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大戟苷誘導人宮頸癌Hela細胞凋亡及其作用機制研究

2018-09-10 02:38張德莉李曉強白銀亮何榮霞呂銀鳳文惠方魏麗
中國藥房 2018年20期
關鍵詞:凋亡宮頸癌機制

張德莉 李曉強 白銀亮 何榮霞 呂銀鳳 文惠方 魏麗

中圖分類號 R285 文獻標志碼 A 文章編號 1001-0408(2018)20-2773-04

DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2018.20.08

摘 要 目的:研究大戟苷對人宮頸癌Hela細胞凋亡的誘導作用及其機制。方法:取Hela細胞分為空白對照組、順鉑組(陽性對照,10 mg/L)和大戟苷低、中、高劑量組(50、100、200 mg/L),分別加入相應藥物進行培養(yǎng)。藥物作用24、48、72 h后,采用MTT法檢測細胞增殖抑制率。藥物作用48 h后,采用流式細胞術檢測細胞凋亡率,采用Hoechst 33258染色法檢測細胞核的形態(tài)變化;采用Western blot法檢測細胞色素C(Cyt-C)、Bcl-2、Bax、Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9和Caspase-10蛋白表達水平。結果:與空白對照組比較,順鉑組和大戟苷各劑量組細胞增殖抑制率和細胞凋亡率均顯著升高(P<0.05或P<0.01),細胞核濃染,或有變形、縮小、碎裂,或出現(xiàn)凋亡小體。與空白對照組比較,大戟苷低、中、高劑量組細胞中Cyt-C、Caspase-8和Caspase-9蛋白表達水平均顯著升高,Bcl-2蛋白表達水平和Bcl-2/Bax比值均顯著降低(P<0.05或P<0.01);大戟苷中、高劑量組細胞中Bax、Caspase-3和Caspase-10蛋白表達水平均顯著升高(P<0.05或P<0.01)。結論:大戟苷能顯著抑制Hela細胞增殖、促進細胞凋亡,其作用可能是通過激活Caspase依賴的線粒體凋亡途徑來實現(xiàn)的。

關鍵詞 大戟苷;宮頸癌;Hela細胞;凋亡;機制

ABSTRACT OBJECTIVE: To study induction effect of euphornin on the apoptosis of cervical cancer Hela cells and its mechanism. METHODS: The cervical cancer Hela cells were divided into blank control group, cisplatin group (positive control, 10 mg/L) and euphornin low-dose, medium-dose and high-dose groups (50, 100, 200 mg/L). They were treated with relevant medicine. The inhibitory effect of Hela cells proliferation was tested by MTT assay after 24, 48, 72 h of medicine treatment. The apoptotic rate of Hela cells was measured by flow cytometry after 48 h of medicine treatment. Morphology of nucleus was detected by Hoechst 33258 staining. The protein expression of Cyt-C,Bcl-2,Bax,Caspase-3,Caspase-8,Caspase-9 and Caspase-10 were detected by Western blot assay. RESULTS: Compared with blank control group, inhibitory rate of cell proliferation and cell apoptosis rate were increased significantly in cisplatin group and euphornin groups (P<0.05 or P<0.01), and obvious staining, deformation, shrinking, fragmentation or apoptotic bodies was found in nucleus. Compared with blank control group, the protein expression levels of Cyt-C, Caspase-8 and Caspase-9 in euphornin low-dose, medium-dose and high-dose groups were increased significantly, while the protein expression level of Bcl-2 and Bcl-2/Bax ratio were decreased significantly (P<0.05 or P<0.01); the protein expression levels of Bax,Caspase-3 and Caspase-10 in euphornin medium-dose and high-dose groups were increased significantly (P<0.05 or P<0.01). CONCLUSIONS: Euphornin can significantly inhibit the proliferation of Hela cell and promote cell apoptosis, the effect of which will be achieved by activating the Caspase-dependent mitochondrion apoptosis pathway.

KEYWORDS Euphornin;Cervical cancer;Hela cell;Apoptosis; Mechanism

宮頸癌是女性最常見的婦科惡性腫瘤之一,發(fā)病率在全球女性腫瘤中居第3位,嚴重威脅女性健康[1]。澤漆是大戟屬植物澤漆(Euphorbia helioscopia L.)的干燥全草,其作為民間驗方的重要組成部分用于治療宮頸癌、食道癌等表現(xiàn)出一定療效,因此其抗腫瘤活性引起了研究者的廣泛關注[2-3]。近年來,有研究者對澤漆的不同溶劑提取物進行了抗腫瘤活性篩選,發(fā)現(xiàn)其對多種腫瘤細胞均有一定的抑制作用[2-4]。以往研究顯示,澤漆的乙酸乙酯、石油醚、氯仿等萃取液對肝癌SMMC7721細胞、HepG2細胞,胃癌SGC7901細胞和肺癌A549細胞均有顯著的增殖抑制作用,其機制可能是通過線粒體途徑誘導腫瘤細胞凋亡[5-8]。目前的研究大多是針對澤漆的提取混合物,對其單體活性成分的研究較少。只有Chen H等[9]于2012年首次研究了澤漆的二萜酯類單體活性成分之一大戟苷(Euphornin)的細胞毒作用,結果發(fā)現(xiàn)其對肺腺癌LA795細胞增殖具有顯著的抑制作用,因此提出大戟苷是澤漆提取物發(fā)揮抗腫瘤作用的最關鍵組分之一,但并未對其抗腫瘤作用機制作進一步研究?;诖耍菊n題組擬研究大戟苷誘導人宮頸癌Hela細胞凋亡的作用及其機制,為大戟苷臨床上用于宮頸癌的治療提供實驗基礎。

1 材料

1.1 儀器

BB15型CO2細胞培養(yǎng)箱(美國Thermo Scientific公司);Synergy H1型全功能酶標儀(美國BioTek公司);IX51型熒光顯微鏡(日本Olympus公司);FACS Calibur型流式細胞儀(美國BD公司);DYY-Ⅲ型電泳儀、DYY-Ⅲ型電泳槽(北京六一實驗儀器廠);Z216K型高速冷凍離心機(德國Hermle 公司)。

1.2 藥品與試劑

大戟苷(蘭州大學天然藥物化學教研室,批號:20151121,純度:≥98%);順鉑注射液(江蘇豪森藥業(yè)股份有限公司,批號:160508,規(guī)格:30 mg/6 mL);四甲基偶氮唑藍(MTT)、Hoechst 33258染色試劑盒、Annexin V-FITC細胞凋亡檢測試劑盒、ECL化學發(fā)光試劑盒(碧云天生物技術研究所);鼠抗人細胞色素C(Cyt-C)、Bcl-2、Bax、Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9、Caspase-10、β-actin單克隆抗體和辣根過氧化物酶標記兔抗鼠二抗(美國Santa Cruz公司);BCA蛋白定量分析試劑盒、胎牛血清、DMEM培養(yǎng)基、雙抗(青霉素-鏈霉素)、磷酸鹽緩沖液(PBS,pH 7.4)[賽默飛世爾科技(中國)有限公司];水為雙蒸水。

1.3 細胞

人宮頸癌Hela細胞株由中國科學院上海細胞庫提供。

2 方法

2.1 細胞培養(yǎng)

取Hela細胞,在含有10%胎牛血清、100 U/mL青霉素、100 μg/mL 鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基(以下簡稱“DMEM培養(yǎng)基”)中,于37 ℃、5%CO2條件下培養(yǎng)。待細胞生長至對數(shù)生長期時取出用于試驗。

2.2 細胞增殖抑制率檢測

采用MTT法檢測。將Hela細胞以5×104個/孔接種于96孔培養(yǎng)板,在37 ℃、5%CO2條件下培養(yǎng)24 h;將細胞分為空白對照組、順鉑組(陽性對照)和大戟苷低、中、高劑量組,分別加入含相應藥物的DMEM培養(yǎng)基。根據(jù)文獻[9],大戟苷低、中、高劑量組的藥物終質(zhì)量濃度分別為50、100、200 mg/L;順鉑組的藥物終質(zhì)量濃度為10 mg/L;空白對照組加入等體積的不含藥DMEM培養(yǎng)基。加藥后繼續(xù)培養(yǎng)24、48、72 h。每組細胞均設6個復孔平行操作。培養(yǎng)完畢后收集細胞,以MTT染色液染色,采用酶標儀在492 nm波長處檢測吸光度(OD值),計算大戟苷對Hela細胞的增殖抑制率。細胞增殖抑制率(%)=(1-試驗組OD值/對照組OD值)×100%。試驗重復3次。

2.3 細胞凋亡率檢測

采用流式細胞術檢測。將Hela細胞以1×105個/孔接種于6孔培養(yǎng)板中,在37 ℃、5%CO2條件下培養(yǎng)24 h;按“2.2”項下方法進行分組及加入相應藥物;繼續(xù)培養(yǎng)48 h后收集細胞,用預冷的PBS洗滌2次;按照Annexin V-FITC細胞凋亡檢測試劑盒說明書操作,采用流式細胞儀檢測細胞凋亡率。試驗重復3次。

2.4 細胞核形態(tài)觀察

采用Hoechst 33258染色法檢測。按“2.3”項下方法取Hela細胞接種、培養(yǎng)、分組及加入相應藥物;繼續(xù)培養(yǎng)48 h后收集細胞并制成細胞懸液(1×104個/mL);按照Hoechst 33258染色試劑盒說明書操作后,于熒光顯微鏡下觀察Hela細胞核形態(tài)并對圖像進行分析。鏡下可見細胞呈藍色熒光;凋亡細胞的細胞核濃染,或有變形、縮小或碎裂,或出現(xiàn)凋亡小體。

2.5 細胞中凋亡相關蛋白表達水平檢測

采用Western blot法檢測。按“2.3”項下方法取Hela細胞接種、培養(yǎng),分為空白對照組(不含藥DMEM培養(yǎng)基)和大戟苷低、中、高劑量組(終質(zhì)量濃度分別為50、100、200 mg/L),加入相應藥物;繼續(xù)培養(yǎng)48 h后加入含蛋白酶抑制劑的RIPA裂解液冰浴裂解25 min,收集細胞,在4 ℃條件下15 000 r/min離心25 min,取上清,采用BCA法進行總蛋白定量,-80 ℃保存?zhèn)溆?。蛋白采?0%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分離,轉膜,5%脫脂奶粉封閉2 h后,加入一抗(Cyt-C、Bcl-2、Bax、Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9、Caspase-10、β-actin,稀釋度均為1 ∶ 1 000),4 ℃孵育過夜,然后加入二抗室溫孵育2 h,電化學發(fā)光法顯色。以β-actin為參比,采用Image Pro Plus 6.0軟件分析目標條帶的相對灰度值,以表示蛋白表達水平。試驗重復3次。

2.6 統(tǒng)計學方法

數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(x±s)表示。應用SPSS 15.0軟件對多組間比較進行單因素方差分析,對組間兩兩比較進行LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

3 結果

3.1 大戟苷對Hela細胞增殖的影響

與空白對照組比較,順鉑組和大戟苷低、中、高劑量組細胞加入相應藥物作用24、48、72 h后,細胞增殖抑制率均顯著升高,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.01),表明不同劑量的大戟苷對Hela細胞增殖均有顯著的抑制作用。各組細胞增殖抑制率比較見表1。

3.2 大戟苷對Hela細胞凋亡的影響

與空白對照組比較,順鉑組和大戟苷低、中、高劑量組細胞加入相應藥物作用48 h后,細胞凋亡率均顯著升高,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.01),表明不同劑量的大戟苷均能夠誘導Hela細胞發(fā)生凋亡。各組細胞的流式細胞圖見圖1,細胞凋亡率比較見表2。

3.3 大戟苷對Hela細胞核形態(tài)的影響

熒光顯微鏡下可見,與空白對照組比較,順鉑組細胞的細胞核出現(xiàn)明顯的濃染、碎裂和凋亡小體;大戟苷低、中、高劑量組細胞的細胞核有不同程度的濃染或變形、縮小、碎裂,其中大戟苷中、高劑量組細胞出現(xiàn)凋亡小體。這表明大戟苷可劑量依賴性促進Hela細胞發(fā)生凋亡。各組細胞的細胞核形態(tài)顯微圖見圖2。

3.4 大戟苷對Hela細胞中凋亡相關蛋白表達的影響

與空白對照組比較,藥物作用48 h后,大戟苷低、中、高劑量組細胞中Cyt-C、Caspase-8和Caspase-9蛋白表達水平均顯著升高,Bcl-2蛋白表達水平和Bcl-2/Bax比值均顯著降低;大戟苷中、高劑量組細胞中Bax、Caspase-3和Caspase-10蛋白表達水平均顯著升高,以上差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05或P<0.01)。各組細胞中凋亡相關蛋白電泳圖見圖3,蛋白表達水平比較見表3。

4 討論

本課題組在預試驗中考察了大戟苷對正常細胞系MRC-5細胞和人宮頸癌Hela細胞增殖的抑制作用,結果發(fā)現(xiàn)不同劑量的大戟苷(50、100、200 mg/L)均能顯著抑制Hela細胞增殖,但對MRC-5細胞未表現(xiàn)出明顯的增殖抑制作用。因此,本研究采用上述劑量進行試驗。

線粒體凋亡途徑是細胞凋亡最主要的途徑之一,通常凋亡信號能引起線粒體的通透性轉換孔(PT)開放,導致線粒體跨膜電位下降和Cyt-C釋放進入細胞質(zhì)[10]。作為凋亡誘導因子,Cyt-C能與凋亡酶激活因子(Apaf-1)、Caspase-9前體、腺嘌呤核糖核苷酸/腺嘌呤脫氧核糖核苷酸(ATP/dATP)形成凋亡體,然后募集并激活Caspase-3,進而誘發(fā)Caspase家族級聯(lián)反應,最終導致細胞凋亡[11-13]。同時,Bcl-2家族蛋白能夠調(diào)節(jié)PT孔的開放和關閉:促凋亡蛋白Bax可通過與PT孔的腺苷轉位因子(ANT)和電壓依賴性陰離子通道(VDAC)結合介導PT孔的開放,繼而發(fā)揮其促凋亡效應;而抗凋亡蛋白Bcl-2則可通過與Bax競爭性地結合ANT或VDAC,繼而發(fā)揮其抗凋亡效應[14-16]。本研究結果顯示,大戟苷能顯著誘導Hela細胞發(fā)生凋亡,升高Cyt-C、Bax蛋白表達水平,降低Bcl-2蛋白表達水平。這提示大戟苷能誘導Cyt-C向細胞質(zhì)釋放,從而啟動線粒體凋亡途徑。

Caspase蛋白家族屬于半胱氨酸蛋白酶,是誘發(fā)細胞凋亡的關鍵酶,一旦被激活即能降解細胞內(nèi)的蛋白質(zhì),導致細胞發(fā)生不可逆的死亡[17]。Caspase蛋白通常分為兩類:一類是啟動者,如Caspase-8、Caspase-9和Caspase-10,它們能通過自催化或自剪接的方式被激活,繼而引起Caspase家族級聯(lián)反應;另一類是執(zhí)行者,如Caspase-3、Caspase-6和Caspase-7,它們可直接降解細胞內(nèi)結構蛋白和功能蛋白,引起細胞凋亡,但不能通過自催化或自剪接的方式被激活[18]。通常當Cyt-C過度釋放進入細胞質(zhì)后,Caspase-8、Caspase-9和Caspase-10接受凋亡信號后通過異源活化方式激活下游Caspase信號,將凋亡信號級聯(lián)放大,被異源活化的Caspase-3等最終執(zhí)行細胞死亡程序[19-20]。本研究結果顯示,大戟苷能顯著升高Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9和Caspase-10蛋白表達水平。這進一步提示大戟苷能通過啟動線粒體凋亡途徑而誘導Hela細胞凋亡。

綜上所述,大戟苷能顯著抑制Hela細胞增殖、促進細胞凋亡,其作用可能是通過激活Caspase依賴的線粒體凋亡途徑來實現(xiàn)的。

參考文獻

[ 1 ] 魏麗惠,趙超. 宮頸癌及其癌前病變的篩查研究進展[J].中華婦幼臨床醫(yī)學雜志:電子版,2016,36(1):16-19.

[ 2 ] 趙杰,吳繁榮,韓續(xù),等. 澤漆化學成分研究[J]. 安徽醫(yī)科大學學報,2016,51(3):383-388.

[ 3 ] 楊萬里,衷宇,丁井永. 澤漆抗腫瘤作用機制研究進展[J].現(xiàn)代腫瘤醫(yī)學,2016,24(22):3680-3683.

[ 4 ] SALEEM U,AHMAD B,AHMAD M,et al. Determination of cytotoxicity of latex and methanol extract of Euphorbia helioscopia leaves on vero cell line with MTT assay[J]. Pak J Zool,2014,46(3):741-745.

[ 5 ] 邵遠,柳鵬程,程軍勝,等. 澤漆乙酸乙酯提取物對SGC7901/DDP多藥耐藥性的逆轉及機制[J]. 中成藥,2017,39(8):1713-1717.

[ 6 ] WANG ZY,LIU HP,ZHANG YC,et al. Anticancer potential of Euphorbia helioscopia L extracts against human cancer cells[J]. Anat Rec:Hoboken,2012,295(2):223- 233.

[ 7 ] LIU HP,SHI XF,ZHANG YC,et al. Quantitative analysis of quercetin in Euphorbia helioscopia L by RP-HPLC[J]. Cell Biochem & Biophys,2011,61(1):59-64.

[ 8 ] 劉海鵬. 澤漆的體外抗腫瘤作用及其生物活性組分研究[D]. 蘭州:蘭州大學,2011.

[ 9 ] CHEN H,WANG Z,YANG L. Analysis of euphornin in Euphorbia helioscopia L. and its cytotoxicity to mice lung adenocarcinoma cells(LA795)[J]. Nat Prod Res,2012,26(22):2112-2116.

[10] LOPEZ J,TAIT SWG. Mitochondrial apoptosis:killing cancer using the enemy within[J]. Br J Cancer,2015,112(6):957-962.

[11] NAGY A,EDER K,SELAK MA,et al. Mitochondrial energy metabolism and apoptosis regulation in glioblastoma.[J]. Brain Res,2015,1595:127-142.

[12] YU X, ZHOU X, FU C,et al. Celastrol induces apoptosis of human osteosarcoma cells via the mitochondrial apoptotic pathway[J]. Oncol Rep,2015,34(3):1129-1136.

[13] MURPHY AN. Potential mechanisms of mitochondrial cytochrome-C release during apoptosis[J]. Drug Develop Res,1999,46(1):18-25.

[14] GIBSON CJ,DAVIDS MS. Bcl-2 antagonism to target the intrinsic mitochondrial pathway of apoptosis[J]. Clin Cancer Res,2015,21(22):5021-5029.

[15] KONG F,WANG H,GUO J,et al. Hsp70 suppresses apoptosis of BRL cells by regulating the expression of Bcl-2,cytochrome C,and caspase 8/3[J]. In Vitro Cell Dev Biol Anim,2016,52(5):568-575.

[16] ALABSI AM,LIM KL,PATERSON IC,et al. Cell cycle arrest and apoptosis induction via modulation of mitochondrial integrity by Bcl-2 family members and caspase dependence in Dracaena cinnabari-treated H400 human oral squamous cell carcinoma[J]. Biomed Res Int,2016. DOI:10.1155/2016/4904016.

[17] SHALINI S,DORSTYN L,DAWAR S,et al. Old,new and emerging functions of caspases[J]. Cell Death Differ,2015,22(4):526-539.

[18] UNSAIN N,BARKER PA. New views on the misconstrued:executioner caspases and their diverse non-apoptotic roles[J]. Neuron,2015,88(3):461-474.

[19] OLA MS,NAWAZ M,AHSAN H. Role of Bcl-2 family proteins and caspases in the regulation of apoptosis[J].Mol Cell Biochem,2011,351(1/2):41-58.

[20] PALAI TK,MISHRA SR. Caspases:an apoptosis mediator[J]. J Adv Vet Anim Res,2015,2(1):18-22.

(收稿日期:2018-04-25 修回日期:2018-08-24)

(編輯:段思怡)

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