柳忠玉,雷 健,李曉筱,劉 嬋,覃建兵,許 鋒
(1.長(zhǎng)江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,湖北荊州434025;2.長(zhǎng)江大學(xué)園藝園林學(xué)院,湖北荊州434025)
苯丙烷類物質(zhì)在植物中普遍存在,這類次生代謝產(chǎn)物以羥基芳香環(huán)為共同特征,包括總黃酮、黃酮醇、香豆素、木質(zhì)素、花青素、單寧以及白藜蘆醇等。近年來(lái),通過(guò)對(duì)擬南芥、玉米、金魚(yú)草和矮牽牛等植物的研究,發(fā)現(xiàn)了一系列髓細(xì)胞組織增生病毒癌基因同源物(MYB)轉(zhuǎn)錄因子作為調(diào)節(jié)蛋白廣泛參與植物苯丙烷類次生代謝的調(diào)控[1]。MYB也參與調(diào)控藥用植物藥效成分合成,丹參SmMYB39通過(guò)調(diào)控苯丙烷類代謝途徑關(guān)鍵酶基因的表達(dá),進(jìn)而影響迷迭香酸的合成[2]。水母雪蓮中bHLH和WD40兩種轉(zhuǎn)錄因子形成二元復(fù)合體后,和MYB轉(zhuǎn)錄因子共同調(diào)控類黃酮合成途徑中結(jié)構(gòu)基因的表達(dá)[3]??嗍w種子萌發(fā)過(guò)程中子葉中黃酮的積累受FtMyb2與FtMyb3的調(diào)控[4]。在紫外線、傷害和病原菌等脅迫條件下,葡萄VvMYB14和VvMYB15調(diào)控白藜蘆醇合酶基因的表達(dá),進(jìn)而影響白藜蘆醇的合成[5-6]。
虎杖(Polygonum cuspidatum Sieb.et Zucc.)是蓼科多年生草本植物,根或根莖入藥,富含白藜蘆醇、類黃酮等藥效成分。其中白藜蘆醇具有顯著抗腫瘤、抗衰老、保護(hù)心血管系統(tǒng)等生物學(xué)功能[7]?;⒄雀缓陌邹继J醇、類黃酮等都經(jīng)由苯丙烷類代謝途徑而來(lái)。目前,對(duì)虎杖苯丙烷類代謝的研究多集中在結(jié)構(gòu)基因上,例如查爾酮合酶基因PcCHS[8]、聚酮合成酶基因PcPKS[9-10]等。前期已經(jīng)對(duì)虎杖苯丙烷代謝途徑中的結(jié)構(gòu)基因白藜蘆醇合酶基因PcRS進(jìn)行了功能鑒定[11-12]。而有關(guān)MYB轉(zhuǎn)錄因子對(duì)虎杖苯丙烷類代謝的調(diào)控作用知之甚少。鑒于此,從虎杖葉片中克隆苯丙烷類代謝相關(guān)的MYB轉(zhuǎn)錄因子基因,對(duì)其進(jìn)行生物信息學(xué)分析,構(gòu)建MYB基因的原核表達(dá)載體并誘導(dǎo)表達(dá),為研究MYB對(duì)虎杖苯丙烷類代謝的調(diào)控奠定基礎(chǔ)。
虎杖植株由廣州中醫(yī)藥大學(xué)中藥資源科學(xué)與工程研究中心提供。引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。限制性內(nèi)切酶、Taq DNA聚合酶、pMD18-T載體購(gòu)自TaRaKa公司??俁NA提取試劑盒、cDNA第1鏈合成試劑盒和凝膠回收試劑盒購(gòu)自Tiangen公司。SMARTerTMRACE cDNA Amplification Kit購(gòu)自Clontech公司。
1.2.1 虎杖葉片總RNA的提取及反轉(zhuǎn)錄 以野生虎杖葉片為材料,用Trizol法提取總RNA,用cDNA第1鏈合成試劑盒將總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA備用,嚴(yán)格按照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。
1.2.2 MYB基因保守區(qū)域片段的獲得 對(duì)已經(jīng)公布的苯丙烷類代謝相關(guān)的R2R3-MYB轉(zhuǎn)錄因子的核酸序列和氨基酸序列進(jìn)行分析,在保守區(qū)域設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物MYBf和MYBr(表1)。以虎杖葉片cDNA為模板進(jìn)行RT-PCR,PCR反應(yīng)條件為:94℃預(yù)變性2 min;94℃變性30 s,57℃退火30 s,72℃延伸30 s,35個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。將PCR產(chǎn)物進(jìn)行回收并連接至pMD18-T載體上,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α進(jìn)行克隆,挑取單菌落進(jìn)行菌液PCR檢測(cè),將陽(yáng)性菌落送至上海生工生物公司進(jìn)行測(cè)序。
表1 PcMYB1基因引物序列
1.2.3 cDNA末端擴(kuò)增 3'RACE 和 5'RACE第1鏈的合成按照Clontech公司試劑盒使用說(shuō)明進(jìn)行。根據(jù)測(cè)序結(jié)果設(shè)計(jì)3'RACE和5'RACE引物(引物序列見(jiàn)表1),進(jìn)行PCR擴(kuò)增?;厥諗U(kuò)增產(chǎn)物并連接至pMD18-T載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,篩選陽(yáng)性克隆并測(cè)序。
1.2.4 PcMYB1全長(zhǎng)cDNA拼接及生物信息學(xué)分析將獲得的MYB保守區(qū)域片段和兩端序列進(jìn)行拼接,獲得PcMYB1基因的cDNA全長(zhǎng)序列。將PcMYB1序列在NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中用BLAST工具進(jìn)行同源分析;利用ORF(Open reading frame)finder軟件尋找開(kāi)放閱讀框;利用Protparam軟件分析編碼蛋白的氨基酸序列組成、分子質(zhì)量、等電點(diǎn)等理化性質(zhì);采用SWISS-MODELSOPMA進(jìn)行蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)分析。利用軟件DNAMAN進(jìn)行多重序列比對(duì);利用軟件ClustalX 2.1和MEGA 5構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。用作同源性和進(jìn)化樹(shù)分析的序列均來(lái)源于GenBank,具體情況列于表2。
1.2.5 PcMYB1基因原核表達(dá)載體的構(gòu)建 根據(jù)原核表達(dá)載體pET28a和PcMYB1基因cDNA序列信息,設(shè)計(jì)1對(duì)特異引物ORFf和ORFr擴(kuò)增該基因ORF。PCR擴(kuò)增條件為:94℃預(yù)變性2 min;94℃變性 30 s、59℃退火 30 s、72℃延伸1 min,30個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。反應(yīng)結(jié)束后,將PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定并回收。用BamHⅠ和HindⅢ分別酶切 PCR回收產(chǎn)物和原核表達(dá)載體pET28a,用T4 DNA連接酶連接回收純化的目的片段和切開(kāi)的載體,并轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,經(jīng)BamHⅠ和HindⅢ雙酶切以及測(cè)序鑒定后獲得的陽(yáng)性克隆即為重組原核表達(dá)載體,并命名為 pET28a-Pc-MYB1。
表2 多重序列比較和進(jìn)化分析所用MYB蛋白
1.2.6 重組菌 pET28a-PcMYB1/BL21(DE3)誘導(dǎo)表達(dá) 將測(cè)序正確的重組質(zhì)粒pET28a-PcMYB1轉(zhuǎn)化至表達(dá)菌株E.coli BL21(DE3),得到重組菌pET28a-PcMYB1/BL21(DE3)。挑取單菌落接種于含卡那霉素(50 μg/mL)的LB培養(yǎng)基內(nèi),37℃振蕩過(guò)夜培養(yǎng)。次日以1%量接種于含有相應(yīng)抗生素的LB培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)至OD600約為 0.5時(shí),吸出1 mL菌液作對(duì)照,其余加入IPTG(終濃度為 0.5 mmol/L),誘導(dǎo)3 h后,收集1 mL菌液,將收集的菌液于4℃、12 000 r/min離心5 min,棄上清,向沉淀中加入200 μL PBS緩沖液,充分混勻后加入50 μL 5×SDS上樣緩沖液,100℃煮沸10 min,4℃冷卻。取15 μL樣品上樣,12%SDS-PAGE電泳檢測(cè)。電泳結(jié)束后,考馬斯亮藍(lán)染色,最后成像分析。
提取虎杖葉片總RNA用于RT-PCR,利用簡(jiǎn)并引物MYBf和MYBr,以cDNA為模板擴(kuò)增MYB基因保守區(qū)域,挑選陽(yáng)性克隆測(cè)序得到1個(gè)長(zhǎng)336 bp的保守區(qū)域片段(圖1-A)。設(shè)計(jì)特異引物3'GSP1和3'GSP2,參照試劑盒說(shuō)明進(jìn)行3'RACE,擴(kuò)增得到1個(gè)長(zhǎng)1 056 bp的帶有多聚A尾巴的片段(圖1-B)。設(shè)計(jì)特異引物5'GSP1和5'GSP2,參照試劑盒說(shuō)明進(jìn)行5'RACE,擴(kuò)增得到1個(gè)長(zhǎng)398 bp的片段(圖1-C)。將獲得的兩端序列與保守區(qū)域片段序列進(jìn)行拼接得到1段長(zhǎng)1 152 bp的cDNA序列,命名該基因?yàn)?PcMYB1(GenBank登錄號(hào)為KY495789)。
圖1 PcMYB1基因的PCR擴(kuò)增結(jié)果
序列分析表明,PcMYB1基因的5'端有長(zhǎng)度為190 bp的非編碼區(qū),3'端有長(zhǎng)度為149 bp的非編碼區(qū),開(kāi)放閱讀框ORF由813個(gè)核苷酸組成,編碼1個(gè)含有270個(gè)氨基酸的蛋白質(zhì),起始密碼子為ATG,終止密碼子為TGA(圖2)。利用ExPASy軟件的Protparam預(yù)測(cè)PcMYB1編碼蛋白的理化性質(zhì),推測(cè)該蛋白質(zhì)分子式為C1325H2095N395O403S14,總原子數(shù)為4 232,分子質(zhì)量為 30.455 ku,理論等電點(diǎn)(pI)為8.6。采用 SWISS-MODELSOPMA 進(jìn)行PcMYB1編碼蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)分析,PcMYB1編碼蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)中α-螺旋占24.07%、延伸鏈占13.70%、β 轉(zhuǎn)角占 6.67%、無(wú)規(guī)則卷曲占 55.56%。
為研究PcMYB1蛋白與其他MYB蛋白的進(jìn)化關(guān)系,選取擬南芥次生代謝調(diào)控相關(guān)的MYB亞家族(Sg3、Sg4、Sg5、Sg6、Sg7)蛋白以及來(lái)源于其他植物的典型Sg4亞家族成員,構(gòu)建進(jìn)化樹(shù)。結(jié)果顯示,PcMYB1和葡萄的VvMYB4a、桉樹(shù)的EgMYB1、矮牽牛的 PhMYB4、玉米的 ZmMYB31、柳枝稷的PvMYB4a、擬南芥的AtMYB4和AtMYB32等轉(zhuǎn)錄因子聚類到Sg4亞家族(圖3),說(shuō)明PcMYB1蛋白是Sg4亞家族MYB蛋白。利用BLAST進(jìn)行同源性分析,結(jié)果表明,虎杖 PcMYB1與矮牽牛 PhMYB4(ADX33331)、葡萄 VvMYB4a(ABL61515)、桉樹(shù)EgMYB1(CAE09058)、擬南芥 AtMYB4(AAC83582)、玉米 ZmMYB31(NP_001105949)、柳枝稷 PvMYB4a(AEM17348)、擬南芥 AtMYB32(NP_195225)有著較高的同源性,分別為67%、64%、63%、59%、58%、58%、56%。
圖2 PcMYB1基因的核苷酸序列和推測(cè)的氨基酸序列
圖3 PcMYB1與其他物種MYB氨基酸序列的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)分析
利用DNAMAN軟件進(jìn)行多重序列比對(duì)發(fā)現(xiàn),虎杖PcMYB1蛋白與其他MYB轉(zhuǎn)錄因子的保守區(qū)域主要集中在N端,虎杖PcMYB1蛋白在N端具有2個(gè)典型的MYB DNA結(jié)合域,即R2、R3結(jié)構(gòu)域,為典型的R2R3-MYB轉(zhuǎn)錄因子(圖4)。結(jié)果表明,PcMYB1蛋白符合R2R3-MYB類轉(zhuǎn)錄因子的特征。在PcMYB1蛋白的C端區(qū)域具有4個(gè)典型的Sg4亞家族的保守基序(圖4):C1基序LLsrGIDPX[T/S]HRX[I/L],C2基序pdLNL[D/E]LXI[G/S],C3 基序CX1-2CX7-12CX1-2C,C4 基序 FLGLX4-7L[D/G][F/Y][R/S]XLEMK,其中 C2基序 pdLNL[D/E]LXI[G/S]為典型的抑制結(jié)構(gòu)域。
將PcMYB1基因的ORF區(qū)域(813 bp)構(gòu)建到載體 pET28a中,獲得原核表達(dá)載體 pET28a-PcMYB1。對(duì)原核表達(dá)載體pET28a-PcMYB1進(jìn)行菌液PCR鑒定,獲得1條800 bp左右特異性片段(圖5-A)。將原核表達(dá)載體pET28a-PcMYB1用BamHⅠ和HindⅢ酶切,切出大小約800 bp的片段,該片段為PcMYB1基因的ORF片段,如圖5-B箭頭所示。同時(shí)測(cè)序結(jié)果表明,連入表達(dá)載體pET28a中的PcMYB1基因片段與目的序列一致,未出現(xiàn)堿基突變和移碼現(xiàn)象。將pET28a-PcMYB1質(zhì)粒轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)BL21(DE3)后,得到重組菌pET28a-PcMYB1/BL21(DE3)。
PcMYB1基因的ORF由270個(gè)氨基酸組成,理論蛋白分子質(zhì)量為30.455 ku,融合His-Tag標(biāo)簽后理論分子質(zhì)量為31.28 ku。由12%SDS-PAGE電泳結(jié)果可知(圖6),與未誘導(dǎo)的重組菌pET28a-Pc-MYB1/BL21(DE3)相比,IPTG誘導(dǎo)的重組菌在31 ku左右處出現(xiàn)特異條帶,特異條帶的大小與理論值相符。結(jié)果表明,重組菌 pET28a-PcMYB1/BL21(DE3)已成功表達(dá)目的蛋白PcMYB1(如圖6箭頭所示)。
圖6 pET28a-PcMYB1/BL21(DE3)誘導(dǎo)產(chǎn)物的SDS-PAGE電泳分析
植物MYB轉(zhuǎn)錄因子結(jié)構(gòu)域的N端區(qū)域都是高度保守的,該結(jié)構(gòu)域由1~3個(gè)串聯(lián)的且不完全重復(fù)的R結(jié)構(gòu)(R1、R2、R3)組成,而且絕大多數(shù)植物中的MYB類轉(zhuǎn)錄因子是含2個(gè)MYB結(jié)構(gòu)域的R2R3-MYB蛋白[13-14]。對(duì)于基因組大、尚未完成基因組測(cè)序的物種,采用同源克隆的方法研究重要功能基因是一種可行的方法。本研究基于同源克隆的策略,從虎杖葉片成功克隆1個(gè)R2R3-MYB同源基因,命名為PcMYB1,以便研究PcMYB1基因的功能及其對(duì)虎杖苯丙烷代謝的調(diào)控作用。
根據(jù)C端功能基序的不同,MYB轉(zhuǎn)錄因子被分成了 28個(gè)亞家族[1,15]。進(jìn)化樹(shù)分析發(fā)現(xiàn),虎杖PcMYB1蛋白和 Sg4亞家族的 AtMYB4、AtMYB32、VvMYB4a、EgMYB1、PhMYB4、ZmMYB31、PvMYB4a等聚為一類,說(shuō)明PcMYB1編碼蛋白屬于Sg4亞家族。來(lái)自Sg4亞家族的AtMYB4是擬南芥中發(fā)現(xiàn)的第1個(gè)R2R3類負(fù)調(diào)控因子,該因子通過(guò)靶向抑制類黃酮物質(zhì)芥子酸酯合成關(guān)鍵基因C4H來(lái)負(fù)調(diào)節(jié)植物對(duì)UV-B的耐受性[16]。AtMYB4蛋白的 C末端有1個(gè)抑制結(jié)構(gòu)域 C2 基序 pdLNL[D/E]LXI[G/S],AtMYB4蛋白可能通過(guò)直接與靶基因結(jié)合而抑制靶基因的轉(zhuǎn)錄,或同時(shí)作為其他激活因子的競(jìng)爭(zhēng)者來(lái)抑制靶基因的表達(dá)。C2基序 pdLNL[D/E]LXI[G/S]也存在于Sg4亞家族的其他負(fù)調(diào)控因子(AtMYB32、VvMYB4a、EgMYB1、PhMYB4、ZmMYB31、PvMYB4a等 ) 中。 其 中 AtMYB32[17]、EgMYB1[18-19]、Zm-MYB31[20]、PvMYB4a[21]被鑒定為在木質(zhì)素生物合成中起轉(zhuǎn)錄抑制作用。矮牽牛PhMYB4通過(guò)負(fù)調(diào)控查爾酮合酶基因PhCHS的表達(dá),進(jìn)而影響類黃酮的合成[22]。葡萄VvMYB4a也被證實(shí)在其介導(dǎo)的相關(guān)植物生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中起負(fù)調(diào)節(jié)作用[23]。Xu等[24]在裸子植物銀杏中也發(fā)現(xiàn)類似于AtMYB4的轉(zhuǎn)錄抑制子GbMYBF2,其在擬南芥中的過(guò)表達(dá)能顯著抑制花青素及黃酮類物質(zhì)的生成。由此可見(jiàn),眾多研究已表明,含有抑制結(jié)構(gòu)域C2基序pdLNL[D/E]LXI[G/S]的MYB轉(zhuǎn)錄因子在苯丙烷類(木質(zhì)素、黃酮、花青素等)合成中起轉(zhuǎn)錄抑制作用。本研究得到的虎杖PcMYB1蛋白同樣具有抑制結(jié)構(gòu)域C2基序 pdLNL[D/E]LXI[G/S],因此,推測(cè)PcMYB1蛋白是一個(gè)負(fù)調(diào)控因子,但其表達(dá)特性與調(diào)控模式,還需要進(jìn)一步轉(zhuǎn)化模式植物加以驗(yàn)證。
MYB轉(zhuǎn)錄因子可以與多種順式作用元件結(jié)合,調(diào)控下游基因的表達(dá)。目前,多采用體外凝膠遷移(EMSA)來(lái)鑒定蛋白質(zhì)與元件的作用情況[25]。本研究已經(jīng)構(gòu)建含有PcMYB1基因的重組質(zhì)粒并且在大腸桿菌中成功表達(dá)目標(biāo)蛋白。后續(xù)將純化該蛋白,用于EMSA鑒定PcMYB1蛋白與元件的作用情況,有利于進(jìn)一步研究虎杖轉(zhuǎn)錄因子PcMYB1蛋白的分子生物學(xué)功能。目前,對(duì)虎杖苯丙烷類代謝中MYB轉(zhuǎn)錄因子的功能知之甚少,本研究的開(kāi)展為虎杖苯丙烷類代謝的深入理解奠定基礎(chǔ)。
本研究從虎杖葉片中成功克隆了1個(gè)R2R3-MYB類轉(zhuǎn)錄因子PcMYB1基因,PcMYB1基因含有長(zhǎng)為813 bp的開(kāi)放讀碼框,編碼270個(gè)氨基酸殘基?;⒄萈cMYB1屬于Sg4亞家族,序列的C端存在1個(gè)抑制結(jié)構(gòu)域 C2基序 pdLNL[D/E]LXI[G/S]?;⒄萈cMYB1與已知的矮牽牛PhMYB4序列相似性最高。構(gòu)建了PcMYB1的原核表達(dá)載體pET28a-Pc-MYB1,并在大腸桿菌表達(dá)菌株BL21中成功表達(dá)。
[1] Liu J,Osbourn A,Ma P.MYB transcription factors as reg-ulators of phenylpropanoid metabolism in plants[J].Mol Plant,2015,8(5):689-708.
[2] Li C,Lu S.Genome-wide characterization and comparative analysis of R2R3-MYB transcription factors shows the complexity of MYB-associated regulatory networks in Salvia miltiorrhiza[J].BMC Genomics,2014,15(4):277-289.
[3] 王亞杰,李厚華,付婉藝,等.水母雪蓮紅色細(xì)胞系類黃酮含量和相關(guān)基因表達(dá)[J].生物工程學(xué)報(bào),2014,30(8):1225-1234.
[4] 趙海霞,吳小峰,吳琦,等.苦蕎芽期黃酮合成關(guān)鍵酶和MYB轉(zhuǎn)錄因子基因的表達(dá)分析[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2012,20(2):121-128.
[6] Fang L,Hou Y,Wang L,et al.Myb14,a direct activator of STS,is associated with resveratrol content variation in berry skin in two grape cultivars[J].Plant Cell Rep,2014,33(10):1629-1640.
[7] Cho S,Namkoong K,Shin M,et al.Cardiovascular protective effects and clinical applications of resveratrol[J].J Med Food,2017,20(4):323-334.
[8] Shen Y,Li X,Chai T,et al.Outer-sphere residues influence the catalytic activity of a chalcone synthase from Polygonum cuspidatum[J].FEBS Open Bio,2016,6(6):610-618.
[9] Ma L Q,Guo Y W,Gao D Y,et al.Identification of a Polygonum cuspidatum three-intron gene encoding a typeⅢpolyketide synthase producing both naringenin and phydroxybenzalacetone[J].Planta,2009,229(5):1077-1086.
[10] Ma L Q,Pang X B,Shen H Y,et al.A novel type Ⅲpolyketide synthase encoded by a three-intron gene from Polygonum cuspidatum[J].Planta,2009,229(3):457-469.
[11] Liu Z Y,Zhuang C X,Sheng S J,et al.Overexpression of a resveratrol synthase gene(PcRS)from Polygonum cuspidatum in transgenic Arabidopsis causes the accumulation of trans-piceid with antifungal activity[J].Plant Cell Rep,2011,30(11):2027-2036.
[12] 柳忠玉,趙樹(shù)進(jìn).轉(zhuǎn)PcRS基因擬南芥的抗炭疽病研究[J].生物技術(shù)通報(bào),2014,32(10):107-112.
[13] BaldoniE,GengaA,CominelliE.PlantMYB transcription tactors:Their role in drought response mechanisms[J].IntJMolSci,2015,16(7):15811-15851.
[14] Pattanaik S,Patra B,Singh S K,et al.An overview of the gene regulatory network controlling trichome development in the model plant,Arabidopsis[J].Front Plant Sci,2014,5(6):259-266.
[15] Shelton D,Stranne M,Mikkelsen L,et al.Transcription factors of Lotus:Regulation of isoflavonoid biosynthesis requirescoordinated changesin transcription factor activity[J].Plant Physiol,2012,159(2):531-547.
[16] Jin H,Cominelli E,Bailey P,et al.Transcriptional repression by AtMYB4 controls production of UV-protecting sunscreens in Arabidopsis[J].The Embo Journal,2000,19(22):6150-6161.
[17] Preston J,Wheeler J,Heazlewood J,et al.AtMYB32 is required for normal pollen development in Arabidopsis thaliana[J].Plant J,2004,40(6):979-995.
[18] Legay S,Lacombe E,Goicoechea M,et al.Molecular characterization of EgMYB1,a putative transcriptional repressor of the lignin biosynthetic pathway[J].Plant Sci,2007,173(5):542-549.
[19] Legay S,Sivadon P,Blervacq A S,et al.EgMYB1,an R2R3 MYB transcription factor from eucalyptus negatively regulates secondary cell wall formation in Arabidopsis and poplar[J].New Phytol,2010,188(3):774-786.
[20] Fornale S,Shi X H,Chai C L,et al.ZmMYB31 directly represses maize lignin genes and redirects the phenylpropanoid metabolic flux[J].Plant J,2010,64(4):633-644.
[21] Shen H,He X,Poovaiah C R,et al.Functional characterization of the switchgrass(Panicum virgatum)R2R3-MYB transcription factor PvMYB4 for improvement of lignocellulosic feedstocks[J].New Phytol,2012,193(1):121-136.
[22] Colquhoun T A,Kim J Y,Wedde A E,et al.PhMYB4 fine-tunes the floral volatile signature of Petunia×hybrida through PhC4H[J].J Exp Bot,2011,62(3):1133-1143.
[23] Cavallini E,Matus J T,F(xiàn)inezzo L,et al.The phenylpropanoid pathway is controlled at different branches by a set of R2R3-MYB C2 repressors in grapevine[J].Plant Physiol,2015,167(4):1448-1470.
[24] Xu F,Ning Y,Zhang W,et al.An R2R3-MYB transcription factorasa negative regulatorofthe flavonoid biosynthesis pathway in Ginkgo biloba[J].Functional Integrative Genomics,2014,14(1):177-189.
[25] Vuzman D,Levy Y.Intrinsically disordered regions as affinity tunersin protein-DNA interactions[J].Mol Biosyst,2012,8(1):47-57.