毛雯靜 張煥康 沈波 何培杰
·基礎(chǔ)研究·
活性氧生成在卡鉑誘導(dǎo)HN-3人喉鱗癌細胞凋亡中的作用△
毛雯靜 張煥康 沈波*何培杰
目的觀察卡鉑(carboplatin)對HN-3人喉鱗癌細胞體外增殖的抑制作用、凋亡誘導(dǎo),探討活性氧生成在其中的作用。方法用卡鉑以不同孵育濃度、不同孵育時間處理HN-3細胞,四甲基偶氮唑鹽(MTT)法測定細胞活力,2′,7′二氯氫化熒光素已二脂(H2DCFDA)染色測定活性氧生成,Hoechst/PI雙重染色檢測細胞凋亡/壞死情況,蛋白印跡法(Western blotting)測定多聚ADP-核糖聚合酶(PARP)表達。結(jié)果卡鉑對體外培養(yǎng)的HN-3細胞有增殖抑制作用,呈劑量依賴性和時間依賴性;卡鉑誘導(dǎo)HN-3細胞活性氧生成及凋亡呈時間與劑量依賴性;卡鉑誘導(dǎo)氧化壓力下PARP表達上調(diào)。結(jié)論卡鉑可抑制人喉鱗癌HN-3細胞增殖,誘導(dǎo)HN-3細胞凋亡,其機制可能與卡鉑誘導(dǎo)HN-3細胞活性氧生成及氧化壓力下PARP表達上調(diào)有關(guān)。(中國眼耳鼻喉科雜志,2015,15:384-387)
喉鱗癌;卡鉑; 活性氧;凋亡;多聚ADP-核糖聚合酶
目前喉癌的治療提倡以手術(shù)為主,輔以放化療的綜合治療。近年來,誘導(dǎo)化療、同步放化療、序貫化療、增效化療等的提出與應(yīng)用,在一定程度上提高了喉癌患者的生存率與治療后的生存質(zhì)量。卡鉑是第2代鉑類化合物, 其抗癌活性與順鉑相似, 但毒性明顯低于順鉑[1]。本實驗以體外培養(yǎng)的HN-3細胞為對象, 觀察卡鉑對HN-3細胞增殖和凋亡的影響,探討卡鉑在喉癌治療中的作用機制。
1.1 細胞培養(yǎng)方法 AMC-HN-3細胞(韓國Asan Medical Center贈送)由1例先前未經(jīng)任何治療的63歲男性喉鱗癌患者標本分離純化而來[2],培養(yǎng)在含有10% 胎牛血清混合100 U/mL青霉素、100 μg/mL鏈霉素的RPMI1640培養(yǎng)基(Hyclone 公司,美國)。恒溫箱培養(yǎng)條件為飽和濕度,5% CO2,95%空氣,37 ℃。0.25%胰酶-0.01%乙二胺四乙酸(EDTA) 消化傳代細胞。
1.2 四甲基偶氮唑鹽實驗 細胞增殖活力由四甲基偶氮唑鹽(methyl thiazolyl tetrazolium,MTT)實驗進行評價。按規(guī)定的時間處理標本后,50 μL MTT 液體 (2 mg/mL) 加入96孔板培養(yǎng)孔孵育2 h后,將MTT液更換為100 μL 二巰基琥珀酸(DMSO)。經(jīng)20 s振蕩后,測量540 nm波長吸光度,細胞活力百分比按下述公式進行計算:細胞活力(%)=治療組平均吸光度/對照組平均吸光度×100%。
1.3 激光共聚焦顯微鏡 活性氧(reactive oxygen series, ROS)生成通過2′,7′二氯氫化熒光素已二脂(H2DCFDA) (D399,Molecular Probes 公司,美國)染色進行評價。簡要步驟包括:標本經(jīng)卡鉑處理達到要求的時間點后,以2 μmmol/L H2DCFDA在37 ℃下孵育細胞30 min;之后以磷酸鹽緩沖液輕柔沖洗細胞,激光共聚焦顯微鏡采集熒光圖片。細胞核形態(tài)通過Hoechst (33342) /PI (Sigma公司,美國)雙重染色進行評價。簡要步驟[3]為:經(jīng)卡鉑處理完畢的標本以2 μg/mL Hoechst (33342)孵育30 min,培養(yǎng)液更換后再以2 μg/mL PI孵育10 min。激光共聚焦顯微鏡觀察標本,拍照。1.4 蛋白印跡實驗 光動力療法治療24 h后,抽提細胞總蛋白,-20 ℃保存。調(diào)整各組總蛋白濃度使每孔上樣量一致(100 μg), 10%聚丙烯酰胺凝膠垂直電泳分離后將蛋白轉(zhuǎn)到硝酸纖維素膜。經(jīng)過脫脂奶粉封閉和洗膜后,分別加入目的抗體,4 ℃過夜。然后按照1∶2 000稀釋濃度加入兔抗過氧化物酶偶聯(lián)的二抗室溫標記1 h, 最后進行顯影、水洗、定影后觀察結(jié)果[GAPDH 購于英國Abcam公司,多聚ADP-核糖聚合酶(poly ADP-ribose polymerase,PARP)購于美國SantaCruz 公司]。
1.5 統(tǒng)計學(xué)處理 數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(SD)表示,應(yīng)用SPSS11.0軟件處理數(shù)據(jù),組間率的比較采用方差分析檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 卡鉑對HN-3細胞增殖的影響 隨著卡鉑濃度的增加,標本540 nm波長吸光度下降(圖1A),細胞活力相應(yīng)下降,增殖活力降低。0.04~2.50 mg/mL 卡鉑孵育下,HN-3細胞活力與對照組比較,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P值均<0.001)(圖1B)。以0.08 mg/mL 卡鉑孵育HN-3細胞,孵育1 h細胞活力無明顯變化(P=0.136),孵育3 h后隨著時間的延長,細胞增殖活力逐漸下降。0.08 mg/mL 卡鉑孵育3~48 h,HN-3細胞活力與對照組比較,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P值均<0.001)(圖2)。
2.2 卡鉑誘導(dǎo)HN-3細胞ROS生成 熒光標記染料H2DCFDA本身不發(fā)熒光,經(jīng)過ROS氧化可轉(zhuǎn)換成有綠色熒光的DCFDA[4]。因此,H2DCFDA染色可間接體現(xiàn)ROS生成的強弱。經(jīng)過24 h孵育,隨著卡鉑濃度的增加(從0.08 mg/mL至0.63 mg/mL),DCFDA熒光逐漸增強,提示HN-3細胞生成的ROS逐漸增多(圖3)。0.08 mg/mL卡鉑孵育HN-3細胞3、6、12、24、36、48 h,DCFDA熒光逐漸增強,表明隨著孵育時間延長,HN-3細胞生成的ROS逐漸增多(圖4)。
圖1. 不同濃度卡鉑對HN-3細胞增殖的影響 **示0.04~2.50 mg/mL卡鉑與對照組比較,P<0.01。本實驗重復(fù)3次
圖2. 0.08 mg/ml卡鉑在不同孵育時間對HN-3增殖的影響 **示0.08 mg/mL卡鉑孵育1~48 h,與對照組比較,P<0.01。本實驗重復(fù)3次
圖3. 不同劑量卡鉑誘導(dǎo)HN-3細胞ROS生成與細胞凋亡(×100)
圖4. 0.08 mg/mL卡鉑孵育HN-3 細胞不同時間后ROS生成及凋亡誘導(dǎo)(×100)
2.3 卡鉑誘導(dǎo)HN-3細胞凋亡 Hoechst 33342是一種嗜核酸熒光染料。正常細胞經(jīng)Hoechst染色表現(xiàn)為藍色類圓形細胞核,而凋亡細胞則表現(xiàn)為皺縮、濃染、有時碎裂的亮藍色細胞核。熒光染料PI不能透過完整的細胞膜,因此正常細胞和早期凋亡細胞不會染色。對于晚期凋亡細胞和壞死細胞,PI可將細胞核染成紫紅色。晚期凋亡細胞表現(xiàn)為紫色、亮藍雙染的濃縮、碎裂細胞核;壞死細胞則表現(xiàn)為紫色、藍色雙染的類圓形細胞核。
與ROS生成規(guī)律一致,Hoechst33342/PI雙重染色顯示,經(jīng)過24 h孵育,0.08~0.63 mg/mL卡鉑處理的HN-3細胞隨著卡鉑濃度的增加,凋亡細胞的比例逐漸增加,凋亡細胞表現(xiàn)為Hoechst33342/PI核皺縮、濃染、碎裂(圖3)。0.08 mg/ml卡鉑孵育HN-3細胞3、6、12、24、36、48 h,HN-3細胞凋亡比例逐漸增多,呈時間依賴性(圖4)。
研究表明,PARP裂解在凋亡誘導(dǎo)過程中發(fā)揮正調(diào)節(jié)作用。蛋白印跡實驗顯示,隨著卡鉑孵育時間的延長,PARP裂解量逐漸增加,呈現(xiàn)出凋亡誘導(dǎo)的時間依賴性特點(圖5)。圖6顯示,0.08 mg/mL較0.04 mg/mL卡鉑孵育HN-3細胞誘導(dǎo)PARP表達量明顯增加。以抗氧化劑谷胱甘肽(glutathione,GSH)共同孵育HN-3細胞,PARP裂解量顯著減少,顯示出ROS生成在卡鉑誘導(dǎo)PARP表達中的重要作用。
圖5. 在不同時間點0.08 mg/mL卡鉑孵育HN-3 細胞PARP表達
圖6. 抗氧化劑谷胱甘肽(GSH)對卡鉑誘導(dǎo)HN-3細胞PARP表達的影響
卡鉑是一種類烷化劑的抗腫瘤藥物, 其作用的分子機制為引起DNA 鏈間及鏈內(nèi)交聯(lián), 破壞DNA 而抑制腫瘤的生長[5]。本研究結(jié)果顯示,卡鉑能夠顯著抑制HN-3細胞增殖活性,誘導(dǎo)其凋亡,呈劑量與時間依賴性。隨著卡鉑孵育時間延長,以及孵育濃度的增加,HN-3細胞生成的ROS也逐漸增多。因此我們提出,卡鉑誘導(dǎo)的ROS生成可能在其誘導(dǎo)HN-3細胞凋亡及增殖抑制上發(fā)揮重要作用。
由超氧離子、過氧化氫和羥自由基組成的ROS是細胞代謝的副產(chǎn)品,主要來源是線粒體和質(zhì)膜。在生理情況下,少量的ROS 作為信號分子參與細胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo),調(diào)控細胞活動;在病理情況下,過量、持續(xù)的ROS 產(chǎn)生造成細胞嚴重的氧化應(yīng)激,導(dǎo)致?lián)p傷性后果。ROS 水平對細胞生死有著復(fù)雜的影響,由此對腫瘤、糖尿病、神經(jīng)退行性病變等氧化應(yīng)激相關(guān)疾病的發(fā)生和進程帶來復(fù)雜的影響,其中機制尚未完全闡明[6]。
研究發(fā)現(xiàn),幾乎所有的腫瘤細胞均有一個共同點,即細胞內(nèi)抗氧化酶活性較正常細胞低,對ROS的清除效率低。因此提高腫瘤細胞內(nèi)的ROS含量,無疑有利于對腫瘤細胞的損傷和抑制[7]。本研究結(jié)果顯示,卡鉑處理后能增加喉癌HN-3細胞內(nèi)ROS的生成釋放,呈劑量與時間依賴性特點。我們以GSH與卡鉑同時孵育HN-3細胞,應(yīng)用抗氧化劑抑制ROS生成,結(jié)果顯示,較卡鉑單純孵育組,同時孵育GSH組PARP裂解量明顯減少,表明ROS生成在卡鉑誘導(dǎo)HN-3細胞凋亡過程中發(fā)揮決定性作用。
我們先前的研究表明,誘導(dǎo)大量的ROS產(chǎn)生是光動力療法的主要機制之一[8]。因此,聯(lián)合卡鉑和PDT可能提高腫瘤細胞內(nèi)的ROS生成,進而有利于殺傷腫瘤細胞。我們曾嘗試卡鉑和PDT聯(lián)合治療HN-3細胞,結(jié)果提示,聯(lián)合治療組較單一治療組有協(xié)同的細胞毒性殺傷效果和凋亡誘導(dǎo)[3],從而提出,卡鉑可能是通過增加PDT的ROS生成途徑增強其光化學(xué)毒性及凋亡誘導(dǎo)。本實驗結(jié)果進一步支持了這一假說。聯(lián)合治療后能否協(xié)同產(chǎn)生ROS,調(diào)控ROS生成后細胞毒性殺傷效果和凋亡誘導(dǎo)能否隨之改變,以及具體參與的凋亡信號傳導(dǎo)通路均需進一步的實驗證實。
同為鉑類化療藥,卡鉑較順鉑的腎毒性更低,對一些腫瘤的療效更好,但其治療過程中存在固有的或獲得性的耐藥以及其他藥物不良反應(yīng)。有學(xué)者將卡鉑與其他化療藥或PDT等其他治療方式聯(lián)合應(yīng)用[3, 9-10],為進一步提高療效、降低藥物不良反應(yīng)做了有益的嘗試,其中的機制值得深入研究。
[1] Rajeswaran A, Trojan A, Burnand B, et al. Efficacy and side effects of cisplatin- and carboplatin-based doublet chemotherapeutic regimens versus non-platinum-based doublet chemotherapeutic regimens as first line treatment of metastatic non-small cell lung carcinoma: a systematic review of randomized controlled trials[J]. Lung Cancer, 2008,59(1):1-11.
[2] Kim SY, Chu KC, Lee HR, et al. Establishment and characterization of nine new head and neck cancer cell lines[J]. Acta Otolaryngol, 1997,117(5):775-784.
[3] He P, Ahn JC, Shin JI, et al. Enhanced apoptotic effect of combined modality of 9-hydroxypheophorbide alpha-mediated photodynamic therapy and carboplatin on AMC-HN-3 human head and neck cancer cells[J]. Oncol Rep, 2009,21(2):329-334.
[4] Afri M, Frimer AA, Cohen Y. Active oxygen chemistry within the liposomal bilayer. Part Ⅳ: locating 2′,7′-dichlorofluorescein (DCF), 2′,7′-dichlorodihydrofluorescein (DCFH) and 2′,7′-dichlorodihydrofluorescein diacetate (DCFH-DA) in the lipid bilayer[J]. Chem Phys Lipids, 2004,131(1):123-133.
[5] Hato SV, Khong A, de Vries IJ, et al. Molecular pathways: the immunogenic effects of platinum-based chemotherapeutics[J]. Clin Cancer Res, 2014,20(11):2831-2837.
[6] Finkel T. Oxidant signals and oxidative stress[J]. Curr Opin Cell Biol, 2003,15(2):247-254.
[7] Sabharwal SS, Schumacker PT. Mitochondrial ROS in cancer: initiators, amplifiers or an Achilles′ heel?[J]. Nat Rev Cancer, 2014,14(11):709-721.
[8] He P, Ahn JC, Shin JI, et al. Photoactivation of 9-hydroxypheophorbide alpha triggers apoptosis through the reactive oxygen species-mediated mitochondrial pathway and endoplasmic reticulum stress in AMC-HN-3 laryngeal cancer cells[J]. Int J Oncol, 2010,36(4):801-808.
[9] Rizvi I, Celli JP, Evans CL, et al. Synergistic enhancement of carboplatin efficacy with photodynamic therapy in a three-dimensional model for micrometastatic ovarian cancer[J]. Cancer Res, 2010,70(22):9319-9328.
[10] Grilley-Olson JE, Keedy VL, Sandler A, et al. A randomized phase II study of carboplatin with weekly or every-3-week nanoparticle albumin-bound paclitaxel (abraxane) in patients with extensive-stage small cell lung cancer[J]. Oncologist, 2015,20(2):105-106.
(本文編輯 楊美琴)
Role of reactive oxygen series generation in the apoptosis of HN-3 human laryngeal carcinoma cells induced by carboplatin
MAOWen-jing,ZHANGHuan-kang,SHENBo*,HEPei-jie.
DepartmentofOtolaryngology,EyeEarNoseandThroatHospitalofFudanUniversity,Shanghai200031,China
HE Pei-jie, E mail: hepj2002@sina.com
Objective To investigate the role of reactive oxygen series (ROS) in suppressing cell viability and inducing apoptosis of HN-3 human laryngeal squamous carcinoma cells induced by carboplatin. Methods The attached HN-3 cancer cells were treated with different concentrations of carboplatin for 24 h and 0.08 mg/mL carboplatin at indicated time points. Methyl thiazolyl tetrazolium(MTT) assay was used to detect cellular viability. H2DCFDA staining and Hoechst 33343/PI double staining were performed to monitor reactive oxygen series (ROS) generation and apoptosis/necrosis, respectively. Western blotting technique was used to assess the expression of poly ADP-ribose polymerase(PARP). Results Suppression of cellular viability on HN-3 cells induced by carboplatin was exhibited in a dose and time related pattern. Remarkable generation of ROS and apoptosis of HN-3 cells were initiated by carboplatin in dose and time related manner. Up-regulated expression of PARP under oxidative stress, induced by carboplatin, was partially inhibited by co-incubated with glutathione. Conclusions Generation of ROS and up-regulated PARP may play an important role in the suppression of cellular viability and apoptosis induction of HN-3 cells exerted by carboplatin. (Chin J Ophthalmol and Otorhinolaryngol,2015,15:384-387)
Laryngeal squamous cell carcinoma; Carboplatin; Reactive oxygen series; Apoptosis; Poly ADP-ribose polymerase
國家自然科學(xué)基金面上項目(81172557);教育部留學(xué)回國人員科研啟動基金(第45批)
復(fù)旦大學(xué)附屬眼耳鼻喉科醫(yī)院耳鼻喉科 上海 200031;*復(fù)旦大學(xué)放射醫(yī)學(xué)研究所 上海 200032
何培杰(Email:hepj2002@sina.com)
10.14166/j.issn.1671-2420.2015.06.002
2015-04-02)