李 英,李成發(fā),白 爽,孫小穎,梁 烽,陳麒宇,李 彬,陳旭輝,李泳濤,廖文忠
(深圳出入境檢驗(yàn)檢疫局,廣東 深圳 518067)
多環(huán)芳烴(PAHs)是指由2個或2個以上苯環(huán),以線狀、角狀或簇狀排列的化合物,其脂溶性高、不易降解、易在生物體內(nèi)積累,具有致癌、致畸、致突變性,且致癌性隨著苯環(huán)數(shù)的增加而加大,對生態(tài)環(huán)境和人體健康具有巨大的潛在危害,已被世界各國列為優(yōu)先控制的環(huán)境污染物[1-2]。目前,對于大氣、水、土壤、沉積物、植物等環(huán)境樣品和熏肉、牛奶、茶葉、食用油脂等食品中多環(huán)芳烴的測定已有大量報道[3-10]。食品接觸材料作為與食品相關(guān)聯(lián)的產(chǎn)品,其安全衛(wèi)生問題已受到廣泛關(guān)注,美國環(huán)保署、《德國食品和商品法》、德國聯(lián)邦的工作用技術(shù)設(shè)備與消費(fèi)品委員會(AtAV)等均對食品接觸材料中的PAHs有強(qiáng)制要求。因此,建立食品接觸材料中PAHs的分析方法,對保證食品質(zhì)量、維護(hù)食品安全體系具有重要意義。
目前,PAHs的前處理方法主要有液-液提取法、索氏提取法、超聲波提取法、固相萃取法、超臨界流體提取法、微波萃取法、快速溶劑萃取法、固相微萃取(SPME)法等[3-17]。固相微萃取是20世紀(jì)90年代初發(fā)展起來的一種集萃取、富集、解析為一體的樣品前處理技術(shù)[18],具有不需任何有機(jī)溶劑、操作簡單、靈敏度高等特點(diǎn),已廣泛應(yīng)用于食品分析、化學(xué)分析等各個領(lǐng)域。食品接觸材料,尤其是塑膠和紙質(zhì)食品接觸材料的基體復(fù)雜,在生產(chǎn)及后續(xù)的加工過程中會添加大量的助劑,如增塑劑、抗氧化劑、防腐劑、著色劑等,同時還可能存在各種殘留單體。本工作建立SPME與GC/MS聯(lián)用方法,采用選擇離子監(jiān)測(SIM)及分段掃描方式測定食品接觸材料模擬物中的PAHs,旨在為食品接觸材料的生產(chǎn)質(zhì)量控制和安全監(jiān)督檢測提供技術(shù)支持。
Agilent7890A-5975C氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀:美國Agilent公司產(chǎn)品,配有CTC Combi PAL自動進(jìn)樣器;DELTA320A pH計(jì):瑞士Mettler公司產(chǎn)品;Milli-Q超純水器:美國Millipore公司產(chǎn)品。
16種PAHs混合標(biāo)準(zhǔn)溶液(甲醇介質(zhì),100 mg/L):美國 Supelco公司產(chǎn)品;甲醇(色譜純):中國醫(yī)藥集團(tuán)公司上?;瘜W(xué)試劑公司產(chǎn)品;冰乙酸、氫氧化鈉(分析純):廣州化學(xué)試劑廠產(chǎn)品;氯化鈉、無水乙醇(分析純):國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司產(chǎn)品;100 μm聚二甲基硅氧烷(PDMS)萃取頭:加拿大Supelco公司產(chǎn)品;Milli-Q超純水;質(zhì)量濃度為3%乙酸溶液和10%氫氧化鈉溶液:實(shí)驗(yàn)室自制。
1.3.1色譜條件 色譜柱: HP-5MS(30 m×0.25 mm×0.25 μm);程序升溫:初始溫度60 ℃,以10 ℃/min升至260 ℃,再以2 ℃/min升至280 ℃,保持10 min;進(jìn)樣口溫度280 ℃;載氣:高純He,純度大于99.999%;載氣流速1.0 mL/min;不分流進(jìn)樣。
1.3.2質(zhì)譜條件 電子轟擊(EI)離子源;電子能量70 eV;傳輸線溫度280 ℃;四極桿溫度150 ℃;離子源溫度230 ℃;溶劑延遲6.5 min;質(zhì)量掃描范圍m/z50~650;采用分段選擇離子的方式(SIM)進(jìn)行定量分析,選擇離子具體條件列于表1。
1.4.1標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制 分別準(zhǔn)確移取適量PAHs混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,用甲醇配制成濃度約為20 mg/L標(biāo)準(zhǔn)儲備液。使用時,再用相應(yīng)的模擬物稀釋至所需濃度,置于4 ℃冰箱中保存。
1.4.2前處理方法 3%乙酸模擬液應(yīng)按照GB/T 23296.1—2009《食品接觸材料 塑料中受限物質(zhì) 塑料中物質(zhì)向食品及食品模擬物待定遷移試驗(yàn)和含量測定方法以及食品模擬物暴露條件選擇的指南》中的要求從遷移試驗(yàn)中獲取,在4 ℃冰箱中,避光保存。
1.4.3固相微萃取方法 按1.4.2方法,將3%乙酸模擬液先用10%氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)至pH 6.8,準(zhǔn)確移取18 mL該溶液,立即蓋上瓶蓋;將SPME萃取纖維插入萃取瓶內(nèi),并完全浸入溶液中,萃取針套管的其他部分不要與水相接觸;在45 ℃振蕩狀態(tài)下(振蕩速度為250 r/min)萃取30 min后,迅速插入GC/MS進(jìn)樣口,250 ℃解吸4 min。
表1 SIM選擇離子條件Table 1 Conditions of selected ion monitor
按1.4.3方法進(jìn)行萃取,在1.3.1條件下,16種多環(huán)芳烴能被很好的萃取和分離,其色譜圖示于圖1。
2.2.1萃取頭的選擇 SPME遵循相似相溶原理,即待分析物在涂層和樣品之間的分配平衡。由于PAHs 屬于非極性化合物,而PDMS纖維更容易吸附非極性物質(zhì),因此本實(shí)驗(yàn)選用100 μm PDMS萃取涂層。
2.2.2解吸時間的選擇 在同一溫度下,待測物解吸程度與解吸時間直接相關(guān)。按照1.4.3方法對5 μg/L多環(huán)芳烴混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行萃取,然后在280 ℃下解吸3 min后,再將該萃取頭進(jìn)行第2次熱解吸,仍有部分待測物峰出現(xiàn)。將解吸時間設(shè)置為4 min,按同樣的方法,可以發(fā)現(xiàn),此時的萃取頭在第2次熱解吸時未見色譜峰出現(xiàn),證明已被解吸完全。因此,本實(shí)驗(yàn)選擇4 min為最佳解吸時間。
2.2.3pH值的選擇 3%乙酸溶液和水的pH值分別為2.7和6.8,因此,用10%氫氧化鈉溶液將2份3%乙酸溶液分別調(diào)節(jié)pH值至5和6.8;取3個100 mL容量瓶,均加入25 μL 20 mg/L PAHs甲醇溶液,分別用pH 5、pH 6.8、pH 2.7的3%乙酸溶液定容至刻度,按1.4.3方法進(jìn)行測定,結(jié)果示于圖2。實(shí)驗(yàn)表明:1~8#組分隨著pH值的減小,峰面積變?。?~10#組分的峰面積在不同pH值時無明顯差異;而11~16#號組分則隨著pH值的減小,峰面積變大??紤]到pH值對組分的總體影響并不十分明顯,而且PDMS萃取涂層直接浸沒在pH值小于4的溶液中會影響壽命,因此最終采用pH 6.8來進(jìn)行測定實(shí)驗(yàn)。
注:1.萘;2.苊烯;3.苊;4.芴;5.菲;6.蒽;7.熒蒽;8.芘;9.苯并[a]蒽;10.屈;11.苯并[b]熒蒽;12.苯并[k]熒蒽;13.苯并[a]芘;14.茚并[1,2,3-cd]芘;15.二苯并[a,h]蒽;16.苯并[g,h,i]芘圖1 16種多環(huán)芳烴的選擇離子流色譜圖Fig.1 Selected ion monitor chromatograms of 16 PAHs
圖2 pH值對16種多環(huán)芳烴萃取量的影響Fig.2 Effect of pH on the adsorption of 16 PAHs
2.2.4萃取時間的選擇 固相微萃取是一個富集平衡的過程,選擇一個優(yōu)化的萃取時間是建立該方法的關(guān)鍵步驟之一。在其他條件相同的情況下,進(jìn)行萃取時間的優(yōu)化實(shí)驗(yàn),結(jié)果發(fā)現(xiàn):隨著萃取時間的增加,1#組分的峰面積基本不變;2~4#組分隨萃取時間的變化較大,但20 min后峰面積基本保持恒定;5~6#、14~16#組分在30 min后峰面積增大趨勢明顯變緩;7~13#組分則隨著萃取時間的增加,峰面積一直呈現(xiàn)明顯上升的趨勢,60 min時仍未達(dá)到平衡。根據(jù)Ai等[19]提出的平衡和非平衡萃取理論,在非平衡狀態(tài)下也可以進(jìn)行定量分析,尤其是對于沸點(diǎn)較高的非極性和弱極性目標(biāo)分析物,應(yīng)選擇在非平衡態(tài)下萃取,但此時的萃取時間和傳質(zhì)條件(如溫度、攪拌速度等)必須嚴(yán)格控制[20]。本實(shí)驗(yàn)最終選擇的萃取時間為30 min。
2.2.5萃取溫度的選擇 溫度升高可以加大待分析物的擴(kuò)散系數(shù),增加待分析物向涂層纖維的傳質(zhì)速率,有利于提高萃取效率,縮短萃取達(dá)到平衡的時間,但因?yàn)檩腿∵^程是放熱的,所以同時又會減少待測物在涂層和液相間的分配系數(shù)。在其他條件相同的情況下,測定了不同萃取溫度下16種多環(huán)芳烴的萃取量,結(jié)果發(fā)現(xiàn):隨著溫度的升高,1~4#組分的萃取量明顯減小;5~6#組分的峰面積隨著溫度的升高而有所增加,但在55 ℃以后峰面積卻隨著溫度的升高而降低;7~16#組分隨著溫度的升高,萃取量明顯增大。綜合考慮溫度對16種多環(huán)芳烴萃取量的影響,最終選擇萃取溫度為45 ℃。
2.2.6振蕩速度的選擇 攪拌有助于樣品與涂層間的傳質(zhì),從而縮短達(dá)到平衡的時間,振蕩是攪拌的方式之一。本實(shí)驗(yàn)考察了不同振蕩速度對萃取效率的影響,結(jié)果示于圖3。不振蕩時,待測物的峰面積最??;振蕩速度為250 r/min時,待測物的吸附量明顯增加;但隨著振蕩速度增加至500 r/min,吸附量只略有增加;振蕩速度為750 r/min時,吸附量反而稍有降低??紤]增加振蕩速度會給針和纖維涂層帶來過量的壓力,故選擇振蕩速度為250 r/min。
2.2.7離子強(qiáng)度的優(yōu)化 在水性模擬液中加鹽可以改變?nèi)芤褐邢嘟缑娴男再|(zhì),影響分配系數(shù),同時會增加水性模擬液中的離子強(qiáng)度,降低有機(jī)物在水中的溶解度,起到鹽析作用,有利于待測物在涂層中的萃取。但加鹽,尤其是高濃度鹽,可能會使鹽在萃取頭沉積或者堵塞毛細(xì)管,且易出現(xiàn)干擾峰。本實(shí)驗(yàn)選擇不加鹽和添加0、5%、10%、20%等4種不同情況來考察離子強(qiáng)度對16種多環(huán)芳烴萃取效率的影響。結(jié)果表明:1~8#組分隨著離子強(qiáng)度的增加峰面積增大;而9~16#組分則與之相反,即隨著離子強(qiáng)度的增加峰面積反而減小??紤]到酸性模擬液中后8個峰的響應(yīng)相對較低,同時也為了操作簡便、保護(hù)萃取頭及色譜柱等,最終選擇不加鹽。
將多環(huán)芳烴標(biāo)準(zhǔn)儲備液用3%乙酸溶液逐級稀釋,配制成濃度為0、0.01、0.02、0.05、0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、5.0 μg/L多環(huán)芳烴標(biāo)準(zhǔn)系列工作溶液。在優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件下進(jìn)行分析,以濃度x為橫坐標(biāo),峰面積y為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果表明,在0.01~5 μg/L范圍內(nèi),多環(huán)芳烴的質(zhì)量濃度與相應(yīng)的峰面積比值呈良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)在0.997 9~0.999 7之間。
用濃度分別為0.1、0.5、1.0 μg/L加標(biāo)樣品溶液進(jìn)行精密度實(shí)驗(yàn)(n=5),16種多環(huán)芳烴的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差在2.72%~14.70%之間。結(jié)果表明,在優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件下,方法的重現(xiàn)性良好。
選擇丙烯腈-苯乙烯量杯(浸泡條件為:溫度60 ℃,時間0.5 h)、硅橡膠壓面棒(浸泡條件為:溫度60 ℃,時間0.5 h)、筷子(浸泡條件為:溫度95 ℃,時間0.5 h)3種實(shí)際樣品,按照1.4.2方法進(jìn)行前處理,得到相應(yīng)的模擬液。在優(yōu)化的萃取條件下,同一濃度的模擬液中分別加入不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液,測得水模擬物和3%乙酸模擬物中16種多環(huán)芳烴的回收率均在 73.47%~117.6% 之間。
圖3 振蕩速度對萃取效率的影響Fig.3 Effect of stirring rate on SPME extraction efficiency
按照1.4.2前處理方法、1.3分析條件及1.4.3固相微萃取方法對塑料、橡膠和木制品等35批實(shí)際食品接觸材料樣品進(jìn)行檢測。測定結(jié)果表明,除4批木制品檢出萘組分外,其余樣品均未檢出16種多環(huán)芳烴。4批陽性樣品均為涂有油漆的木制品,萘的含量在1.19~9.97 μg/L范圍內(nèi)。
采用固相微萃取技術(shù),通過對SPME纖維頭、萃取溫度、萃取時間及解吸時間等萃取條件和GC/MS色譜條件進(jìn)行優(yōu)化,建立了一種固相微萃取-氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(SPME-GC/MS)測定食品接觸材料中多環(huán)芳烴遷移量的分析方法。該方法操作簡單、快速、靈敏、且不需要有機(jī)溶劑,可大大簡化樣品前處理步驟,提高檢測效率,能實(shí)現(xiàn)綠色檢測,從而滿足快速檢測的需要。
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