牛慶麗,關(guān)貴全,楊吉飛,付鈺廣,馬米玲,李有全,劉軍龍,郝雪峰,羅建勛,殷 宏
(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所家畜疫病病原生物學(xué)國家重點實驗室,甘肅蘭州730046)
萊姆病(Lyme disease)又稱萊姆包柔體病或萊姆疏螺旋體病,是一種經(jīng)蜱傳播的自然疫源性人獸共患病,因首次在美國康涅狄格州的萊姆鎮(zhèn)發(fā)現(xiàn)而得名[1]。病原體為伯氏疏螺旋體(Borrelia burgdorferi),可分為13個基因型或組[2]。1982年,W illy等在美國首次從肩突硬蜱中分離出B.burgdorferi[4],我國于1986年首次在黑龍江省海林縣林區(qū)發(fā)現(xiàn)該病,之后陸續(xù)報道的病原有狹義伯氏疏螺旋體(B.burgdorferi sensus stricto)、伽氏疏螺旋體(B.garinii)、阿氏疏螺旋體(B.afzelii)和法雷斯疏螺旋體(Borrelia valaisiana)共4個基因型[3]。到目前為止,我國29個省(區(qū)、市)均有人萊姆病的報道,每年新發(fā)病例高達萬余例。蜱是B.burgdorferi的傳播媒介和貯存宿主,在其叮咬吸血的過程中,將病原傳遞給脊椎動物。我國地域遼闊,不同地區(qū)蜱的種類及B.burgdorferi感染情況存在很大的差異,因此探明媒介蜱的種類在該病的防治中具有重要意義。
雖然在萊姆病的流行病學(xué)方面取得了一定的研究進展,但是獲得的數(shù)據(jù)已經(jīng)不能確切反應(yīng)該病在我國的流行狀況。常規(guī)的細菌分離與鑒定、細菌抗原檢測等方法,對動物組織、血液以及傳播媒介蜱等菌體含量低微的樣品檢測時,往往得不到準(zhǔn)確的結(jié)果,容易漏檢。本研究從文獻[6-8]中用于擴增B.burgdorferi OspA基因片段的3對引物中篩選出一對特異、敏感的引物,建立了PCR檢測方法,該方法具有高度的敏感性和特異性,并且操作簡便,適用于動物組織、血液及蜱體內(nèi)的病原檢測。
1.1 實驗用B.burgdorferi標(biāo)準(zhǔn)基因組DNA 分別從德國慕尼黑大學(xué)Max von pettenkofer研究所和荷蘭引進14株B.burgdorferi基因組樣品,涵蓋了國內(nèi)分布的主要基因型,即:PKo(B.afzelii)、PKa(B.burgdorferi sensus stricto)、 T25(B.garinii)、 PBi(B.garinii)、PBr(B.garinii)、B31(B.burgdorferi sensus strict)、 20047(B.garinii)、IP90(B.garinii)、PFim(B.garinii)、Poti(B.garinii)、PTrob(B.garinii)、PHei(B.garinii)、PKab(B.garinii)和 TN(B.garinii)。
1.2 樣品采集 2009年4月~7月在福建省(南平市)、湖南省(懷化市)、廣東省(惠州市)、廣西壯族自治區(qū)(來賓市)、黑龍江省(尚志市)、吉林省(琿春市)和甘肅省(臨潭縣)的山區(qū)放養(yǎng)的牛羊身上采集寄生蜱共667只,經(jīng)實驗室鑒定為革蜱屬(264只)、血蜱屬(173只)、牛蜱屬(185只)和扇頭蜱屬(45只)。
1.3 主要試劑 Taq DNA聚合酶等購自TaKaRa公司,DNA提取試劑盒購自Gentra公司。
1.4 引物合成及篩選 按照文獻[6-8]設(shè)計3對通用引物,SL1PF:5'-AATAggTCTAATAATAgCCTTAA TAgC-3', SL1PR: 5'-CTAgTgTTTTgCCATCTTCTTT gAAAA-3'; SL2PF: 5'-ggAAAAgCTAAAgAg[A]gTT TTAAAA-3',SL2PR:5'-TTATTTTAAAgCgT[g]T[C]TTT-3';SL3PF:5'-ggAAAAgCTAAAgAggTTTTAAA A-3', SL3PR: 5'-TTATTTCAAAgCg-3'。 引 物 由TaKaRa公司合成,擴增目的片段分別為307bp、316bp和 320bp。
1.5 基因組DNA的提取 按說明書DNA提取試劑盒提取667只蜱的DNA。
1.6 PCR的特異性試驗 采 用 引 進 的 14株B.burgdorferi基因組樣品和從健康牛羊血液、衣原體、支原體、牛無漿體、羊無漿體樣品中提取的DNA,進行PCR擴增,體系為:10×PCR buffer 5μL,dNTPs(2.5mmol/L)4μL,Taq DNA 聚合酶 0.3μL(5u),上、下游引物 (50pmol/μL)各0.5μL,模板(10ng/μL)1μL。反應(yīng)條件:94℃3m in;94℃ 1min、57.6℃ 1m in、72℃ 1min,35個循環(huán);72℃10min。PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳觀察并分析結(jié)果。
1.7 PCR敏感性試驗 將PKo,B31和PBi3株代表性B.burgdorferi基因組DNA進行分光光度計測定含量,稀釋至 10ng/μL,10倍倍比稀釋(10-1~10-12)進行PCR擴增,以檢測其敏感性。
1.8 流行病學(xué)調(diào)查 以提取的667只蜱樣品基因組DNA為模板,用SL1引物對進行PCR擴增,分析結(jié)果。
2.1 引物篩選及PCR特異性擴增結(jié)果 分別對3對引物擴增的反應(yīng)條件進行比較,從中篩選出特異性和敏感性較好的一組引物SL1,退火溫度確定為57.6℃。對14株B.burgdorferi分離株的OspA基因進行PCR擴增,均出現(xiàn)了與預(yù)期片段大小一致的條帶,大小約為 300bp(圖 1)。擴增產(chǎn)物測序及BLAST分析結(jié)果表明,其序列為B.burgdorferi OspA基因,而衣原體、支原體、牛無漿體、羊無漿體和牛羊血液基因組DNA及陰性對照,均無擴增片段。結(jié)果表明,所建立的PCR方法具有良好的特異性。OspA是B.burgdorferi主要外膜蛋白之一,在體外和體內(nèi)高效表達。OspA是一種粘附素(Adhesion),對螺旋體在蜱腸中(M idgut)的定居至關(guān)重要,缺乏該蛋白B.burgdorferi在蜱體內(nèi)無法存活。B.burgdorferi OspA與其他微生物如梅毒螺旋體、赫氏疏螺旋體和鉤端螺旋體的交叉反應(yīng)較低,因此,在分子診斷及流行病學(xué)研究方面有重要意義[9]。
2.2 PCR敏感性試驗結(jié)果 選用B.burgdorferi 3個致病性種代表株,將基因組DNA定量后,稀釋為 10ng/μL,以 10倍倍比稀釋進行 PCR檢測。BB、BG和BA 3種基因組DNA樣品的最低檢出量分別為0.01pg、1pg和10pg,即該方法可檢測到0.01pg~10pg的基因組DNA(圖2),表明該方法具有較高的敏感性。
2.3 野外樣品檢測結(jié)果 對采集自7個省份的蜱用建立的PCR方法進行檢測,其中革蜱屬10只為陽性,血蜱屬有11只檢測為陽性,牛蜱屬59只為陽性,扇頭蜱屬14只為陽性結(jié)果,4種蜱屬的檢出率分別為 4%(10/264),6%(11/137),32%(59/185)和31%(14/45)。
這4種蜱屬中的3種,即:牛蜱屬,血蜱屬和革蜱屬,體內(nèi)存在萊姆病病原,并且?guī)Ь瘦^高,表明這些蜱可能在萊姆病的流行與傳播中發(fā)揮一定的作用。試驗結(jié)果表明,湖南省和廣西省的牛蜱屬感染率較高,與以往報道結(jié)果相符,證實牛蜱在這些地區(qū)為萊姆病傳播的優(yōu)勢蜱屬[10],而血蜱屬感染率與以往所報道的相比較低,這可能與采集地區(qū)蜱的分布及萊姆病流行地區(qū)的密度有關(guān)。從甘肅省采集的蜱體內(nèi)分離到B.burgdorferi病原也已得到證實[11]。本研究首次從黑龍江尚志市采集的革蜱體內(nèi)檢測到B.burgdorferi,而吉林省琿春市革蜱的檢測結(jié)果比黃海楠等報道的用RFLP法檢測的革蜱的感染率低[12],造成這種差異的原因可能與采集地地理區(qū)域的差異、檢測樣本的數(shù)量和該蜱本身的自然感染率的高低有關(guān)。扇頭蜱在萊姆病傳播中的媒介作用目前未見報道,本研究首次從扇頭蜱體內(nèi)檢測到B.burgdorferi,并認(rèn)為可能該蜱屬是萊姆病潛在的傳播媒介,其媒介地位需進一步證實。我國蜱的種類較多,已證實有30種蜱具有醫(yī)學(xué)重要性,對人畜的攻擊性強,作為萊姆病媒介的可能性較大,并且存在著較大的地區(qū)差異。研究證實在我國北方林區(qū)全溝硬蜱為優(yōu)勢種,河南、山東等地長角血蜱為優(yōu)勢種,南方林區(qū)為二棘血蜱和粒形硬蜱傳播本病[13-14]。
本研究建立的PCR方法具有較高的特異性和敏感性。對來自于牛羊體表的蜱體內(nèi)B.burgdorferi感染情況的調(diào)查結(jié)果表明,該方法適應(yīng)于評估B.burgdorferi在這些地區(qū)的感染狀況,確定其對人畜可能造成感染的潛在威脅的高風(fēng)險區(qū),從而有助于控制萊姆病的傳播與流行,減少經(jīng)濟損失,為我國萊姆病的防治提供診斷方法。
[1]Steere A C.Lyme disease[J].N Engl J Med,1989,321(9):586-596.
[2]Maria E,Aguero-Rosenfeld,Wang Gui qing,et al.Diagnosis of Lyme Borreliosis[J].Clin M icrobiol Rev,2005,18(3):484-509.
[3]王定明,郝琴,蔡星和,等.貴州省萊姆病螺旋體的基因分型研究[J].中華流行病學(xué)雜志,2003,24(12):1129-1131.
[4]Burgdorfer W,Barbour A G,Hayes S F,et al.Lyme Disease,a tick-borne spirochetosis?[J].Science,1982,216(4552):1317-1319.
[5]張哲夫,張金聲,朱桂鳳,等.我國東北林區(qū)萊姆病的調(diào)查[J].中華流行病學(xué)雜志,1989,10(5):261-264.
[6]Isabelle D,Abdelouahid B M,Myriam de K,et al.Simultaneous presence of different Borrelia burgdorferi genospecies in biological fluids of Lyme disease patients[J].J clin M icrobiol,1995,33(3):602-608.
[7]李建民,曹務(wù)春,張習(xí)坦,等.用聚合酶鏈方法對北京林區(qū)萊姆病疫源地及萊姆病病原體基因型的探索性研究[J].中華流行病學(xué)雜,2002,23(3):209-212.
[8]Vlad V,Peter H,Dieter R G L,et al.Heterogeneity of Borrelia burgdorferi sensu lato demonstrated by an ospA-type-specific PCR in synovial fluid from patientsw ith Lyme arthritis[J].Med M icrobiol Immunol,1998,187(2):97-102.
[9]李新軍.萊姆病的實驗室診斷技術(shù)研究進展[J].國外醫(yī)學(xué)(流行病學(xué)傳染冊),1998,25(6):272-275.
[10]何漢江,黃曉敏.湘南微小¨牛蜱攜帶萊姆病螺旋體的調(diào)查[J].中國媒介生物學(xué)及控制雜志,2003,14(4):303.
[11]孫毅,許榮滿,張泮河,等.我國一些常見蜱種萊姆病螺旋體的分離與鑒定[J].寄生蟲與醫(yī)學(xué)昆蟲學(xué)報,2002,9(2):114-119.
[12]黃海楠,丁壯,何靜,等.吉林林區(qū)動物萊姆病螺旋體感染的調(diào)查研究[J].中國人獸共患病學(xué)報,2006,22(8):785-788.
[13]劉國平,任清明,賀順喜,等.我國東北三省蜱類的分布及醫(yī)學(xué)重要性[J].中華衛(wèi)生殺蟲藥械,2008,14(1):39-42.
[14]萬康林,張哲夫,張金聲,等.中國20個省、區(qū)、市動物萊姆病初步調(diào)查研究[J].中國媒介生物學(xué)及控制雜志,1998,9(5):366-369.