王 巍,方東輝,付茂忠,甘 佳,唐 慧,石 溢,王 淮,易 軍
(四川省畜牧科學(xué)研究院,動(dòng)物遺傳育種四川省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,成都 610066)
基因組印記(Genomic imprinting),又稱為遺傳印記(Genetic imprinting),是指在配子期或合子期,來自親本(父源或母源)的等位基因或染色體發(fā)生特異性的修飾,導(dǎo)致不同親本來源等位基因具有不同表達(dá)活性的一種不遵從孟德爾定律的單親性特殊遺傳現(xiàn)象[1-2]。絕大多數(shù)的印記基因都是成簇存在的;在印記簇中的印記基因的表達(dá)或沉默是由印記控制區(qū)(Imprinting control regions,ICRs)通過順式作用來調(diào)控的[3]。ICRs實(shí)質(zhì)為一段差異性甲基化區(qū)域(Differentially methylated regions,DMRs),這種差異性甲基化一般是在生殖細(xì)胞中建立的,以調(diào)控整個(gè)印記基因簇的基因沉默情況[4]。因此,印記基因簇可以分為兩種,即在卵母細(xì)胞發(fā)生過程中進(jìn)行修飾而產(chǎn)生的母源印記以及在精子發(fā)生過程中進(jìn)行修飾而產(chǎn)生的父源印記[5-6]。
普-威綜合征(Prader-Willi syndrome,PWS)和安吉爾曼綜合征(Angelman syndrome,AS)是兩種先天性的神經(jīng)行為發(fā)育異常綜合癥。這兩種疾病的臨床癥狀和遺傳形式雖不相同,但病因都與人類染色體15q11~13區(qū)域的母源性印記基因簇有關(guān)。PWS/AS基因簇包含
PWS和AS兩個(gè)亞區(qū),其中PWS亞區(qū)又包含有5個(gè)父源表達(dá)的蛋白編碼基因,即MKRN3、MAGEL2、NDN、SNURF 和 SNRPN[7]。PWS/AS 基因簇的 ICRs區(qū)由 PWSIC和AC-IC兩部分組成;PWS-IC被定位于包括SNRPN的啟動(dòng)子和外顯子1的4.3 kb區(qū)域內(nèi)[8],而AC-IC區(qū)則被定位于SNRPN基因轉(zhuǎn)錄起始點(diǎn)上游35 kb前的880 bp區(qū)域內(nèi)[9]。敲除父源性的PWS-IC區(qū)可致PWS亞區(qū)所有父源基因表達(dá)的沉默[10]。PWS/AS基因簇等母源印記區(qū)是良好的分子標(biāo)簽。應(yīng)用甲基化測序方法檢測克隆動(dòng)物早期胚胎中這些印記區(qū)的甲基化水平,并與體外受精胚胎進(jìn)行比較,可直觀地了解克隆胚中母源染色體的甲基化模式,也可為提高克隆胚胎的成功率提供理論指導(dǎo)。
處于配子期(受精后8 h或激活后5 h)、S期、2-cell期、8-cell期和桑葚期的西門塔爾牛體外受精(IVF)胚胎和體細(xì)胞核移植(SCNT)胚胎每個(gè)時(shí)期各40枚,由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物遺傳育種與繁殖實(shí)驗(yàn)室提供。
按照全細(xì)胞亞硫酸鹽DNA甲基化修飾試劑盒(Epigentek)的操作說明,取20 μL的樣品進(jìn)行DNA的亞硫酸鹽變性及提取,-20℃凍存?zhèn)溆谩?/p>
以PWS/AS基因簇的ICR區(qū)為主要的分析對(duì)象,根據(jù)NCBI上公布的牛SNRPN基因序列(GenBank ID:NM_001079797)查找其啟動(dòng)子序列,使用methyl primer express software v1.0引物設(shè)計(jì)軟件分別在兩個(gè)基因的啟動(dòng)子內(nèi)選取一個(gè)CPG島設(shè)計(jì)引物,用于BSP測序。引物設(shè)計(jì)情況見圖1。
圖1 PCR擴(kuò)增片段在SNRPN基因啟動(dòng)子區(qū)的相對(duì)位置示意圖及引物設(shè)計(jì)
參照天根生化科技(北京)有限公司MasterMix PCR試劑盒的使用說明,在2×25 μL及應(yīng)體系中進(jìn)行PCR反應(yīng),條件如下:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性45 s,53.6℃退火 45 s,72℃延伸 45 s,38 個(gè)循環(huán);72℃末端擴(kuò)增10 min。
用干凈的手術(shù)刀割下含有目的DNA片段的瓊脂糖凝膠,放入1.5 mL離心管中。采用UNIQ-10柱式DNA膠回收試劑盒(上海生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司),按照說明書操作進(jìn)行膠回收?;厥盏腄NA通過pMD19-T載體(大連寶生物公司)進(jìn)行連接,連接產(chǎn)物均勻加入到30 μL的大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞中,冰浴30 min;42℃水浴熱激45 s,然后立即冰上放置冰浴1 min;每管中加入900 μL的LB肉湯培養(yǎng)基,37℃震蕩培養(yǎng)2 h,使細(xì)菌復(fù)蘇,并表達(dá)對(duì)抗生素的抗性;然后涂布于含Amp的LB瓊脂平板中,37℃倒置培養(yǎng)過夜。
挑選平板上的單個(gè)菌落,接種于含Amp的LB肉湯中培養(yǎng)過夜,用菌液作PCR模板進(jìn)行菌落PCR鑒定。從SCNT和IVF胚胎5個(gè)發(fā)育階段菌落樣本中各挑選12~15個(gè)陽性克隆,送上海英俊公司進(jìn)行序列測定。
使用BIQ甲基化分析軟件對(duì)重亞硫酸鹽測序結(jié)果分析,并對(duì)CpG位點(diǎn)的甲基化狀態(tài)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以x±S表示,采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件處理,相同階段不同類型胚胎、相同胚胎不同階段的甲基化水平和甲基化位點(diǎn)比較采用兩因素方差分析(One-way ANOVA)。
PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測后,在250 bp至500 bp之間接近250 bp處出現(xiàn)目的條帶,與目的片段的長度相符,見圖2。
圖2 PCR產(chǎn)物凝膠電泳檢測結(jié)果
各個(gè)發(fā)育階段的IVF胚胎和SCNT胚胎中,SNRPN基因啟動(dòng)子的甲基化測序結(jié)果見表1。
由表1可知,SCNT胚胎發(fā)育時(shí)期PWS/AS亞區(qū)ICR甲基化水平的變化模式為:S期甲基化水平顯著低于其他各時(shí)期(P<0.05),且其他4個(gè)時(shí)期的甲基化水平差異均不顯著(P>0.05);IVF胚胎發(fā)育時(shí)期PWS/AS亞區(qū)ICR甲基化水平的變化模式為:2-cell期甲基化水平顯著低于其他各時(shí)期(P<0.05),且其他4個(gè)時(shí)期的甲基化水平差異也均不顯著(P>0.05)。SCNT胚胎發(fā)育至2-cell期時(shí),PWS/AS亞區(qū)ICR甲基化水平顯著高于IVF胚胎(P<0.05)。
表1 PWS-IC亞區(qū)ICR區(qū)在早期胚胎發(fā)育期中的甲基化值
如圖3所示,SNRPN轉(zhuǎn)錄起始點(diǎn)1 693 bp開始的258 bp序列中共檢測到5個(gè)甲基化位點(diǎn)。
圖3 SNRPN基因啟動(dòng)子的5個(gè)甲基化位點(diǎn)分布
圖4 SCNT和IVF胚胎各發(fā)育時(shí)期5個(gè)位點(diǎn)甲基化水平
由圖4-1可見,配子期SCNT胚胎PWS/AS亞區(qū)ICR中位點(diǎn)1的甲基化水平顯著低于IVF(P<0.05),兩種胚胎其他4個(gè)位點(diǎn)的甲基化水平差異均不顯著(P>0.05);由圖4-2可見,S期SCNT胚胎和IVF胚胎的PWS/AS亞區(qū)ICR中5個(gè)位點(diǎn)甲基化水平差異均不顯著(P >0.05);由圖 4-3可見,2-cell期 SCNT胚胎 PWS/AS亞區(qū)ICR中位點(diǎn)1和位點(diǎn)5的甲基化水平均顯著高于IVF(P<0.05),兩種胚胎其他3個(gè)位點(diǎn)的甲基化水平差異均不顯著(P>0.05);由圖4-4可見,8-cell期SCNT胚胎PWS/AS亞區(qū)ICR中位點(diǎn)1的甲基化水平顯著高于IVF(P<0.05),兩種胚胎其他4個(gè)位點(diǎn)的甲基化水平差異均不顯著(P>0.05);由圖4-5可見,囊胚期SCNT胚胎PWS/AS亞區(qū)ICR中位點(diǎn)1的甲基化水平顯著高于IVF(P<0.05),兩種胚胎其他4個(gè)位點(diǎn)的甲基化水平差異也均不顯著((P>0.05)。因此,位點(diǎn)1和位點(diǎn)5為去甲基化抑制機(jī)制的易感位點(diǎn)。
PWS/AS基因簇的ICR區(qū)表現(xiàn)為母源印記狀態(tài),因此,其ICR區(qū)在早期胚胎發(fā)育過程中的甲基化變化模式可以反映母源染色體的甲基化模式[11]。該ICR印記區(qū)在IVF胚胎中的甲基化模式為2-cell期之前進(jìn)行去甲基化,并于8-cell期開始DNA甲基化的重建。該結(jié)果與前面的免疫熒光結(jié)果相吻合,與Fatima等[3]的試驗(yàn)結(jié)果吻合[3]。IVF 胚胎中 PWS/AS基因簇的 ICR 區(qū)(PWS-IC)在S期前去甲基化并不顯著(P>0.05),發(fā)育到S期,DNA大量復(fù)制后才進(jìn)行了顯著的去甲基化(P<0.05)。該檢測結(jié)果表明,母源基因的印記區(qū)段在S期之前先進(jìn)行微弱的主動(dòng)去甲基化,在S期DNA大量復(fù)制時(shí)進(jìn)行大規(guī)模的被動(dòng)去甲基化。該結(jié)論可以支持Chan、Goll和Morgan等的觀點(diǎn)[12],但還有待更多的試驗(yàn)驗(yàn)證。
SCNT胚胎PWS/AS基因簇的ICR區(qū)(PWS-IC)甲基化模式較IVF胚胎變化比較劇烈,在卵裂之前的SCNT胚胎中PWS/AS基因簇的ICR區(qū)的甲基化水平較IVF胚胎差異不顯著(P>0.05),見表1。卵裂后SCNT的甲基化水平發(fā)生了極顯著的升高,表明母源DNA在S期至2-cell期的發(fā)育階段進(jìn)行了異常的甲基化重建,該結(jié)果證明了Dean等[13]的觀點(diǎn),克隆胚胎甲基化過高的原因?yàn)檫^早地進(jìn)行了甲基化的重建。同時(shí)也提示在去核的卵母細(xì)胞中存在著大量過表達(dá)或功能得到增強(qiáng)的甲基化重建相關(guān)酶,影響基因組的正常去甲基化。超甲基化水平必定會(huì)影響ICR區(qū)對(duì)于整個(gè)基因簇的調(diào)控情況,從而對(duì)細(xì)胞分化、增殖、胚胎發(fā)育等產(chǎn)生重要關(guān)系[14]。McAllister等[15]研究已經(jīng)證實(shí),SNRPN 基因印記的紊亂還會(huì)導(dǎo)致神經(jīng)系統(tǒng)的發(fā)育異常。
PWS-IC區(qū)域甲基化模式改變,導(dǎo)致了SCNT胚胎母源DNA的高甲基化;同時(shí)篩選出了2個(gè)去甲基化抑制機(jī)制的易感位點(diǎn),即SNRPN啟動(dòng)子的1 693 bp開始的258 bp序列中的1號(hào)和5號(hào)位點(diǎn)。推測是母源DNA過早地進(jìn)行了甲基化的重建,造成了克隆胚胎的甲基化過高,建議在核移植過程中優(yōu)化卵母細(xì)胞的篩選機(jī)制和卵母細(xì)胞成熟機(jī)制。
[1]Thorvaldsen J L,Duran K L,Bartolomei MS.Deletion of the H19 differentially methylated domain results in loss of imprinted expression of H19 and Igf2[J].Genes Dev,1998,12:3693-3702.
[2]Drewell R A,Arney K L,Arima T,et al.Novel conserved elements upstream of the H19 gene are transcribed and act as mesodermal enhancers[J].Development,2002,129:1205-1213.
[3]Fatima Santos,Valeri Zakhartchenko,Miodrag Stojkovic,et al.Epigenetic marking correlates with developmental potential in cloned bovine preimplantation embryos[J].Current Biology,2003,13:1116-1121.
[4]Dean W,Santos F,Stojkovic M,et al.Conservation of methylation reprogramming in mammalian development:Aberrant reprogramming in cloned embryos[J].Proc Natl Acad Sci USA,2001,98:13734-13738.
[5]Wolf D P.Assisted reproductive technologies in rhesus macaques[J].Reprod Biol Endocrinol,2004,2:37.
[6]李裕強(qiáng),安志興,張涌.牛卵母細(xì)胞質(zhì)內(nèi)注射體細(xì)胞核移植胚的早期發(fā)育[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào),2005,36(1):33-37.
[7]Barlow D P.Gametic imprinting in mammals[J].Science,1995,270(5242):1610-1613.
[8]Juan V,Crain C,Wilson C.Evidence for evolutionarily conserved secondary structure in the H19 tumor suppressor RNA[J].Nuclear Acids Res,2000,28(5):1221-1227.
[9]Lustig Yariv O,Schulze E,Komitowski D,et al.The expression of the imprinted genes H19 and IGF-2 in choriocarcinoma cell lines.Is H19 a tumor suppressor gene[J].Oncogene,1997,15(2):169-177.
[10]Ariel I,Sughayer M,F(xiàn)ellig Y,et al.The imprinted H19 gene is a marker of early recurrence in human bladder carcinoma [J].Mol-Pathol,2000,53(6):320-323.
[11]Ohta T,Gray T A,Rogan P K,et al.Imprinting-mutation mechanisms in Prader-Willi syndrome[J].Am J Hum Genet,1999,64:397-413.
[12]Chan S W,Henderson I R,Jacobsen S E.Gardening the genome:DNA methylation in Arabidopsis thaliana[J].Nat Rev Genet,2005,6(5):351-360.
[13]Dean W,Santos F,Stojkovic M,etal.Conservation of methylation reprogramming in mammalian development:aberrant reprogramming in cloned embryos[J].Proc Natl Acad Sci USA,2001,98(24):13734-13738.
[14]Couldrey C,Lee R S F.DNA methylation patterns in tissues from mid-gestation bovine foetuses produced by somatic cell nuclear transfer show subtle abnormalities in nuclear reprogramming[J].BMC Developmental Biology,2010,10:27.
[15]McAllister G,Amara S G,Lerner M R.Tissue-specific expression and cDNA cloning of small nuclear ribonucleoprotein-associated polypeptide N[J].Proceeding of the National Academy of Sciences of the United States of America,1988,85(14):5296-5300.