左志晗,鄭津輝
(天津師范大學(xué)a.生命科學(xué)學(xué)院,b.天津市細(xì)胞遺傳與分子調(diào)控重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津 300387)
擴(kuò)增ccaR基因提高棒狀鏈霉菌克拉維酸產(chǎn)量的研究
左志晗,鄭津輝
(天津師范大學(xué)a.生命科學(xué)學(xué)院,b.天津市細(xì)胞遺傳與分子調(diào)控重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津 300387)
在棒狀鏈霉菌B71-14中擴(kuò)增對(duì)克拉維酸具有正調(diào)控作用的基因ccaR,構(gòu)建了ccaR的重組質(zhì)粒pSET152-ccaR,通過(guò)接合轉(zhuǎn)移將重組質(zhì)粒pSET152-ccaR轉(zhuǎn)入了S.clavuligerusB71-14中,通過(guò)pSET152-ccaR中的att P位點(diǎn)整個(gè)質(zhì)粒插入到S.clavuligerusB71-14基因組中的attB位點(diǎn),實(shí)現(xiàn)了S.clavuligerusB71-14基因組DNA中增加一個(gè)拷貝ccaR基因的目的,所得突變株S.clavuligerus::ccaR產(chǎn)酸量可達(dá)820.91 mg/L,較出發(fā)菌株提高了54%.
克拉維酸;棒狀鏈霉菌;ccaR[Q812]
克拉維酸是棒狀鏈霉菌的代謝產(chǎn)物,又名棒酸,結(jié)構(gòu)式如下.
其本身抗菌活性很弱,但具有強(qiáng)力、廣譜且不可逆的β-內(nèi)酰胺酶抑制活性.大量體外抗菌作用研究表明,β-內(nèi)酰胺酶抑制劑與β-內(nèi)酰胺類抗生素聯(lián)合應(yīng)用可增強(qiáng)后者的抗菌活性.
由于抗生素的大量使用,導(dǎo)致很多細(xì)菌產(chǎn)生了抗藥性,這己成為臨床上治療細(xì)菌性疾病的一個(gè)越來(lái)越棘手的問(wèn)題.克拉維酸同β-內(nèi)酰胺類抗生素聯(lián)合使用既抑制了β-內(nèi)酰胺酶的活性,又增強(qiáng)了這類抗生素的廣譜抗菌作用,可有效解決產(chǎn)酶細(xì)菌的耐藥性問(wèn)題.但當(dāng)前我國(guó)臨床上使用的復(fù)方β-內(nèi)酰胺類抗生素來(lái)源主要依賴進(jìn)口產(chǎn)品,其主要原因是菌株的產(chǎn)酸能力差,因此如何獲取高產(chǎn)菌株是解決這種現(xiàn)狀的關(guān)鍵.隨著鏈霉菌分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,以及克拉維酸代謝途徑和相應(yīng)基因簇的進(jìn)一步揭示,通過(guò)基因工程的手段來(lái)獲取高產(chǎn)菌株已成為可能[1].
目前,克拉維酸生物合成途徑的基因簇己經(jīng)被闡釋.克拉維酸合成具有獨(dú)立的代謝途徑,它以D-3-磷酸甘油醛和精氨酸為前體物質(zhì)[2],依次在ceaS,bls,pah,cas和oat等基因編碼酶的作用下合成,Kapil等[3]研究還發(fā)現(xiàn)參與克拉維酸生物合成的上述基因均具有與之相似的同源基因,且相互同源的基因分別集中在兩套平行的基因簇內(nèi):一套包括ceaS1,bls1,pah1 和oat1 等 基 因;另 一 套 包 括ceaS2,bls2,pah2,cas2和oat2等基因,且兩套基因簇中的基因排列順序非常相似.
除上述基因外,在棒狀鏈霉菌中,抗生素及克拉維酸的合成受到按級(jí)別排列的一系列基因的調(diào)控,故某些調(diào)控基因的變化可能會(huì)使克拉維酸產(chǎn)量獲得提高[4].
ccaR是棒狀鏈霉菌克拉維酸生物合成的調(diào)節(jié)基因之一,位于棒狀鏈霉菌頭霉素C基因簇lat基因下游4 kb處,編碼由256個(gè)氨基酸組成的類ActII-ORF-4調(diào)控蛋白.ccaR的作用是結(jié)合于cefD-cmcl基因之間的雙向啟動(dòng)子上,對(duì)于頭霉素C和克拉維酸生成途徑的中、下游所需要酶的轉(zhuǎn)錄過(guò)程起到調(diào)節(jié)作用.它還可以結(jié)合在自身的啟動(dòng)子上,是一個(gè)正調(diào)節(jié)因子.ccaR的突變將導(dǎo)致頭霉素C和克拉維酸或其它棒烷類合成的停止;當(dāng)回補(bǔ)ccaR基因后,頭霉素C和克拉維酸的合成得以恢復(fù);盡管頭霉素C和克拉維酸這兩個(gè)β-內(nèi)酰胺類物質(zhì)的合成途徑截然不同,但當(dāng)增加ccaR拷貝數(shù)后,頭霉素C和克拉維酸的產(chǎn)量都將成倍增加[5].
本研究選取棒狀鏈霉菌的ccaR為目標(biāo)基因,構(gòu)建了含ccaR基因的重組質(zhì)粒pSET152-ccaR,對(duì)棒狀鏈霉菌的ccaR基因進(jìn)行了擴(kuò)增,并對(duì)所得的突變菌株的克拉維酸產(chǎn)量變化進(jìn)行了研究.
棒狀鏈霉菌S.clavuligerusB71-14(紫外誘變獲得的克拉維酸高產(chǎn)菌株),用于接合轉(zhuǎn)移的E.coliET12567/p UZ8002以及E.coliDH5α均為本實(shí)驗(yàn)室保存菌種.
PCR產(chǎn)物克隆載體 p UCm-T(AmpR),購(gòu)自Sangon公司;大腸桿菌 -放線菌穿梭質(zhì)粒載體pSET152,含有接合轉(zhuǎn)移起始位點(diǎn)(RK2ori T)、阿泊拉霉素抗性基因(aacC4)和特異整合位點(diǎn)att P,由加拿大阿爾伯塔大學(xué)Annie教授惠贈(zèng).
E.coliET12567/p UZ8002 以 及E.coliDH5α所用為L(zhǎng)B培養(yǎng)基[6];棒狀鏈霉菌所用產(chǎn)孢培養(yǎng)基為YMGA培養(yǎng)基[7],種子培養(yǎng)采用TSB培養(yǎng)基,發(fā)酵培養(yǎng)采用SS培養(yǎng)基[8].大腸桿菌-鏈霉菌接合培養(yǎng)基采用改良 AS-1培養(yǎng)基(g/L)[9],即在每升AS-1培養(yǎng)基中添加5 g蛋白胨及0.5 g葡萄糖.
以上所用培養(yǎng)基中,在培養(yǎng)帶有質(zhì)粒的抗性菌株時(shí)培養(yǎng)基中抗生素的使用濃度如下:氨芐青霉素終質(zhì)量濃度為100μg/m L,阿泊拉霉素為25μg/m L,卡那霉素為50μg/m L,氯霉素為25μg/m L,萘啶酮酸為25μg/m L.
大腸桿菌中質(zhì)粒DNA的提取、限制性內(nèi)切酶消化、連接、PCR以及轉(zhuǎn)化等操作均按Sambrook等[10]的方法進(jìn)行.
棒狀鏈霉菌中質(zhì)粒及染色體的提取按Kieser等[8]的方法進(jìn)行.
以ccaR的上下游引物做測(cè)序引物,采用Sanger雙脫氧末端終止法進(jìn)行核苷酸序列測(cè)定,測(cè)序反應(yīng)委托Sangon公司完成.測(cè)序結(jié)果在GenBank進(jìn)行序列比對(duì)(http://www.ncbi.nlm.nih.gov).
重組質(zhì)粒向S.clavuligerusB71-14的轉(zhuǎn)移采用Kieser等[8]介紹的接合轉(zhuǎn)移的方法,即以E.coliET12567/p UZ8002/pSET152-ccaR 為 供 體 菌 株,將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)移至S.clavuligerusB71-14中.
以克雷伯氏肺炎桿菌KlabsiellapneumoniaeATCC29665作為克拉維酸生物活性鑒定指示菌[11].
發(fā)酵液于10 000 r/min離心10 min,所得上清液經(jīng)0.45μm微孔濾膜過(guò)濾,按1∶5的比例與咪唑溶液混勻,30℃反應(yīng)12 min后冷卻到20℃,生成的衍生物采用Shim-pack VP-ODS(150×4.6)C18色譜柱進(jìn)行 HPLC分析[12].
將ccaR的測(cè)序結(jié)果在GenBank上做序列比對(duì),結(jié)果證明,PCR獲得的ccaR與棒狀鏈霉菌標(biāo)準(zhǔn)菌株NRRL 3585具有99.93%的同源性,證明所得的PCR產(chǎn)物正確,可以用于重組質(zhì)粒的構(gòu)建.
參照文獻(xiàn)[13]報(bào)道的棒狀鏈霉菌調(diào)節(jié)基因ccaR的相應(yīng)核苷酸序列,設(shè)計(jì)合成如下引物(引物委托北京奧科生物工程有限公司合成):引物1:5’-TAGGGAGGGGAGAGTCCGA-3’; 引 物 2: 5 ’-TTCAGCGTTGGTTCAGGGA-3’.以棒狀鏈霉菌的染色體為模板,PCR擴(kuò)增得到1.4 kb的一段含上游啟動(dòng)區(qū)的ccaR基因片段,將該片段經(jīng)PCR產(chǎn)物回收試劑盒純化與p UCm-T載體進(jìn)行連接,得到重 組 質(zhì) 粒 p UCm-T-ccaR;對(duì) p UCm-T-ccaR 進(jìn) 行EcoRI-BamHI酶切,回收1.4 kb的ccaR 基因片段,與經(jīng)過(guò)同樣酶切的載體pSET152進(jìn)行連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化E.coliDH5α,經(jīng)質(zhì)粒提取,對(duì)重組質(zhì)粒進(jìn)行酶切驗(yàn)證,載體的構(gòu)建過(guò)程及驗(yàn)證結(jié)果見(jiàn)圖1和圖2.
圖1 重組質(zhì)粒pSET152-cca R的構(gòu)建過(guò)程Figure 1 Construction of the recombinant plasmid pSET152-cca R
圖2 重組質(zhì)粒pSET152-cca R的驗(yàn)證Figure 2 Verification of recombinant plasmid pSET152-cca R
由圖2可知,采用EcoRI酶切pSET152-ccaR后得到一條1.4 kb的DNA片段和一條5.5 kb的DNA片段,分別與ccaR基因及載體pSET152的大小相吻合,與理論值相符.并且以待驗(yàn)證的pSET152-ccaR質(zhì)粒為模版,PCR擴(kuò)增ccaR基因的引物和條件進(jìn)行PCR擴(kuò)增,結(jié)果能得到1.4 kb的ccaR基因片段,表明此重組質(zhì)粒為正確的重組質(zhì)粒pSET152-ccaR.
將驗(yàn)證正確的pSET152-ccaR電轉(zhuǎn)至E.coliET12567/p UZ8002 中,所 得 的 轉(zhuǎn) 化 子E.coliET12567/p UZ8002/pSET152-ccaR 與S.clavuligerusB71-14進(jìn)行接合轉(zhuǎn)移,從AS-1培養(yǎng)基中挑取單個(gè)接合子至含有萘啶酮酸(25μg/m L)和阿泊拉霉素(25μg/m L)的營(yíng)養(yǎng)瓊脂平板上,再影印至含有和不含有卡那霉素(50μg/m L)的營(yíng)養(yǎng)瓊脂平板上.最后,挑選出抗阿泊拉霉素但對(duì)卡那霉素敏感的菌株即為接合子.提取接合子中的質(zhì)粒進(jìn)行驗(yàn)證,結(jié)果與由大腸桿菌中所提取的質(zhì)粒相一致,表明重組質(zhì) 粒 pSET152-ccaR 已 轉(zhuǎn) 入S.clavuligerusB71-14中.
載體pSET152含有一個(gè)att P位點(diǎn),可以特異性地插入到鏈霉菌基因組中的att B位點(diǎn),重組質(zhì)粒pSET152-ccaR 轉(zhuǎn)入S.clavuligerusB71-14后,將以整合到基因組上的插入方式將其攜帶的ccaR同時(shí)插入到S.clavuligerusB71-14的attB位點(diǎn)(圖3),從而使其增加了一個(gè)拷貝的ccaR基因.
圖3 pSET152-cca R 插入 S.clavuligerus B71-14染色體的示意圖Figure 3 Procedure of pSET152-cca R inserted intochromosome of S.clavuligerus B71-14
將上述接合平板上長(zhǎng)出的阿泊拉抗性菌落轉(zhuǎn)接于含相應(yīng)抗生素的YMGA平板上,28℃培養(yǎng)3~5 d,直至孢子出現(xiàn),收集孢子,將孢子在不含抗生素的YMGA培養(yǎng)基上進(jìn)行松弛培養(yǎng),并在該培養(yǎng)基上傳代3次,仍具有抗性的菌株即為插入了重組質(zhì)粒pSET152-ccaR的菌株,將該突變株命名為S.clavuligerus::ccaR.
根據(jù)棒狀鏈霉菌attB位點(diǎn)兩側(cè)的序列設(shè)計(jì)一對(duì) 引 物 (圖 4)P1:5’-AGCGGCCAAAGGGAGCAGACTGTAA-3’;P2:5’-CAGGATTCGAACCTGGGAAGGCTGA-3’,分別以S.clavuligerus::ccaR及出發(fā)菌株S.clavuligerusB71-14的基因組DNA為模板,進(jìn)行PCR驗(yàn)證,結(jié)果如圖4.
由圖4可知,以S.clavuligerus::ccaR的基因組DNA為模板的PCR產(chǎn)物在6~7 kb之間,與理論值6.9 kb(6.9 kb的pSET152-ccaR插入S.clavuligerus的attB位點(diǎn))相吻合;而以出發(fā)菌株S.clavuligerusB71-14的基因組DNA為模板不能得到PCR產(chǎn)物(att B兩引物之間只有60 bp),說(shuō)明S.clavuligerus::ccaR為pSET152-ccaR整合插入到S.clavuligerusB71-14的attB位點(diǎn)所得的突變株.
圖4 突變株S.clavuligerus::cca R的PCR驗(yàn)證Figure 4 PCR verification of S.clavuligerus::cca R
挑取突變菌株及一株原始對(duì)照菌株在豆粉培養(yǎng)基中分別進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng),測(cè)定發(fā)酵液中的克拉維酸含量,結(jié)果突變菌株的克拉維酸產(chǎn)量最高(表1中M-1)可達(dá)820.91 mg/L,較原始對(duì)照菌株提高了54%(表1).
表1 突變菌株及原始菌株發(fā)酵液中克拉維酸產(chǎn)量的HPLC測(cè)定結(jié)果Table 1 HPLC analysis result of clavulanic acid production of original strain and the mutants
將表1中產(chǎn)酸量最高的突變株M-1在YMGA培養(yǎng)基斜面上進(jìn)行傳代培養(yǎng),每轉(zhuǎn)接一次同時(shí)轉(zhuǎn)入發(fā)酵培養(yǎng)基中,搖瓶發(fā)酵后HPLC法測(cè)定克拉維酸的效價(jià),結(jié)果如表2所示.
表2 S.clavuligerus::cca R的遺傳穩(wěn)定性Table 2 Hereditary stability of S.clavuligerus::cca R
由表2的傳代實(shí)驗(yàn)結(jié)果可知,S.clavuligerus::ccaR在5代之內(nèi)產(chǎn)酸量較穩(wěn)定,繼續(xù)傳代,則菌種的產(chǎn)酸量下降較明顯,所以應(yīng)盡量控制傳代次數(shù)在5代以內(nèi).
隨著克拉維酸生物合成途徑及基因調(diào)控的逐漸明確,在常規(guī)誘變、原生質(zhì)體融合的基礎(chǔ)上可以寄希望于通過(guò)基因工程的方法來(lái)獲得克拉維酸高產(chǎn)菌株[4].
頭霉素C是棒狀鏈霉菌的抗生素類代謝產(chǎn)物之一,與克拉維酸的代謝途徑彼此獨(dú)立又關(guān)系密切,克拉維酸合成酶基因簇和頭霉素C合成酶基因簇相鄰,且受相同的調(diào)節(jié)基因ccaR的調(diào)控,而棒狀鏈霉菌中一種代謝產(chǎn)物的阻斷往往會(huì)導(dǎo)致其它代謝產(chǎn)物產(chǎn)量的提高[14].基于上述原因,Paradkar等[15]對(duì)野生型棒狀鏈霉菌的lat基因進(jìn)行插入突變,該基因編碼賴氨酸ε-轉(zhuǎn)氨酶(該酶是頭霉素C合成途徑中的關(guān)鍵酶)[16],結(jié)果獲得了頭霉素C合成停止而克拉維產(chǎn)酸量為原始菌株的2.5倍的高產(chǎn)菌株,是采用基因工程的方法對(duì)棒狀鏈霉菌進(jìn)行改造的成功典范.國(guó)內(nèi)王永華[17]、舒楊等[18]也曾采用類似的方法分別獲得了克拉維酸產(chǎn)量分別為原始菌株1.8倍和2.67倍的高產(chǎn)突變株.
本課題曾選擇對(duì)棒狀鏈霉菌進(jìn)行紫外誘變獲得了產(chǎn)量為原始菌株1.91倍的高產(chǎn)菌株S.clavuligerusB71-14[19],并對(duì)該誘變高產(chǎn)菌株進(jìn)行了lat基因的插入突變,獲得了產(chǎn)酸量進(jìn)一步提高的工程菌株[20].在前面研究的基礎(chǔ)上,本研究嘗試在高產(chǎn)菌株S.clavuligerusB71-14中擴(kuò)增對(duì)克拉維酸合成具有正調(diào)控作用的調(diào)節(jié)基因ccaR,以期為構(gòu)建棒狀鏈霉菌高產(chǎn)菌株提供又一可行途徑.
本實(shí)驗(yàn)嘗試增加棒狀鏈霉菌中的ccaR基因拷貝以提高克拉維酸的產(chǎn)量,構(gòu)建了重組質(zhì)粒pSET152-ccaR,并將其轉(zhuǎn)入E.coliET12567中獲得了接合轉(zhuǎn)移的供體菌E.coliET12567/p UZ8002/pSET152-ccaR,通過(guò)大腸桿菌與棒狀鏈霉菌的接合轉(zhuǎn)移實(shí)驗(yàn)成功的將重組質(zhì)粒pSET152-ccaR轉(zhuǎn)入了S.clavuligerusB71-14中,由于載體pSET152含有一個(gè)att P位點(diǎn),可以特異性的插入到鏈霉菌基因組中的att B位點(diǎn),實(shí)現(xiàn)了在S.clavuligerusB71-14基因組中增加一個(gè)拷貝ccaR基因的目的,該方式是整合到基因組上的插入方式,所構(gòu)建的基因工程菌株穩(wěn)定性較高,易于進(jìn)行工業(yè)化生產(chǎn),為棒狀鏈霉菌克拉維酸高產(chǎn)菌的選育提供了又一可行性途徑.
[1] Jensen S E,Paradkar A S,Mosher R H,et al.Five additional genes are involved in clavulanic acid biosynthesis inStreptomycesclavuligerus[J].Antimicrobial Agents and Chemutherapy,2004,48(1):192-202.
[2] Khaleeli N,Li R,Townsend C A.Origin of theβ-lactam carbons in clavulanic acid from an unusual thiamine pyrophosphate-mediated reaction[J].Journal of the American Chemical Society,1999,121:9223-9234.
[3] Kapil T,Hyeon U P,Annie W,et al.Two sets of paralogous genes encoded the enzymes involved in the early stages of clavulanic acid and clavam metabolite biosynthesis inStreptomycesclavuligerus[J].Antimicrobiol Agents and Chemotherapy,2004,48(3):930-939.
[4] Liras P,Rodriguez-Gracia A.Clavulanic acid,aβ-lactamase inhibitor:Biosynthesis and molecular genetics[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2000,54:467-475.
[5] Wang L R,Tahlan K,Kaziuk T L,et al.Transcriptional and translational analysis of theccaR gene fromStreptomycesclavuligerus[J].Microbiology,2004,150:4137-4145.
[6] Lynch H C,Yang Y.Degradation products of clavulanic acid promote clavulanic acid production in cultures ofstreptomyces clavuligerus[J].Enzyme and Microbicology Technology,2004,34:48-54.
[7] Salowe S P,Marsh E N,Townsend C A.Purification and characterization of clavaminate synthase fromstreptomyces clavuligetus:An unusual oxidative enzyme in natural product biosynthesis[J].Biochemistry,1990,29:6499-6508.
[8] Kieser T,Chater K,Bibb M J,et al.PracticalStreptomycesgenetics[M].Norwich:John Innes Foundation,2000.
[9] Baltz R H.Genetic recombination by protoplast fusion inStreptomyces[J]. Development Industrial Microbiology,1980,21:43-54.
[10] Sambrook J,F(xiàn)ritsch E F,Maniatis T.Molecular cloning:A laboratory manual[M].2nd ed.New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989.
[11] Aharonowitz Y,Demain A L.Carbon catabolite regulation of cephmycin production instreptomycesclavuligerus[J].Antimicrobial Agents and Chemotherapy,1978,14:159-164.
[12] Bierman M,Logan R,O'Brien K,et al.Plasmid cloning vectors for the conjugal transfer of DNA fromEscherichiacolitoStreptomycesspp[J].Gene,1992,116:43-49.
[13] Francisco J,Perez-Llarena,Paloma Liras,et al.A regulatory gene(ccaR)required for Cyphamycin and clavulanic acid production inStreptomycesclavuligerus:Amplification results in overproduction of bothβ-lactam compounds[J].Journal of Bacteriology,1997,179(6):2053-2059.
[14] Malmberg L H,Hu W S,Sherman D H.Precursor flux control through targeted chromosomal insertion of the lysine-εaminotransferase(lat)gene in cephamycin C biosynthesis[J].Journal of Bacteriology,1993,175:6916-6923.
[15] Paradkar A S,Mosher R H,Anders C.Application of gene replacement technology toStreptomycesclavuligerusstrain development for clavulanic acid production[J].Applied and environmental microbiology,2001,67(5):2292-2297.
[16] Christopher R,Bailey F,David J.Winstanley.Inhibition of restriction inStreptomycesclavuligerusby heat treatment[J].Journal of General Biology,1986,132:2945-2947.
[17] 王永華,荊琛峰,陶美鳳,等.棒狀鏈霉菌lat基因的中斷對(duì)棒酸產(chǎn)量的影響[J].微生物學(xué)報(bào),2005,45(4):500-503.
[18] 舒楊,何建勇,田威,等.棒狀鏈霉菌中l(wèi)at基因的置換與克拉維酸的選擇性生產(chǎn)[J].沈陽(yáng)藥科大學(xué)學(xué)報(bào),2005,22(1):62-66.
[19] 王艷萍,張永生,張陽(yáng),等.產(chǎn)克拉維酸的棒狀鏈霉菌突變菌株的選育[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2007,5:9-12.
[20] Zuo Z H,Wang Y P.Application oflatgene disruptionto increase the clavulanic acid production ofStreptomycesclavuligerus[J].Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic,2006,43:102-107.
Study on application ofccaRStreptomycesclavuligerusto increase clavulanic acid production
ZUOZhihan,ZHENGJinhui
(a.College of Life Science,b.Tianjin Key Laboratory of Cyto-Genetical and Molecular Regulation,Tianjin Normal University,Tianjin 300387,China)
Clavulanic acid positive regulation geneccaR was amplified inStreptomycesclavuligerusB71-14.ccaR expression plasmid pSET152-ccaR was constructed and transformed intoS.clavuligerusB71-14 by conjugation.Theatt Psite in pSET152-ccaR could be inserted intoattBsite ofS.clavuligerusB71-14,and an extra copy ofccaR was inserted into the chromosome ofS.clavuligerusB71-14.The clavulanic acid yield of the obtained mutantS.clavuligerus::ccaR can reach 820.91 mg/L,which is 1.54 times of that withS.clavuligerusB71-14.The yield is steady within five generations.
clavulanic acid;Streptomycesclavuligerus;ccaR
Q939.9
A
1671-1114(2011)04-0064-06
2010-04-07
天津師范大學(xué)博士基金資助項(xiàng)目(52X0910)
左志晗(1979),女,講師,博士,主要從事微生物活性物質(zhì)開(kāi)發(fā)方面的研究.
(責(zé)任編校 紀(jì)翠榮)