陳 娟 馬曉曄
視網(wǎng)膜色素變性(retinitis pigmentosa,RP)是一種眼科常見的遺傳性疾病。患者早期表現(xiàn)為“夜盲”,進(jìn)而表現(xiàn)為周邊視野缺損,最終導(dǎo)致中心視力喪失。該病目前尚無有效的預(yù)防和治愈方法。近年來,隨著基因治療、視網(wǎng)膜移植等技術(shù)在動物實驗中的廣泛開展,給人類RP的治療帶來了新的希望。本文就當(dāng)前RP的各種最新治療進(jìn)展綜述如下。
1.1 RP基因 RP具有多種遺傳方式,其中常染色體顯性遺傳RP(autosomal dominant retinitis pigmentosa,ADRP)占15% ~20%,常染色體隱性遺傳RP(autosomal recessive retinitis pigmentosa,ARRP)占20% ~25%,X染色體連鎖遺傳 RP(X-linked retinitis pigmentosa,XLRP)占10% ~15%,散發(fā)型 RP占40% ~45%[1]。目前已有超過60種ADRP基因、20種ARRP基因及5種XLRP基因被定位;其中引起ADRP的視紫紅質(zhì)基因的突變位點超過150個[2]。與隱性RP相關(guān)的位點有20個,其中14個基因被克隆,多數(shù)基因較為少見。XLRP患者無論從發(fā)病時間還是預(yù)后角度講均最為嚴(yán)重,已知有5個位點與XLRP有關(guān),其中有2個基因已被克隆,這2個基因的蛋白產(chǎn)物在多種組織中表達(dá),但蛋白質(zhì)的確切功能還不清楚。不斷發(fā)現(xiàn)的與RP相關(guān)的基因和位點以及基因突變位點的差異表明,導(dǎo)致RP的分子發(fā)病機制非常復(fù)雜?;虻膹V泛深入研究為基因治療提供了堅實的基礎(chǔ)。
1.2 基因治療途徑 主要分體內(nèi)和體外兩種。體內(nèi)基因治療主要用合適的載體攜帶目的基因經(jīng)視網(wǎng)膜下腔注射或玻璃體腔注射進(jìn)行治療。所用的載體主要分為病毒載體和非病毒載體。體外基因治療主要是把轉(zhuǎn)基因靶細(xì)胞移植到眼內(nèi),使外源性基因表達(dá)與視網(wǎng)膜移植手術(shù)聯(lián)合使用以達(dá)到基因治療的目的。
1.3 基因增補 ARRP主要是由于基因突變、基因產(chǎn)物缺乏引起的。對于這種類型的RP,可以通過基因增補技術(shù)把正?;?qū)敫泄饧?xì)胞內(nèi),以產(chǎn)生正常的基因表型,達(dá)到治療的目的。RPE65基因特別表達(dá)于視網(wǎng)膜色素上皮(retinal pigment epithelium,RPE),并且在11-順-視黃醛、視桿細(xì)胞和視錐細(xì)胞視蛋白色基的再循環(huán)中起著重要作用。Mao等[3]將野生型人RHO基因?qū)隦HO-/-小鼠后,視網(wǎng)膜電圖表明接受基因治療的小鼠在治療后6個月,A波振幅增加了79%,治療眼外核層厚度與對照眼相比增加了80%。這些結(jié)果表明,野生型RHO基因具有抑制突變蛋白的功能。Acland等[4]將RPE65基因?qū)?月齡的RPE65-/-狗,95 d后b波的閾值下降4個對數(shù)單位,接近于正常;振幅為正常的16%左右,感光細(xì)胞的振幅也為正常的16%,但對照組基本消失。Bemelmans等[5]將慢病毒介導(dǎo)的RPE65基因注射到RPE65-/-小鼠視網(wǎng)膜下腔內(nèi),可以使RPE65基因在RPE持續(xù)表達(dá),視網(wǎng)膜電圖記錄到的圖像與正常類似。RPE65基因轉(zhuǎn)移后至少4個月內(nèi)可以防止視錐細(xì)胞的退化,而對照組小鼠的視錐細(xì)胞則完全退化。Sarra等[6]發(fā)現(xiàn)將正常RHO基因?qū)胍暰W(wǎng)膜退化突變小鼠感光細(xì)胞后,可使感光細(xì)胞的酶活性和細(xì)胞功能恢復(fù)正常,且病毒滴度的增加可以提高轉(zhuǎn)導(dǎo)效率和感光細(xì)胞轉(zhuǎn)導(dǎo)起始速度。
1.4 基因沉默 目前研究認(rèn)為,ADRP的發(fā)病機制是由于感光細(xì)胞中出現(xiàn)異?;虍a(chǎn)物堆積,最后導(dǎo)致細(xì)胞壞死。正?;虻膶?dǎo)入并不能達(dá)到根本的治療目的,可行的方法是通過基因沉默使突變基因不表達(dá)或者少表達(dá)蛋白產(chǎn)物。
1.4.1 錘頭狀核酶 錘頭狀核酶是一種小型催化性RNA,具有催化裂解其他順式或反式RNA的功能,可識別特異性片段并產(chǎn)生裂解以催化清除異?;颉D壳板N頭狀核酶已應(yīng)用于獲得性免疫缺陷綜合征、帕金森病、血友病及RP等基因治療。Sullivan等[7]的體外研究證實錘頭狀核酶可以有效治療ADRP。Fritz等[8]設(shè)計了一套針對人類P23H視桿蛋白基因的錘頭狀核酶。A1i等[9]認(rèn)為錘頭狀核酶通過體內(nèi)基因轉(zhuǎn)移,能使RPE細(xì)胞復(fù)雜的超微結(jié)構(gòu)缺陷在形態(tài)和功能上得到矯正。Gorbatyuk等[10]使用設(shè)計的錘頭狀核酶Rz397體外轉(zhuǎn)染HEK293細(xì)胞與野生型RHO基因,結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染后1 d導(dǎo)致RHO mRNA表達(dá)下降60%;將AAV2-Rz397從視網(wǎng)膜下腔注入P6小鼠后發(fā)現(xiàn),錘頭狀核酶可以顯著降低(≥50%)RHO基因在P6小鼠視網(wǎng)膜中的表達(dá)。Shaw等[11]將錘頭狀核酶導(dǎo)入P347L豬眼后證實錘頭狀核酶能靶向破壞P347L序列,從而發(fā)揮保護(hù)感光細(xì)胞的作用。
1.4.2 RNA 干擾 RNA 干擾(RNA interference,RNAi)現(xiàn)象廣泛存在于動植物的細(xì)胞中,是機體為適應(yīng)環(huán)境變化而在蛋白翻譯水平進(jìn)行調(diào)控的重要機制。與目的基因序列同源的雙鏈小干擾RNA(small interference RNA,siRNA)進(jìn)入細(xì)胞后導(dǎo)致的基因轉(zhuǎn)錄后沉默現(xiàn)象稱為RNAi。RNAi近幾年來成為眼科治療ADRP的新研究方向。Georgiadis等[12]使用重組腺病毒轉(zhuǎn)錄的針對外周蛋白-2(Prph2)基因的siRNA研究小鼠視網(wǎng)膜上Prph2基因表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn)短發(fā)夾結(jié)構(gòu)的siRNA可以有效且特異地使Prph2基因沉默,在小鼠活體經(jīng)視網(wǎng)膜下腔注射后3周開始抑制Prph2基因的表達(dá)。Chadderton等[13]最近利用RNAi技術(shù)在ADRP小鼠模型視網(wǎng)膜下腔注射攜帶針對突變RHO siRNA的重組腺病毒載體,同時聯(lián)合移植鼠源性野生型RHO基因,利用視網(wǎng)膜電圖評估療效,結(jié)果表明突變點RNAi聯(lián)合RHO基因移植可以有效治療RHO基因突變引起的ADRP。O’Reilly等[14]同樣利用RNAi技術(shù)聯(lián)合野生型RHO基因轉(zhuǎn)入小鼠活體實驗和細(xì)胞實驗均證實針對突變RHO基因的siRNA能抑制90%突變型RHO基因的表達(dá),同時導(dǎo)入的野生型RHO基因能夠正常表達(dá)。
1.5 凋亡抑制 Bcl-2家族是研究及應(yīng)用最廣泛的一種抑制凋亡的基因,Bcl-2的表達(dá)具有保護(hù)光感受器細(xì)胞的作用,然而其過度表達(dá)也可導(dǎo)致大鼠光感受器細(xì)胞死亡,其原因尚不清楚,可能是Bcl-2基因的過度表達(dá)破壞了Bcl-2/Bax的平衡。Bcl-2也能抑制γ-PDE基因突變引起感光細(xì)胞的凋亡[15]。Yoshizawa等[16]研究發(fā)現(xiàn),由甲基亞硝基脲誘導(dǎo)的小鼠RP是可以高度再生的,機制主要與Bcl-2蛋白減少、Bax蛋白增加等有關(guān)。Murakami等[17]證實細(xì)胞凋亡誘導(dǎo)因子途徑在神經(jīng)保護(hù)作用中有著重要的地位,該研究表明細(xì)胞凋亡誘導(dǎo)因子可以上調(diào)Bcl-2表達(dá),最終導(dǎo)致感光細(xì)胞的凋亡。
誘導(dǎo)多能干細(xì)胞是一項創(chuàng)新技術(shù),可以作為一個無限細(xì)胞分化或組織工程來源。最近研究發(fā)現(xiàn),誘導(dǎo)多能干細(xì)胞具有治療 RP等疾病的潛力[18]。Smith等[19]將自體同源骨髓衍生的家族陰性的造血干細(xì)胞注入大鼠的退行性靜脈中,可以在一定程度上防治視錐細(xì)胞的死亡,保護(hù)中心椎體視覺且沒有明顯的排異反應(yīng)。Idelson等[20]利用特定的培養(yǎng)方法,使具有多能分化潛力的人類胚胎干細(xì)胞成功培養(yǎng)分化出功能形態(tài)學(xué)上都正常的RPE細(xì)胞。為將來治療因RPE細(xì)胞異常機能障礙引起的RP提供依據(jù)。Wang等[21]在一項非侵襲性干細(xì)胞治療的研究中發(fā)現(xiàn),在RP大鼠模型的感光細(xì)胞還沒有大量喪失之前,在大鼠尾靜脈注射干細(xì)胞進(jìn)行治療,當(dāng)未治療的大鼠感光細(xì)胞只有1~2層時,經(jīng)過干細(xì)胞注射治療,大鼠感光細(xì)胞增加至5~6層。
RP是由于感光細(xì)胞凋亡,最終導(dǎo)致感光細(xì)胞功能的喪失[22]。因此RPE移植研究思路即是將RPE細(xì)胞經(jīng)體外培養(yǎng)后,注入視網(wǎng)膜下腔或?qū)⒑琑PE細(xì)胞和感光細(xì)胞片的視網(wǎng)膜用手術(shù)的方法直接植入受體視網(wǎng)膜下腔,用來補充或修復(fù)凋亡的RPE細(xì)胞和感光細(xì)胞,以達(dá)到治療目的。視網(wǎng)膜移植的方法主要分為細(xì)胞移植和組織場面移植。
3.1 細(xì)胞移植 可進(jìn)行移植的細(xì)胞包括感光細(xì)胞、RPE細(xì)胞、神經(jīng)干細(xì)胞和雪旺細(xì)胞等。通常所說的視網(wǎng)膜細(xì)胞移植是指感光細(xì)胞和RPE細(xì)胞移植。Gouras等[23]將正常小鼠中分離的RPE細(xì)胞移植到RPE65-/-變性小鼠的視網(wǎng)膜下腔,對照組注射生理鹽水。結(jié)果發(fā)現(xiàn)移植后RPE65-/-小鼠外核層厚度較對照組明顯增厚,同時3.7周后小鼠視網(wǎng)膜電圖顯示振幅明顯增大,提示RPE移植是治療RP的有效方法之一。Sauve等[24]在RP大鼠的視網(wǎng)膜下腔注射人類衍生RPE細(xì)胞株ARPE-19,可以部分保留視桿細(xì)胞和視錐細(xì)胞的視網(wǎng)膜電圖功能。Gouras等[25]首先報道酶解Bruch膜RPE移植術(shù),他們將人RPE細(xì)胞經(jīng)處理后直接注射于猴的Bruch膜,術(shù)后2 h內(nèi),移植的RPE細(xì)胞可與宿主Bruch膜黏合,形成一層類上皮樣細(xì)胞層,病理檢查發(fā)現(xiàn)被移植的RPE細(xì)胞形態(tài)及功能均正常,說明這一方法的可行性。
3.2 視網(wǎng)膜組織塊移植 Yang等[26]將正常的大鼠光感受器及視網(wǎng)膜移植到3個月大的P23H大鼠(Pro-23-His視紫紅質(zhì)大鼠),6個月后評估視功能和視錐細(xì)胞計數(shù)。研究發(fā)現(xiàn)移植后的視錐細(xì)胞損傷減少了10%,同時視網(wǎng)膜電圖發(fā)現(xiàn)b波振幅增加了78%。Woch等[27]將新生鼠的視網(wǎng)膜片植入37~69 d RP大鼠的視網(wǎng)膜下腔,移植63 d~10個月后,大鼠上丘腦刺激實驗證實植入的視網(wǎng)膜片具有應(yīng)答反應(yīng)。Arai等[28]將完整的視網(wǎng)膜片移植入RP大鼠視網(wǎng)膜后,可以記錄到上丘對閃光的視反應(yīng)。
神經(jīng)營養(yǎng)因子是一類對神經(jīng)系統(tǒng)分化、發(fā)育、神經(jīng)元存活、軸突再生有著重要作用的細(xì)胞因子。相關(guān)研究已經(jīng)證實眼組織中存在著神經(jīng)營養(yǎng)因子,包括睫狀神經(jīng)營養(yǎng)因子(ciliary neurotrophic factor,CNTF)、堿性成纖維細(xì)胞生長因子、晶狀體上皮源性生長因子、肝細(xì)胞源性生長因子、腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)等,且許多已應(yīng)用于治療各種神經(jīng)退行性疾?。?9]。研究表明各種神經(jīng)營養(yǎng)因子通過玻璃體腔及視網(wǎng)膜下腔注射可以有效挽救RP動物模型的感光細(xì)胞,神經(jīng)營養(yǎng)因子多與基因治療相結(jié)合。CNTF已經(jīng)被證實具有視網(wǎng)膜保護(hù)作用,且不會引起視網(wǎng)膜下膠質(zhì)細(xì)胞增生[30]。Rhee等[31]將 rAAV 介導(dǎo)的 CNTF 注射到 RP小鼠視網(wǎng)膜下腔,發(fā)現(xiàn)可以維持感光內(nèi)視紫紅質(zhì)的表達(dá)。Azadi等[32]將CNTF聯(lián)合BDNF移植治療RP小鼠,發(fā)現(xiàn)治療后小鼠TUNEL染色陽性的光感受器細(xì)胞數(shù)量較對照組明顯下降,同時體內(nèi)可以檢測到內(nèi)源性CNTF表達(dá)顯著增高,證明CNTF聯(lián)合BDNF治療有確定的神經(jīng)保護(hù)作用。Zhang等[33]將BDNF質(zhì)粒注入RCS大鼠視網(wǎng)膜下腔或者玻璃體腔后再行電穿孔術(shù)治療RP,發(fā)現(xiàn)治療組和對照組視網(wǎng)膜光感受器細(xì)胞凋亡率有明顯的差異,證明BDNF移植是治療RP的有效方法之一。
人工視力主要包括視盤植入微電極、視網(wǎng)膜下腔植入人工視網(wǎng)膜硅芯片以及電針療法。Sakaguchi等[34]研究表明,將3個微電極植入已經(jīng)失明的RP患者的左眼視盤,6個月后,通過電刺激患者可以出現(xiàn)視覺反應(yīng)。通過刺激不同的電極患者產(chǎn)生視覺的部位及能感知的形狀也有所不同。在隨后的隨訪中沒有發(fā)現(xiàn)任何并發(fā)癥,提示通過植入電極可以有效地修復(fù)視覺缺損。Chow等[35]研究表明,將人工視網(wǎng)膜硅芯片植入6位患者的右眼,在隨后的6~18個月隨訪中,芯片依靠自帶的電量發(fā)揮一定的功能,沒有移植排異等反應(yīng),所有患者的視覺都得到一定的改善。
Tam等[36]研究表明RHO基因突變引起的RP存在光依賴性。它們在RHO突變基因的小鼠動物模型中進(jìn)行綠光照射刺激,發(fā)現(xiàn)可以誘發(fā)其感光細(xì)胞的變性,因此臨床上應(yīng)給予配戴墨鏡等處理以減少光源對眼視網(wǎng)膜的損傷。另外,還可以通過我國傳統(tǒng)醫(yī)學(xué)的針灸、中藥等聯(lián)合治療改善視網(wǎng)膜微循環(huán),進(jìn)而緩解感光細(xì)胞的凋亡。
基因治療將成為RP治療的主要方法,RP基因治療已經(jīng)通過了最初的實驗階段,但在基因治療過程中,其有效性、給藥途徑、載體的安全性等問題還有待于廣大眼科工作者進(jìn)行深入地研究。希望這些新技術(shù)、新療法能盡早實現(xiàn)治療RP的目標(biāo),相信在不久的將來,這些新療法能夠安全有效地治療RP,為RP患者帶來福音。
1 Wang Q,Chen Q,Zhao K,Wang L,Wang L,Traboulsi EI.Update on the molecular genetics of retinitis pigmentosa[J].Ophthalmic Genet,2001,22(3):133-154.
2 Farrar GJ,Millington-Ward S,Chadderton N,Humphries P,Kenna PF.Gene-based therapies for dominantly inherited retinopathies[J].Gene Ther,2011[Epub ahead of print].
3 Mao H,James T Jr,Schwein A,Shabashvili AE,Hauswirth WW,Gorbatyuk MS,et al.AAV delivery of wild-type rhodopsin preserves retinal function in a mouse model of autosomal dominant retinitis pigmentosa[J].Humgene Ther,2011,22(5):567-575.
4 Acland GM,Aguirre GD,Ray J,Zhang Q,Aleman TS,Cideciyan AV,et al.Gene therapy restores vision in a canine model of childhood blindness[J].Nat Genet,2001,28(1):92-95.
5 Bemelmans AP,Kostic C,Crippa SV,Hauswirth WW,Lem J,Munier FL,et al.Lentiviral gene transfer of RPE65 rescues survival and function of cones in a mouse model of leber congenital amaurosis[J].PloS Med,2006,3(10):e347.
6 Sarra GM,Stephens C,Schlichtenbrede FC,Bainbridge JW,Thrasher AJ,Luthert PJ,et al.Kinetics of transgene expression in mouse retina following sub-retinal injection of recombinant adeno-associated virus[J].Vision Res,2002,42(4):541-549.
7 Sullivan JM,Pietras KM,Shin BJ,Misasi JN.Hammerhead ribozymes designed to cleave all human rod opsin mRNAs which cause autosomal dominant retinitis pigmentosa[J].Mol Vis,2002,8:102-113.
8 Fritz JJ,Gorbatyuk M,Lewin AS,Hauswirth WW.Design and validation of therapeutic hammerhead ribozymes for autosomal dominant diseases[J].Methods Mol Biol,2004,252:221-236.
9 Ali RR,Sarra GM,Stephens C,Alwis MD,Bainbridge JW,Munro PM,et al.Restoration of photoreceptor ultrastructure and function in retinal degeneration slow mice by gene therapy[J].Nat Genet,2000,25(3):306-310.
10 Gorbatyuk MS,Pang JJ,Thomas J Jr,Hauswirth WW,Lewin AS.Knockdown of wild-type mouse rhodopsin using an AAV vectored ribozyme as part of an RNA replacement approach[J].Mol Vis,2005,11(7):648-656.
11 Shaw LC,Skold A,Wong F,Petters R,Hauswirth WW,Lewin AS.An allele-specific hammerhead ribozyme gene therapy for a porcine model of autosomal dominant retinitis pigmentosa[J].Mol Vis,2001,7(1):6-13.
12 Georgiadis A,Tschernutter M,Bainbridge JW,Robbie SJ,McIntosh J,Nathwani AC,et al.AAV-mediated knockdown of Peripherin-2 in vivo using miRNA-based hairpins[J].Gene Ther,2010,17(4):486-493.
13 Chadderton N,Millington-Ward S,Palfi A,O’Reilly M,Tuohy G,Humphries MM,et al.Improved retinal function in a mouse model of dominant retinitis pigmentosa following AAV-delivered gene therapy[J].Mol Ther,2009,17(4):593-599.
14 O’Reilly M,Palfi A,Chadderton N,Millington-Ward S,Ader M,Cronin T,et al.RNA interference-mediated suppression and replacement of human rhodopsin in vivo[J].Am J Humgenet,2007,81(1):127-135.
15 Cottet S,Schorderet DF.Mechanisms of apoptosis in retinitis pigmentosa[J].Curr Mol Med,2009,9(3):375-383.
16 Yoshizawa K,Tsubura A.Characteristics of N-methyl-N-nitrosourea-induced retinal degeneration in animals and application for the therapy of human retinitis pigmentosa[J].Nihpon Ganka Gakkai Zasshi,2005,109(6):327-337.
17 Murakami Y,Ikeda Y,Yonemitsu Y,Onimaru M,Nakagawa K,Kohno R,et al.Inhibition of nuclear translocation of apoptosisinducing factor is an essential mechanism of the neuroprotective activity of pigment epithelium-derived factor in a rat model of retinal degeneration[J].Am J Pathol,2008,173(5):1326-1338.
18 Jin ZB,Okamoto S,Mandai M,Takahashi M.Induced pluripotent stem cells for retinal degenerative diseases:a new perspective on the challenges[J].J Genet,2009,88(4):417-424.
19 Smith LE.Bone marrow-derived stem cells preserve cone vision in retinitis pigmentosa[J].J Clin Invest,2004,114(6):765-774.
20 Idelson M,Alper R,Obolensky A,Ben-Shushan E,Hemo I,Yachimovich-Cohen N,et al.Directed differentiation of human embryonic stem cells into functional retinal pigment epithelium cells[J].Cell Stem Cell,2009,5(4):396-408.
21 Wang S,Lu B,Girman S,Duan J,Duan J,McFarland T,et al.Non-invasive stem cell therapy in a rat model for retinal degeneration and vascular pathology[J].PLoS One,2010,5(2):e9200.
22 Huang Y,Enzmann V,Ildstad ST.Stem cell-based therapeutic applications in retinal degenerative diseases[J].Stem Cell Rev,2011,7(2):434-445.
23 Gouras P,Kong J,Tsang SH.Retinal degeneration and RPE transplantation in Rpe65(-/-)mice[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2002,43(10):3307-3311.
24 Sauve Y,Pinilla I,Lund RD.Partial preservation of rod and cones ERG function following subretinal injection of ARPE-19 cells in RCS rats[J].Vision Res,2006,46(8-9):1459-1472.
25 Gouras P,F(xiàn)lood MT,Kjedbye H,Bilek MK,Eggers H.Transplantation of cultured human retinal epithelium to Bruch’s membrane of the owl monkey’s eye[J].Curr Eye Res,1985;4(3):253-265.
26 Yang Y,Mohand-Said S,Léveillard T,F(xiàn)ontaine V,Simonutti M,Sahel JA.Transplantation of photoreceptor and total neural retina preserves cone function in P23H rhodopsin transgenic rat[J].PLoS One,2010,5(10):e13469.
27 Woch G,Aramant RB,Seiler MJ,Sagdullaev BT,McCall MA.Retinal transplants restore visually evoked responses in rats with photoreceptor degeneration[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2001,42(7):1669-1676.
28 Arai S,Thomas BB,Seiler MJ,Aramant RB,Qiu G,Mui C,et al.Restoration of visual responses following transplantation of in intact retinal sheets in rd mice[J].Exp Eye Res,2004,79(3):331-341.
29 Zhang X,Li GL.Progress in treatment of retinitis pigmentosa by neurotrophic factors[J].Zhonghua Yanke Zazhi,2009,45(9):855-859.
30 Zeiss CJ,Allore HG,Towle V,Tao W.CNTF induces dose-dependent alterations in retinal morphology in normal and rcd-1 canine retina[J].Exp Eye Res,2005,82(1):1-10.
31 Rhee KD,Ruiz A,Duncan JL,Hauswirth WW,Lavail MM,Bok D,et al.Molecular and cellular alterations induced by sustained expression of ciliary neurotrophic factor in a mouse model of retinitis pigmentosa[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2007,48(3):1389-1400.
32 Azadi S,Johnson LE,Paquet-Durand F,Perez MT,Zhang Y,Ekstr?m PA,et al.CNTF+BDNF treatment and neuroprotective pathways in the rd1 mouse retina[J].Brain Res,2007,1129(1):116-129.
33 Zhang M,Mo X,F(xiàn)ang Y,Guo W,Wu J,Zhang S,et al.Rescue of photoreceptors by BDNF gene transfer using in vivo electroporation in the RCS rat of retinitis pigmentosa[J].Curr Eye Res,2009,34(9):791-799.
34 Sakaguchi H,Kamei M,F(xiàn)ujikado T,Yonezawa E,Ozawa M,Cecilia-Gonzalez C,et al.Artificial vision by direct optic nerve electrode(AV-DONE)implantation in a blind patient with retinitis pigmentosa[J].J Artif Organs,2009,12(3):206-209.
35 Chow AY,Chow VY,Packo KH,Pollack JS,Peyman GA,Schuchard R.The artifical silicon retina microchip for the treatment of vision loss from retinitis pigmentosa[J].Arch Ophthalmol,2004,122(4):460-469.
36 Tam BM,Qazalbash A,Lee HC,Moritz OL.The dependence of retinal degeneration caused by the rhodopsin P23H mutation on light exposure and vitamin a deprivation[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2010,51(3):1327-1334.