陳雨龍,姚勤
(青島大學(xué)附屬醫(yī)院婦科,山東 青島 266500)
卵巢癌病死率居于婦科惡性腫瘤首位,其遠(yuǎn)期生存率低。已有研究證實(shí),癌細(xì)胞從瘤體脫落并獲得轉(zhuǎn)移種植能力的過(guò)程中,上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)起到了重要的作用[1]。微小RNA(miRNA)是一類內(nèi)源性的具有調(diào)控功能的非編碼RNA,在卵巢癌中已發(fā)現(xiàn)多種miRNA可通過(guò)調(diào)節(jié)EMT影響卵巢癌的生物學(xué)特性。研究miRNA調(diào)節(jié)EMT影響卵巢癌的發(fā)生、發(fā)展及轉(zhuǎn)歸過(guò)程中的分子機(jī)制,針對(duì)關(guān)鍵通路中的主要信號(hào)分子設(shè)計(jì)轉(zhuǎn)移篩查方法和靶向治療藥物,將為卵巢癌的預(yù)后判斷和治療提供新的思路。
miRNA是一種長(zhǎng)度為20~25個(gè)核苷酸的非編碼RNA分子。自LEE等[2]從線蟲克隆出lin-4基因以來(lái),人類對(duì)miRNA的研究快速發(fā)展,據(jù)miRNA數(shù)據(jù)庫(kù)(miRbase)最新統(tǒng)計(jì)[3],目前已發(fā)現(xiàn)的人類前體 miRNA(pri-miRNA)已超過(guò)1800種,表達(dá)成熟miRNA產(chǎn)物已超過(guò)2500種。
EMT可誘導(dǎo)許多病理過(guò)程,如慢性炎癥、器官纖維化、高分化癌等。典型的上皮細(xì)胞具有游離面-基底面的極性特征,細(xì)胞間具有緊密連接和黏附連接,不能夠隨意地遷移。EMT過(guò)程中,上皮細(xì)胞喪失正常極性并獲得侵襲遷移能力,伴隨細(xì)胞內(nèi)骨架蛋白的改變和多種細(xì)胞表面標(biāo)志物的表達(dá)變化,主要表現(xiàn)為上皮表型相關(guān)分子如E-鈣黏素(E-cad)、角蛋白、纖維粘連蛋白(FN)等的減少,以及間質(zhì)表型相關(guān)分子如α-平滑肌肌動(dòng)蛋白(α-SMA)、波形蛋白(Vimentin)、鈣結(jié)合蛋白S100A4等的增加。
Wnt基因包括兩個(gè)高度同源基因,即小鼠乳癌細(xì)胞int-1基因和果蠅無(wú)翅wingless(wg)基因,故合稱為 Wnt基因[4]。Wnt通路主要包括:Wnt蛋白(Wnt配體)及其受體(卷曲家族蛋白Frz),低密度脂蛋白受體相關(guān)蛋白(LRP)、松散蛋白(Dsh/Dvl)、β-catenin、糖原合成酶激酶3β(GSK-3β)、軸抑制因子(Axin)、家族性腺瘤性息肉病基因(APC)等。Wnt/β-catenin經(jīng)典通路為:Wnt配體與其受體Frz結(jié)合后,可激活細(xì)胞內(nèi)的 Dsh/Dvl,并進(jìn)一步抑制 GSK-3β/Axin/APC復(fù)合物對(duì)β-catenin的磷酸化作用,β-catenin降解隨之減少并在細(xì)胞內(nèi)積聚,而后進(jìn)入細(xì)胞核并激活c-myc、survivin和cyclin D基因的轉(zhuǎn)錄[5]。研究表明,miR-939可通過(guò)下調(diào)APC來(lái)抑制Wnt通路,并促進(jìn)卵巢癌細(xì)胞的增殖[6]。
研究顯示,PI3K/Akt/mTOR通路主要由磷脂酰肌醇3激酶(PI3K)、蛋白激酶B(Akt/PKB)及哺乳動(dòng)物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)構(gòu)成[7]。PI3K/Akt/mTOR通路的大致激活過(guò)程為:生長(zhǎng)因子、細(xì)胞因子、神經(jīng)肽等與相應(yīng)受體結(jié)合形成復(fù)合體,該復(fù)合體激活PI3K的p110催化亞基,使底物Ptd Ins(4,5)P2轉(zhuǎn)化為 Ptd Ins(3,4,5)P3,PIP3隨后與 Akt氨基端調(diào)節(jié)區(qū)PH結(jié)構(gòu)域(pleckst rin homology domain)結(jié)合,使Akt向細(xì)胞膜募集。而后Akt的兩個(gè)磷酸化位點(diǎn)(Thr-308/Ser-473)分別被PI3K依賴激酶1(PDK1)/PI3K 依賴激酶2(PDK2)磷酸化。激活后的Akt可以直接磷酸化mTOR使其激活,或通過(guò)滅活結(jié)節(jié)性硬化復(fù)合物1/2(TSC1/2)以增強(qiáng)mTOR的活性。GSK-3β是 Wnt信號(hào)通路和PI3K/Akt/mTOR通路的共同信號(hào)分子,提示各信號(hào)通路間相互影響。有研究表明,在卵巢癌細(xì)胞株中下調(diào)miRNA-150可以激活PI3K/Akt通路并降低癌細(xì)胞對(duì)帕妥珠單抗的敏感性[8]。
Hedgehog是一種分節(jié)極性基因,哺乳動(dòng)物中有3種Hedgehog同源基因:SHH、DHH和IHH。經(jīng)典SHH信號(hào)通路的構(gòu)成:SHH配體,跨膜蛋白受體Ptch、Smo,Gli蛋白家族。Gli蛋白家族包括轉(zhuǎn)錄促進(jìn)因子Gli1、Gli2,轉(zhuǎn)錄抑制因子Gli3,三者相互作用引起靶基因過(guò)表達(dá),并最終導(dǎo)致腫瘤發(fā)生。Hedgehog信號(hào)通路的作用機(jī)制為:當(dāng)SHH缺少時(shí),Ptch與Smo結(jié)合使Smo失活,Gli失去Smo的刺激作用后表達(dá)減少且不斷被蛋白酶水解,從而導(dǎo)致靶基因表達(dá)受抑制;當(dāng)SHH過(guò)表達(dá)時(shí),SHH作為配體與Ptch結(jié)合使其與Smo分離,Smo隨后激活Gli的過(guò)表達(dá)并引起靶基因的高表達(dá),最終引起腫瘤的發(fā)生。已有多項(xiàng)研究證實(shí),Hedgehog信號(hào)通路的激活與卵巢癌密切相關(guān)[9]。
轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β(TGF-β)屬于 TGF-β超家族,體外培養(yǎng)成纖維細(xì)胞時(shí),若加入表皮生長(zhǎng)因子(EGF)和TGF-β,成纖維細(xì)胞不再貼壁生長(zhǎng),并能在瓊脂中生長(zhǎng),密度抑制效應(yīng)隨之消失。TGF-β除了誘導(dǎo)EMT的發(fā)生外,可在體外誘導(dǎo)正常成纖維細(xì)胞(NF)向腫瘤相關(guān)成纖維細(xì)胞(CAF)的轉(zhuǎn)變[10]。TGF-β與細(xì)胞表面Ⅰ型受體Ⅱ型受體結(jié)合后,Ⅰ、Ⅱ型受體構(gòu)型發(fā)生改變形成復(fù)合體,使Smad2與Smad3磷酸化并進(jìn)一步與Smad4結(jié)合,隨后進(jìn)入細(xì)胞核內(nèi)調(diào)節(jié)相應(yīng)靶基因的轉(zhuǎn)錄。已有研究證實(shí),TGF-β能夠激活谷氨酰胺轉(zhuǎn)移酶(TG2),TG2可上調(diào)鋅指增強(qiáng)子結(jié)合蛋白1(ZEB1)、下調(diào)E-cad表達(dá),從而誘導(dǎo)卵巢癌EMT過(guò)程,而這一過(guò)程主要是經(jīng)Samd通路和TGF-β激活激酶(TAK1)/NF-κB途徑來(lái)實(shí)現(xiàn)的[11]。
Notch信號(hào)通路:直接作用于轉(zhuǎn)錄因子Snail的啟動(dòng)子以上調(diào)Snail水平;還可在缺氧誘導(dǎo)因子-1α(HIF-1α)存在的情況下上調(diào)賴氨酰氧化酶(LOX)以穩(wěn)定Snail,減少Snail的降解,最終誘導(dǎo)EMT過(guò)程[12]。研究結(jié)果表明,上皮性卵巢癌中高表達(dá)Snail對(duì)腫瘤的發(fā)生和進(jìn)展具有協(xié)同作用[13]。此外,NF-κB、肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子(HGF)、表皮生長(zhǎng)因子(EGF)、血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)等多種信號(hào)通路都參與了EMT的過(guò)程[14]。
3.1.1 miR-200家族與卵巢癌發(fā)生發(fā)展 序列(尤其是種子序列)高度同源miRNA通常被歸為一個(gè)家族。miR-200家族主要包括miR-200a/b/c、miR-141、miR-429。內(nèi)源性miR-200家族可與 E-cad轉(zhuǎn)錄抑制因子 ZEB1/2的3′UTR結(jié)合,抑制ZEB轉(zhuǎn)錄因子的翻譯,從而維持E-cad的表達(dá)水平,在 MET/EMT過(guò)程中起到重要作用[15]。研究發(fā)現(xiàn),在卵巢癌細(xì)胞系HEY中,miR-429的過(guò)表達(dá)可以誘導(dǎo) MET過(guò)程,伴隨細(xì)胞形態(tài)的改變和ZEB1/2的下降及E-cad的升高[16]。但 BENDORAITE等[17]發(fā)現(xiàn)ZEB1/2也可以反向抑制miR-200家族的表達(dá)并在一定程度上逆轉(zhuǎn)miR-200家族誘導(dǎo)的MET過(guò)程。EMT/MET這種雙向抑制的反饋通路在結(jié)直腸癌中也已被證實(shí),miR-34可以抑制Snail的表達(dá):miR-34通過(guò)與Snail的3′UTR結(jié)合;反之Snail也可以抑制miR-34的表達(dá):Snail通過(guò)與miR-34啟動(dòng)子上的E-boxes結(jié)合[18]。在卵巢癌的相關(guān)研究中,miR-200家族表達(dá)水平既有上升也有下降[17]。這提示miR-200家族在卵巢癌發(fā)展和轉(zhuǎn)移過(guò)程中的不同時(shí)期起到不同的作用。不妨假設(shè),在腫瘤發(fā)展早期,miR-200家族表達(dá)下調(diào),隨之E-cad表達(dá)水平降低,細(xì)胞間黏附作用下降,腫瘤細(xì)胞獲得侵襲能力;當(dāng)腫瘤已發(fā)生遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移時(shí),miR-200家族表達(dá)上調(diào),誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞發(fā)生MET過(guò)程,以利于腫瘤細(xì)胞在遠(yuǎn)處的定植。OLSON等[19]的研究部分驗(yàn)證了這一過(guò)程:通過(guò)RT2小鼠體外構(gòu)建多步驟腫瘤發(fā)生模型發(fā)現(xiàn),只有當(dāng)瘤細(xì)胞進(jìn)展到類轉(zhuǎn)移原發(fā)瘤期或轉(zhuǎn)移瘤期時(shí),miR-200家族才會(huì)明顯地下調(diào)。
3.1.2 miR-200家族與卵巢癌耐藥 已有研究證實(shí),卵巢癌細(xì)胞發(fā)生EMT后對(duì)鉑類藥物的耐藥性會(huì)顯著上升[20],而miR-200家族尤其是 miR-429可以逆轉(zhuǎn) EMT過(guò)程[16],根據(jù)該逆轉(zhuǎn)過(guò)程是否伴隨卵巢癌細(xì)胞恢復(fù)對(duì)鉑類藥物敏感性的這一設(shè) 想,JABBARI等[21]在卵巢 癌細(xì)胞系 SKOV-3 和HEY-A8中分別過(guò)表達(dá)miR-200家族各成員,并隨后進(jìn)行順鉑耐藥性實(shí)驗(yàn),結(jié)果發(fā)現(xiàn)過(guò)表達(dá)miR-429與miR-141對(duì)卵巢癌細(xì)胞順鉑敏感性的恢復(fù)最高,miR-200c與miR-200a次之,miR-200b較差。JABBARI等[21]認(rèn)為這與 miR-200家族各成員間非種子序列的差異性有關(guān)。
3.1.3 miR-200家族與卵巢癌預(yù)后 腫瘤發(fā)生轉(zhuǎn)移以后預(yù)后很差,卵巢癌亦是如此。HU等[22]對(duì)55例晚期卵巢癌miRNA 表達(dá)水平分析后結(jié)果顯示,miR-200a、miR-200b、miR-429與卵巢癌復(fù)發(fā)及遠(yuǎn)期生存率密切相關(guān),其表達(dá)水平越低,預(yù)后越差。EITAN等[23]的研究結(jié)果顯示,在Ⅲ期卵巢癌中 miR-200a、miR-34a、miR-449b下調(diào)最為顯著,其中miR-200a與病人總生存期密切相關(guān)。腫瘤誘發(fā)miRNA表達(dá)后在血清-血漿中穩(wěn)定存在且不受內(nèi)源性RNA酶的影響,因此血清或血漿標(biāo)本都可以用以檢測(cè)miRNA的含量[24]。miR-429被認(rèn)為除可以作為卵巢癌發(fā)生EMT的標(biāo)志物外,還對(duì)抑制腫瘤的轉(zhuǎn)移具有一定的治療價(jià)值[10]。
除了miR-200家族外,尚有許多miRNA參與了卵巢癌EMT過(guò)程。CHAO等[25]研究發(fā)現(xiàn),miR-187在卵巢惡性腫瘤中表達(dá)上調(diào),但與之相反的是miR-187的表達(dá)水平卻與總生存率及無(wú)復(fù)發(fā)生存率呈正相關(guān)。進(jìn)一步的研究發(fā)現(xiàn),在卵巢癌發(fā)生的最初階段miR-187異常表達(dá)可以抑制其靶基因Dab2(一種抑癌基因),并引起癌細(xì)胞過(guò)度增殖,隨后在卵巢癌進(jìn)展晚期,持續(xù)上調(diào)的miR-187可以抑制Dab2依賴的EMT過(guò)程。YANG等[18]通過(guò)對(duì)459例晚期卵巢癌病例的分析研究發(fā)現(xiàn),提高miR-506的表達(dá)可以上調(diào)E-cad水平,抑制EMT過(guò)程,最終降低癌細(xì)胞的增殖侵襲能力。
卵巢惡性腫瘤整體預(yù)后不良,上皮性卵巢癌病死率居?jì)D科惡性腫瘤首位。卵巢腫瘤的組織學(xué)分型在目前人類實(shí)體腫瘤中也最為復(fù)雜多樣,這在一定程度上加大了其診斷和治療難度。隨著對(duì)EMT及其相關(guān)microRNA調(diào)控機(jī)制研究的深入,將為卵巢癌發(fā)病機(jī)制的解釋、化療方案選擇及預(yù)后判斷提供了新的思路。如 miR-429與ZEB1/2、miR-34與Snail的雙向抑制反饋通路首先通過(guò)EMT過(guò)程使癌細(xì)胞獲得轉(zhuǎn)移侵襲能力,而后又在腫瘤進(jìn)展晚期通過(guò)MET過(guò)程使腫瘤細(xì)胞在遠(yuǎn)處組織器官定植,這為解釋腫瘤的轉(zhuǎn)移機(jī)制提供了新的觀點(diǎn)。
雖然miRNA對(duì)EMT的調(diào)控機(jī)制研究已取得長(zhǎng)足進(jìn)展,但miRNA數(shù)量龐大,其調(diào)控的EMT通路間錯(cuò)綜復(fù)雜,且不同病理類型的卵巢癌組織中其miRNA表達(dá)存在較大差異。進(jìn)一步深入研究各EMT通路的機(jī)制及其的關(guān)鍵調(diào)節(jié)分子,將為臨床診斷、預(yù)后判斷、化療方案的選擇提供指導(dǎo)和依據(jù)。
[1]SUN Y,GUO F,BAGNOLI M,et al.Key nodes of a microRNA network associated with the integrated mesenchymal subtype of high-grade serous ovarian cancer[J].Chinese Journal of Cancer,2015,34(1):28-40.
[2]LEE R C,F(xiàn)EINBAUM R L,AMBROS V.The C.elegans heterochronic gene lin-4encodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14[J].Cell,1993,75(5):843-854.
[3]KOZOMARA A,GRIFFITHS-JONES S.miRBase:annotating high confidence microRNAs using deep sequencing data[J].Nucleic Acids Research,2014,42:D68-D73.
[4]RIJSEWIJK F,SCHUERMANN M,WAGENAAR E,et al.The drosophila homolog of the mouse mammary oncogene int-1is identical to the segment polarity gene wingless[J].Cell,1987,50(4):649-657.
[5]CLEVERS H,NUSSE R.Wnt/β-Catenin signaling and disease[J].Cell,2012,149(6):1192-1205.
[6]XIONG Y,Qi L Y,ZHOU F,et al.MiR-939promotes the proliferation of human ovarian cancer cells by repressing APC2 expression[J].Biomedicine & Pharmacotherapy,2015,71:64-69.
[7]PENUEL E,MARTIN G S.Transformation by v-Src:Ras-MAPK and PI3K-mTOR mediate parallel pathways[J].Molecular Biology of the Cell,1999,10(6):1693-1703.
[8]WUERKENBIEKE D,WANG J,LI Y,et al.miRNA-150 downregulation promotes pertuzumab resistance in ovarian cancer cells via AKT activation[J].Archives of Gynecology and Obstetrics,2015(Epub ahead of print).
[9]RAY A,MENG ERHONG,REED E,et al.Hedgehog signaling pathway regulates the growth of ovarian cancer spheroid forming cells[J].International Journal of Oncology,2011,39(4):797-804.
[10]EBERLEIN C,ROONEY C,ROSS S J,et al.E-Cadherin and EpCAM expression by NSCLC tumour cells associate with normal fibroblast activation through a pathway initiated by integrinαvβ6and maintained through TGFβsignalling[J].Oncogene,2015,34(6):704-716.
[11]CAO L,SHAO M,SCHILDER J,et al.Tissue transglutaminase links TGF-beta,epithelial to mesenchymal transition and a stem cell phenotype in ovarian cancer[J].Oncogene,2012,31(20):2521-2534.
[12]SAHLGREN C,GUSTAFSSON M V,JIN S B,et al.Notch signaling mediates hypoxia-induced tumor cell migration and invasion[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2008,105(17):6392-6397.
[13]唐青,張素芹,侯建青.上皮性卵巢癌組織Snail與Axl的表達(dá)及其意義[J].齊魯醫(yī)學(xué)雜志,2014,29(5):414-416.
[14]HUBER M A,AZOITEI N,BAUMANN B,et al.NF-kappaB is essential for epithelial-mesenchymal transition and me-tastasis in a model of breast cancer progression[J].The Journal of Clinical Investigation,2004,114(4):569-581.
[15]GREGORY P A,BERT A G,PATERSON E L,et al.The mir-200family and mir-205regulate epithelial to mesenchymal transition by targeting ZEB1and SIP1[J].Nature Cell Biology,2008,10(5):593-601.
[16]CHEN J,WANG L J,MATYUNINA L V,et al.Overexpression of miR-429induces mesenchymal-to-epithelial transition(Met)in metastatic ovarian cancer cells[J].Gynecologic Oncology,2011,121(1):200-205.
[17]BENDORAITE A,KNOUF E C,GARG K S,et al.Regulation of miR-200family microRNAs and ZEB transcription factors in ovarian cancer:Evidence supporting a mesothelial-toepithelial transition[J].Gynecologic Oncology,2010,116(1):117-125.
[18]YANG D,SUN Y,HU L M,et al.Integrated analyses identify a master microRNA regulatory network for the mesenchymal subtype in serous ovarian cancer[J].Cancer Cell,2013,23(2):186-199.
[19]OLSON P,LU J,ZHANG H,et al.MicroRNA dynamics in the stages of tumorigenesis correlate with hallmark capabilities of cancer[J].Genes & Development,2009,23(18):2152-2165.
[20]MARCHINI S,F(xiàn)RUSCIO R,CLIVIO L,et al.Resistance to platinum-based chemotherapy is associated with epithelial to mesenchymal transition in epithelial ovarian cancer[J].European Journal of Cancer(Oxford,England:1990),2013,49(2):520-530.
[21]JABBARI N,REAVIS A N,MCDONALD J F.Sequence variation among members of the miR-200microRNA family is correlated with variation in the ability to induce hallmarks of mesenchymal-epithelial transition in ovarian cancer cells[J].Journal of Ovarian Research,2014,7:12.
[22]HU X X,MACDONALD D M,HUETTNER P C,et al.A miR-200microRNA cluster as prognostic marker in advanced ovarian cancer[J].Gynecologic Oncology,2009,114(3):457-464.
[23]EITAN R,KUSHNIR M,LITHWICK-YANAI G,et al.Tumor microRNA expression patterns associated with resistance to Platinum based chemotherapy and survival in ovarian cancer patients[J].Gynecologic Oncology,2009,114(2):253-259.
[24]MITCHELL P S,PARKIN R K,KROH E M,et al.Circulating microRNAs as stable blood-based markers for cancer detection[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2008,105(30):10513-10518.
[25]CHAO A,LIN C Y,LEE Y S,et al.Regulation of ovarian cancer progression by microRNA-187through targeting Disabled homolog-2[J].Oncogene,2012,31(6):764-775.