磁珠分選試劑盒說明書操作,用500μL PBE重懸脾細(xì)胞,加入10μL FcR封閉液混勻,4℃靜置30 min;加10μL Gr-1抗體混勻,4℃靜置30 min;加入10 mL PBE,吸管吹打洗滌并吸棄大的雜質(zhì);4℃行500×g離心10 min;棄上清液,加600μL PBE重懸;加20μL抗生素磁珠4℃靜置30 min;過MS分離柱;最后用PBE將MS分離柱中細(xì)胞壓出得到MDSC,標(biāo)記CD11b,Gr-1抗體后用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)分選的MDSC細(xì)胞純度。

按照MDSC、Na?ve CD4+T細(xì)胞磁珠分選試劑盒分別分離出MDSC、Na?ve CD4+T細(xì)胞。本實(shí)驗(yàn)分為3組,活化組、誘導(dǎo)組和共培養(yǎng)組?;罨M是經(jīng)CD3抗體和CD28抗體活化Na?ve CD4+T細(xì)胞;誘導(dǎo)組是用IL-6和TGF-β誘導(dǎo)活化Na?ve CD4+T細(xì)胞分化為Th17細(xì)胞;共培養(yǎng)組使用誘導(dǎo)分化的Th17細(xì)胞,然后按照MDSC∶Th17=2∶1比例共培養(yǎng);培養(yǎng)3 d,流式細(xì)胞儀檢測(cè)各組Th17細(xì)胞比例。

1.5 HE染色觀察心臟組織炎細(xì)胞浸潤(rùn)及炎癥評(píng)分

取“1.3”中的心臟組織,4%低聚甲醛固定,石蠟包埋,4μm切片;二甲苯、梯度乙醇水化切片;蘇木精染色2 min,流水沖洗;伊紅染色2 min,流水沖洗;梯度乙醇、二甲苯脫水10 min;中性樹脂封片,晾干,于光鏡下觀察炎性細(xì)胞浸潤(rùn)情況。

根據(jù)Pummerer等[12]提出的4級(jí)標(biāo)準(zhǔn)行炎癥評(píng)分。0分:無炎性細(xì)胞浸潤(rùn);1分:少量炎性細(xì)胞浸潤(rùn);2分:局灶炎性細(xì)胞浸潤(rùn);3分:炎性細(xì)胞浸潤(rùn)10%~30%;4分:炎性細(xì)胞浸潤(rùn)大于30%。

1.6 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)小鼠脾臟中MDSC和Th17細(xì)胞比例

取“1.3”中得到的脾臟組織放入濾網(wǎng)中,加入PBS研磨制備脾細(xì)胞懸液,用ACK裂解紅細(xì)胞;4℃行3 500 r/min離心5 min;棄上清液后分2管,每管加250μL PBS重懸細(xì)胞,一管依次加入Gr-1和CD11b熒光抗體各1μL;另一管加入IL-17A熒光抗體1μL,室溫避光孵育15 min;加入1 mL PBS混勻,4℃行3 500 r/min離心5 min;棄去未結(jié)合的熒光抗體上清液,加入200μL PBS重懸,然后經(jīng)流式細(xì)胞儀檢測(cè)MDSC和Th17細(xì)胞比例。

1.7 ELISA法檢測(cè)小鼠血清中IL-17A濃度

取“1.3”中眼球血,常溫靜置30 min,4℃行3500 r/min離心5 min;取100μL血清加入包被好抗體的反應(yīng)孔中,加HRP標(biāo)記的抗體,37℃孵育1 h;洗滌液反復(fù)洗5遍;加底物顯色15 min;加終止液,經(jīng)酶標(biāo)儀檢測(cè)各樣本IL-17A濃度。

1.8 組織RNA提取和qRT-PCR檢測(cè)心肌組織IL-17A mRNA的表達(dá)

取“1.3”中的心臟組織1 mg,剪碎后加入1 mL Trizol,按照RNA提取步驟提取組織RNA。用核酸分析儀檢測(cè)RNA濃度和純度。選取濃度大于100 ng/μL,純度D(260 nm)/D(280 nm)位于1.8~2.0的RNA行反轉(zhuǎn)錄。按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA,反應(yīng)條件:37℃15 min,85℃5 s,4℃保存。將獲得的cDNA作為模板行qRT-PCR檢測(cè)IL-17A mRNA表達(dá)。擴(kuò)增條件:95℃預(yù)變性15 s,95℃變性10 s,60℃退火20 s,72℃延伸15 s,共40個(gè)循環(huán)。以GAPDH為內(nèi)參,采用2-ΔΔCT法行相對(duì)定量分析。

1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS 15.0軟件和GraphPad Prism 5.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析和制圖,計(jì)量數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,組間數(shù)據(jù)比較采用單因素方差分析,進(jìn)一步兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn),所有實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次以上。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 心肌炎癥損傷情況

HE染色結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,EAM組心臟組織中以淋巴細(xì)胞為主的炎性細(xì)胞浸潤(rùn)增多,并且可見心肌細(xì)胞壞死;與EAM組相比,EAM+吉西他濱組小鼠心臟組織中炎性細(xì)胞浸潤(rùn)減少。心肌炎癥評(píng)分顯示,與對(duì)照組相比,EAM組心臟組織炎癥評(píng)分明顯升高(t=6.364,P<0.05);與EAM組相比,EAM+吉西他濱組心臟組織炎癥評(píng)分明顯降低(t=4.95,P<0.05)。見圖1。

2.2 吉西他濱下調(diào)EAM模型鼠脾臟中MDSC和Th17的比例

如圖2所示,與對(duì)照組相比,EAM組MDSC比例明顯增加(t=12.43,P<0.05),Th17比例也明顯增加(t=16.42,P<0.05)。但與EAM組比較,EAM+吉西他濱組小鼠脾臟中MDSC和Th17比例均明顯降低(t=22.64,15.52,P均<0.05)。

圖1 各組小鼠心臟組織炎性細(xì)胞浸潤(rùn)情況(HE染色)及炎癥評(píng)分

圖2 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)各組小鼠脾臟中MDSC和Th17比例

2.3 MDSC促進(jìn)Na?ve CD4+T細(xì)胞向Th17細(xì)胞分化

流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示,與活化組相比,誘導(dǎo)組Th17細(xì)胞比例明顯增加(t=8.888,P<0.05),說明IL-6和TGF-β可促進(jìn)活化的Na?ve CD4+T細(xì)胞向Th17細(xì)胞分化。與誘導(dǎo)組相比,共培養(yǎng)組Th17細(xì)胞比例明顯增加(t=19.36,P<0.05),說明MDSC促進(jìn)Na?ve CD4+T細(xì)胞向Th17細(xì)胞分化。見圖3。

圖3 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)各組Th17細(xì)胞比例

2.4 吉西他濱下調(diào)EAM模型小鼠血清中IL-17A濃度和IL-17A mRNA水平

ELISA法檢測(cè)結(jié)果顯示,與對(duì)照組比較,EAM組血清中IL-17A濃度明顯上升(t=74.36,P<0.05);與EAM組比較,EAM+吉西他濱組小鼠血清中IL-17A濃度明顯下降(t=35.52,P<0.05)。見圖4。

圖4 ELISA法檢測(cè)各組小鼠血清IL-17A濃度

qRT-PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,與對(duì)照組比較,EAM組心肌組織中IL-17A mRNA表達(dá)量明顯上升(t=32.00,P<0.05)。與EAM組比較,EAM+吉西他濱組IL-17A mRNA水平明顯降低(t=23.27,P<0.05)。見圖5。

圖5 qRT-PCR檢測(cè)各組IL-17A mRNA表達(dá)水平

3 討論

心肌炎特征表現(xiàn)為心肌細(xì)胞變性壞死和相關(guān)炎性細(xì)胞的浸潤(rùn)。心肌炎和其后遺癥擴(kuò)張性心肌病是年輕人心力衰竭發(fā)生猝死的主要原因[13]。既往研究表明,CVB3是北美和歐洲引起病毒性心肌炎最常見的病原體之一[14-15]。EAM在組織學(xué)上與病毒性心肌炎相似,所以研究EAM可以為臨床治療病毒性心肌炎和評(píng)價(jià)預(yù)后療效提供依據(jù)。本研究表明,吉西他濱可抑制EAM小鼠心肌炎癥,但具體機(jī)制還不清楚。既往研究表明,T細(xì)胞尤其是輔助性T細(xì)胞,在心肌炎癥的發(fā)生中起著重要作用[16];Th17細(xì)胞是CD4+T細(xì)胞分化的表型,分泌IL-17A和IL-6等炎癥因子進(jìn)而促進(jìn)炎癥的進(jìn)展。Th17細(xì)胞在系統(tǒng)性紅斑狼瘡、類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎和多發(fā)性硬化等自身免疫疾病的發(fā)展中起重要作用[17-18]。既往研究表明,在EAM急性期,Th1和Th17細(xì)胞增殖并且促進(jìn)炎癥進(jìn)展[19]。本研究結(jié)果表明,與EAM組比較,EAM+吉西他濱組Th17細(xì)胞明顯降低,說明吉西他濱抑制Th17細(xì)胞從而抑制心肌炎。

MDSC是具有免疫抑制功能的未成熟骨髓細(xì)胞的異質(zhì)群體,在小鼠中,MDSC在表型上定義為CD11b+Gr1+細(xì)胞,其進(jìn)一步分類為G-MDSC和MMDSC,前者如CD11b+Ly6G+Ly6Clow細(xì)胞,后者如CD11b+Ly6G-Ly6Chi細(xì)胞[20]。MDSC在膠原誘導(dǎo)的關(guān)節(jié)炎和類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎的發(fā)病中發(fā)揮顯著的促炎作用[21]。本研究結(jié)果顯示,EAM組小鼠心臟組織中MDSC比例較對(duì)照組明顯增加,說明MDSC促進(jìn)EAM的進(jìn)展。MDSCs在Th17極化條件下以高效方式增強(qiáng)幼稚CD4+T細(xì)胞前體向Th17細(xì)胞的分化,如Th17細(xì)胞數(shù)量顯著增加,IL-17A 濃度升高[22-23]。本研究結(jié)果顯示,MDSC與誘導(dǎo)的Th17細(xì)胞共培養(yǎng)可以促進(jìn)Na?ve CD4+T細(xì)胞向Th17細(xì)胞分化,并且吉西他濱可降低小鼠脾臟中MDSC和Th17比例,由此推測(cè)吉西他濱可能通過抑制MDSC進(jìn)而抑制Th17細(xì)胞,從而抑制心肌炎,但其具體機(jī)制有待于進(jìn)一步研究。

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