周一軍,李璦,宋雨凌,李妍,周慧
(中國醫(yī)科大學(xué)附屬第四醫(yī)院內(nèi)分泌科,沈陽 1 1 0 0 3 2)
2型糖尿病患者由于肥胖、脂代謝紊亂常存在血漿游離脂肪酸(free fatty acid,F(xiàn)FA)水平增高[1],長期的FFA水平升高可導(dǎo)致胰島素分泌障礙,是形成胰島素抵抗、胰島β細(xì)胞功能減退的重要環(huán)節(jié)[2]。研究顯示,GTP結(jié)合蛋白耦聯(lián)受體40(GTP-binding protein coupling receptor 40,GPR40)是中長鏈 FFA的特異性受體,主要在胰島β細(xì)胞和胰島素分泌細(xì)胞系大量表達(dá),介導(dǎo)了FFA對β細(xì)胞的多種作用。GPR40是1個7次跨膜受體,它是G蛋白耦聯(lián)受體家族成員之一。GPR40以前從1個人類基因組片段中發(fā)現(xiàn),曾被認(rèn)為是1種“孤兒”受體(1種未知配體的受體),不發(fā)揮生理功能。最近研究發(fā)現(xiàn),GPR40通過介導(dǎo)β細(xì)胞Ca2+信號反應(yīng)參與了FFA刺激的胰島素分泌。FFA作為胞外配體,通過激活胰島β細(xì)胞的GPR40增加葡萄糖刺激的胰島素分泌[3~5]。
長期暴露在高水平FFA下,胰島細(xì)胞長期大量分泌胰島素而出現(xiàn)功能障礙,引起“脂毒性”作用,去除胰島β細(xì)胞中的GPR40可以保護(hù)大鼠不患肥胖誘發(fā)的糖尿病。因此,如果能選擇性地抑制胰島β細(xì)胞膜上的GPR40受體表達(dá),抑制其信號轉(zhuǎn)導(dǎo)功能,則可以防止“脂毒性”作用的發(fā)生,進(jìn)而大大降低糖尿病發(fā)生的可能性。本研究擬應(yīng)用反義RNA技術(shù)特異性下調(diào)胰島β細(xì)胞GPR40的表達(dá),觀察其對胰島 β 細(xì)胞內(nèi) Ca2+濃度([Ca2+]i)及胰島素分泌的影響。
成年SD大鼠,8~10周齡,體質(zhì)量250~300 g,由中國醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心提供。GPR40反義RNA真核表達(dá)載體 pcDNA3.1(+)-GPR40(-)質(zhì)粒由美國UniversityofTennesseeZhao博士惠贈;LipofectamineTM2000脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑,熒光染料探針Fura-2/AM購自Invitrogene公司;膠原酶Ⅴ、軟脂酸、油酸均為美國Sigma公司產(chǎn)品;RPMI-1640購自Gibco公司,胎牛血清為Hyclone公司產(chǎn)品,GPR40抗體購自Santa Cruz公司;胰島素放免檢測試劑盒購自中國原子能科學(xué)院;RF-5000型雙波長熒光分光光度計為日本島津制造。1.2 方法
1.2.1 胰島β細(xì)胞的分離純化:成年SD大鼠,腹腔麻醉,剖腹,絲線接扎膽總管入十二指腸處,膽總管內(nèi)插管,逆行灌注0.5 g/L膠原酶Ⅴ10 mL,分離胰腺,38℃水浴振蕩10 min取出,冰浴中撕碎,繼續(xù)38℃水浴振蕩10 min后,D-Hanks液終止消化,重復(fù)1~2次,直到組織完全消化。500 μm篩網(wǎng)過濾消化液,D-Hanks液離心洗滌3遍,沉淀物制成懸液。離心管中,依次加入 250、200、110 g/L Ficoll分離液和胰島懸液,3 000 r/min離心20 min,分層,吸出各界面細(xì)胞,D-Hanks液離心洗滌3遍,置入含胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)液中,37℃、CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
1.2.2 GPR40反義RNA表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染胰島細(xì)胞:將胰島細(xì)胞以2×105/孔接種于24孔培養(yǎng)板上,按照脂質(zhì)體介導(dǎo)法,取1 μg純化的重組反義RNA表達(dá)質(zhì)粒 pcDNA3.1(+)-GPR40(-),稀釋于 50 μL 無血清培養(yǎng)液中;加入2.5 μL LipofectamineTM2000脂質(zhì)體至50 μL無血清培養(yǎng)液中,室溫靜置20~30 min;將質(zhì)粒DNA與脂質(zhì)體的復(fù)合體按100 μL/孔加到24孔培養(yǎng)板中之后加入0.5 mL不含血清的培養(yǎng)液,輕輕搖動混勻,置入培養(yǎng)箱培養(yǎng)4 h后,移去轉(zhuǎn)染復(fù)合物,加入無血清培養(yǎng)液孵育48 h;同時設(shè)置空白質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組和對照組,每組設(shè)6個復(fù)孔。
1.2.3 免疫熒光染色:將各組胰島細(xì)胞培養(yǎng)于蓋玻片上,37℃下生長36 h后,加入4%多聚甲醛,室溫下固定10 min,加入GPR40單克隆抗體,4℃孵育過夜,用TBS及TBST漂洗后3次,相應(yīng)的二抗室溫下孵育1 h,二抗被相應(yīng)的帶有Alexa F1uor 488546熒光所標(biāo)記。用倒置熒光顯微鏡觀察,未加一抗的陰性對照沒有顯示陽性染色。
1.2.4 Western blot檢測GPR40表達(dá):收集各組細(xì)胞,RIPA裂解液裂解細(xì)胞,離心收集上清。提取細(xì)胞總蛋白后,BSA法蛋白定量,10%SDS-PAGE電泳分離,轉(zhuǎn)膜,室溫下5%脫脂奶粉、TBST封閉液封閉1 h,加入特異性GPR40抗體,4℃孵育過夜,TBST洗膜3次,二抗37℃孵育1 h,洗膜3次,ECL顯色系統(tǒng)顯示蛋白條帶,曝光、顯影。用UVP凝膠影象分析儀測定蛋白條帶濃度。
1.2.5 胰島素測定:各組胰島細(xì)胞培養(yǎng)48 h后,換用含軟脂酸和油酸混合物(軟脂酸∶油酸=2∶1,終濃度為1.0 mmol/L)的RPMI 1640培養(yǎng)液,分別作用胰島細(xì)胞10、30、60 min后,置于濃度為 16.7 mmol/L的高葡萄糖培養(yǎng)液中,37℃、50 mL/L CO2培養(yǎng)箱孵育2 h,收集培養(yǎng)液,放射免疫法測定胰島素水平。
1.2.6 測定[Ca2+]i:參照文獻(xiàn)[6]的方法,將上述細(xì)胞懸液在37℃預(yù)溫5 min后,加入Fura-2/AM(終濃度為5 μmol/L)37℃恒溫振蕩45 min。負(fù)載后的細(xì)胞以含0.2%牛血清白蛋白的溫Hank液洗滌2次,最后調(diào)整細(xì)胞數(shù)為2×106/mL,測前細(xì)胞先于37℃復(fù)溫2 min,采用熒光分光光度計測定熒光,測試參數(shù)如下:激發(fā)波長340 nm,裂隙寬度3 nm;發(fā)射波長500 nm,裂隙寬度 10 nm。用下面的公式:[Ca2+]i=Kd[(F-Fmin)/(Fmax-F)](nmol/L)來計算[Ca2+]i濃度。Kd為解離常數(shù)(225 nmol/L),F(xiàn)為測得的熒光強度,F(xiàn)max為加入1%Triton X-100后,測得的最大熒光強度,F(xiàn)min為加入EGTA(10 mmol/L)后測得的最小熒光強度。
實驗結(jié)果均以x±s表示,使用SPSS 11.5統(tǒng)計軟件,多組樣本均數(shù)間比較用方差分析,組間兩兩比較采用Dunnettt檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
對照組和空白質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組胰島β細(xì)胞,在熒光顯微鏡下觀察,細(xì)胞膜呈現(xiàn)綠色熒光,胰島β細(xì)胞轉(zhuǎn)染質(zhì)粒 pcDNA3.1(+)-GPR40(-)后,綠色熒光明顯減弱(圖1)。
Western blot結(jié)果顯示,反義RNA轉(zhuǎn)染組胰島細(xì)胞中GPR40蛋白的表達(dá)水平顯著低于對照組和空白質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),而對照組和空白質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組GPR40蛋白表達(dá)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05,圖2),結(jié)果顯示反義RNA轉(zhuǎn)染能夠有效地下調(diào)胰島細(xì)胞中GPR40的表達(dá)。
當(dāng)加入軟脂酸和油酸混合物時,引起對照組胰島細(xì)胞[Ca2+]i升高分2個時相:即起始的短暫快速相和隨后的持續(xù)相,快速相[Ca2+]i升高呈時間依賴性;同樣軟脂酸和油酸混合物升高空白質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組細(xì)胞[Ca2+]i;而軟脂酸和油酸混合物對反義RNA轉(zhuǎn)染組細(xì)胞[Ca2+]i升高不顯著,在各作用時間點,反義RNA轉(zhuǎn)染組細(xì)胞[Ca2+]i顯著低于對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05,表 1)。
軟脂酸和油酸混合物作用對照組胰島細(xì)胞后,隨作用時間增長,胰島素分泌水平明顯增加(P<0.05),呈時間依賴性;軟脂酸和油酸混合物同樣升高空白質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組胰島素分泌水平,反義RNA轉(zhuǎn)染組胰島素分泌較其它組受到顯著抑制,在各作用時間點,反義RNA轉(zhuǎn)染組胰島素水平顯著低于對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05,表2)。
FFA短期作用能調(diào)節(jié)基礎(chǔ)胰島素分泌和葡萄糖刺激的胰島素分泌(glucose stimulated insulin secre-tion,GSIS)。長期FFA水平升高可導(dǎo)致胰島素分泌障礙,甚至胰島β細(xì)胞凋亡,即脂毒性作用,這是形成胰島素抵抗、胰島β細(xì)胞功能減退的重要環(huán)節(jié),直接參與糖尿病的發(fā)生發(fā)展。
表1 G P R 4 0反義R N A對胰島β細(xì)胞內(nèi)C a2+濃度的影響(n mo l/L,x±s)T a b.1 E f f e c t o f G P R 4 0 a n t i-s e n s e R N Ao n t h e[C a2+]i i n β-c e l l s(n mo l/L,x±s)
中長鏈FFA增強胰腺β細(xì)胞中由葡萄糖刺激產(chǎn)生的胰島素分泌作用與GPR40的活化有關(guān),已知中長鏈FFA是GPR40的內(nèi)源性配體,一般認(rèn)為有活性的是含有10~16個碳原子的飽和脂肪酸以及含有18~22個碳原子的不飽和脂肪酸。GPR40在胰腺中大量表達(dá),它作為跨膜受體,可以接受細(xì)胞外FFA的刺激,通過信息轉(zhuǎn)導(dǎo)機制,使得細(xì)胞外鈣離子內(nèi)流,放大GSIS[7~9]。本研究顯示,在高濃度葡萄糖和Ca2+存在的環(huán)境下,軟脂酸和油酸混合物可刺激大鼠胰島細(xì)胞膜上的GPR40,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)[Ca2+]i顯著升高,放大GSIS。FFA作為GPR40的內(nèi)源性配體,通過一種全新的作用機制放大胰島素的分泌。
表2 G P R 4 0反義R N A對胰島β細(xì)胞胰島素分泌的影響(mmo l/L,x±s)T a b.2 E f f e c t o f G P R 4 0 a n t i-s e n s e R N Ao n i n s u l i n s e c r e t i o n i n β-c e l l s(mmo l/L,x±s)
反義RNA技術(shù)是近年發(fā)展起來的新型分子生物學(xué)技術(shù),它是利用基因重組,構(gòu)建人工表達(dá)載體,使其表達(dá)反義RNA,通過堿基互補與靶RNA配對結(jié)合,特異性封閉基因的手段[10],在抑制有害基因表達(dá)或失控基因的過度表達(dá)中顯示了良好的應(yīng)用前景。本研究采用反義RNA技術(shù),結(jié)果表明GPR40反義RNA轉(zhuǎn)染能夠有效地下調(diào)胰島細(xì)胞中GPR40的表達(dá),并且經(jīng)過進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),下調(diào)GPR40的表達(dá)可以顯著抑制細(xì)胞內(nèi)[Ca2+]i升高,同時GPR40反義RNA降低葡萄糖刺激胰島素分泌水平。去除細(xì)胞膜上的GPR40,細(xì)胞內(nèi)[Ca2+]i和胰島素分泌水平將會大大降低,說明軟脂酸和油酸混合物刺激放大的GSIS很大一部分經(jīng)由GPR40實現(xiàn)信息轉(zhuǎn)導(dǎo)。另外有實驗表明,GPR40-/-小鼠能免于肥胖介導(dǎo)的高胰島素血癥、肝脂肪變和糖耐量減退,小鼠胰島β細(xì)胞過度表達(dá)GPR40會損害β細(xì)胞功能[11]。研究結(jié)果表明,對于一些肥胖癥患者,體內(nèi)的高水平的FFA可能會引發(fā)糖尿病的發(fā)生,如果能找到一種高效的GPR40抑制劑,有選擇性地和胰島β細(xì)胞膜上的GPR40受體結(jié)合,抑制其信息轉(zhuǎn)導(dǎo)的功能,則可以保護(hù)部分患者免受“脂毒性”作用,進(jìn)而大大降低糖尿病發(fā)生的可能性。因此,研究GPR40的高效低毒的小分子拮抗劑,阻斷GPR40的分子有可能用于新型抗糖尿病藥物的開發(fā),對于防治糖尿病具有非常重要的意義。
綜上所述,F(xiàn)FA能夠通過激活胰島β細(xì)胞的GPR40增加GSIS,用GPR40反義RNA下調(diào)β細(xì)胞GPR40的表達(dá),導(dǎo)致FFA介導(dǎo)的細(xì)胞內(nèi)Ca2+應(yīng)答及胰島素分泌的顯著抑制,提示GPR40通過介導(dǎo)β細(xì)胞Ca2+信號反應(yīng)參與了FFA刺激的胰島素分泌。
[1]洪旭,馬清,陳海平,等.老年代謝綜合征患者的臨床特點分析[J].首都醫(yī)科大學(xué)學(xué)報,2009,30(5):691-695.
[2]Delarue J,Magnan C.Free fatty acids and insulin resistance[J].Curr Opin Clin Nutr Metab Care,2007,10(2):142-148.
[3]Hu H,He LY,Gong Z,et al.A novel class of antagonists for the FFAs receptor GPR40[J].Biochem Biophys Res Commun,2009,390(3):557-563.
[4]Oh DY,Lagakos WS.The role of G-protein-coupled receptors in mediating the effect of fatty acids on inflammation and insulin sensitivity[J].Curr Opin Clin Nutr Metab Care,2011,14(4):322-327.
[5]Del Guerra S,Bugliani M,D′Aleo V,et al.G-protein-coupled receptor 40 (GPR40)expression and its regulation in human pancreatic islets:the role of type 2 diabetes and fatty acids[J].Nutr Metab Cardiovasc Dis,2010,20(1):22-25.
[6]Sch觟fl C,B觟rger J,Lange S,et al.Energetic requirement of carbachol-inducedCa2+signalinginsinglemousebeta-cells[J].Endocrinology,2000,141(11):4065-4071.
[7]Wu J,Sun P,Zhang X,et al.Inhibition of GPR40 protects MIN6 β cellsfrompalmitate-inducedERstressandapoptosis[J].JCellBiochem,2012,113(4):1152-1158.
[8]Hara T,Hirasawa A,Ichimura A,et al.Free fatty acid receptors FFAR1 and GPR120 as novel therapeutic targets for metabolic disorders[J].J Pharm Sci,2011,100(9):3594-3601.
[9]Doshi LS,Brahma MK,Sayyed SG,et al.Acute administration of GPR40 receptor agonist potentiates glucose-stimulated insulin secretion in vivo in the rat[J].Metabolism,2009,58(3):333-343.
[10]龔道元,郭婷婷,伏紅霞,等.Survivin反義RNA/HSP70雙基因?qū)?MCF-7 細(xì)胞的影響[J].南方醫(yī)科大學(xué)學(xué)報,2010,30(7):1587-1589.
[11]Steneberg P,Rubins N,Bartoov-Shifman R,et al.The FFA receptor GPR40 links hyperinsulinemia,hepatic steatosis,and impaired glucose homeostasis in mouse[J].Cell Metab,2005,1(4):245-258.