楊力,郭南京,蔡德鴻,程彥臻,張振,張樺
2007-2008年全國流行病學(xué)調(diào)查顯示,目前我國糖尿病前期人群已達總?cè)丝诘?5.5%[1],如不及時干預(yù),約有50%最終會發(fā)展為糖尿病。胰高血糖素樣肽1(glucagon-like peptide-1,GLP-1)是腸道L細胞分泌的重要腸肽激素[2],具有葡萄糖依賴性的促胰島素分泌作用[3-4],在糖尿病領(lǐng)域具有廣闊的應(yīng)用前景,但在糖尿病前期方面的作用尚未明確。近期的體外研究發(fā)現(xiàn),GLP-1可抑制糖基化終末產(chǎn)物(advanced glycation endproducts,AGEs)及炎癥因子所致的氧化應(yīng)激作用,防止細胞凋亡[5]。為進一步了解GLP-1的作用,拓展其應(yīng)用,本研究采用不同濃度GLP-1受體激動劑——利拉魯肽(liraglutide)對自發(fā)性糖耐量異常動物模型雄性O(shè)LETF (Otsuka-Long-Evans-Tokushima Fatty)大鼠及同種系LETO(Long-Evans-Tokushima-Otsuka)大鼠進行干預(yù),檢測血清中血糖、胰島素、主要的AGEs及炎癥因子水平,觀察利拉魯肽干預(yù)對糖尿病前期OLETF大鼠糖代謝的影響,并探討其相關(guān)作用機制。
1.1 實驗動物 雄性4周齡OLETF大鼠32只,同周齡雄性LETO大鼠8只為其同種系正常對照,均由日本大冢制藥株式會社德島研究所贈送。每籠4~6只飼養(yǎng)于SPF級環(huán)境,環(huán)境溫度控制在21±2℃,濕度為55%±10%,光照與黑暗12h交替。標準飼料喂養(yǎng),自由進食、飲水。12周齡時進行糖耐量試驗(隔夜禁食12h,葡萄糖2g/kg胃管注入),檢測0、30、60、90、120min時血糖,參照日本大冢制藥株式會社德島研究所關(guān)于OLETF大鼠的實驗研究[6],血糖峰值>16.7mmol/L且2h血糖>11.1mmol/L診斷為糖尿病,符合任何一項診斷為糖耐量異常(impaired glucose tolerance,IGT)。將符合IGT診斷的OLETF大鼠(IGT-OLETF)隨機分成4組,每組8只,單籠飼養(yǎng)。
1.2 主要試劑與儀器 主要試劑及配制:利拉魯肽(丹麥諾和諾德制藥公司),采用1ml注射器分次抽取利拉魯肽注射筆(3ml/支,6mg/ml)筆芯注射液,加入4℃ 0.9% NaCl,分別配成200、100、50μg/ml 3種濃度的利拉魯肽溶液,0.22μm濾膜過濾除菌,分裝,放置于4℃保存?zhèn)溆谩GEs、胰島素、血清超敏C反應(yīng)蛋白(Hs-CRP)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白細胞介素-6(IL-6)ELISA檢測試劑盒均購自武漢伊艾博科技有限公司。主要儀器:酶標檢測儀器(美國Bio-Rad公司),穩(wěn)豪?倍優(yōu)型血糖儀[強生(中國)醫(yī)療器材有限公司],-80℃超低溫冰箱(美國Thermo Fisher Scientific公司)。
1.3 實驗分組 將8只LETO大鼠作為LETO-saline(正常對照)組,給予生理鹽水0.5ml/kg,2次/d。另外將造模成功的IGT-OLETF大鼠隨機分為4組(每組8只):①OLETF-saline組(給予生理鹽水0.5ml/kg,2次/d[7]);②OLETF/LR-50μg/kg組(給予利拉魯肽50μg/kg,2次/d);③OLETF/LR-100μg/kg組(給予利拉魯肽100μg/kg,2次/d);④OLETF/LR-200μg/kg組(給予利拉魯肽200μg/kg,2次/d)。由于實驗灌胃失誤,導(dǎo)致OLETF/LR-100μg/kg組和OLETF/LR-200μg/kg組各死亡1只。以上藥物均為每日早7:30和晚7:30各注射1次,腹腔注射,持續(xù)12周后處死實驗動物。
1.4 一般項目觀察 實驗期間每周記錄各組實驗動物體重和進食量。分別于干預(yù)后每周行OGヰ 測定。取鼠尾靜脈血進行空腹和服糖后2h血糖測定。于0和12周尾靜脈采血,分離血清,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.5 血清指標檢測 檢測大鼠均于末次干預(yù)給藥后次日上午,腹腔注射戊巴比妥鈉(50mg/kg)麻醉(此前禁食15h),右心室徹底放血處死大鼠,收集血液離心后-80℃保存。采用ELISA法檢測血清AGEs、空腹胰島素(FIns)、Hs-CRP、TNF-α和IL-6水平。根據(jù)公式計算胰島素抵抗指數(shù)(HOMAIR=FBG×FIns/22.5)。
1.6 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 18.0軟件進行統(tǒng)計分析。所有數(shù)據(jù)均以表示,重復(fù)測量數(shù)據(jù)多組間比較采用重復(fù)測量方差分析,多組間比較采用單因素方差分析(One-Way ANOVA),組間兩兩比較方差齊性采用Bonferroni法,方差不齊采用Dunnet's T3法檢驗,干預(yù)前后數(shù)據(jù)比較采用配對樣本t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 一般項目 干預(yù)前各組IGT-OLETF大鼠進食量及體重較LETO大鼠增多(P<0.0001)。利拉魯肽干預(yù)1周后,不同劑量干預(yù)組IGT-OLETF大鼠體重及進食量均較干預(yù)前有所減少,體重較OLETF-saline組大鼠也有所降低(P<0.05)。干預(yù)后第2周開始,各組大鼠進食量及體重均逐漸增加,不同劑量利拉魯肽干預(yù)組的體重均較LETO-saline組明顯增加(P<0.01),與OLETF-saline大鼠比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05,圖1)。
2.2 血清糖代謝指標的比較 干預(yù)前OLETF大鼠空腹血糖(FPG)、糖耐量后2h血糖(2hPG)、空腹胰島素均高于LETO大鼠,提示胰島素抵抗導(dǎo)致血糖升高。50、100、200μg/kg利拉魯肽干預(yù)2周后,OLETF大鼠的FPG、2hPG、空腹胰島素均低于生理鹽水干預(yù)組(P<0.05),之后血糖一直維持在與LETO大鼠相似的水平,不同劑量組間FPG、2hPG及空腹胰島素差異均無統(tǒng)計學(xué)意義。干預(yù)實驗結(jié)束后,生理鹽水干預(yù)組8只OLETF大鼠中有7只(87.5%)發(fā)展成了糖尿病,利拉魯肽干預(yù)組22只大鼠均未發(fā)生糖尿病(圖2、表1)。
圖1 干預(yù)處理后大鼠進食量(A)和體重(B)的變化Fig. 1 Changes of food intake (A) and weight (B) after intervention LR. Liraglutide
2.3 各組大鼠AGEs、炎癥指標的變化 干預(yù)前OLETF大鼠AGEs與TNF-α、IL-6水平均高于LETO大鼠(P<0.05)。給予不同劑量利拉魯肽干預(yù)12周后,OLETF大鼠AGEs、TNF-α、IL-6水平均降低(P<0.01),其中OLETF/LR-200μg/kg 組AGEs較50μg/kg組下降更明顯(P<0.05,表2),表明利拉魯肽降低AGEs呈劑量依賴性。
圖2 利拉魯肽干預(yù)對空腹血糖(A)、糖耐量2h血糖(B)的影響Fig. 2 Change of fasting blood glucose and 2h post-prandial blood glucose after intervention with liraglutide LR. Liraglutide
表1 血清胰島素比較(x±s)Tab. 1 Fasting insulin before and after intervention (x±s)
OLETF大鼠是日本大冢制藥公司經(jīng)20代的傳代篩選開發(fā)的一種自發(fā)性2型糖尿病大鼠,該鼠由于膽囊收縮素(CCK)-A受體基因表達缺失而導(dǎo)致食欲亢進和肥胖。此鼠貪食,不好運動,體形肥胖,逐漸出現(xiàn)糖尿病,與人類2型糖尿病的病理生理進程極為相似,是目前國際上公認的最佳自發(fā)性2型糖尿病模型之一[8],而23周齡前的OLETF大鼠則是研究糖尿病前期病理生理機制及干預(yù)治療措施的理想動物模型[9]。
表2 利拉魯肽干預(yù)后血清AGEs及炎癥因子的比較(Tab. 2 Serum AGEs and markers of inflammation after intervention with liraglutide (
表2 利拉魯肽干預(yù)后血清AGEs及炎癥因子的比較(Tab. 2 Serum AGEs and markers of inflammation after intervention with liraglutide (
(1)P<0.05 compared with LETO-saline group; (2)P<0.05 compared with OLETF-saline group; (3)P<0.05 compared with OLETF/LR-50μg/kg group
Group n AGEs (ng/ml) TNF-α (ng/ml) Hs-CRP (ng/ml) IL-6 (pg/ml)LETO-saline 8 1.275±0.191 34.55±3.62 4.22±0.35 4.73±0.38 OLETF-saline 8 1.755±0.094(1) 53.22±2.09(1) 5.72±0.18 8.72±0.19(1)OLETF/LR-50μg/kg 8 1.564±0.140(1)(2) 35.47±3.29(2) 4.14±0.17 5.63±0.32(2)OLETF/LR-100μg/kg 7 1.392±0.128(2) 33.57±6.29(2) 3.90±0.48(2) 4.79±0.90(2)OLETF/LR-200μg/kg 7 1.351±0.153(2)(3) 34.72±5.06(2) 3.68±0.12(2) 5.11±0.26(2)
GLP-1是腸道細胞分泌的一種促進細胞增殖、抑制細胞凋亡的重要激素,其受體激動劑——利拉魯肽具有減輕體重,直接刺激胰島β細胞增殖、誘導(dǎo)細胞再生、阻止胰島細胞凋亡的作用,故而廣泛用于2型糖尿病的治療。但GLP-1對2型糖尿病前期的作用尚不明確,因此在本研究中我們采用IGT-OLETF大鼠模型作為研究對象,使用不同劑量利拉魯肽進行干預(yù),結(jié)果顯示利拉魯肽不僅可以改善OLETF大鼠的胰島素抵抗狀態(tài)及糖耐量異常,同時能夠明顯降低血清中AGEs和炎癥標志物(如Hs-CRP、TNF-α、IL-6)的水平。
近年來多項研究揭示,糖耐量異常階段人群血清AGEs及多種炎癥因子均較健康人明顯升高[10],說明非酶糖化及炎癥反應(yīng)在糖尿病前期階段即已存在,它們造成的氧化應(yīng)激作用可能加重胰島β細胞損害及胰島素抵抗,在糖尿病前期向糖尿病轉(zhuǎn)變過程中發(fā)揮著重要推動作用,進行有效的早期干預(yù)可延緩2型糖尿病及其并發(fā)癥的發(fā)生和發(fā)展。
最新的體外研究發(fā)現(xiàn),GLP-1在多種細胞中均可抑制AGEs-RAGE-氧化應(yīng)激軸,防止細胞凋亡。Ishibashi等[5]報道在腎小球系膜細胞中GLP-1可下調(diào)RAGE表達,從而拮抗AGEs的作用,減少ROS的形成。此后Puddu等[11]在胰腺β細胞HIT-T 15中也發(fā)現(xiàn)GLP-1可抑制AGEs誘導(dǎo)的RAGE表達,抵抗AGEs誘導(dǎo)的細胞凋亡和壞死。在我們的研究中,利拉魯肽可降低自發(fā)糖耐量異常動物模型血清中AGEs和炎癥標志物的水平。因此,我們推測,利拉魯肽在糖尿病前期階段可能通過抑制非酶糖化及抗炎作用,改善胰島素抵抗及胰島細胞功能,從而達到延緩糖尿病進展的目的。
[1]Yang W, Lu J, Weng J, et al. Prevalence of diabetes among men and women in China[J]. N Engl J Med, 2010, 362(12): 1090-1101.
[2]Li JH, Zhang H, Hou WL. Recent progress in the use of incretin for treating diabetes[J]. Acta Acad Med CPAPF, 2011, 20(7): 597-599, 604. [李敬華, 張紅, 候雯莉. 腸促胰島素生理作用及應(yīng)用研究進展[J]. 武警醫(yī)學(xué)院學(xué)報, 2011, 20(7): 597-599, 604.]
[3]Jin YC, Shen CA, Chai JK, et al. Progress of researches on the structure and biological effects of glucagon-like peptide-1[J].Med J Chin PLA, 2011, 36(8): 875-878. [金玉翠, 申傳安, 柴家科, 等. 胰高血糖素樣肽-1的結(jié)構(gòu)及生物學(xué)作用研究進展[J]. 解放軍醫(yī)學(xué)雜志, 2011, 36(8): 875-878.]
[4]Zhang YH. Advances on GLP-1 and analogs for type 2 diabetes[J]. Acta Acad Med CPAPF, 2010, 19(11): 921-924. [張月華. GLP-1及其類似物與2型糖尿病的關(guān)系[J]. 武警醫(yī)學(xué)院學(xué)報, 2010, 19(11): 921-924.]
[5]Ishibashi Y, Nishino Y, Matsui T, et al. Glucagon-like peptide-1 suppresses advanced glycation end product-induced monocyte chemoattractant protein-1 expression in mesangial cells by reducing advanced glycation end product receptor level[J].Metabolism, 2011, 60(9): 1271-1277.
[6]Kawano K, Hirashima T, Mori S, et al. Spontaneous long-term hyperglycemic rat with diabetic complications. Otsuka Long-Evans Tokushima Fatty (OLETF) strain[J]. Diabetes, 1992,41(11): 1422-1428.
[7]Sturis J, Gotfredse CF, Romer J, et al. GLP-1 derivative liraglutide in rats with β-cell deficiencies: influence of metabolic state on β-cell mass dynamics[J]. British J Pharmacology, 2003,140(1):123-32.
[8]Chen D, Wang MW. Development and application of rodent models for type 2 diabetes[J]. Diabetes Obes Metab, 2005, 4(7):307-317.
[9]Mochizuki K, Fukaya N, Tanaka Y, et al. Treatment with the alphaglucosidase inhibitor miglitol from the preonset stage in Otsuka Long-Evans Tokushima Fatty rats improves glycemic control and reduces the expression of inflammatory cytokine genes in peripheral leukocytes[J]. Metabolism, 2011, 11(60): 1560-1565.
[10]Suga T, Iso T, Shimizu T, et al. Activation of receptor for advanced glycation end products induces osteogenic differentiation of vascular smooth muscle cells[J]. J Atheroscler Thromb, 2011, 18(8): 670-683.
[11]Puddu A, Storace D, Durante A, et al. Glucagon-like peptide-1 counteracts the detrimental effects of Advanced Glycation End-Products in the pancreatic beta cell line HIT-T 15[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2010, 398 (3): 462-466.