李霞,劉志丹,秦艷杰
(大連海洋大學(xué) 遼寧省海洋生物資源恢復(fù)與生境修復(fù)重點實驗室,遼寧 大連 116023)
隨著冷凍保存技術(shù)的發(fā)展,人們開始探討超低溫冷凍保存對精子超微結(jié)構(gòu)以及遺傳物質(zhì)的損傷。林丹軍等[1]檢測了冷凍-解凍復(fù)蘇過程對大黃魚精子超微結(jié)構(gòu)的影響;徐西長等[2]應(yīng)用單細胞凝膠電泳技術(shù)(SCGE)研究了超低溫保存真鯛精子對其DNA的損傷。中間球海膽Strongylocentrotusintermedius作為中國北方重要的養(yǎng)殖種類,研究其精子的冷凍保存對種質(zhì)資源保護、良種培育、人工育苗等具有重要意義。關(guān)于中間球海膽精子超低溫冷凍保存的研究已有一些報道[3-4],但研究內(nèi)容主要集中在抗凍劑種類、降溫方式及解凍方式的選擇等方面,對精子超低溫冷凍保存的損傷尚未見報道。本研究中,作者采用透射電鏡技術(shù)對超低溫冷凍保存前后精子的形態(tài)和超微結(jié)構(gòu)進行了觀察,同時應(yīng)用單細胞凝膠電泳技術(shù)研究了超低溫冷凍保存對中間球海膽精子DNA的損傷,旨在為建立中間球海膽超低溫冷凍保存技術(shù)和凍精質(zhì)量的檢測提供參考。
中間球海膽取自大連新碧龍海產(chǎn)有限公司。于2009年5—6月和2010年9—11月分別選取性腺發(fā)育成熟的海膽,從中間球海膽圍口膜處注射0.075 mol/L KCl 1 mL,然后單個放在50 mL燒杯中,收集產(chǎn)出后的精子用于試驗。
1.2.1 冷凍精子的制備 制備冷凍精子時分為對照組(A0)和試驗組(A1),方法如下:
試驗組(A1):將400 μL鮮精與用400 μL消毒海水配制的抗凍劑(體積分?jǐn)?shù)為10%的DMSO+體積分?jǐn)?shù)為6%的甘油+25 mmol/L海藻糖)混合裝入1.8 mL凍存管中,將凍存管放入冰箱(4 ℃)內(nèi)平衡10 min,取出后在液氮面上方15 cm和3 cm處分別停留3 min和5 min,再浸入液氮中冷凍保存。24 h后取出凍存管在(22±2)℃下水浴中解凍。
對照組(A0):將400 μL鮮精與400 μL消毒海水混合,裝入1.8 mL凍存管中,冷凍、解凍方法同上。
1.2.2 電鏡樣品的制備與觀察 將新鮮精液與各組冷凍精子,分別放入用磷酸緩沖液(pH 7.2)配制的體積分?jǐn)?shù)為2.5%的戊二醛中固定24 h,再用體積分?jǐn)?shù)為1%的鋨酸固定2 h后,用梯度乙醇脫水,E-pon812包埋,用醋酸鈾和檸檬酸鉛雙重染色,在JEM-1200型透射電鏡下觀察并拍照。
在電鏡下觀察各組100個精子的質(zhì)膜、頂體、線粒體、鞭毛等細胞器,并計算各細胞器的畸形率:
畸形率=受損細胞器個數(shù)/總細胞器個數(shù)×100%。
1.2.3 單細胞凝膠電泳 將新鮮精液與解凍后的精液用4 ℃下預(yù)冷的磷酸緩沖液(pH 7.4)離心洗滌兩次(2 000 r/min),然后用磷酸緩沖液將精液稀釋至106個/mL。試驗參照Singh等[5]提出的堿性單細胞凝膠電泳方法,略加改進。步驟如下:
1)凝膠片的制備。用PBS配制6.5 g/L常溫熔點瓊脂糖(NMA)溶液,于微波爐內(nèi)加熱熔化,將熔解后的凝膠冷卻至45 ℃待用。取100 μL凝膠滴于預(yù)冷載玻片上,迅速蓋上蓋玻片,置于冰箱(4 ℃)內(nèi)保存20 min,待瓊脂糖冷卻變硬,取下蓋玻片,形成第一層凝膠;取10 μL精液與70 μL 6.5 g/L的低熔點瓊脂糖(LMA)溶液混勻,制成精子LMA懸液,迅速滴在第一層瓊脂糖上,加上蓋玻片,4 ℃下放置20 min使LMA硬化,輕輕取下蓋玻片,形成第二層凝膠;隨后在其上滴加75 μL 6.5 g/L LMA,加蓋玻片,形成第三層膠,凝固后取下蓋玻片。
2)裂解。將鋪好膠的載玻片立即浸入預(yù)冷的裂解液(2.5 mol/L NaCl,100 mmol/L Na2EDTA,10 mmol/L Tris,調(diào)節(jié)pH至10后加入10 g/L肌氨酸鈉,臨用前加入體積分?jǐn)?shù)為1%的TritonX-100和體積分?jǐn)?shù)為10%的DMSO)中,于4 ℃下裂解1 h。
3)電泳。將上述處理的玻片,吸去表面液體。并列放置在水平電泳槽的陽極,然后加入預(yù)冷的堿性電泳液(300 mmol/L NaOH,1 mmol/L Na2EDTA,pH>13),液面高出玻片約2.5 mm,浸泡30 min,使DNA雙鏈充分解旋, 之后在25 V、300 mA條件下,避光電泳40 min。
4)觀察并拍照。取出載玻片吸干水分,用Tris-HCl(0.4 mol/L,pH 7.5)中和3次,每次5 min;隨后滴加50 μL EB(50 μg/mL)溶液,加上蓋玻片染色15 min;避光操作,在熒光顯微鏡(Nikon DXM 1200)下觀察并拍照。
5)圖像分析及數(shù)據(jù)處理。采用CASP彗星圖像分析軟件測量。根據(jù)彗星尾部的DNA含量將DNA損傷程度分為5級:0級(G0),DNA含量<5%,無損傷,精子核完整;1級(G1),DNA含量為5%~20%,輕度損傷,可見彗尾,精子核基本完整;2級(G2),DNA含量為20%~40%,中度損傷,可見明顯的彗尾,精子核縮??;3級(G3),DNA含量為40%~95%,重度損傷,彗尾熒光信號強而密,并見明顯縮小的精子核;4級(G4),DNA含量>95%,完全損傷,僅見熒光強而密的彗星,精子核基本消失。每次計數(shù)100個精子,重復(fù)3次,計算各級損傷率[6]以及彗星率:
彗星率=彗星細胞數(shù)/總細胞數(shù)×100%,
損傷系數(shù)=∑(Gi級損傷細胞數(shù)×i),i=0~4。
用SPSS 17.0軟件處理試驗數(shù)據(jù),采用One Way-ANOVA做單因素方差分析, 差異顯著性水平設(shè)為0.05。試驗數(shù)據(jù)用平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。
在透射電鏡下觀察新鮮精子的超微結(jié)構(gòu)時發(fā)現(xiàn),中間球海膽精子屬鞭毛型,由頭和尾組成。精子頭部形似“子彈頭”,緊緊包被于平滑的質(zhì)膜下,頭部主要由頂體和細胞核組成。頂體位于前端,呈圓錐狀,前端鈍圓,內(nèi)含電子密度較高的物質(zhì);細胞核由前到后逐漸變寬,電子密度很高,細胞核外有一層核膜,正常狀態(tài)下核膜和質(zhì)膜不易區(qū)分;核的上端為頂體窩,呈“U”型,窩內(nèi)物質(zhì)電子密度較低,排列疏松(圖1-a);核后窩位于核的下端,呈倒“V”字型(圖1-b);線粒體數(shù)目為1個,形態(tài)較大,位于細胞核的后方,近圓形,具有雙層膜結(jié)構(gòu),內(nèi)膜向內(nèi)折形成排列不規(guī)則的內(nèi)嵴(圖1-c)。鞭毛從核后窩內(nèi)伸出,由軸絲和鞘組成,橫切面可見軸絲為典型的“9+2”型結(jié)構(gòu)(圖1-d)。
觀察發(fā)現(xiàn),A0組精子線粒體和頂體結(jié)構(gòu)均不完整,質(zhì)膜、鞭毛破損,細胞核裸露(圖1-e)。A1組多數(shù)精子結(jié)構(gòu)完好,但有部分精子的細胞器受損,表現(xiàn)為質(zhì)膜褶皺(圖1-f),或膨脹舉起,與核膜間隙明顯增大(圖1-g);頂體腫脹、破裂(圖1-h)或脫落(圖1-i);線粒體嵴間隙增大,內(nèi)部出現(xiàn)空泡(圖1-j),甚至線粒體內(nèi)膜破損,內(nèi)嵴減少,呈彌散狀(圖1-k);鞭毛被膜腫脹,呈波浪狀,“9+2”型結(jié)構(gòu)模糊(圖1-l)。細胞核結(jié)構(gòu)同新鮮精子。各組細胞器畸形率見表1。由表1可見,冷凍對質(zhì)膜和線粒體結(jié)構(gòu)影響較大,對頂體次之。
圖1 中間球海膽新鮮精子和冷凍精子超微結(jié)構(gòu)的比較Fig.1 Ultrastructural comparison of fresh and post-thawed sperm in sea urchin Strongylocentrotus intermedius
注:a~d 正常鮮精子的亞顯微結(jié)構(gòu);e A0組冷凍精子,示細胞核裸露; f A1組冷凍精子,示質(zhì)膜褶皺;g A1組冷凍精子,示質(zhì)膜高度膨脹;h A1組冷凍精子,示頂體腫脹變形;i A1組冷凍精子,示頂體脫落;j A1組線粒體,示內(nèi)嵴間隙增大;k A1組線粒體,示線粒體內(nèi)膜解體;l A1組冷凍精子鞭毛縱切,鞭毛外膜腫脹,呈波浪狀。Ac示頂體;N示細胞核;M示線粒體;AF示頂體窩(核前窩);SS示亞頂體腔;PF示核后窩;F示鞭毛;PM示質(zhì)膜。
Note:a-d Ultrastructure of normal fresh sperm; e Post-thawed sperm in group A0, showing nucleus exposure; f Post-thawed sperm in group A1, showing the swollen plasma membrane; g Post-thawed sperm in group A1, showing swollen plasma membrane;h Post-thawed sperm in group A1, showing the swollen acrosome;i Post-thawed sperm in group A1, showing detachment of acrosome;j Mitochondria in group A1, showing enlargement of mitochondrion cristae space; k Mitochondria in group A1, showing disruption of the external membrane of mitochondrion;l Cross section of flagellum of post-thawed sperm in group A1, showing swolled membrane of flagellum.Ac,acrosome; N,nucleus; M,mitochondria; AF,acrosome fossa; SS,subacrosomal space;PF, posterior nuclear fossa; F,flagellum; PM,plasma membrane.
表1 冷凍前后精子細胞器畸形率的變化
注:同列中標(biāo)有不同小寫字母者表示組間差異顯著(P<0.05)。
Note:The means with the different letters within the same column are significant differences at the 0.05 probability level.
用SCGE檢測不同冷凍保護液保存精子后,冷凍精子DNA有不同程度的損傷(表2)。DNA彗星圖見圖2。
由表2可見,A0組、A1組精子解凍后各級損傷情況、彗星率以及損傷系數(shù)與鮮精均無顯著差異(P>0.05)。冷凍精子DNA損傷主要為輕度和中度損傷,重度損傷比率較低,而完全損傷則未發(fā)現(xiàn)。
表2用SCGE檢測中間球海膽鮮精及凍存精子的DNA損傷分級(n=100)
Tab.2C1assificationofDNAdamagedetectioninfleshandfrozen-thawedspermintheseaurchinbySCGE(n=100)
%
圖2 中間球海膽精子SCGE彗星圖Fig.2 Comet image of the sea urchin sperm through SCGE
注:A DNA 0級損傷;B DNA 1級損傷;C DNA 2級損傷;D DNA 3級損傷。
Note:A Damage grade 0 in DNA;B Damage grade 1 in DNA;C Damage grade 2 in DNA;D Damage grade 3 in DNA.
精子冷凍過程中細胞內(nèi)外冰晶的形成以及細胞內(nèi)電解質(zhì)或大分子物質(zhì)的濃縮(如蛋白質(zhì)等)是造成冷凍損傷的主要因素。細胞內(nèi)外環(huán)境存在一定水分,冷凍時溫度降低會形成冰晶,使細胞器受到機械損傷。同時由于細胞外溶液濃度增加引起細胞嚴(yán)重脫水,胞內(nèi)物質(zhì)濃縮,或者膜破損,胞內(nèi)物質(zhì)丟失,細胞器結(jié)構(gòu)發(fā)生改變[7]。DMSO、甘油等滲透型保護劑可以增強細胞膜的通透性,能夠滲入細胞內(nèi)部,與細胞內(nèi)的水分子結(jié)合,使得溶液黏性增加,從而弱化水的結(jié)晶,減少冰晶對精子的損傷。所以添加抗凍劑一組冷凍精子的質(zhì)膜、頂體、線粒體、鞭毛等細胞器畸形率較不添加組顯著下降。
用透射電鏡觀察冷凍前后精子的超微結(jié)構(gòu),結(jié)果表明,添加抗凍劑后雖有多數(shù)精子結(jié)構(gòu)完好,但仍有部分精子的細胞器受損,表現(xiàn)為質(zhì)膜膨脹舉起,嵴間隙增大,內(nèi)部出現(xiàn)空泡。頂體破裂或脫落,鞭毛被膜腫脹,呈波浪狀,“9+2”型結(jié)構(gòu)模糊,表現(xiàn)形式的不同和精子個體間的差異有關(guān)。損傷特征與西伯利亞鱘[8]、太平洋牡蠣[9]精子凍存的研究結(jié)果相似。細胞器結(jié)構(gòu)與精子行使正常生理功能密切相關(guān),如質(zhì)膜具有維持細胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定以及接受外界刺激的作用;線粒體是精子能量的來源,它為精子的新陳代謝和運動提供能量。Gwo[10]對運動前后精子的線粒體觀察后發(fā)現(xiàn),運動后線粒體體積變小,數(shù)目也迅速減少,最后完全消失。頂體是精子行使受精功能必不可少的細胞器,頂體變形以及破裂將使得精子不能正常受精。楊培民[11]認(rèn)為,頂體破裂將導(dǎo)致無法識別精卵。精子靠鞭毛的擺動進行運動,鞭毛的畸變也會影響精子的運動能力,使得其進入卵子的幾率降低。細胞器受損后必然導(dǎo)致解凍后精子喪失運動能力,不能完成正常受精。
精子細胞核是遺傳物質(zhì)的載體,而DNA作為遺傳物質(zhì),其完整性對于物種的延續(xù)具有重要意義。關(guān)于冷凍對精子DNA損傷目前有兩種觀點:一種觀點認(rèn)為,冰凍對精子DNA沒有影響,精子作為單倍體細胞,其染色質(zhì)結(jié)構(gòu)與體細胞不同,由魚精蛋白濃縮形成超螺旋四聚體,染色質(zhì)高度凝聚,細胞內(nèi)液體成分極少,不會形成冰晶,可以采用冰凍方式保存精子DNA[12];第二種觀點認(rèn)為,冷凍會造成DNA損傷,精子在從精原細胞逐漸轉(zhuǎn)化為精子的過程中, 在后期丟失了大部分的細胞質(zhì), 從而也就遺失了一部分保護精子細胞免遭氧化損傷的酶類, 而這些酶有利于組蛋白向魚精蛋白的轉(zhuǎn)化[13]。有學(xué)者認(rèn)為,高濃度的抗凍劑可引起精子DNA損傷。魏平等[14]檢測了不同濃度的DMSO對真鯛Pagrosomusmajor精子DNA的損傷,認(rèn)為用體積分?jǐn)?shù)為5%~25%DMSO組成的抗凍劑冷凍精子,解凍后DNA的損傷狀況與鮮精接近,但DMSO的體積分?jǐn)?shù)高于25%時,真鯛冷凍精子DNA的損傷比鮮精顯著加重。陳東華等[15]認(rèn)為,體積分?jǐn)?shù)為10%的DMSO抗凍劑對河蟹Eriocheirsinensis精子DNA的損傷最為明顯。本試驗結(jié)果表明:冷凍以及添加較低濃度的抗凍劑對中間球海膽精子DNA損傷均沒有顯著影響,說明適宜的抗凍劑種類和濃度能夠?qū)覦NA起到較好的保護效果,高濃度的抗凍劑對DNA結(jié)構(gòu)是否有影響還有待進一步研究。
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