陳 江 李宏宇 王 迪 許文達(dá) 郭曉鐘
胰腺癌細(xì)胞總RNA轉(zhuǎn)染樹突細(xì)胞與胰腺癌-樹突融合細(xì)胞激發(fā)特異性細(xì)胞毒T淋巴細(xì)胞能力的比較研究
陳 江 李宏宇 王 迪 許文達(dá) 郭曉鐘
目的比較人胰腺癌MiaPaCa-2細(xì)胞總RNA電轉(zhuǎn)染樹突細(xì)胞(Dendritic Cell,DC)與DCM iaPaCa-2融合細(xì)胞體外激發(fā)抗原特異性細(xì)胞毒T淋巴細(xì)胞(Cytotoxic T Lymphocyte,CTL)能力的差異。方法自6例胰腺癌患者外周血單核細(xì)胞中分離、培養(yǎng)DC。使用電穿孔法將M iaPaCa-2細(xì)胞總RNA轉(zhuǎn)染DC,使用細(xì)胞融合方法將胰腺癌M iaPaCa-2細(xì)胞抗原負(fù)載DC,以未負(fù)載抗原的DC為對照。使用流式細(xì)胞術(shù)(FCM)檢測PE-MUC/FITC-CD86抗體雙標(biāo)細(xì)胞評估融合效率;四甲基偶氮唑鹽(MTT)檢測轉(zhuǎn)染各組DC存活率;混合細(xì)胞培養(yǎng)法評價各組DC體外刺激自體T淋巴細(xì)胞增殖能力;ELISA法檢測各組DC體外激發(fā)抗原特異性CTL因子釋放量。結(jié)果采用PEG-DMSO誘導(dǎo)的DC與M iaPaCa-2的融合細(xì)胞同時表達(dá)DC表型和MUC1分子,CD86與MUC1雙陽性表達(dá)率為(42.3±7.30)%;融合細(xì)胞組DC存活率呈時間依賴性下降,轉(zhuǎn)染后96h的存活率降低至62.81%,而M iaPaCa-2總RNA轉(zhuǎn)染組DC細(xì)胞存活率穩(wěn)定在85%左右,兩組間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);轉(zhuǎn)染M iaPaCa-2總RNA DC刺激自體T細(xì)胞增殖指數(shù)(DC∶T=1∶10)為8432±611.25,顯著高于DC-MiaPaCa-2融合細(xì)胞(DC∶T=1∶10)5672±107.51(P<0.05);且MiaPaCa-2總RNA轉(zhuǎn)染DC激發(fā)特異性CTL分泌IL-12p70、IL-10和IFN-γ細(xì)胞水平亦顯著異于DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞(P<0.05)。結(jié)論胰腺癌細(xì)胞總RNA轉(zhuǎn)染DC較胰腺癌-樹突融合細(xì)胞有更強(qiáng)的體外抗原特異性CTL激發(fā)能力。
樹突細(xì)胞;RNA轉(zhuǎn)染;細(xì)胞融合;胰腺腫瘤;細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞
胰腺癌是一種常見的消化道惡性腫瘤,多數(shù)病例在發(fā)現(xiàn)時已屬晚期,手術(shù)治療及放、化療作用有限,患者預(yù)后極差,臨床迫切需要探索新的有效治療手段[1]。樹突細(xì)胞(Dendritic cell,DC)是體內(nèi)功能最為強(qiáng)大的抗原遞呈細(xì)胞(antigen presenting cell, APS),能夠刺激并致敏T淋巴細(xì)胞,產(chǎn)生細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞(cytotoxic T lynphocytes,CTLs),是機(jī)體免疫應(yīng)答的核心。近年來出現(xiàn)的以DC為基礎(chǔ)構(gòu)建的腫瘤疫苗技術(shù)對多種腫瘤均有顯著的治療作用,為胰腺癌的臨床治療開辟了新的思路[2-4]。腫瘤細(xì)胞總RNA轉(zhuǎn)染DC疫苗和DC-腫瘤細(xì)胞融合疫苗是當(dāng)前DC腫瘤疫苗構(gòu)建免疫治療的兩個熱點(diǎn)方向[5]。本研究通過比較人胰腺癌M iaPaCa-2細(xì)胞總RNA電轉(zhuǎn)染DC和DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞體外激發(fā)抗原特異性CTL能力的差異,為臨床選擇更為高效的DC腫瘤疫苗構(gòu)建策略提供前期實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
一、一般材料及試劑
篩選2014年6月至2016年1月期間沈陽軍區(qū)總醫(yī)院消化科收治的6例HLA-A2+晚期胰腺癌患者,男性4例,女性2例,年齡35~65歲,平均年齡50歲。全部患者均經(jīng)組織病理學(xué)檢查(剖腹探查活檢4例,細(xì)針穿刺活檢2例)證實(shí)為胰腺癌。入選前未經(jīng)放、化療及免疫治療。所有患者均簽署知情同意書,并經(jīng)本院倫理委員會批準(zhǔn)。
人胰腺癌細(xì)胞株M iaPaCa-2(沈陽軍區(qū)總醫(yī)院消化科實(shí)驗(yàn)室);RPM I 1640、小牛血清(Hyclone公司,美國),rhGM-CSF、rhIL4、TNFα(PeproTec公司,美國),鼠抗人CD80、HLA-DR、CD83和CD86單抗(Santa-Cruz公司,美國),兔抗人MUC1多克隆抗體(DPC-Biermann公司,德國),TRIzol、MTT、50%PEG-10%DMSO溶液、Ficoll淋巴細(xì)胞分離液(Sigma公司,美國),3H標(biāo)記甲基胸腺嘧啶(中科院原子能所),IL-12p70、IL-10、TNF-α和IFN-γ細(xì)胞因子檢測試劑盒(BD公司,美國)。
二、DC的分離、培養(yǎng)和鑒定
參照文獻(xiàn)[6]方法,通過Ficoll密度梯度離心法,分離來自胰腺癌患者100m L外周血中單核細(xì)胞(PBMCs),貼壁1 h后,取出未貼壁的細(xì)胞另作培養(yǎng)備用。貼壁細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng)20 h后,更換新鮮培養(yǎng)液,加入rhGM-CSF(800 IU/m L)和rhIL-4(500 IU/ m L)。37℃,5%CO2,培養(yǎng)5 d后加入TNF-α(10 ng/ m L),培養(yǎng)至7 d,收集成熟DCs。使用倒置顯微鏡和電鏡連續(xù)觀察體外培養(yǎng)5~10 d DCs形態(tài)學(xué)變化。
三、胰腺癌M iaPaCa-2細(xì)胞總RNA提取、鑒定和轉(zhuǎn)染
收獲M iaPaCa-2細(xì)胞,加入Trizol試劑1m L充分裂解,5m in后加入氯仿200μL,4℃12 000 r/ m in離心15m in,加入異丙醇500μL,室溫放置20 m in,4℃12 000 r/m in離心15m in,棄上清,加入75%乙醇1m L漩渦器震蕩混均,4℃12 000 r/m in離心15 m in。棄上清,超凈臺晾干后溶于25μL DEPC水。分光光度計(jì)測定A260/A280值,計(jì)算RNA純度和含量,1%變性凝膠電泳測RNA完整性后-80℃保存。
[7]的方法,取200μL培養(yǎng)5 d的未成熟DCs細(xì)胞懸液加入2mm的電極杯,加入20μg M iaPaCa-2總RNA。調(diào)整電壓300 V、間隔125ms、4個脈沖,持續(xù)250ms進(jìn)行電轉(zhuǎn)染。電穿孔后立刻置入4℃冰箱靜置10min,移入加有完全培養(yǎng)基的12孔培養(yǎng)板中,37℃、5%CO2培養(yǎng)0~96 h。以未轉(zhuǎn)染RNA的mock-DC作為對照組。
四、細(xì)胞融合
選取連續(xù)傳代培養(yǎng)20代后仍能穩(wěn)定表達(dá)MUC1蛋白[8]的M iaPaCa-2細(xì)胞,使用25μg/m L絲裂霉素處理30m in,去增殖后與培養(yǎng)5 d的DC以3∶1混合,離心盡量吸盡上清,置37℃水浴中,滴加預(yù)熱的50%PEG-10%DMSO溶液0.8m L,作用2 m in后加入1m L血清終止反應(yīng),未排除細(xì)胞間粘附及DC吞噬M iaPaCa-2細(xì)胞對實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響,以不加融合劑的mock-DC為對照。收集培養(yǎng)細(xì)胞,采用FITC-CD86及PE-MUC1雙標(biāo)記法,經(jīng)流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞融合率,融合率(%)=(融合組雙標(biāo)率-共培養(yǎng)組雙標(biāo)率)×100%。同時,使用MTT法檢測各組DC存活率變化。
五、DC標(biāo)志物檢測
使用流式細(xì)胞法,分別檢測轉(zhuǎn)染M iaPaCa-2細(xì)胞總RNA及與M iaPaCa-2細(xì)胞融合后48 h的DC特異性標(biāo)志物CD80、DC特征性成熟標(biāo)志CD83、共刺激分子CD86以及MHC類分子HLA-DR等的表達(dá)水平,比較兩者差異。
六、不同RNA轉(zhuǎn)染組DC體外刺激自體T淋巴細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)
分別收集不同轉(zhuǎn)染組DCs,調(diào)節(jié)細(xì)胞濃度為1 ×105/m L作為刺激細(xì)胞,分選并調(diào)節(jié)患者自體PBMCs中的懸浮T淋巴細(xì)胞,濃度為1×106/m L作為反應(yīng)細(xì)胞,按照刺激與效應(yīng)細(xì)胞l∶10,l∶20,l∶40和l∶80比例加入到96孔板中,終體積200μL,在37℃,5%CO2培養(yǎng)5 d,收獲細(xì)胞前18 h加入3HTdR,每孔1μCi。以RPM I-1640培養(yǎng)基替代效應(yīng)細(xì)胞的4個孔作為對照組,使用液閃爍儀檢測每分鐘脈沖數(shù)(CPM)。
七、不同RNA轉(zhuǎn)染組DC體外激發(fā)抗原特異性CTL釋放細(xì)胞因子
以不同轉(zhuǎn)染組DC為刺激細(xì)胞,以患者自體T淋巴細(xì)胞為效應(yīng)細(xì)胞,刺激與效應(yīng)細(xì)胞按l∶10比例混合反應(yīng)14 d后,應(yīng)用ELISA法,按試劑盒操作說明書檢測細(xì)胞培養(yǎng)上清中IL-12p70、IL-10、TNF-α和IFN-γ水平。細(xì)胞培養(yǎng)上清用試劑盒中樣本稀釋液稀釋50倍后檢測。每個樣本設(shè)3個復(fù)孔,取平均值。
八、統(tǒng)計(jì)學(xué)處理
圖1 體外培養(yǎng)DC及胰腺癌M iaPaCa-2細(xì)胞形態(tài)表現(xiàn)
一、DC與M iaPaCa-2細(xì)胞的體外培養(yǎng)和鑒定DC經(jīng)體外分離、培養(yǎng),數(shù)量可達(dá)初始數(shù)量的10~15倍。鏡下可見胞體向四周伸出大量樹枝狀或裙褶狀不規(guī)則突起,部分突起末端呈球狀膨大(圖1 A、B)M iaPaCa-2細(xì)胞呈集落樣生長,條索狀,異型性明顯(圖1 C)。
二、融合細(xì)胞的鑒定與融合率的檢測
倒置顯微鏡下可見,經(jīng)50%PEG-10%DMSO溶液誘導(dǎo)融合后,部分DCs與M iaPaCa-2細(xì)胞先發(fā)生細(xì)胞膜融合,形成雙核的巨大細(xì)胞,而后細(xì)胞核逐漸發(fā)生融合,形成DC與M iaPaCa-2細(xì)胞的雜交細(xì)胞(DC-M iaPaCa-2)。
M iaPaCa-2為MUC1陽性細(xì)胞,不表達(dá)CD86抗原;而CD86為成熟DC特異性表面標(biāo)志物之一,DC為CD86陽性細(xì)胞,不表達(dá)或低表達(dá)MUC1抗原。采用FITC-CD86及PE-MUC1雙標(biāo)記法檢測融合細(xì)胞,結(jié)果示融合細(xì)胞組CD86及MUC1雙陽性的DC比率為(42.3±7.30)%(圖2),而共培養(yǎng)組CD86及MUC1雙陽性DC比率為(7.21±1.06)%,除去細(xì)胞粘附等因素作用,DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞形成率為(35.09±6.24)%。
三、DC存活率變化情況
M iaPaCa-2細(xì)胞總RNA轉(zhuǎn)染后0~96 h,DC存活率變化較小,穩(wěn)定在85%左右,而M iaPaCa-2細(xì)胞與DC融合后,融合細(xì)胞存活率呈現(xiàn)時間依賴性降低,96 h時,DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞存活率低至61.23%(P<0.05),見圖3。
四、不同分組DC體外刺激自體T淋巴細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)
以M iaPaCa-2總RNA轉(zhuǎn)染DC、DC-M ia-PaCa-2融合細(xì)胞及mock-DC作為刺激細(xì)胞,各組刺激細(xì)胞與自體T淋巴細(xì)胞混合培養(yǎng),結(jié)果顯示在DC∶T=1∶10時,DC-M iaPaCa-2 RNA細(xì)胞刺激自體T細(xì)胞增殖指數(shù)為8432±611.25,顯著高于DCM iaPaCa-2融合細(xì)胞的5672±107.51(P<0.05)及Mock-DC的257±32.16(P<0.05);且在DC∶T=1∶20時,DC-M iaPaCa-2 RNA組細(xì)胞刺激自體T細(xì)胞增殖指數(shù)為5852±153.03,亦高于DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞組的4276±130.01(P<0.05)及Mock-DC組的108±17.18(P<0.05);而當(dāng)DC∶T=1∶40及1∶80時,DC-M iaPaCa-2 RNA組細(xì)胞與DC-M ia-PaCa-2融合細(xì)胞刺激自體T細(xì)胞的增殖指數(shù)無顯著差異(P>0.05)(圖4)。
圖2 與M iaPaCa-2細(xì)胞融合前后DC內(nèi)CD86、MUC1雙抗原相對表達(dá)情況
圖3 不同分組DC存活率變化情況[轉(zhuǎn)染后96 h,DCM iaPaCa-2細(xì)胞融合組細(xì)胞存活率顯著低于M iaPaCa-2總RNA轉(zhuǎn)染組DC(*P<0.05)]
圖4 DC-MiaPaCa-2融合組,DC-MiaPaCa-2RNA轉(zhuǎn)染組及M ock-DC組細(xì)胞刺激自體T細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)
五、不同分組DC體外激發(fā)抗原特異性CTL釋放細(xì)胞因子
M iaPaCa-2總RNA轉(zhuǎn)染組DC、DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞及Mock-DC均具有刺激抗原特異性CTL分泌Th1型細(xì)胞因子的能力,但Mock-DC對CTLs的刺激作用較弱,幾可忽略不計(jì)。ELISA法檢測示,在DC∶T=1∶10時,M iaPaCa-2總RNA轉(zhuǎn)染組DCs能激活自體特異性T細(xì)胞,其誘導(dǎo)特異性CTLs分泌IL-12p70和IFN-γ水平,顯著高于DCM iaPaCa-2融合細(xì)胞(P<0.05);而M iaPaCa-2總RNA轉(zhuǎn)染組DCs誘導(dǎo)特異性CTL分泌的IL-10水平,顯著低于DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞;TNF-α水平兩組間無顯著變化(圖5)。
圖5 DC∶T=1∶10時,DC-M iaPaCa-2RNA轉(zhuǎn)染細(xì)胞誘導(dǎo)特異性CTL分泌IL-12p70和IFN-γ水平顯著高于DCMiaPaCa-2融合細(xì)胞,IL-10水平則明顯低于DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞(*P<0.05)
DC腫瘤疫苗的實(shí)質(zhì)是以特異性T細(xì)胞為基礎(chǔ)的細(xì)胞免疫,而胰腺癌DC疫苗構(gòu)建的關(guān)鍵在于選擇合適的腫瘤抗原。胰腺癌缺乏特異性腫瘤抗原、異質(zhì)性大、免疫原性差,使用單腫瘤抗原負(fù)載DC構(gòu)建胰腺癌腫瘤疫苗時,其誘導(dǎo)的免疫反應(yīng)通常較弱;而使用腫瘤全抗原負(fù)載DC構(gòu)建胰腺癌疫苗則可激活針對不同腫瘤特異性抗原的多克隆細(xì)胞,減少腫瘤細(xì)胞克隆變異引起的抗原缺失,從而可以減少免疫逃逸的發(fā)生率,理論上是較具優(yōu)勢的DC腫瘤疫苗的構(gòu)建策略[9]。
腫瘤細(xì)胞總RNA電轉(zhuǎn)染DC疫苗與腫瘤-DC融合細(xì)胞疫苗,是當(dāng)前臨床研究中受關(guān)注較多的兩種癌細(xì)胞全抗原負(fù)載DC疫苗制備方案。腫瘤-DC融合細(xì)胞是通過細(xì)胞融合技術(shù)將腫瘤細(xì)胞抗原導(dǎo)入DC,獲得的雜交細(xì)胞既有DC的表面特征和功能,又能內(nèi)源性表達(dá)腫瘤相關(guān)蛋白。負(fù)載有腫瘤細(xì)胞全抗原的DC能夠體外激活T淋巴細(xì)胞多克隆性增殖,并促進(jìn)相關(guān)CTLs分泌大量功能性細(xì)胞因子。而腫瘤細(xì)胞總RNA電轉(zhuǎn)染DC,是通過RNA電轉(zhuǎn)染技術(shù),將含有腫瘤細(xì)胞全部抗原信息的總RNA導(dǎo)入DC胞內(nèi),在胞漿內(nèi)對相關(guān)抗原基因進(jìn)行轉(zhuǎn)錄,翻譯,最終將腫瘤細(xì)胞抗原信息表達(dá)于DC表面,呈遞并激活相關(guān)CTLs,實(shí)現(xiàn)特異性抗腫瘤免疫效應(yīng)。
腫瘤-DC融合細(xì)胞疫苗的優(yōu)勢包括:①DC-腫瘤融合細(xì)胞能表達(dá)整個腫瘤細(xì)胞抗原決定簇,因而能誘導(dǎo)產(chǎn)生多克隆的CTL反應(yīng);②DC-腫瘤融合細(xì)胞既表達(dá)腫瘤抗原,又表達(dá)包括MHC、共刺激信號分子在內(nèi)的DC表面抗原,使細(xì)胞介導(dǎo)的抗腫瘤免疫應(yīng)答大大增強(qiáng)[10];③DC-腫瘤融合疫苗能夠?qū)⒁阎臀粗哪[瘤相關(guān)抗原加工后呈遞給T淋巴細(xì)胞,發(fā)揮最佳的抗腫瘤免疫作用;④DC-腫瘤細(xì)胞融合后其抗原呈遞作用持久[11],可誘導(dǎo)出更強(qiáng)的免疫應(yīng)答反應(yīng)。而腫瘤細(xì)胞總RNA轉(zhuǎn)染DC疫苗的優(yōu)勢體現(xiàn)在:①轉(zhuǎn)染的RNA只進(jìn)入DC胞漿而非胞核,對細(xì)胞的損傷??;②RNA半衰期短,RNA轉(zhuǎn)染DC疫苗更為安全;③負(fù)載的腫瘤抗原可從很少的癌細(xì)胞中經(jīng)PCR擴(kuò)增得來、RNA模板本身可經(jīng)進(jìn)一步的序列修飾,穩(wěn)定性較強(qiáng)等[12]。RNA電轉(zhuǎn)染法則更具有操作簡單、安全、不受MHC遺傳背景影響等優(yōu)點(diǎn)[13]。
我們的研究發(fā)現(xiàn),利用腫瘤細(xì)胞總RNA電轉(zhuǎn)染技術(shù),胰腺癌M iaPaCa-2細(xì)胞總RNA能夠成功負(fù)載DCs,且轉(zhuǎn)染過程中未出現(xiàn)抗原不良交互反應(yīng)。而利用50%PEG-10%DMSO誘導(dǎo)DC的細(xì)胞融合技術(shù),可使DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞的融合效率大于40%,凸顯了該方法的有效性。胰腺癌M ia-PaCa-2細(xì)胞總RNA轉(zhuǎn)染后0~96 h,DCs存活率穩(wěn)定在85%左右,DC與胰腺癌M iaPaCa-2細(xì)胞融合后,細(xì)胞存活率在不同的時間點(diǎn)明顯降低,提示此現(xiàn)象可能與50%PEG-10%DMSO融合劑對DCs的毒性蓄積和細(xì)胞膜的破壞作用有關(guān)。使用此兩種方法負(fù)載胰腺癌M iaPaCa-2細(xì)胞總抗原后,DCs表面均可見細(xì)胞特異性CD80、HLA-DR、CD83和CD86分子的陽性表達(dá),且表達(dá)水平無明顯差異,說明兩種方法對DC特異性共刺激分子及MHC表型分子的表達(dá)無顯著影響。
本實(shí)驗(yàn)研究中,我們將DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞、DC-M iaPaCa-2 RNA轉(zhuǎn)染細(xì)胞及Mock-DC與自體T細(xì)胞混合培養(yǎng),結(jié)果顯示在不同效靶比情況下,不同實(shí)驗(yàn)組DCs均能刺激自體T細(xì)胞增殖。但DC-M iaPaCa-2 RNA轉(zhuǎn)染細(xì)胞對自體T細(xì)胞的增殖刺激能力顯著高于DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞和Mock-DC,提示隨著負(fù)載抗原效率的增加,DC刺激自體T細(xì)胞增殖的能力可顯著增強(qiáng)。DC腫瘤疫苗的最終目的在于其誘導(dǎo)體內(nèi)CTL反應(yīng),進(jìn)而對腫瘤細(xì)胞產(chǎn)生特異性殺傷效應(yīng)。隨著T細(xì)胞的增殖和特異性CTLs的擴(kuò)增,活化的CTLs可分泌大量Th1型細(xì)胞因子,如IL-12、TNF-α和IFN-γ等,同時減少Th2型細(xì)胞因子,如IL10等的釋放,使得免疫反應(yīng)本身向著有利于腫瘤細(xì)胞殺傷的Th1反應(yīng)為主的方向發(fā)展。因此,DCs對體外CTL的刺激活化能力可間接使用IFN-γ等細(xì)胞因子的釋放量表示[11]。本研究發(fā)現(xiàn),DC-M iaPaCa-2融合細(xì)胞與M iaPaCa-2總RNA轉(zhuǎn)染DCs均具有體外激發(fā)抗原特異性CTLs的能力,但DC-M iaPaCa-2 RNA可表現(xiàn)出更強(qiáng)的CTL激發(fā)效應(yīng)。此發(fā)現(xiàn)與Van Tendeloo等[14]的研究結(jié)果類似。提示胰腺癌細(xì)胞總RNA轉(zhuǎn)染DC法的抗原負(fù)載效率更強(qiáng),其體外活化、激發(fā)抗原特異性CTLs的能力亦更強(qiáng)。
綜上所述,本研究結(jié)果表明人胰腺癌細(xì)胞總RNA轉(zhuǎn)染DC可表現(xiàn)出較胰腺癌-DC融合細(xì)胞更強(qiáng)的促進(jìn)抗原特異性CTLs增殖和活化能力,此結(jié)果為臨床選擇更加有效的胰腺癌DC腫瘤疫苗構(gòu)建方式奠定了前期實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
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Com parison of cytotoxic T lymphocyte induction by dendritic cells transfected with totalpancreatic can-cer RNA and fusion hybrided w ith tumor cell in vitro
CHEN Jiang,LIHong-Yu,WANG Di,XUWen-Da, GUO Xiao-Zhong.Departmentof Gastroenterology,Shenyang GeneralHospital of People Liberation Army, Shenyang 110016,China.Corresponding author:GUO Xiao-Zhong,Email:Guoxiaozhong1962@aliyun.com
ObjectiveTo compare theability of specific cytotoxic T lymphocytes(CTL)induction stimulated by dendritic cells(DC)transfectedw ith total RNA of human pancreatic cancer MiaPaCa-2 cell lines with DC fused with MiaPaCa-2 cell lines.MethodDCswere isolated and cultured from peripheral blood mononuclearcells(PBMCs).TotalRNA derived from MiaPaCa-2 cell lineswas transfected into DCsby electroporation.DCswere fused w ith M iaPaCa-2 cellsand the fusion efficiency wasassessed by flow cytometry (FCM).DC-MiaPaCa-2 hybridswere identified asPE-MUC1/FITC-CD86 double positive cells.The survival rate of DC wasdeterm ined by MTTmethod.The lymphocyte proliferation ability was evaluated bymixed cell culturemethod.The cytokines releasing of antigen-specific CTLsweremeasured by ELISA assay.ResultsDC-MiaPaCa-2 hybridswhich possessed both the phenotype of DC and MUC1 protein.The co-expression rate of both CD 86 and MUC1 positivity was(42.3±7.30)%.The survival rate of DCs transected w ith M ia-PaCa-2 total RNA were stabilized around 85%and the survival rate of DCs fused with MiaPaCa-2 cellswas 62.81%at96 hours(P<0.05).The autologous T cell proliferation index of the total RNA of M iaPaCa-2 celllines transfection DC group was8432±611.25,significantly higher than the DC-M iaPaCa-2 hybrids5672± 107.51(P<0.05);The secretion of IL-12p70,IL-10 and IFN-γlevels of the total RNA of MiaPaCa-2 cell lines transfection DC-specific CTL w ere significantly differentw ith DC-M iaPaCa-2 hybrids(P<0.05).ConclusionDCs transfected with the total RNA of pancreatic cancer cells had a stronger ability to stimulate specific CTL in vitro than the DCs fusedwith pancreatic cancer cells.
Dendritic cells;RNA transfection;Cell fusion;Pancreatic cancer;Cytotoxic T lym phocytes
2016-09-19)
(本文編輯:喬偉光)
10.3969/j.issn.1672-2159.2016.05.006
110016沈陽軍區(qū)總醫(yī)院消化科
郭曉鐘,E-mail:Guoxiaozhong1962@aliyun.com
國家自然科學(xué)基金(81071982)