羅喜鋼,王毅,張鳳香
(1.錦州醫(yī)科大學(xué)附屬第三醫(yī)院 檢驗中心,遼寧 錦州 121000;2.錦州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院 胸外科,遼寧 錦州 121001)
血紅素加氧酶1(heme oxygenase-1,HO-1)活性對熱較穩(wěn)定,又被稱為熱休克應(yīng)激反應(yīng)蛋白32,是HO亞型中的可誘導(dǎo)型。在正常的情況下,機體內(nèi)各種組織器官中的HO-1表達(dá)水平極低,當(dāng)機體受到一些刺激因素時其表達(dá)水平和生物活性會有所提高。其中能夠刺激HO-1產(chǎn)生的活化信號分子包括血紅素、內(nèi)毒素、活性氧和生長因子等。在上述誘因下可誘導(dǎo)HO-1生成[1],而鋅原卟啉等物質(zhì)對其有抑制作用。血紅素在其限速酶HO-1的催化下可以代謝生成CO、鐵離子和膽綠素,膽綠素經(jīng)過還原酶的作用生成膽紅素[2]。近年來研究發(fā)現(xiàn)[3],HO-1與其代謝產(chǎn)物有一定的抗炎、抗凋亡、舒張血管等作用。HO-1在許多疾病中都起重要的保護(hù)作用,抑制腎臟HO-1活性會導(dǎo)致腎臟血流灌注減少加重腎功能不全,提高HO-1活性恰恰與其相反。
本實驗通過復(fù)制2型糖尿病腎?。╠iabetic nephropathy,DN)大鼠模型,使用HO-1誘導(dǎo)劑氯化血紅素和抑制劑鋅原卟啉對大鼠模型進(jìn)行藥物干預(yù)后,分析不同組別大鼠腎臟損傷程度與腎臟中HO-1表達(dá)之間的關(guān)系,探討HO-1對2型糖尿病腎病腎臟損傷是否具有保護(hù)作用,為2型糖尿病導(dǎo)致的腎臟損傷提供新的治療思維方式。
200~250 g健康清潔6周齡雄性SD大鼠32只,遼寧長生生物技術(shù)有限公司供給,合格證:SCXK(遼)2010-0001,分籠飼養(yǎng)。氯化血紅素、鋅原卟啉(美國Sigma公司),HO-1多克隆抗體、免疫組織化學(xué)試劑盒、DAB顯色試劑盒(武漢博士德生物技術(shù)有限公司)。
大鼠尾靜脈注射鏈脲佐菌素(Streptozotocin,STZ)復(fù)制DN模型,72 h后用快速血糖儀測血糖,其中≥16.65 mmol/L的大鼠入選實驗組。確定模型復(fù)制成功后,各組大鼠分別進(jìn)行藥物干預(yù)。氯化血紅素是HO-1的誘導(dǎo)劑,DN氯化血紅素組大鼠腹腔注射氯化血紅素30 μmol/kg,1次/2 d,連續(xù)4周;鋅原卟啉是HO-1抑制劑,DN鋅原卟啉組大鼠腹腔注射鋅原卟啉10 μmol/kg,1次/2 d,連續(xù)4周;正常對照組和DN組大鼠腹腔注射等劑量的生理鹽水。氯化血紅素與鋅原卟啉溶液均需現(xiàn)用現(xiàn)配以免藥物失效,藥物需要避光配制。使用0.2 mol/L的氫氧化鈉NaOH溶液對藥品進(jìn)行充分的溶解后,0.2 mol/L的氯化氫HCl調(diào)節(jié)pH值至7.4~8.0。
大鼠腹腔用藥4周后,分別收集各組大鼠24 h尿液。根據(jù)大鼠的體重腹腔注射一定量的10%水合氯醛充分麻醉大鼠,待大鼠麻醉后固定大鼠的四肢于手術(shù)臺上,取血3 ml,將血液緩慢推入一次性試管中,靜止一段時間,當(dāng)有血塊凝集后,以3 000 r/min離心10 min后輕輕取出試管,使用移液器將上層血清轉(zhuǎn)移至無菌EP管中。使用全自動生化分析儀檢測各組大鼠血中丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(alanine aminotransferase,ALT)、血肌酐(serum creatinine,Scr)、尿肌酐(urine creatinine,Ucr)和胱抑素C(cystatin-c,Cys-c)濃度,計算內(nèi)生肌酐清除率(creatinine clearance,Ccr),做相關(guān)性分析。
取血后開腹取大鼠的肝臟和腎臟組織,雙側(cè)腎臟使用大量生理鹽水反復(fù)洗至顏色蒼白為止,取大鼠左側(cè)部分腎臟組織將其修飾為5 mm×5 mm×5 mm左右的組織塊,迅速置于10%甲醛中固定,用于HE染色、免疫組織化學(xué)分析,同時取1 mm×1 mm×1 mm的組織塊,2%戊二醛和1%鋨酸固定,用于電鏡觀察。取右側(cè)腎臟立即放置到-80℃冰箱中用于Western blot檢測。
數(shù)據(jù)分析采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件,計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間的比較采用單因素方差分析(ANOVA),兩組間比較采用t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
經(jīng)單因素方差分析,4組大鼠Scr、Cys-c、Ucr、Ccr比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與正常對照組比較,DN組、DN氯化血紅素組和DN鋅原卟啉組Scr、Ucr、Cys-c、Ccr、Cys-c比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),DN 組 Scr、Cys-c升高(t=7.021 和 27.502,P=0.004和 0.001),Ucr、Ccr降低(t=-6.143和-5.604,P=0.007和0.008)。與DN組比較,DN氯化血紅素組的Scr、Cys-c降低(t=5.041和11.893,P=0.007和0.003),Ucr、Ccr增高(t=-3.922和 -3.623,P=0.009和0.015)。與DN組比較,DN鋅原卟啉組Scr、Cys-c增高(t=-13.924和-6.391,P=0.003和 0.009),Ucr、Ccr降低(t=2.481和7.183,P=0.021和0.006)。見附表。
光鏡下可觀察到對照組大鼠腎臟組織結(jié)構(gòu)正常,腎小球基底膜厚度均勻,足突細(xì)胞排列有序;DN組大鼠腎小球與腎小管結(jié)均有改變,腎小管上皮細(xì)胞排列不整齊,并且有腫脹,脫落等現(xiàn)象,在腎小管中還可見有管型生成,腎小球基底膜增厚,腎小球有一定程度上的萎縮;DN氯化血紅素組大鼠腎小管上皮細(xì)胞濁腫,空泡樣的變性,刷狀緣丟失;DN鋅原卟啉組大鼠腎小管和腎小球的病變最為嚴(yán)重,可見腎小管管腔擴大,上皮細(xì)胞水腫變性,大量的脫落,細(xì)胞質(zhì)和線粒體中有空泡形成,腎小球萎縮,鮑曼囊腔擴大,腎小球基底膜不均勻的增厚,足突細(xì)胞大量的融合。見圖1~3。
Western blot結(jié)果顯示,正常對照組大鼠腎臟中有一定量的HO-1表達(dá);DN組大鼠腎臟中HO-1的表達(dá)較正常對照組大鼠降低;DN氯化血紅素組大鼠腎臟中HO-1表達(dá)高于其他各組;DN鋅原卟啉組大鼠腎臟中幾乎沒有HO-1的表達(dá)。見圖4。
附表 各組大鼠 Scr、Ucr、Ccr、Cys-c 比較 (n =8,±s)
附表 各組大鼠 Scr、Ucr、Ccr、Cys-c 比較 (n =8,±s)
注:1)與正常對照組比較,P <0.05;2)與DN組比較,P <0.05;3)與DN氯化血紅素組比較,P <0.05
組別 Scr/(μmol/L) Ucr/(mmol/L) Ccr/(ml/min) Cys-c/(mg/L)正常對照組 35.59±1.35 9.72±1.12 4.21±0.79 0.24±0.03 DN組 70.52±5.211) 6.42±0.931) 2.40±0.371) 0.75±0.041)DN氯化血紅素組 50.96±2.131)2) 8.55±1.031)2) 3.40±0.621)2) 0.50±0.031)2)DN 鋅原卟啉組 110.18±8.251)2)3) 5.02±1.121)2)3) 1.03±0.301)2)3) 0.91±0.051)2)3)F值 251.315 27.325 38.781 436.206 P值 0.000 0.000 0.000 0.000
圖1 腎臟組織形態(tài) (HE染色×200)
圖2 腎小管組織形態(tài) (電鏡×10 000)
圖3 腎小球組織形態(tài) (電鏡×5 000)
圖4 腎臟HO-1蛋白表達(dá)
HO-1是血紅素代謝過程中的關(guān)鍵酶[4],也是器官、組織、細(xì)胞受損后機體內(nèi)重要的保護(hù)性酶。HO-1具有抗炎、抗凋亡、抗氧化和維持應(yīng)激狀態(tài)下細(xì)胞穩(wěn)定性的作用[5]。此外,現(xiàn)已公認(rèn)HO-1在血液循環(huán)系統(tǒng)具有重要的作用,是潛在的血管調(diào)節(jié)器[6]。本實驗通過藥物干預(yù)改變DN大鼠腎臟內(nèi)HO-1的表達(dá)水平,DN氯化血紅素組大鼠通過腹腔注射氯化血紅素來增加腎臟中HO-1的生成,DN鋅原卟啉組大鼠通過腹腔注射鋅原卟啉減少腎臟HO-1生成。免疫組織化學(xué)和Western blot實驗結(jié)果顯示正常對照組大鼠腎臟中有少量HO-1表達(dá);DN組大鼠腎臟中的HO-1表達(dá)較正常對照組降低;DN氯化血紅素組大鼠腎臟中有大量的HO-1表達(dá)于腎小管上皮細(xì)胞;DN鋅原卟啉組大鼠腎臟內(nèi)幾乎沒有HO-1的表達(dá)。
總之,本實驗結(jié)果表明提高DN大鼠腎臟中HO-1的表達(dá),可以提高腎臟濾過功能并減輕腎臟組織形態(tài)的損傷程度,在一定程度上改善了腎功能。相反,減少DN大鼠腎臟中的HO-1的表達(dá)水平,腎臟內(nèi)Ccr下降,腎小管和腎小球都有一定程度上的損傷,并且小管的損傷程度較腎小球嚴(yán)重,但是確切的作用機制仍不完全清楚,需要進(jìn)一步去探究驗證。
[1]ZHU K,GUO X,PENG W,et al.Protective effects of wheat germ protein isolate hydrolysates (WGPIH) against hydrogen peroxideinduced oxidative stress in PC12 cells[J].Food Res,2013,53(5):297-303.
[2]WONG P,MURRAY C,LOUW J,et al.Adult bronchopulm- onary dysplasia: computed tomography pulmonary findings[J].J Med Imaging Radiat Oncol,2011,55(7): 373-378.
[3]STEFANSON A,BAKOVIC M.Dietary regulation of Keap1/Nrf2/ARE pathway: focus on plant-derived compounds and trace minerals[J].Nutrients,2014,6(8): 3777-3801.
[4]IHO S,MAEYAMA J,SUZUKI F.CpG oligodeoxynucleotides as mucosal adjuvants[J].Hum Vaccin Immunother,2015,11(4): 755-760.
[5]SCHEIERMANN J,KLINMAN D M.Clinical evaluation of CpG oligonucleotides as adjuvants for vaccines targeting infectious diseases and cancer[J].Vaccine,2013,32(5): 6377-6389.
[6]GAO H,MENG J,XING H,et a1.Association of heme oxygenase-1 with the risk of polycystie ovary syndrome in nonobese women[J].Hum Reprod,2014,29(5): 1058-1066.