余夢(mèng)辰 綜述,李 斌,周 紅 審校
(第三軍醫(yī)大學(xué)藥學(xué)院藥理學(xué)教研室,重慶 400038)
內(nèi)毒素(lipopolysaccharide/endotoxin,LPS)是革蘭陰性菌胞壁外膜主要成分,由3部分組成:O-特異性側(cè)鏈、核心多糖和脂質(zhì)A(Lipid A)。LPS進(jìn)入機(jī)體后,免疫細(xì)胞可通過相關(guān)模式識(shí)別分子識(shí)別LPS,誘發(fā)失控性炎癥反應(yīng)。其中,單核/吞噬細(xì)胞系統(tǒng)是LPS的主要效應(yīng)細(xì)胞,其胞膜表面的模式識(shí)別受體是識(shí)別啟動(dòng)炎癥反應(yīng)的始動(dòng)因素。肝臟是人體最大的清除外來有毒物質(zhì)的器官,肝枯否細(xì)胞是全身最大的組織巨噬細(xì)胞群,是清除降解LPS的重要免疫細(xì)胞,肝竇狀內(nèi)皮細(xì)胞也可充當(dāng)清道夫角色,可不依賴枯否細(xì)胞獨(dú)立清除LPS[1]。本文就近年來有關(guān)單核/吞噬細(xì)胞系統(tǒng)內(nèi)化清除LPS相關(guān)受體的研究進(jìn)展予以綜述。
mCD14主要以GPI錨狀物附在單核/巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞和樹突狀細(xì)胞表面,無跨膜結(jié)構(gòu)和胞漿段,需通過與Toll樣受體4(TLR4)相互作用參與LPS的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)。LPS進(jìn)入體循環(huán)后以聚合物形式存在,血漿中的脂多糖結(jié)合蛋白使LPS聚合物轉(zhuǎn)換為單體,形成LPS-LBP復(fù)合物與mCD14結(jié)合,再將LPS轉(zhuǎn)移到TLR4/MD-2復(fù)合物,激活下游信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)。LPS能刺激細(xì)胞表面LBP/mCD14表達(dá)上調(diào),提高細(xì)胞對(duì)LPS敏感性,LPS的許多生物學(xué)效應(yīng)即通過此增敏效應(yīng)實(shí)現(xiàn)。
Toll樣受體(Toll like receptors,TLRs)家族是天然免疫系統(tǒng)中最重要的一類模式識(shí)別受體(PRR),結(jié)構(gòu)高度保守,能識(shí)別細(xì)菌、真菌、病毒和瘧原蟲等。TLRs為Ⅰ型跨膜蛋白,胞外區(qū)為富含亮氨酸的重復(fù)序列,胞內(nèi)區(qū)具有與Toll和白細(xì)胞介素1(IL-1)受體家族同源的結(jié)構(gòu)域 TIR[2]。目前已發(fā)現(xiàn)的TLRs有13種,分別識(shí)別不同的病原相關(guān)分子模式(pathogen associated molecular pattern,PAMP),如 TLR2可識(shí)別革蘭陽性菌的細(xì)菌脂蛋白,TLR4則是LPS的識(shí)別受體。
2.1 TLR4 TLR4廣泛表達(dá)在單核/巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞及上皮細(xì)胞中。LPS侵入機(jī)體后,可通過作用于TLR4下游的MyD88依賴和非MyD88依賴性信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑激活胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),啟動(dòng)炎癥反應(yīng)。
(1)MyD88依賴性信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑:在LBP和mCD14參與下LPS被轉(zhuǎn)運(yùn)至TLR4/MD-2復(fù)合物,MyD88招募IL-1受體相關(guān)激酶(IL-1receptor-associated kinase,IRAK),使IRAK 磷酸化而激活,而后IRAK-1從復(fù)合體上解離,結(jié)合于腫瘤壞死因子受體相關(guān)因子6(tumor necrosis factor-associated factor 6,TRAF6)并使其活化[3]。TRAF6通過兩條途徑進(jìn)行信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),一是通過泛素化活化轉(zhuǎn)化生長因子激酶1(transforming growth factor-B-activated kinase-1,TAK1),降 解 I-κB,活 化NF-κB誘導(dǎo)炎癥相關(guān)基因表達(dá);二是通過(mitogen-activated protein kinases,MAPK)途徑,激活p38、JNK、ERK1/2等介導(dǎo)炎性因子表達(dá)[4]。
MyD88非依賴性信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑:TLR4胞內(nèi)段與TRAM(TRIF-related adaptor molecule)作用,進(jìn)而與 TRIF(Toll/IL-1Rdomain-containing adaptor inducing IFN-β)結(jié)合,磷酸化干擾素調(diào)節(jié)因子3(interferon regulatory factor-3,IRF-3),誘導(dǎo)目的基因的轉(zhuǎn)錄。TRIF還可通過TRAF6激活NF-κB,誘導(dǎo)炎癥相關(guān)基因表達(dá)[5]。
TLR4也可介導(dǎo)LPS的內(nèi)化,TLR4識(shí)別游離的LPS后細(xì)胞質(zhì)側(cè)面的網(wǎng)格蛋白牽拉質(zhì)膜向內(nèi)凹陷,形成有被小泡。內(nèi)化的有被小泡形成內(nèi)體并和溶酶體融合,囊泡酸化后經(jīng)多種蛋白酶作用降解清除。阻礙LPS受體識(shí)別或封閉網(wǎng)格蛋白的表達(dá)均會(huì)導(dǎo)致LPS內(nèi)化程度降低。研究表明LPS內(nèi)化不僅與其降解、代謝有關(guān),也與細(xì)胞的活化有關(guān),如內(nèi)體酸化抑制劑氯喹可通過影響早期體內(nèi)的成熟抑制LPS誘導(dǎo)的細(xì)胞活化[6],在LPS的內(nèi)化障礙模型中,LPS誘導(dǎo)的炎癥因子的釋放水平降低,且NF-κB的活化受到顯著抑制[7]。此外,許多負(fù)調(diào)控分子如IRAK-M,A20等也可對(duì)TLR4介導(dǎo)的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路起抑制作用。TLR4還與其他LPS識(shí)別受體相互協(xié)同、相互制約,共同參與維持機(jī)體平衡。
2.2 TLR2 TLR2是革蘭陽性菌的主要識(shí)別受體,也能識(shí)別LPS并介導(dǎo)細(xì)胞LPS反應(yīng)。但TLR2與LPS的親和力較低,當(dāng)TLR4存在時(shí)細(xì)胞對(duì)LPS的識(shí)別無須TLR2的參與。TLR2與TLR4也存在協(xié)同作用和交叉耐受作用,且在LPS誘導(dǎo)的醛固酮分泌過程中,TLR2與TLR4都參與了信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)間的溝通[8]。LPS刺激可導(dǎo)致TLR2mRNA在腦、肝、肺、腎的表達(dá)上調(diào),但在脾臟中的表達(dá)下調(diào)。另有研究顯示,在LPS刺激下TLR2的蛋白水平表現(xiàn)為上調(diào),然而在LPS與腺苷同時(shí)存在的情況下,TLR2的蛋白水平則呈下調(diào)。
清道夫受體(scavenger receptor,SR)是巨噬細(xì)胞膜上帶有膠原結(jié)構(gòu)的三聚體膜蛋白,具有結(jié)合被修飾低密度脂蛋白等帶負(fù)電荷配體的活性??煞譃?個(gè)家族,即SR A~H。近來的研究發(fā)現(xiàn),巨噬細(xì)胞表面的SRs具有結(jié)合和清除細(xì)菌及LPS的作用。其中SR-A、SR-B是單核/吞噬細(xì)胞系統(tǒng)參與天然免疫的主要SR。
3.1 SR-A A型SR表達(dá)于大多數(shù)組織的巨噬細(xì)胞、骨髓來源樹突狀細(xì)胞、脾樹突狀細(xì)胞,是1種調(diào)控吞噬、降解LPS的防御性受體。SR-A可與LPS的Lipid A結(jié)合,通過受體介導(dǎo)的網(wǎng)格蛋白依賴途徑介導(dǎo)對(duì)LPS的內(nèi)化后迅速移至溶酶體內(nèi),經(jīng)脫磷酸和脫?;饔帽淮x、降解。與其他LPS受體不同的是,SR-A介導(dǎo)的LPS內(nèi)化清除不會(huì)激活巨噬細(xì)胞、誘導(dǎo)炎癥介質(zhì)的釋放。SR-A表達(dá)的上調(diào)可促進(jìn)RAW264.7細(xì)胞結(jié)合、內(nèi)化LPS,并抑制炎癥因子釋放和NF-κB活化。SR-A的激活還與TLR4誘導(dǎo)的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)可相互影響。一方面LPS刺激巨噬細(xì)胞后激活的SR-A可抑制TLR4誘導(dǎo)的細(xì)胞活化,從而降低炎癥因子的釋放[9];另一方面,LPS通過激活的TLR4下游信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)使巨噬細(xì)胞SR-A表達(dá)上調(diào)[10]。但也有文獻(xiàn)報(bào)道,LPS刺激對(duì)SR-A表達(dá)的上調(diào)與TLR4信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路無關(guān),而是由p38信號(hào)通路調(diào)控[11]。
SR-A還可通過識(shí)別革蘭陰性菌胞壁上的LPS而直接與革蘭陰性菌結(jié)合,是多種革蘭陰性菌內(nèi)化入胞的識(shí)別受體。SR-A基因敲除小鼠更易受到細(xì)菌感染,且對(duì)革蘭陰性菌的吞噬能力會(huì)減弱[12]。
3.2 MARCO MARCO僅表達(dá)于脾邊緣區(qū)的巨噬細(xì)胞、腹腔巨噬細(xì)胞等部分巨噬細(xì)胞,因其結(jié)構(gòu)與SR-AⅠ高度相似而被劃分為SR-A,但功能和分布與SR-A有明顯差異。MARCO缺少SR-AⅠ的繞線式α螺旋結(jié)構(gòu)域,但有較長的膠原結(jié)構(gòu)域,具有結(jié)合細(xì)菌和被修飾LDL的作用,可通過其C末端的SRCR結(jié)構(gòu)域與細(xì)菌結(jié)合,參與巨噬細(xì)胞對(duì)革蘭陽性菌和革蘭陰性菌的吞噬過程[13]。通常認(rèn)為LPS是 MARCO參與天然免疫反應(yīng)的主要配體,有研究顯示,MARCO的表達(dá)可受Toll受體激活的MyD88y依賴和非MyD88依賴信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑調(diào)控。但MARCO和SR-A在LPS誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞的炎性因子釋放進(jìn)程中的行為不同,SR-A可抑制LPS刺激巨噬細(xì)胞誘導(dǎo)的IL-12的釋放,但MARCO則可刺激IL-12的釋放。
3.3 SR-B B型SR是清道夫受體超基因家族成員,分為SRBⅠ、SR-BⅡ和CD36,參與機(jī)體脂類代謝、動(dòng)脈粥樣硬化形成與保護(hù)、細(xì)胞粘附和凋亡細(xì)胞的清除等生命過程。SR-BⅠ和CD36與LPS內(nèi)化清除有關(guān),有關(guān)SR-BⅡ生理意義的研究尚少見。
SR-BⅠ主要在肝臟、腎上腺及脂肪組織中表達(dá),與高密度脂蛋白有高度的親和性,是抗動(dòng)脈粥樣硬化的關(guān)鍵因子之一。體外實(shí)驗(yàn)表明,SR-BⅠ可與LPS直接結(jié)合,并促進(jìn)LPS的攝取與清除[14]。SR-BⅠ缺陷型小鼠對(duì)LPS誘導(dǎo)的LPS休克可表現(xiàn)出了更強(qiáng)的免疫炎癥反應(yīng)。SR-BⅠ也參與了肝細(xì)胞對(duì)血漿中LPS的清除,且這種清除作用在HDL的輔助下效率更高[15]。LPS可通過TLR2、TLR4的PI3K/Akt信號(hào)通路影響SR-BⅠ的表達(dá)[16],NF-κB的活化對(duì)SR-BⅠ的表達(dá)起負(fù)調(diào)控作用[17]。SR-BⅠ亦可抑制TLR4誘導(dǎo)的 NF-κB的活化。
CD36是一種與SR-BⅠ高度同源的膜糖蛋白,可在血小板、單核/巨噬細(xì)胞、樹突狀細(xì)胞等多種細(xì)胞中表達(dá)。研究表明,CD36可識(shí)別革蘭陽性菌和革蘭陰性菌,并可通過非TLR2/4依賴的JNK信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路調(diào)節(jié)LPS誘導(dǎo)的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)[18]。
膜突蛋白(membrane-organizing extension spike protein,moesin)屬ERM(ezrin,radixin,moesin)家族成員之一,表達(dá)于單核/巨噬細(xì)胞的表面。早期研究認(rèn)為moesin主要在結(jié)合細(xì)胞骨架、維持細(xì)胞的形狀、黏附及運(yùn)動(dòng)中起重要作用,近年來發(fā)現(xiàn)還參與LPS誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)??筸oesin抗體能劑量依賴性地抑制LPS刺激巨噬細(xì)胞釋放TNF-α,皮下注射LPS在moesin-/-型小鼠體內(nèi)引起的炎癥反應(yīng)程度比對(duì)照組低3倍,說明moesin參與了LPS誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)[19]。
moesin在CD14/TLR-4信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過程中扮演重要角色。LPS可與moesin的C末端結(jié)合,促進(jìn)moesin的表達(dá)和磷酸化。在LPS刺激過程中,moesin始終與CD14直接結(jié)合,并可與TLR-4/MD2復(fù)合物結(jié)合。阻斷 moesin后,LPS誘導(dǎo)的MyD88信號(hào)通路被阻斷,p38、ERK以及NF-κB的活化均被抑制[20]。
AOAH并非LPS識(shí)別受體,而是一種內(nèi)源性LPS水解酶,與LPS清除和LPS相關(guān)受體關(guān)系密切,因此將其一同納入綜述。AOAH主要分布于肝KCs、巨噬細(xì)胞、樹突狀細(xì)胞等,可選擇性水解LPS的脂質(zhì)A酰氧酰基基團(tuán)上的次級(jí)?;I,促使LPS的Lipid A結(jié)構(gòu)暴露從而被AOAH降解[21]。小鼠腹腔注射LPS后,肝、肺組織中的AOAH mRNA表達(dá)及活性均明顯提高。炎癥反應(yīng)時(shí),AOAH可在胞內(nèi)水解LPS,也可在胞外發(fā)揮去?;饔?,但AOAH胞外水解LPS的活性較胞內(nèi)緩慢。AOAH還可降解革蘭陰性菌胞膜上的LPS,降解后的LPS(deacylated lipopolysaccharide,dLPS)可通過與LPS競爭性結(jié)合LBP、CD14或抑制IL-8的釋放從而阻礙完整的LPS刺激免疫細(xì)胞。研究發(fā)現(xiàn),LPS的酰基鏈?zhǔn)荓PS與MD-2結(jié)合的關(guān)鍵部位,因此推斷dLPS由于與TLR4/MD-2結(jié)合受阻而阻斷LPS的刺激作用[22]。
研究顯示,Aoah-/-型小鼠和野生型小鼠同時(shí)靜脈注入LPS,Aoah-/-型小鼠較野生型小鼠更容易表現(xiàn)出不可逆的肝、脾腫大。而高表達(dá)AOAH基因的小鼠,LPS攻擊后恢復(fù)比野生型小鼠快,且可以避免小鼠出現(xiàn)肝、脾腫大[23]。但LPS或革蘭陰性菌攻擊的Aoah-/-型小鼠和Aoah+/+型小鼠存活率及炎癥反應(yīng)并無區(qū)別[24]。經(jīng)LPS預(yù)處理的Aoah-/-型小鼠對(duì)大腸埃希菌攻擊更為敏感,TNF-α和IL-6的釋放被延遲,且在細(xì)菌感染的最初24h,小鼠體內(nèi)的細(xì)菌大量繁殖[25]。提示AOAH可能是在LPS感染的晚期通過降低免疫細(xì)胞活性、抑制過度的炎癥反應(yīng)對(duì)機(jī)體起到保護(hù)作用。
LPS的識(shí)別與清除是由多器官、多系統(tǒng)協(xié)同參與的復(fù)雜的過程。許多種生物大分子參與LPS識(shí)別和清除,膿毒癥不同時(shí)期或/和不同階段需要不同的生物大分子的參與,發(fā)揮不同的生理作用,促使單核/吞噬細(xì)胞系統(tǒng)迅速清除、滅活LPS,并啟動(dòng)促炎癥和抗炎癥反應(yīng),使機(jī)體免受損害。對(duì)參與LPS降解清除的相關(guān)模式識(shí)別受體和生物大分子之間相互關(guān)系做進(jìn)一步深入的研究,將有助于明確膿毒癥的發(fā)病機(jī)制,為臨床膿毒癥防治提供新的理論依據(jù)。
[1]Stuart WD,Kulkarni RM,Gray JK,et al.Ron receptor regulates Kupffer cell-dependent cytokine production and hepatocyte survival following endotoxin exposure in mice[J].Hepatology,2011,53(5):1618-1628.
[2]Akira S,Uematsu S,Takeuchi O.Pathogen recognition and innate immunity[J].Cell,2006,124(4):783-801.
[3]Kawagoe T,Sato S,Jung A,et al.Essential role of IRAK-4protein and its kinase activity in Toll-like receptor-mediated immune responses but not in TCR signaling[J].J Exp Med,2007,204(5):1013-1024.
[4]Sato S,Sanjo H,Takeda K,et al.Essential function for the kinase TAK1in innate and adaptive immune responses[J].Nat Immunol,2005,6(11):1087-1095.
[5]H?cker H,Redecke V,Blagoev B,et al.Specificity in tolllike receptor signalling through distinct effector functions of TRAF3and TRAF6[J].Nature,2006,439(7073):204-207.
[6]Hong Z,Jiang Z,Liangxi W,et al.Chloroquine protects mice from challenge with CpG ODN and LPS by decreasing proinflammatory cytokine release[J].Int Immunopharmacol,2004,4(2):223-234.
[7]Wang Y,Yang Y,Liu X,et al.Inhibition of clathrin/dynamin-dependent internalization interferes with LPS-mediated TRAM-TRIF-dependent signaling pathway[J].Cell Immunol,2012,274(1-2):121-129.
[8]Wang L,Zhu R,Huang Z,et al.Lipopolysaccharide-induced toll-like receptor 4signaling in cancer cells promotes cell survival and proliferation in hepatocellular carcinoma[J].Dig Dis Sci,2013,58(8):2223-2236.
[9]Ohnishi K,Komohara Y,F(xiàn)ujiwara Y,et al.Suppression of TLR4-mediated inflammatory response by macrophage class A scavenger receptor(CD204)[J].Biochem Biophys Res Commun,2011,411(3):516-522.
[10]Mukhopadhyay S,Varin A,Chen Y,et al.SR-A/MARCO-mediated ligand delivery enhances intracellular TLR and NLR function,but ligand scavenging from cell surface limits TLR4response to pathogens[J].Blood,2011,117(4):1319-1328.
[11]Xiang Q,Wen L,Liu MH,et al.Endotoxin tolerance of RAW264.7correlates with p38-dependent up-regulation of scavenger receptor-A[J].J Int Med Res,2009,37(2):491-502.
[12]Bieghs V,Verheyen F,van Gorp PJ,et al.Internalization of modified lipids by CD36and SR-A leads to hepatic inflammation and lysosomal cholesterol storage in Kupffer cells[J].PLoS One,2012,7(3):e34378.
[13]Chen Y,Wermeling F,Sundqvist J,et al.A regulatory role for macrophage class A scavenger receptors in TLR4-mediated LPS responses[J].Eur J Immunol,2010,40(5):1451-1460.
[14]Vishnyakova TG,Kurlander R,Bocharov AV,et al.CLA-1and its splicing variant CLA-2mediate bacterial adhesion and cytosolic bacterial invasion in mammalian cells[J].Proc Natl Acad Sci USA,2006,103(45):16888-16893.
[15]Baranova IN,Vishnyakova TG,Bocharov AV,et al.Class B scavenger receptor types I and II and CD36mediate bacterial recognition and proinflammatory signaling induced by Escherichia coli,lipopolysaccharide,and cytosolic chaperonin 60[J].J Immunol,2012,188(3):1371-1380.
[16]Huang HL,Chiang MF,Lin CW,et al.Lipopolysaccharide directly stimulates aldosterone production via tolllike receptor 2and toll-like receptor 4related PI(3)K/Akt pathway in rat adrenal zona glomerulosa cells[J].J Cell Biochem,2010,111(4):872-880.
[17]Shibata N,Glass CK.Regulation of macrophage function in inflammation and atherosclerosis[J].J Lipid Res,2009,50(S1):277-281.
[18]Baranova IN,Kurlander R,Bocharov AV,et al.Role of human CD36in bacterial recognition,phagocytosis,and pathogen-induced JNK-mediated signaling[J].J Immunol,2008,181(10):7147-7156.
[19]Takamatsu H,Espinoza JL,Lu X,et al.Anti-moesin antibodies in the serum of patients with aplastic anemia stimulate peripheral blood mononuclear cells to secrete TNF-alpha and IFN-gamma[J].J Immunol,2009,182(1):703-710.
[20]Zawawi KH,Kantarci A,Schulze-Sp?te U,et al.Moesininduced signaling in response to lipopolysaccharide in macrophages[J].J Periodontal Res,2010,45(5):589-601.
[21]Gioannini TL,Teghanemt A,Zhang D,et al.Endotoxinbinding proteins modulate the susceptibility of bacterial endotoxin to deacylation by acyloxyacyl hydrolase[J].J Biol Chem,2007,282(11):7877-7884.
[22]Kim HM,Park BS,Kim JI,et al.Crystal structure of the TLR4-MD-2complex with bound endotoxin antagonist Eritoran[J].Cell,2007,130(5):906-917.
[23]Shao B,Lu M,Katz SC,et al.A host lipase detoxifies bacterial lipopolysaccharides in the liver and spleen[J].J Biol Chem,2007,282(18):13726-13735.
[24]Munford R,Lu M,Varley A.Chapter 2:kill the bacteria and also their messengers?[J].Adv Immunol,2009,103(3):29-48.
[25]Lu M,Varley AW,Ohta S,et al.Host inactivation of bacterial lipopolysaccharide prevents prolonged tolerance fol-lowing gram-negative bacterial infection[J].Cell Host Microbe,2008,4(3):293-302.