唐兆華 廖正步 支興剛 謝延風(fēng) 石全紅 何朝暉 詹彥
腦水腫是顱腦創(chuàng)傷、缺血性腦卒中等眾多神經(jīng)系統(tǒng)疾病共同的病理過(guò)程。顱腦疾病常常伴發(fā)的神經(jīng)細(xì)胞缺血缺氧則是引起腦水腫的最重要病理基礎(chǔ)之一。促紅細(xì)胞生成素是血液系統(tǒng)主要的造血因子。近年國(guó)內(nèi)外及本課題組前期的體外研究發(fā)現(xiàn),重組人促紅細(xì)胞生成素(recombinanthuman erythropoietin,rhEPO)在神經(jīng)系統(tǒng)中具有減輕創(chuàng)傷性腦水腫等重要的神經(jīng)保護(hù)功能[1-4]。新近研究顯示水通道蛋白 4(aquaporin4,AQP4)是中樞神經(jīng)系統(tǒng)最豐富的水通道蛋白,在腦內(nèi)水電解質(zhì)平衡的調(diào)節(jié)上發(fā)揮著重要作用[5-6],而且已有最新研究表明rhEPO可以調(diào)節(jié)AQP介導(dǎo)的體外星形膠質(zhì)細(xì)胞水通透性的改變[4]。星形膠質(zhì)細(xì)胞是腦組織中占絕大多數(shù)比例的神經(jīng)細(xì)胞,它的水腫會(huì)造成嚴(yán)重的腦損害[7]。所以,本研究旨在觀察rhEPO預(yù)處理對(duì)氧糖剝奪后星形膠質(zhì)細(xì)胞水腫及其AQP4表達(dá)的影響,并探討其意義。
1.1 研究對(duì)象 新生2 d內(nèi)的SD大鼠(重慶醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供)50只,胎牛血清(美國(guó)Gibco),無(wú)糖DMEM培養(yǎng)基(中國(guó) 鈕因華信),神經(jīng)膠質(zhì)原纖維酸性蛋白(美國(guó)Sigma),乳酸脫氫酶試劑盒(美國(guó) Hyclone),RT-PCR試劑盒(美國(guó) Ferments),AQP4 多克隆抗體(美國(guó) Santa Cruz)。
1.2 星形膠質(zhì)細(xì)胞原代培養(yǎng)[8]取新生2 d內(nèi)的SD大鼠,取大腦皮層剪碎并消化后,接種到培養(yǎng)瓶中,置于37℃,20%O2的孵箱1 h,將細(xì)胞懸液換至有多聚賴氨酸涂底的培養(yǎng)瓶,隔2 d換液,7 d后 37℃,180 r/min 水平振蕩 10 h,換液,細(xì)胞長(zhǎng)滿至95%瓶底后傳代,待培養(yǎng)至第三代時(shí),用特異性GFAP對(duì)星形膠質(zhì)細(xì)胞行免疫熒光染色,鑒定成熟、純化的星形膠質(zhì)細(xì)胞。
1.3 氧糖剝奪模型的建立[9]去掉星形膠質(zhì)細(xì)胞的含血清的DMEM/F12培養(yǎng)基,用PBS沖洗 2次,換為未添加血清的無(wú)糖DMEM培養(yǎng)基,置于1%O2的孵箱(美國(guó) Thermo)行5 h時(shí)長(zhǎng)的氧糖剝奪,此后再給細(xì)胞換回含血清的DMEM/F12培養(yǎng)基,并于20%O2的孵箱行復(fù)氧培養(yǎng),至0.5 h、2 h、8 h、24 h四個(gè)時(shí)間點(diǎn)時(shí)進(jìn)行觀察及實(shí)驗(yàn)。
1.4 實(shí)驗(yàn)分組 將星形膠質(zhì)細(xì)胞分為3個(gè)組:①正常組,未行氧糖剝奪及rhEPO預(yù)處理的星形膠質(zhì)細(xì)胞;②模型組,未經(jīng)rhEPO預(yù)處理,直接行氧糖剝奪的星形膠質(zhì)細(xì)胞;③rhEPO預(yù)處理組,先在星形膠質(zhì)細(xì)胞的正常培養(yǎng)基中加入1IU/mL rhEPO
作用2 h后,再對(duì)其進(jìn)行氧糖剝奪(在0.1、1和10 IU/mL三種濃度的預(yù)實(shí)驗(yàn)中1IU/mL rhEPO保護(hù)作用最強(qiáng))。每個(gè)分組在每個(gè)時(shí)間點(diǎn)均有3~5個(gè)隨機(jī)抽樣的獨(dú)立樣本。
1.5 星形膠質(zhì)細(xì)胞形態(tài)觀察 用光學(xué)顯微鏡(德國(guó)Leica)直接觀察氧糖剝奪并復(fù)氧培養(yǎng)至各時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞的形態(tài)變化。
1.6 乳酸脫氫酶(LDH)漏出率測(cè)定 各組星形膠質(zhì)細(xì)胞分別在氧糖剝奪后復(fù)氧培養(yǎng)至各時(shí)間點(diǎn)進(jìn)行LDH活性測(cè)定,取每孔細(xì)胞培養(yǎng)液約0.3 mL,按照乳酸脫氫酶試劑盒說(shuō)明書(shū)操作,測(cè)試樣品中LDH的活性,LDH漏出率=培養(yǎng)基LDH×100%/(胞漿LDH+培養(yǎng)基 LDH)。
1.7 逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)檢測(cè)星形膠質(zhì)細(xì)胞AQP4 mRNA的表達(dá) 按Trizol試劑說(shuō)明提取細(xì)胞總RNA,采用MMLV逆轉(zhuǎn)錄試劑盒按操作說(shuō)明逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,產(chǎn)物進(jìn)行PCR。AQP4引物: 上游 5′CCTACAGAACCAAGGCGTAA3′,下游5′TCCCTGGAAATGACTGAGAA3′,擴(kuò)增片段長(zhǎng) 261 bp;β-肌動(dòng)蛋白(β-actin)引物:上游 5′ACCTCCAACACCCCAGCCATG3′,下游 5′CTGATCCACATCTGCTGGAAGGTGG3′,擴(kuò)增片段長(zhǎng) 691 bp。反應(yīng)體系25 μL,58℃退火 45 s,共循環(huán)30次。PCR產(chǎn)物以1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),長(zhǎng)波紫外燈下觀測(cè)照相。用Quantity One軟件分析電泳條帶平均光密度值,AQP4/β-actin積分A值為AQP4 mRNA表達(dá)水平。
1.8 Western Blot法檢測(cè)星形膠質(zhì)細(xì)胞AQP4蛋白的表達(dá) 分別消化各組在不同時(shí)間點(diǎn)的細(xì)胞,加入蛋白裂解液,冰上裂解20 min,測(cè)定蛋白濃度,加入上樣緩沖液,沸水變性5min。每孔加入40 μg蛋白樣品電泳,用PDVF膜轉(zhuǎn)膜,封閉后加一抗AQP4(1∶300),4℃孵育過(guò)夜,加入 HRP 標(biāo)記的二抗,37℃孵育1 h,ECL顯影,GAPDH作為內(nèi)對(duì)照參數(shù)。用Quantity One軟件分析熒光條帶平均光密度值,AQP4/β-actin積分 A值為 AQP4蛋白表達(dá)水平。
1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 計(jì)量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用SPSS 13.0進(jìn)行分析,組間比較均采用單因素方差分析,兩兩比較均采用Turkey法,檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。
2.1 星型膠質(zhì)細(xì)胞的原代培養(yǎng)及鑒定 光學(xué)顯微鏡下可見(jiàn)原代成熟的星形膠質(zhì)細(xì)胞成片生長(zhǎng),形態(tài)較扁而大,呈多邊不規(guī)則形,有細(xì)長(zhǎng)突起,細(xì)胞間連接緊密(圖1 A)。對(duì)培養(yǎng)成功的原代星形膠質(zhì)細(xì)胞,用特異性GFAP抗體進(jìn)行免疫熒光染色鑒定,熒光顯微鏡下見(jiàn)熒光陽(yáng)性細(xì)胞比例>98%,滿足后續(xù)實(shí)驗(yàn)要求(圖1 B)。
2.2 光學(xué)顯微鏡觀察星形膠質(zhì)細(xì)胞形態(tài)改變 模型組星形膠質(zhì)細(xì)胞在5 h氧糖剝奪后復(fù)氧培養(yǎng)至0.5 h時(shí),出現(xiàn)邊緣皺縮,折光率增高,胞體略增大,胞內(nèi)形成較多顆粒樣物質(zhì),至2 h時(shí)形態(tài)變化加重,細(xì)胞明顯腫脹變圓,折光率明顯增高,突起增粗縮短,少量細(xì)胞呈凝固性壞死,8 h時(shí)腫脹的細(xì)胞稍有緩解,部分壞死細(xì)胞已脫落懸浮,細(xì)胞數(shù)量減少,至24 h時(shí)腫脹雖有所緩解,但較正常細(xì)胞仍有明顯腫脹(圖2 A~D)。
rhEPO預(yù)處理組星形膠質(zhì)細(xì)胞在5 h氧糖剝奪后復(fù)氧培養(yǎng)至0.5 h時(shí)胞質(zhì)內(nèi)出現(xiàn)少量顆粒樣物質(zhì),至2 h時(shí)細(xì)胞邊緣皺縮,輪廓加強(qiáng),僅部分胞體及足突輕度腫脹,折光率增高,但形態(tài)變化明顯輕于模型組,至8 h時(shí)細(xì)胞腫脹減輕,未見(jiàn)明顯壞死細(xì)胞,24 h時(shí)大部分細(xì)胞基本恢復(fù)扁平、多邊形,有細(xì)長(zhǎng)突起的正常形態(tài)(圖2 E~H)。
2.3 星形膠質(zhì)細(xì)胞LDH漏出率變化 LDH漏出率在5 h時(shí)長(zhǎng)的氧糖剝奪后,隨著時(shí)間延長(zhǎng),呈不斷增高趨勢(shì)(24 h時(shí):F=80.45,P<0.01)。 與正常組相比,模型組LDH漏出率氧糖剝奪后24 h時(shí)增加最多(P<0.01);與模型組相比,rhEPO預(yù)處理組LDH漏出率在5 h時(shí)長(zhǎng)的氧糖剝奪后24 h時(shí)的增高趨勢(shì)有明顯降低(P<0.01),見(jiàn)表1。
2.4 RT-PCR法檢測(cè) AQP4 mRNA的表達(dá)變化正常組星形膠質(zhì)細(xì)胞有一定量的AQP4 mRNA表達(dá);與正常組比較,模型組細(xì)胞AQP4 mRNA在5 h氧糖剝奪并復(fù)氧培養(yǎng)至0.5 h時(shí)表達(dá)有所下降(P = 0.041),2 h時(shí)回升(P =0.381),至 8 h時(shí)明顯高于正常并達(dá)最高值(P<0.01),24 h時(shí)有所下降,但仍明顯高于正常水平(P<0.01);與模型組比較,rhEPO預(yù)處理組AQP4 mRNA在氧糖剝奪后的表達(dá)變化趨勢(shì)與模型組相似,但在各個(gè)時(shí)間點(diǎn)的表達(dá)水平均有明顯降低(8 h時(shí):P<0.001),見(jiàn)圖 3,表2。
圖1 原代成熟的星形膠質(zhì)細(xì)胞(A光學(xué)顯微鏡)及其鑒定(B細(xì)胞免疫熒光)
圖2 rhEPO預(yù)處理對(duì)5 h氧糖剝奪后星形膠質(zhì)細(xì)胞形態(tài)的影響。
2.5 Western Blot法檢測(cè)AQP4蛋白的表達(dá)變化正常組星形膠質(zhì)細(xì)胞有一定量的AQP4蛋白表達(dá);與正常組相比,模型組細(xì)胞AQP4蛋白在5 h氧糖剝奪并復(fù)氧培養(yǎng)至 0.5 h時(shí)表達(dá)先下降(P=0.021),2 h 時(shí)回升(P = 0.527),至 8 h 時(shí)明顯高于正常組(P < 0.01),24 h 時(shí)達(dá)最高值(P < 0.01);rhEPO預(yù)處理組AQP4蛋白在5 h氧糖剝奪后的表達(dá)變化趨勢(shì)與模型組相似,但在各個(gè)時(shí)間點(diǎn)的表達(dá)水平均有明顯降低(24 h 時(shí):P < 0.01),見(jiàn)圖3,表2。
近二十年來(lái),研究發(fā)現(xiàn)EPO及其受體廣泛存在于中樞神經(jīng)系統(tǒng)中[10],在病理?xiàng)l件下發(fā)揮了各種重要的神經(jīng)保護(hù)功能。最新研究表明rhEPO可以明顯減輕大鼠顱腦創(chuàng)傷后的腦水腫[2]和大鼠凍傷模型中的血管源性腦水腫[11],并且能夠很好地保護(hù)血腦屏障的完整性[12]。Gunnarson等在體外低滲模型及興奮性氨基酸模型中發(fā)現(xiàn),rhEPO能明顯降低野生原代星形膠質(zhì)細(xì)胞水通透性的上調(diào),但在AQP4敲出的原代星形膠質(zhì)細(xì)胞中則無(wú)上述作用[4]。目前,rhEPO減輕腦水腫的具體途徑及機(jī)制目前都尚不清楚。所以,本研究觀察rhEPO預(yù)處理后對(duì)體外星形膠質(zhì)細(xì)胞水腫模型中AQP4表達(dá)的影響,探討EPO減輕腦水腫是否是通過(guò)調(diào)節(jié)AQP4的表達(dá)來(lái)實(shí)現(xiàn)的。
體外氧糖剝奪模型可引起星形膠質(zhì)細(xì)胞胞體和突起明顯腫脹,能模擬體內(nèi)顱腦創(chuàng)傷等神經(jīng)系統(tǒng)疾病中星形膠質(zhì)細(xì)胞因缺血再灌注損傷引起細(xì)胞毒性腦水腫這一重要病理過(guò)程。本實(shí)驗(yàn)中,星形膠質(zhì)細(xì)胞在5 h氧糖剝奪后,細(xì)胞逐漸腫脹,2 h至8 h時(shí)達(dá)到腫脹高峰,至24 h時(shí)腫脹仍未消退,期間有大量細(xì)胞壞死,LDH活性的不斷增高也印證了星形膠質(zhì)細(xì)胞嚴(yán)重?fù)p傷的表現(xiàn)。而在氧糖剝奪前加入rhEPO預(yù)處理,能使細(xì)胞的腫脹明顯減輕,且在復(fù)氧后24 h時(shí),腫脹的細(xì)胞形態(tài)已基本恢復(fù)正常,壞死細(xì)胞明顯減少,LDH活性增高的程度也同樣明顯降低。上述結(jié)果表明rhEPO預(yù)處理能夠明顯減輕5 h氧糖剝奪引起的星形膠質(zhì)細(xì)胞水腫。
表1 rhEPO預(yù)處理對(duì)5 h氧糖剝奪后星形膠質(zhì)細(xì)胞LDH漏出率的影響
圖3 rhEPO預(yù)處理對(duì)5 h氧糖剝奪后各時(shí)間點(diǎn)星形膠質(zhì)細(xì)胞AQP4 mRNA和蛋白表達(dá)的影響
表2 rhEPO預(yù)處理對(duì)5 h氧糖剝奪后AQP4 mRNA和蛋白表達(dá)的影響
AQP4是腦內(nèi)主要的水通道蛋白,在國(guó)內(nèi)外研究及本課題組的前期研究當(dāng)中發(fā)現(xiàn),它與腦水腫的形成及轉(zhuǎn)歸均密切相關(guān)。Papadopoulos等人在細(xì)胞毒性腦水腫模型發(fā)現(xiàn)中,AQP4敲除小鼠的腦水腫程度明顯輕于野生小鼠[13]。Thrane等人發(fā)現(xiàn)AQP4敲除鼠可減輕低滲液引起的星形膠質(zhì)細(xì)胞腫脹[14]。而Yang等人發(fā)現(xiàn)在過(guò)表達(dá)AQP4小鼠中,其細(xì)胞毒性腦水腫則較野生型小鼠更加嚴(yán)重[15]。由此可見(jiàn),AQP4表達(dá)水平的高低與細(xì)胞毒性腦水腫的嚴(yán)重程度呈正相關(guān)。
在5 h氧糖剝奪后星形膠質(zhì)細(xì)胞嚴(yán)重水腫的過(guò)程中,AQP4 mRNA和蛋白的表達(dá)量在短時(shí)下降后,呈上升趨勢(shì)。而在加入rhEPO預(yù)處理后,AQP4 mRNA和蛋白的表達(dá)在星形膠質(zhì)細(xì)胞氧糖剝奪后各個(gè)時(shí)間點(diǎn)較模型組均明顯降低,細(xì)胞水腫也明顯減輕。AQP4在氧糖剝奪后短時(shí)下降可能是細(xì)胞保護(hù)性下調(diào),或者因氧糖剝奪導(dǎo)致的細(xì)胞能量障礙,使其蛋白合成能力降低所致。而經(jīng)rhEPO預(yù)處理后,氧糖剝奪后星形膠質(zhì)細(xì)胞AQP4的表達(dá)水平明顯降低,由此可以阻止細(xì)胞水腫過(guò)程中胞外水分異常過(guò)多的進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),從而達(dá)到減輕5 h氧糖剝奪后星形膠質(zhì)細(xì)胞水腫的作用。
EPO調(diào)節(jié)AQP4表達(dá),減輕氧糖剝奪后星形膠質(zhì)細(xì)胞水腫的作用,為臨床創(chuàng)傷性腦水腫、顱內(nèi)瘤周腦水腫等腦水腫的治療提供了新的思路。最新研究表明,EPO可通過(guò)調(diào)節(jié)ERK信號(hào)通路的活化減輕創(chuàng)傷性腦水腫,起到神經(jīng)系統(tǒng)保護(hù)的作用[16],但其具體分子機(jī)制研究有待于我們進(jìn)一步的研究來(lái)探討。
[1]Verdonck O,Lahrech H,F(xiàn)rancony G,et al.Erythropoietin protects from post-traumatic edema in the rat brain[J].J Cereb Blood Flow Metab,2007,27(7):1369-1376.
[2]Liao ZB,Zhi XG,Shi QH,et al.Recombinant human erythropoietin administration protects cortical neurons from traumatic brain injury in rats [J].Eur J Neurol,2008,15(2):140-149.
[3]朱紅燦,李紅戈,孫圣剛.短暫性前腦缺血沙土鼠腦內(nèi)促紅細(xì)胞生成素的表達(dá)變化[J].中國(guó)神經(jīng)精神疾病雜志,2004,30(3):235-235.
[4]Gunnarson E,Song Y,Kowalewski JM,et al.Erythropoietin modulation of astrocyte water permeability as a component of neuroprotection[J].Proc Natl Acad Sci USA,2009,106(5):1602-1607.
[5]唐兆華,廖正步,蔣光元,等.水通道蛋白4在缺氧缺糖后水腫星形膠質(zhì)細(xì)胞中的作用[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2010,32(13):1387-1390.
[6]李靜,李長(zhǎng)清.血紅蛋白致腦組織水腫機(jī)制研究[J].中國(guó)神經(jīng)精神疾病雜志,2008,34(11):684-686.
[7]Kimelberg HK. Astrocytic swelling in cerebral ischemia as a possible cause of injury and target for therapy[J].Glia,2005,50(4):389-397.
[8]McCarthy KD,de Vellis J.Preparation of separate astroglial and oligodendroglial cell cultures from rat cerebral tissue[J].J Cell Biol,1980,85(3):890-902.
[9]Panickar KS,Polansky MM,Anderson RA.Cinnamon polyphenols attenuate cell swelling and mitochondrial dysfunction following oxygen-glucose deprivation in glial cells[J].Exp Neurol,2009,216(2):420-427.
[10]Genc S,Koroglu TF,Genc K.Erythropoietin and the nervous system[J].Brain Res,2004,1000(1-2):19-31.
[11]Okutan O,Turkoglu OF,Gok HB,et al.Neuroprotective effect of erythropoietin after experimental cold injury-induced vasogenic brain edema in rats[J].Surg Neurol,2008,70(5):498-502.
[12]Uzum G,Sarper Diler A,Bahcekapili N,et al.Erythropoietin prevents the increase in blood-brain barrier permeability during pentylentetrazol induced seizures[J].Life Sci,2006,78(22):2571-2576.
[13]Papadopoulos MC,Verkman AS.Aquaporin-4 gene disruption in mice reduces brain swelling and mortality in pneumococcal meningitis[J].J Biol Chem,2005,280(14):13906-13912.
[14]Thrane AS,Rappold PM,F(xiàn)ujita T,et al.Critical role of aquaporin-4(AQP4) in astrocytic Ca2+signaling events elicited by cerebral edema[J].Proc Natl Acad Sci USA,2011,108(2):846-851.
[15]Fu X,Li Q,F(xiàn)eng Z,et al.The roles of aquaporin-4 in brain edema following neonatal hypoxia ischemia and reoxygenation in a cultured rat astrocyte model[J].Glia,2007,55(9):935-941.
[16]Valable S,F(xiàn)rancony G,Bouzat P,et al.The impact of erythropoietin on short-term changes in phosphorylation of brain protein kinases in a rat model of traumatic brain injury[J].J Cereb Blood Flow Metab,2010,30(2):361-369.