馮偉科,于華蕓,王媛,趙月,吳智春
(山東中醫(yī)藥大學,濟南250355)
黃連和大黃是歷代本草明確記載的寒性中藥,具有清熱瀉火解毒等功效[1,2]。前期基因芯片研究結(jié)果顯示,二藥均可調(diào)控應(yīng)答刺激免疫反應(yīng)相關(guān)基因表達,以增強機體防御和應(yīng)答功能,發(fā)揮一定抗炎、抗菌作用,這可能是其寒以清熱的主要分子機制[3,4]。Toll樣受體(TLR)家族是介導炎癥反應(yīng)的關(guān)鍵受體蛋白[5],其中TLR2可通過增強核轉(zhuǎn)錄因子κB(NF-κB)的活化介導細菌及其產(chǎn)物對機體細胞的激活和損傷[6],而白細胞介素4受體相關(guān)激酶(IRAK4)是TLR2/NF-κB信號通路下游的關(guān)鍵因子。炎癥反應(yīng)可導致炎性因子水平升高,如IL-1β、IL-6等。2017年2月,我們以巨噬細胞RAW264.7為研究對象,觀察黃連和大黃的主要活性成分小檗堿和大黃酸[7,8]對LPS誘導的炎癥反應(yīng)及TLR2/NF-κB信號通路的影響,為進一步闡明寒性中藥抗炎分子機制提供實驗依據(jù)。
1.1 主要材料 RAW264.7細胞購自齊氏生物科技有限公司,DMEM完全培養(yǎng)基購自HyClone公司;LPS購自Sigma公司;IL-1β、IL-6 ELISA檢測試劑盒購自華美生物工程有限公司;TRIzol購自Invitrogen公司,TIANScript RT Kit、SuperReal PreMix Plus(SYBR Green)購自天根生物科技有限公司;熒光定量PCR儀購自美國ABI公司,IRAK4、NF-κΒ p65、TLR2、β-actin引物由上海生工生物工程股份有限公司合成;TLR2、IRAK4、NF-κΒ p65抗體購自Abcam公司。
1.2 實驗方法
1.2.1 細胞培養(yǎng)與分組干預(yù) RAW264.7細胞培養(yǎng)于DMEM完全培養(yǎng)基中,37 ℃、5% CO2恒溫培養(yǎng)箱孵育。將細胞隨機分為4組:空白組以完全培養(yǎng)基常規(guī)培養(yǎng),LPS誘導組加入10 ng/mL LPS誘導4 h,小檗堿組和大黃酸組分別用20 μmol/L小檗堿和30 μmol/L大黃酸預(yù)處理2 h后,加入10 ng/mL LPS誘導4 h。
1.2.2 細胞上清液中炎性因子IL-1β和IL-6檢測 采用ELISA法。收集各組細胞,以1 000 r/min離心10 min,保留細胞上清液。按照試劑盒說明書進行操作,酶標儀檢測樣品450 nm波長吸光度,繪制標準曲線;根據(jù)樣品吸光度值,從標準曲線查得上清液中IL-1β和IL-6水平,評價炎癥反應(yīng)程度。實驗重復3次。
1.2.3 細胞中TLR2、IRAK4、NF-κB p65 mRNA檢測 采用實時熒光定量PCR法。TRIzol試劑提取各組細胞總RNA,按TIANScript RT Kit說明書反轉(zhuǎn)錄得到cDNA,利用SuperReal PreMix Plus試劑盒及熒光定量PCR儀進行實時熒光定量PCR分析。反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性10 min;95 ℃變性15 s,60 ℃退火60 s,40個循環(huán)。以β-actin為內(nèi)參,以2-ΔΔCt表示樣品中目的基因相對表達量。實驗重復3次。TLR2/NF-κB信號通路相關(guān)基因及內(nèi)參引物序列,見表1。
表1 TLR2/NF-κB信號通路相關(guān)基因及內(nèi)參引物序列
1.2.4 細胞中TLR2、IRAK4、NF-κΒ p65蛋白檢測 采用Western blotting法。提取各組細胞蛋白質(zhì),BCA法檢測蛋白質(zhì)濃度;調(diào)整蛋白濃度,取相同總量的蛋白上樣至10% SDS-PAGE中,電泳,轉(zhuǎn)膜。轉(zhuǎn)膜完畢后,加入5%脫脂牛奶封閉1 h;加入一抗,4 ℃搖床孵育過夜,TBST室溫下脫色搖床洗膜3次;加入二抗,室溫孵育30 min,TBST清洗3次;化學發(fā)光,顯影,定影。采用Image J軟件分析電泳條帶灰度值,以目的蛋白與β-actin灰度比值表示目的蛋白的相對表達量。實驗重復3次。
2.1 各組細胞上清液中IL-1β、IL-6水平比較 LPS誘導組、小檗堿組和大黃酸組細胞上清液中IL-1β、IL-6水平均高于空白組(P均<0.05);小檗堿組和大黃酸組細胞上清液中IL-1β、IL-6水平均低于LPS誘導組(P均<0.05)。見表1。
2.2 各組細胞中TLR2、IRAK4和NF-κΒ p65 mRNA表達比較 LPS誘導組、小檗堿組和大黃酸組細胞中TLR2、IRAK4和NF-κΒ p65 mRNA表達量均高于空白組(P均<0.05),小檗堿組和大黃酸組細胞中TLR2、IRAK4和NF-κΒ p65 mRNA表達量均低于LPS誘導組(P均<0.05)。見表2。
表1 各組細胞上清液中IL-1β、IL-6水平比較
注:與空白組比較,*P<0.05;與LPS誘導組比較,#P<0.05。
表2 各組TLR2、IRAK4和NF-κΒ p65 mRNA表達比較
注:與空白組比較,*P<0.05;與LPS誘導組比較,#P<0.05。
2.3 各組細胞中TLR2、IRAK4和NF-κΒ p65蛋白表達比較 LPS誘導組、小檗堿組和大黃酸組細胞中TLR2、IRAK4和NF-κΒ p65蛋白表達量均高于空白組(P均<0.05),小檗堿組和大黃酸組細胞中TLR2、NF-κΒ p65蛋白表達量均低于LPS誘導組(P均<0.05),小檗堿組細胞中IRAK4蛋白表達量均低于LPS誘導組(P<0.05)。見表3。
表3 各組細胞中TLR2、IRAK4和NF-κΒ p65蛋白表達比較
注:與空白組比較,*P<0.05;與LPS誘導組比較,#P<0.05。
細菌、病毒等病原體引起的急性感染,中醫(yī)臨床辨證多屬“熱證”范疇,“治熱以寒”,臨證據(jù)法當以寒涼中藥為主組方[9]。前期基因芯片研究顯示,寒性代表中藥黃連和大黃可影響炎癥反應(yīng)相關(guān)基因LBP、TLR2等的表達[3,4]。LBP編碼的LPS結(jié)合蛋白可以增強細胞對LPS的反應(yīng)性,激發(fā)機體炎癥反應(yīng);TLR2編碼的TLR2蛋白可誘生多種促炎癥細胞因子,介導機體免疫應(yīng)答,增強機體防御反應(yīng)。這些可能是黃連和大黃發(fā)揮清熱瀉火作用的機制之一。本實驗擬在此基礎(chǔ)上對基因芯片結(jié)果進行驗證,進一步揭示寒性中藥發(fā)揮抗炎作用的信號機制。
中藥有效單體成分清楚,質(zhì)量可控,效力專宏,往往起關(guān)鍵作用[10]。目前,基于中藥有效單體成分的新藥開發(fā),是研發(fā)具有自主知識產(chǎn)權(quán)新藥的重要途徑之一[11]?,F(xiàn)代藥理學研究表明,黃連抗內(nèi)毒素的藥效物質(zhì)基礎(chǔ)是生物堿類,其中小檗堿約占5%,是黃連的主要活性單體[7];大黃酸則為大黃給藥1 h后血清指紋譜中含量較高成分[8],是大黃主要活性單體之一。本實驗采用LPS誘導巨噬細胞RAW264.7建立炎癥細胞模型,以黃連和大黃主要活性單體小檗堿和大黃酸進行干預(yù)研究。
RAW264.7為鼠源巨噬細胞系,是研究炎癥反應(yīng)的常用細胞模型。革蘭陰性菌細胞壁中的LPS可誘導該細胞表達多種炎性因子,其中IL-1β可趨化并激活中性粒細胞,IL-6可誘導T淋巴細胞和B淋巴細胞分化,放大炎癥反應(yīng),從而導致組織細胞損傷[12]。本實驗結(jié)果亦顯示,LPS誘導RAW264.7細胞IL-1β、IL-6分泌顯著增多,小檗堿和大黃酸預(yù)處理均可明顯抑制此升高趨勢。由此可見,小檗堿和大黃酸可減少LPS誘導的炎性因子IL-1β、IL-6的產(chǎn)生,具有明顯的抗炎作用。
TLR是機體抵抗感染性疾病的第一道屏障,可以被病原體激活并迅速啟動炎癥反應(yīng)。其中,TLR2可通過增強NF-κB的活化介導細菌及其產(chǎn)物對機體細胞的激活和損傷[6]。TLR2識別LPS后,通過下游信號分子髓樣分化因子88募集IRAK4[13,14]。IRAK4兼具絲氨酸/蘇氨酸激酶活性和酪氨酸激酶活性,在TLR介導的信號通路中起正向調(diào)節(jié)作用[15]。內(nèi)源性的IRAK4以前炎癥細胞因子依賴的方式與IRAK1和腫瘤壞死因子受體活化因子6(TRAF6)相互作用,促進IκB磷酸化降解,從而去除了對NF-κB的抑制作用,導致NF-κB活化[16,17]?;罨腘F-κB是由p50亞單位和p65亞單位組成的異源二聚體,可以進入細胞核,引起炎癥介質(zhì)基因的轉(zhuǎn)錄和表達[18]。本實驗結(jié)果顯示,LPS誘導RAW264.7細胞TLR2、IRAK4和NF-κB p65 mRNA及蛋白表達均升高,小檗堿和大黃酸均可明顯下調(diào)上述信號分子的表達,提示影響TLR2/NF-κB信號通路可能是小檗堿和大黃酸抗炎的分子機制之一。
綜上所述,寒性中藥黃連和大黃的主要活性單體小檗堿和大黃酸可下調(diào)TLR2/NF-κB通路信號分子表達,減少炎性因子產(chǎn)生,發(fā)揮一定抗炎作用,這可能是黃連和大黃清熱瀉火功效的物質(zhì)基礎(chǔ)和分子機制之一。本實驗僅觀察了小檗堿和大黃酸的抗炎作用及相關(guān)機制,黃連、大黃的其他活性單體的作用及機制有待于進一步研究探討。