馬軍德,賈斌,馬世俊,申紅,張挺軍,付維明,蔡國(guó)寶
(1石河子大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,石河子832003;2新疆兵團(tuán)第九師師機(jī)關(guān),額敏834609;3新疆兵團(tuán)第九師165團(tuán)畜牧獸醫(yī)工作站,額敏834609)
哺乳動(dòng)物中,睪丸決定因子(TDF)位于異型個(gè)體的遺傳組中,并引起具有雙向潛能的性腺原基分化成睪丸[1]。在 Y染色體短臂(Yp11.3)靠近常染色體的區(qū)域上,存在一種可編碼鋅指蛋白的高度保守的基因序列,即鋅指結(jié)構(gòu)基因(Zinc-finger Y,Zfy)[2]。研究發(fā)現(xiàn),在所有哺乳動(dòng)物個(gè)體中均可檢測(cè)到Zfy基因的序列,且Zfy-1存在于小鼠性別決定區(qū)域中,因此推測(cè)Zfy基因就是TDF[3]。經(jīng)研究發(fā)現(xiàn)Zfy基因是小鼠精子發(fā)生過程中的重要基因,位于Y染色體短臂上,在精母細(xì)胞粗線期到圓形精細(xì)胞的發(fā)育階段表達(dá),圓形精細(xì)胞中的含量最高。其作為一個(gè)較強(qiáng)的轉(zhuǎn)錄激活因子,能夠引導(dǎo)靶基因穿過核膜,定位于精子細(xì)胞核內(nèi),可能在精子變態(tài)過程中對(duì)某些基因具有轉(zhuǎn)錄激活作用[4],與精子的發(fā)生有關(guān)[5]。
RNA 干擾(RNA interference,RNAi)是由一些siRNA引起與其序列互補(bǔ)的單鏈RNA發(fā)生降解的現(xiàn)象。其可以高效特異地阻斷細(xì)胞內(nèi)特定基因的表達(dá),促使特定基因mRNA降解,誘導(dǎo)細(xì)胞表現(xiàn)出特定基因缺失的表型[6]。實(shí)驗(yàn)研究用來表達(dá)siRNA的工具主要有質(zhì)粒載體和病毒載體[7],其中質(zhì)粒載體最為常見。然而將載體有效地導(dǎo)入哺乳動(dòng)物細(xì)胞一般需要借助轉(zhuǎn)染試劑,這種外源基因的導(dǎo)入方法因存在無法準(zhǔn)確地確定轉(zhuǎn)染效率、難以保證每次實(shí)驗(yàn)的可重復(fù)性、不能在體內(nèi)產(chǎn)生長(zhǎng)期的效應(yīng),限制了它在哺乳動(dòng)物中的應(yīng)用[8]。利用病毒載體介導(dǎo)產(chǎn)生的小分子干擾RNA可以靶向感染宿主細(xì)胞實(shí)現(xiàn)穩(wěn)定、高效的基因沉默效果,避免了由于質(zhì)粒轉(zhuǎn)染效率低帶來的各種問題[9]。
本研究以逆轉(zhuǎn)錄病毒載體pMIG為基礎(chǔ),構(gòu)建一種新的RNA干擾逆轉(zhuǎn)錄病毒載體,并以小鼠的Zfy基因?yàn)榘悬c(diǎn),驗(yàn)證Zfy基因沉默效果,旨在為進(jìn)一步探究該基因在小鼠生精過程中的作用機(jī)制及功能奠定了基礎(chǔ),同時(shí)也為研究生精過程中的其它基因提供了一種新的思路。
1.1.1 試驗(yàn)動(dòng)物
昆明小鼠由石河子大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,按常規(guī)方法飼養(yǎng)及傳代,取25日齡左右的小鼠用于生精細(xì)胞的分離。
1.1.2 主要試驗(yàn)試劑及儀器
DMEM干粉培養(yǎng)基(Gibco),胎牛血清(FBS,Gibco),膠原酶IV(Sigma),透明質(zhì)酸(Sigma),胰蛋白酶(Amresco),非必須氨基酸(Gibco),丙酮酸(Sigma),及其它工作培養(yǎng)液;限制性內(nèi)切酶(EcoRⅠ、Bgl II)購自TaKaRa公司;無內(nèi)毒素質(zhì)粒試劑盒購自北京天根生化有限公司;氨芐青霉素購自沃德生物公司;高效轉(zhuǎn)染試劑盒(HET)購自百恩維生物科技有限公司;SYBR@ Premix Ex TaqTM購自TaKaRa公司;逆轉(zhuǎn)錄病毒載體pMIG、病毒包裝質(zhì)粒pUMVC及包膜質(zhì)粒VSVG,人胚腎細(xì)胞293T細(xì)胞,DH5α感受態(tài)細(xì)胞均有石河子大學(xué)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室保存;細(xì)胞培養(yǎng)箱、熒光顯微鏡。
1.2.1 逆轉(zhuǎn)錄病毒重組質(zhì)粒的構(gòu)建
根據(jù)本實(shí)驗(yàn)室前期設(shè)計(jì)篩選的Zfy基因RNA有效干擾序列,委托上海生工合成2條寡聚核苷酸:5′-AATTCCAACAGTGTGAGCTTCAAATTCAA GAGATTTGAAGCTCACACTGTTGTTTTTTGGA AA-3′和5′-GATCTTTCCAAAAAACAACAGTGTG AGCTTCAAATCTCTTGAATTTG AAGCTCACAC TGTTGG-3′。
該序列基本組成如下:酶切位點(diǎn)(EcoRⅠ)+Sense+loop+Antisense+終止信號(hào)+酶切位點(diǎn)(Bgl II)?;パa(bǔ)的2條 Oligo DNA 分別溶于去離子水,稀釋成100μmol/L。分別加入與上述配對(duì)的上游、下游單鏈寡核苷酸片段,按照1∶1的比例進(jìn)行混合后,在PCR儀上以95℃30s,72℃2min,25℃2min的程序合成雙鏈DNA,稀釋保存?zhèn)溆谩?/p>
原質(zhì)粒pMIG-h(huán)oct3/4經(jīng) EcoRⅠ、Bgl II雙酶切,回收大片段。將2對(duì)正確合鏈的雙鏈shRNA模板分別與線性化載體進(jìn)行連接,16℃孵育過夜,轉(zhuǎn)化入DH5α,挑取陽性單克隆,酶切鑒定并送華大基因測(cè)序驗(yàn)證。測(cè)序鑒定正確的重組質(zhì)粒命名為pMIG/ZFY-siRNA。
1.2.2 逆轉(zhuǎn)錄病毒顆粒的制備
將293T細(xì)胞種植于10cm細(xì)胞培養(yǎng)板中(約1×107個(gè)細(xì)胞),培養(yǎng)至待細(xì)胞狀態(tài)良好。將測(cè)序鑒定正確的pMIG/ZFY-siRNA質(zhì)粒與包裝質(zhì)粒pUMVC和包膜質(zhì)粒VSVG用高效轉(zhuǎn)染試劑盒(HET)共轉(zhuǎn)染至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期293T細(xì)胞,培養(yǎng)6~8h后換液并加入新鮮的細(xì)胞培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),同時(shí)設(shè)立陰性空載體對(duì)照。72h后收集病毒上清于4℃,12000r/min離心10min以除去細(xì)胞碎片,應(yīng)用0.45m濾器過濾,置于15000r/min高速離心機(jī)離心90min。將獲得的病毒液分裝在病毒管中,-80℃保存?zhèn)溆?。取少量病毒原液采用孔稀釋法測(cè)定病毒滴度,稀釋后依次感染293T細(xì)胞,培養(yǎng)48h后通過觀察計(jì)數(shù)熒光量以測(cè)定和計(jì)算病毒滴度。包裝的病毒記為Viral vector/ZFY-siRNA,陰性對(duì)照記為 Negative control。
1.2.3 小鼠生精細(xì)胞的分離、培養(yǎng)及病毒感染
選取25日齡左右的昆明小鼠頸椎脫臼法處死,75%的酒精進(jìn)行腹部皮膚消毒,置于超凈臺(tái)上切開皮膚及皮下組織取出雙側(cè)睪丸,放入冰冷的DHanks溶液中。剝除睪丸被膜,沖洗睪丸實(shí)質(zhì),用D-Hanks沖洗2次,加入相當(dāng)于組織10倍體積的1 g/LⅣ型膠原酶+20μg/mL DNAsePBS溶液在37℃5%CO2培養(yǎng)箱中15min,然后1000r/min離心1min后除去上清,用F12/DMEM洗滌2次,1000 r/min離心1min,將其剪碎成約1mm3大小。加入含1.5g/L透明質(zhì)酸酶和0.25%胰蛋白酶+20 μg/mL DNAse的PBS 37℃5%CO2培養(yǎng)箱中10 min(在此期間,搖動(dòng)試管3次),以消化基底膜和管周細(xì)胞。倒置顯微鏡下見曲細(xì)精管段軟散,讓其消散成單細(xì)胞或小的細(xì)胞團(tuán)即可。加入含10%胎牛血清、1%青鏈霉素的新鮮F12/DMEM培養(yǎng)液終止消化,吹打8~10次,制成單細(xì)胞懸液。用100μm濾網(wǎng)過濾后將濾液轉(zhuǎn)入離心管,1000r/min離心10 min輕輕的去除上清。用F12/DMEM洗滌2次(1000r/min離心10min去上清),將這些生精小管碎塊放入含10%胎牛血清的HamF12/DMEM培養(yǎng)液中,內(nèi)添加必需氨基酸、表皮生長(zhǎng)因子等,然后按約1×106個(gè)/cm2的密度接種于六孔板中,在32℃5%CO2、濕度為95%的條件下培養(yǎng)。24h后更換新鮮培養(yǎng)基,倒置相差顯微鏡下觀察細(xì)胞生長(zhǎng)情況和形態(tài)變化,并采集圖像。待生精細(xì)胞融合度達(dá)70%~80%,生長(zhǎng)狀態(tài)良好時(shí),用包裝好的逆轉(zhuǎn)錄病毒和陰性對(duì)照分別對(duì)其進(jìn)行轉(zhuǎn)染,48h后在熒光顯微鏡下觀察綠色熒光檢測(cè)轉(zhuǎn)染效果。
1.2.4 Zfy基因mRNA表達(dá)水平的檢測(cè)
72h后,采用Trizol(美國(guó)Invitroger)法提取細(xì)胞RNA,由寶生物TaKaRa公司提供的反轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行cDNA合成。利用熒光實(shí)時(shí)定量PCR方法檢測(cè)Zfy基因的mRNA表達(dá)水平,所用目標(biāo)基因Zfy 引 物 上 游 序 列 為 5′-TTTCCGTCACCCATCAGCACTC-3′,下 游 為 5′-AAAGTCAGGAGACAGATGCCACA-3′,擴(kuò)增產(chǎn)物為174bp。內(nèi)參基因 GAPDH 引 物 上 游 序 列 為 5′-ACCCAGAAGACTGTGGATGG-3′,下游為5′-CACATTGGGGGTAGGAACAC-3′,擴(kuò)增產(chǎn)物為171bp。
熒光實(shí)時(shí)定量PCR反應(yīng)體系的總體積為25 μL,其中包含SYBR@ Premix Ex TaqTM(Perfect Real time染料法實(shí)時(shí)熒光定量試劑盒)12.5μL,上下游引物(10μmol/L)各0.5μL,cDNA模板2μL,dd H2O 9.5μL。PCR反應(yīng)條件為95℃預(yù)變性30 s,95℃變性30s,61℃退火30s,72℃延伸15s,30個(gè)循環(huán)。試驗(yàn)對(duì)所有樣本進(jìn)行3個(gè)重復(fù),并在每次試驗(yàn)時(shí)設(shè)ddH2O為陰性對(duì)照。
構(gòu)建的重組RNAi質(zhì)粒pMIG/ZFY-siRNA,經(jīng)轉(zhuǎn)化感受態(tài)大腸桿菌DH5α擴(kuò)增后,進(jìn)行雙酶切鑒定,經(jīng)酶切的重組質(zhì)粒出現(xiàn)2條帶,沒有進(jìn)行酶切的質(zhì)粒只有1條帶,說明目的基因已成功插入線性化載體pMIG中。篩選酶切鑒定正確的陽性克隆送華大基因公司測(cè)序驗(yàn)證,結(jié)果證實(shí)插入的序列與設(shè)計(jì)的序列完全一致,無堿基突變。測(cè)序結(jié)果見圖1。
逆轉(zhuǎn)錄病毒重組質(zhì)粒pMIG/ZFY-siRNA、包裝質(zhì)粒pUMVC及包膜質(zhì)粒VSVG經(jīng)高效轉(zhuǎn)染試劑盒(HET)轉(zhuǎn)染至293T細(xì)胞后熒光顯微鏡下可見細(xì)胞表達(dá)綠色熒光蛋白(圖2a、b)。說明重組質(zhì)粒成功轉(zhuǎn)染至該細(xì)胞并已進(jìn)行病毒包裝,且轉(zhuǎn)染效率達(dá)80%左右。
根據(jù)孔稀釋法檢測(cè)熒光蛋白的表達(dá)量計(jì)算病毒滴度(TU/mL)=熒光細(xì)胞率(%)×細(xì)胞總數(shù)×病毒液稀釋倍數(shù)/病毒液體積(mL),測(cè)定滴度為5×108TU/mL,可用于后期實(shí)驗(yàn)。
從睪丸經(jīng)組合酶法分離的生精細(xì)胞,24h后可見一些由多個(gè)細(xì)胞的聚集,形成的細(xì)胞集落生長(zhǎng)于支持細(xì)胞飼養(yǎng)層上,集落中的細(xì)胞大小均一、飽滿呈圓形,輪廓清晰,以單個(gè)或數(shù)個(gè)連在一起依次排列,細(xì)胞之間緊密連接呈念珠狀或團(tuán)狀,支持細(xì)胞擴(kuò)展開來,呈多角形或不規(guī)則形。細(xì)胞集落少數(shù)貼壁生長(zhǎng),大部分以懸浮或半懸浮狀態(tài)生長(zhǎng)。待六孔板中培養(yǎng)的生精細(xì)胞數(shù)目達(dá)到70%~80%后,將包裝病毒和陰性對(duì)照轉(zhuǎn)染入所培養(yǎng)的生精細(xì)胞。48h后經(jīng)熒光顯微鏡檢測(cè)熒光蛋白,可以達(dá)到40%以上的感染效果(圖3a、b)。
利用qRT-PCR檢測(cè)經(jīng)細(xì)胞轉(zhuǎn)染后病毒干擾組與陰性對(duì)照組和空白對(duì)照組Zfy基因mRNA的表達(dá)水平。測(cè)定結(jié)果見圖4。
由測(cè)定結(jié)果(圖4)可以看出,轉(zhuǎn)染逆轉(zhuǎn)錄病毒的試驗(yàn)組,Zfy基因mRNA表達(dá)水平較陰性對(duì)照組和空白對(duì)照組顯著下降(P<0.01),而陰性對(duì)照組和空白對(duì)照組Zfy基因mRNA表達(dá)水平無顯著性差異(P>0.05)。
Zfy/Zfx分別位于X/Y染色體上的特異性基因,它們是染色體上編碼鋅指蛋白的1對(duì)等位基因,從減數(shù)分裂期開始表達(dá),在圓形精子細(xì)胞中的含量最高。Page等[10]明確指出Zfy基因與性別分化、精子發(fā)生有關(guān)。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)Zfy基因位于Y染色體短臂(Yp11.3)上,有11個(gè)外顯子和1個(gè)隨機(jī)重復(fù)區(qū)域的13個(gè)“鋅-指”結(jié)構(gòu)[11],約有801個(gè)氨基酸,30個(gè)氨基酸殘基,由2個(gè)半胱氨酸和2個(gè)組氨酸配位1個(gè)鋅離子構(gòu)成[12]。它具有2個(gè)核定位信號(hào)區(qū)和DNA結(jié)合位點(diǎn),能夠特異性的與靶基因結(jié)合,引導(dǎo)靶基因穿過核膜,定位于精子細(xì)胞核內(nèi),其編碼蛋白可能作為轉(zhuǎn)錄因子,在精子形成過程中具有一定功能[13]。因此,本研究利用RNA干擾技術(shù)有效地抑制了生精細(xì)胞內(nèi)Zfy基因的表達(dá),這一結(jié)果為進(jìn)一步探究Zfy基因在生精過程中的作用和功能奠定了基礎(chǔ)。
自從1998年Fire等[14]將dsRNA誘導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄后基因沉默現(xiàn)象命名為RNAi以來,這種可誘發(fā)高效基因沉默效應(yīng)的技術(shù)受到研究者的大力推廣并得到迅速發(fā)展。與傳統(tǒng)基因敲除技術(shù)、反義RNA技術(shù)及負(fù)性突變等基因沉默技術(shù)比較,RNAi具有特異性強(qiáng)、效率高、成本低、周期短、操作簡(jiǎn)單等不可比擬的優(yōu)勢(shì)[15-16],因而被廣泛應(yīng)用于功能基因組研究、基因治療等領(lǐng)域。本實(shí)驗(yàn)利用siRNA介導(dǎo)的RNAi技術(shù)實(shí)現(xiàn)了對(duì)靶基因Zfy表達(dá)的精細(xì)調(diào)控,達(dá)到了研究的目的,同時(shí)也為研究生精過程中其他相關(guān)基因的誘導(dǎo)調(diào)控開辟了新的思路。
質(zhì)粒和病毒載體介導(dǎo)的RNAi技術(shù)向哺乳動(dòng)物細(xì)胞中導(dǎo)入小分子干擾RNA(siRNA)能取得有效的基因沉默[17]。我們所使用的逆轉(zhuǎn)錄病毒載體pMIG多克隆位點(diǎn)中插入了綠色熒光蛋白,因此,通過熒光顯微鏡下的熒光強(qiáng)弱可以判斷siRNA的轉(zhuǎn)染效率。攜帶干擾片段的病毒載體進(jìn)入細(xì)胞后,siRNA將持續(xù)產(chǎn)生,并通過識(shí)別、降解具有同源序列的mRNA,最終干擾目的基因的表達(dá);這種逆轉(zhuǎn)錄病毒載體可以包裝成逆轉(zhuǎn)錄病毒,用于轉(zhuǎn)染比較難轉(zhuǎn)染的細(xì)胞系,從而提高了細(xì)胞的轉(zhuǎn)染效率,拓寬了RNAi的應(yīng)用范圍。
采用適當(dāng)?shù)某绦蚣跋椒ㄊ欠蛛x良好單細(xì)胞懸浮液的關(guān)鍵環(huán)節(jié)之一。由于曲細(xì)精管含有膠原纖維,大多研究采用了膠原酶消化法。本實(shí)驗(yàn)在參考相關(guān)文獻(xiàn)[18-20]方法的基礎(chǔ)上,采用組合酶法通過對(duì)酶濃度、消化時(shí)間探究,用低濃度膠原酶Ⅳ消散睪丸間質(zhì)并釋放大部分管周細(xì)胞,最低程度減少了間質(zhì)組織及管周細(xì)胞的污染;用胰蛋白酶消化時(shí)加機(jī)械吹打至組織塊完全消化為止,完全釋放出生精細(xì)胞和支持細(xì)胞。結(jié)果表明,這種程序性的消化過程能有效地分離到較為純粹的曲精細(xì)管段并制備出較高活率的單細(xì)胞懸液,同時(shí)確保絕大部分間質(zhì)成份、管周細(xì)胞及睪丸外細(xì)胞的去除。因此本研究認(rèn)為膠原酶和胰蛋白酶的組合是分離小鼠生精細(xì)胞較為簡(jiǎn)單、有效的方法。
逆轉(zhuǎn)錄病毒轉(zhuǎn)染小鼠生精細(xì)胞并篩選出穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的單克隆細(xì)胞擴(kuò)大培養(yǎng)。采用熒光實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)生精細(xì)胞中Zfy基因mRNA的表達(dá)水平,結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染逆轉(zhuǎn)錄病毒干擾載體的生精細(xì)胞中Zfy基因mRNA表達(dá)水平較對(duì)照組極顯著降低,而轉(zhuǎn)染陰性對(duì)照組和空白對(duì)照組Zfy基因mRNA表達(dá)水平無明顯變化。說明本研究中的逆轉(zhuǎn)錄病毒RNAi載體能特異、高效地抑制目的基因Zfy表達(dá),為進(jìn)一步研究Zfy基因的作用和功能奠定了基礎(chǔ)。
[1]Eric A,Juan F M.Amplification of the ZFY and ZFY genes for sex identification in humans,cattle,sheep and goats[J].Bio/Technology,1990,8:1279-1281.
[2]Palmer M S,Berta P,Sinelair A H,et al Comparison of human ZFY and ZFX Ixanseripts[J].Proc Natl Acad Sci USA,1990,87(5):1681-1685.
[3]Tajima F M.Estimation of evolutionary distance between nuclertide sequences[J].Mol Biol Evol,1984,10:677-688.
[4]彭強(qiáng),班謙,賈斌,等.siRNA介導(dǎo)小鼠Zfy基因干擾的定量分析[J].石河子大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2011,29(4):448-451.
[5]Reynolds R,Varlaro J.Gender determination of forensic samples using PCR amplification of ZFY/ZFX gene sequence[J].Forensic Sci,1996,41(2):276-286.
[6]沈波,鞠桂芝.RNA干擾技術(shù)及其在放射醫(yī)學(xué)研究中的應(yīng)用[J].輻射研究與輻射工藝學(xué)報(bào),2004,22(66):321-324.
[7]Rubinson D A,Dillon C P,Kwiatkowski A V,et al.A Lentivirus-based systemto functionally silence genes in primary mammalian cell,stem cell and transgenic mice by RNA interference[J].Nat Genet,2003,33:401-406.
[8]Barton G M,Medzhitov R.Retroviral delivery of small interfering RNA into primary cells[J].Proc Natl Acad Sci USA,2002,99:14943-14945.
[9]Cunningham A P,Andrews L G,Tollefsbol T O,Retro-virus mediated RNA interference.Targeting hTRET Through Stable Expression of Short-h(huán)airpin RNA[J].Methods Mol Biol,2007,405:39-46.
[10]Page D C,Mosher R,Simpson E M,et al.The sex-determining region of the human Y chromosome encodes a finger protein[J].Cell,1987,51(6):1091-1104.
[11]Palmer M S,Berta P,Sinelair A H,et al.Comparison of human ZFY and ZFX Ixanseripts[J].Proc Natl Acad Sci USA,1990,87(5):1681-1685.
[12]Brown R S,Sander C,Argos P.The primary structure of transcription factor TF Ⅲ A has 12consecutive Repeats[J].FEBS Lett,1985,186(2):271-274.
[13]Qing Peng,Ren Yan Li,Bin Jia,et al.Sex control by Zfy siRNA in the mouse[J].Theriogenology,2011,76:507-511.
[14]Fire A,Xu S,Montgomery M K,et al.Potent and specific gentic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans[J].Nature,1998,391(6669):806-811.
[15]Mocellin S,Provenzano M.RNA interference:learing gene knock-down from cell physiology[J].Transl Med,2004,2(1):39.
[16]趙峰玉,鄭銀英,張瑜,等.抗番茄花葉病毒RNAi載體的構(gòu)建及煙草遺傳轉(zhuǎn)化[J].石河子大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2011,29(2):163-168.
[17]Brummelkamp T R,Bermards R,Agami R.A system for stable expression of short interfering RNAs in mammalian cells[J].Science,2002,296(5567):550-553.
[18]Sousa M,Cremades N,Alves C,et al.Developmental potential of Human spermatogenic cells cocultured with Sertoli cells[J].Hum Reprod,2002,17(1):161-172.
[19]王寶峰,王菊,謝松松.小鼠精原干細(xì)胞體外分化中Stra8、mina53表達(dá)的研究[J].石河子大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2010,28(6):717-721.
[20]Van Pelt A M,De Rooij D G,Van Der B B.Isolation of the synchronized A spermatogonia from adult vitamin A-deficient rat testse[J].Biol Reprod,1996,55:439-444.