潘蕾蔓,張祎,賀萍,張藝哲,林政立,楊錦熹,張麗娜,吳暉,張猛猛
(華南理工大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,廣東廣州 510640)
瑪咖(Lepidium meyeniiWalp.)是一種十字花科獨(dú)行菜屬的一年生草本植物,原產(chǎn)于秘魯安第斯高原,亦被稱為“秘魯人參”[1]。上世紀(jì)末,瑪咖受到聯(lián)合國(guó)糧農(nóng)組織的推薦種植[2]?,斂в?000年首次被引入國(guó)內(nèi);瑪咖粉在2011年獲批為新資源食品[3,4]。研究表明瑪咖具有多種生物活性,如提高生育力與性欲、抗疲勞、提高免疫力、抗氧化、提高記憶力、抗腫瘤以及降血糖等功能[5-7]。目前的研究認(rèn)為瑪咖的這些活性主要與其中的多糖、瑪咖烯和瑪咖酰胺等物質(zhì)有關(guān)。事實(shí)上,瑪咖還含有豐富的蛋白質(zhì)(9.56%~21.90%),而蛋白質(zhì)經(jīng)胃腸消化后可產(chǎn)生各種活性肽,因此蛋白質(zhì)可能在瑪咖的功能活性中也發(fā)揮了一定作用。然而,據(jù)報(bào)道,瑪咖蛋白經(jīng)模擬胃腸消化的水解度[8]明顯低于一些常見的植物蛋白,如大豆蛋白、玉米蛋白等,這意味著瑪咖蛋白較難被胃腸道消化,直接食用的利用率不高。目前有很多研究利用外源蛋白酶,如堿性蛋白酶、復(fù)合蛋白酶等,通過(guò)預(yù)酶解的方法處理各種難消化蛋白的酶解物,以達(dá)到充分利用蛋白質(zhì)的目的,但尚未有研究探究這種方法對(duì)瑪咖蛋白可消化性的影響。此外,實(shí)驗(yàn)室前期研究表明瑪咖蛋白經(jīng)胃腸消化后產(chǎn)生的肽具有良好的免疫調(diào)節(jié)活性[8],而預(yù)酶解的加工處理方式對(duì)瑪咖蛋白胃腸消化產(chǎn)物的免疫調(diào)節(jié)活性的影響尚不明確。
本研究采用單酶酶解與模擬胃腸道消化相結(jié)合的方式,研究經(jīng)不同蛋白酶預(yù)酶解后的瑪咖蛋白可消化性的變化,并以小鼠巨噬細(xì)胞RAW 264.7為模型探究預(yù)酶解對(duì)瑪咖蛋白胃腸消化后的免疫調(diào)節(jié)活性的影響,解析活性最強(qiáng)的消化產(chǎn)物中肽的序列,然后對(duì)其中免疫活性較強(qiáng)的肽進(jìn)行活性驗(yàn)證和構(gòu)效分析。本研究在為瑪咖蛋白的深加工利用方式提供技術(shù)支撐的同時(shí),也將深化人們對(duì)瑪咖蛋白免疫調(diào)節(jié)活性的認(rèn)識(shí)。
瑪咖根莖粉末(黃瑪咖),購(gòu)于云南種植基地;中性蛋白酶(100 U/mg)、堿性蛋白酶(100 U/mg)、木瓜蛋白酶(800 U/mg)、菠蘿蛋白酶(300 U/mg)、復(fù)合蛋白酶(120 U/mg),上海源葉生物科技有限公司;胃蛋白酶(≥250 units/mg)、胰酶(8×USP),美國(guó)Sigma公司;5% TNBS水溶液,美國(guó)Sigma公司;福林酚,北京索萊寶科技有限公司;小鼠TNF-αELISA試劑盒,欣博盛生物科技有限公司;細(xì)胞增殖及毒性檢測(cè)試劑盒(CCK-8),大連美侖生物科技有限公司;胎牛血清,上海吉泰依科賽生物科技有限公司;其它試劑均為市售分析純;小鼠巨噬細(xì)胞RAW 264.7,實(shí)驗(yàn)室保存。
集熱式恒溫加熱磁力攪拌器,鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;低速離心機(jī),安徽嘉文儀器裝備有限公司;冷凍干燥機(jī),上海繼譜電子科技有限公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器,上海亞榮生化儀器廠;紫外可見光分光光度計(jì),上海棱光技術(shù)有限公司;多微孔板檢測(cè)儀,新加坡PerkinElmer公司;Q Exactive質(zhì)譜儀,美國(guó)Thermo Fisher科技有限公司;Dionex Ultimate 3000 RSLCnano液相色譜,美國(guó)Thermo Fisher科技有限公司;全自動(dòng)氨基酸分析儀,日本HITACHI公司。
1.3.1 瑪咖蛋白的制備
在Wu等[9]的方法基礎(chǔ)上改進(jìn),具體為:取瑪咖根莖粉末為原料,以Tris-HCl溶液(0.05 mol/L,pH值9.0)為提取液,料液比1:30(g/mL),超聲(60 ℃,250 W,20 min),提取時(shí)間30 min,提取溫度60 ℃。離心(4 000 r/min,5 min)、過(guò)濾(500目濾布)取上清液,加入1 mol/L HCl溶液至上清液pH值達(dá)到3.75,靜置30 min后再次離心(4 000 r/min,10 min),用 0.6 mol/L NaOH溶液復(fù)溶沉淀,透析脫鹽(5 000 u),凍干得瑪咖蛋白,蛋白含量為87.02%±1.58%。
1.3.2 瑪咖蛋白消化產(chǎn)物的制備
1.3.2.1 瑪咖蛋白消化產(chǎn)物制備流程圖
瑪咖蛋白經(jīng)模擬胃腸消化、單酶預(yù)酶解與模擬胃腸消化結(jié)合制備消化產(chǎn)物的工藝如圖1所示。
圖1 瑪咖蛋白消化產(chǎn)物制備流程Fig.1 Flow chart of preparation of maca protein digestion products
1.3.2.2 單酶預(yù)酶解
取0.5 g瑪咖蛋白配成1%(m/V)的蛋白溶液,加酶至總酶活為2.0×104U,酶解3 h。沸水浴加熱10 min,使瑪咖蛋白中蛋白酶抑制劑失活。將溫度和pH值調(diào)至表1各值,預(yù)熱10 min。在酶解過(guò)程中,前30 min,每5 min調(diào)節(jié)一次pH值,隨后每20 min調(diào)節(jié)一次pH值,使其保持恒定。反應(yīng)結(jié)束后,將酶解液置于沸水浴中10 min以終止反應(yīng)。
表1 七種酶的最適酶解條件Table 1 Optimal hydrolysis conditions of the seven enzymes
各酶的活力測(cè)定方法為:中性蛋白酶及堿性蛋白酶酶活的測(cè)定方法參照GB/T 23527-2009[10]紫外分光光度法;木瓜、菠蘿及復(fù)合蛋白酶酶活的測(cè)定方法參照T/CCCMHPIE 1.18-2016[11];胃蛋白酶及胰酶酶活的測(cè)定方法參照《中華人民共和國(guó)藥典》[12]。
1.3.2.3 體外模擬胃腸消化
參照Brodkorb等[13]的方法:①模擬胃消化階段:滴加1 mol/L的HCl溶液使pH值達(dá)到3.0,在溫度達(dá)到37 ℃后加入胃蛋白酶,磁力攪拌反應(yīng)2 h;②模擬腸消化階段:滴加1 mol/L的NaOH溶液使pH值達(dá)到7.0終止模擬胃消化,加入胰酶,37 ℃磁力攪拌反應(yīng)2 h。隨后將溶液pH值調(diào)至7.0,煮沸10 min使反應(yīng)完全結(jié)束,冷卻后離心(4 000 r/min,20 min),取上清液透析(截留量100 u),再冷凍干燥得體外模擬胃腸消化產(chǎn)物,并將所得各組消化產(chǎn)物按表1次序命名為B1、B2、B3、B4及B5。
1.3.3 消化產(chǎn)物得率的測(cè)定
體外模擬消化產(chǎn)物及預(yù)酶解后體外模擬消化產(chǎn)物的得率計(jì)算如下:
式中:
D——模擬胃腸消化產(chǎn)物得率,%;
m1——模擬胃腸消化產(chǎn)物干粉質(zhì)量,g;
m0——所用瑪咖蛋白質(zhì)量,g。
式中:
D1——預(yù)酶解后模擬胃腸消化產(chǎn)物得率,%;
m2——預(yù)酶解后模擬胃腸消化產(chǎn)物干粉質(zhì)量,g;
m——所用瑪咖蛋白質(zhì)量,g。
1.3.4 水解度(DH)的測(cè)定
1.3.4.1 瑪咖蛋白的酸水解
參照Bandyopadhyay等[14]的方法,取10 mg瑪咖蛋白,加入4.00 mL的HCl溶液(6 mol/L),混勻后密封于安瓿瓶中,在110 ℃下水解24 h,得瑪咖蛋白完全水解液。
1.3.4.2 水解度(DH)的測(cè)定
采用J.Adler-Nissen[15]的方法(TNBS法)測(cè)定水解度,即取含有0.25×10-3~2.5×10-3amino equiv/L的酶解液(用1% SDS溶液稀釋),加入2.00 mL磷酸緩沖液(pH值8.2),加入2.00 mL的0.1% TNBS溶液,振蕩搖勻,水浴60 min(50±1 ℃),鋁箔避光;最后加入4.00 mL的0.10 mol/L的HCl溶液終止反應(yīng),并于室溫下靜置30 min后在波長(zhǎng)340 nm下完成吸光值的測(cè)定。
水解度的計(jì)算公式[16]如下:
式中:
DH——水解度,%;
hs——瑪咖蛋白的氨基酸含量,mmol/L;
h0——消化產(chǎn)物的氨基酸含量,mmol/L;
ht——瑪咖蛋白經(jīng)過(guò)酸水解后的氨基酸含量,mmol/L,為1.55 mmol/L。
以L-亮氨酸為標(biāo)準(zhǔn)品,用1% SDS溶液配制濃度為0~2.0 mmol/L[17]的標(biāo)準(zhǔn)品溶液,按上述方法測(cè)定,并以在波長(zhǎng)340 nm下測(cè)定的吸光值為縱坐標(biāo),以L-亮氨酸濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.3.5 可溶性肽得率(YSP)的測(cè)定
采用福林酚法測(cè)定可溶性肽含量,按照說(shuō)明書方法進(jìn)行測(cè)定:
稱取2.0 mg預(yù)酶解消化產(chǎn)物配制濃度為 200 μg/mL的樣品溶液,加入5.0 mL試劑甲,混勻后靜置10 min,再加入0.5 mL試劑乙,立即搖勻,保溫30 min,最后于波長(zhǎng)500 nm比色。整個(gè)反應(yīng)過(guò)程溫度應(yīng)控制在20~25 ℃。
可溶性肽得率的計(jì)算公式為:
式中:
YSP——可溶性肽得率,%;
Ts——可溶性肽含量,μg/mL;
Tp——底物中的蛋白含量,為153.55 μg/mL。
以牛血清白蛋白為標(biāo)準(zhǔn)品,配制1.0 mL濃度為0~250 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)液,按上述方法測(cè)定,并以波長(zhǎng)500 nm下吸光值為縱坐標(biāo),以牛血清白蛋白濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.3.6 游離氨基酸含量的測(cè)定
測(cè)定方法參照GB/T 30987-2020[18]全自動(dòng)氨基酸分析儀法。色譜條件:色譜柱為磺酸型陽(yáng)離子交換柱;按標(biāo)準(zhǔn)配制流動(dòng)相B1~B6,分離流動(dòng)相流量為 0.35 mL/min,檢測(cè)流動(dòng)相流量為0.30 mL/min;進(jìn)樣量為20 μL;檢測(cè)波長(zhǎng)為570 nm和440 nm。分別吸取不同濃度的系列混合氨基酸標(biāo)準(zhǔn)工作溶液得到21種氨基酸的峰面積,建立標(biāo)準(zhǔn)工作曲線,并通過(guò)保留時(shí)間識(shí)別各氨基酸出峰順序。將樣品中各氨基酸色譜峰面積代入標(biāo)準(zhǔn)工作曲線計(jì)算含量,以水為空白樣品,得各樣品中氨基酸凈含量。
1.3.7 分子量分布測(cè)定
測(cè)定方法參照GB/T 22729-2008[19]:采用Waters 1525高效液相色譜系統(tǒng)測(cè)定各瑪咖蛋白消化產(chǎn)物的分子量。稱取100 mg樣品于10 mL容量瓶中,用流動(dòng)相稀釋至刻度,經(jīng)0.22 μm微孔過(guò)濾膜過(guò)濾后進(jìn)樣。色譜柱:TSKgel 2000 SWXL(300 mm×7.8 mm);柱溫:30 ℃;流動(dòng)相:乙腈/水/三氟乙酸(45/55/0.1,V/V/V);檢測(cè)波長(zhǎng):UV 220 nm;流速:0.5 mL/min。
稱取細(xì)胞色素C(Mw 12 400 u)、桿菌酶(Mw 1 450 u)、乙氨酸-乙氨酸-酪氨酸-精氨酸(Mw 451 u)和乙氨酸-乙氨酸-乙氨酸(Mw 189 u)標(biāo)準(zhǔn)品用流動(dòng)相溶解配制成0.2 mg/mL左右的標(biāo)準(zhǔn)分子量溶液。以標(biāo)準(zhǔn)品的logMw及洗脫時(shí)間繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線:
1.3.8 免疫調(diào)節(jié)活性的評(píng)價(jià)
1.3.8.1 消化產(chǎn)物及肽對(duì)RAW 264.7細(xì)胞的毒性
取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的小鼠巨噬細(xì)胞RAW 264.7,以每孔1.0×105個(gè)的數(shù)量接種于96孔板,用DMEM培養(yǎng)液(含1%雙抗,10%胎牛血清,V/V)在5% CO2、37 ℃環(huán)境中培養(yǎng)24 h后棄去上清液,加入100 μL含不同濃度樣品的新鮮培養(yǎng)液(瑪咖蛋白消化產(chǎn)物所用濃度為500 μg/mL,瑪咖肽所用濃度為250 μg/mL),以正常培養(yǎng)液為陰性對(duì)照,培養(yǎng)24 h。棄去上清液,加入100 μL含10% CCK-8試劑的培養(yǎng)液,培養(yǎng)1 h后于波長(zhǎng)450 nm處測(cè)定吸光值。
細(xì)胞存活率的計(jì)算公式為:
式中:
X——細(xì)胞存活率,%;
As——樣品吸光值;
Ac——陰性對(duì)照組吸光值。
1.3.8.2 細(xì)胞因子TNF-α的測(cè)定
取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的小鼠巨噬細(xì)胞RAW 264.7,以每孔1.0×105個(gè)的數(shù)量接種于96孔板,用DMEM培養(yǎng)液(含1%雙抗,10%胎牛血清,V/V)在5% CO2、37 ℃環(huán)境中培養(yǎng)24 h后棄去上清液,加入100 μL含不同濃度樣品的新鮮培養(yǎng)液,以正常培養(yǎng)液為陰性對(duì)照,培養(yǎng)24 h。收集上清液,用小鼠TNF-αELISA試劑盒測(cè)定細(xì)胞因子TNF-α的表達(dá)量,具體操作按說(shuō)明書進(jìn)行。
1.3.9 消化產(chǎn)物中肽序列的測(cè)定
1.3.9.1 消化產(chǎn)物的超濾分組
稱取25 mg免疫調(diào)節(jié)活性最高的瑪咖消化產(chǎn)物,配制濃度為0.25 mg/mL的溶液,并超濾(5 000 r/min離心,60 min)取分子量小于3 ku的部分。為盡量避免截留量為3 ku的超濾膜被堵塞,在進(jìn)行3 ku超濾分組前先將樣品溶液經(jīng)過(guò)截留量為10 ku(5 000 r/min離心,30 min)的超濾管分組。最后經(jīng)蒸發(fā)濃縮、冷凍干燥得分子量小于3 ku部分消化產(chǎn)物。
1.3.9.2 消化產(chǎn)物中肽序列的測(cè)定
用樣品溶解液(含φ=0.1%甲酸、φ=2%乙腈)溶解1.3.9.1所得消化產(chǎn)物,離心(4 ℃,13 200 r/min,20 min),取上清,進(jìn)入液相色譜分離,分離后的肽段直接進(jìn)入質(zhì)譜儀進(jìn)行在線檢測(cè)。質(zhì)譜原始文件經(jīng)過(guò)MM File Conversion軟件處理轉(zhuǎn)換,得到MGF格式文件,然后用MASCOT檢索UniProt數(shù)據(jù)庫(kù)(Mascot:http://www.matrixscience.com/)。
1.3.10 免疫調(diào)節(jié)肽的篩選
1.3.10.1 預(yù)篩選
根據(jù)免疫調(diào)節(jié)活性肽具有肽鏈短、一般由2~10個(gè)氨基酸組成的特點(diǎn)[20,21],對(duì)1.3.9.2所得肽段進(jìn)行篩選。
1.3.10.2 生物活性評(píng)估
將1.3.10.1篩選所得肽段導(dǎo)入Bioware網(wǎng)站的PeptideRanker程 序[22]( http://distilldeep.ucd.ie/ PeptideRanker/)預(yù)測(cè)肽段具有生物活性的可能性,并選擇可能性評(píng)分大于0.5的肽段。
1.3.11 HPEPDOCK分子對(duì)接篩選
將1.3.10.2篩選得到的肽段導(dǎo)入HPEPDOCK網(wǎng)站[23],與模式識(shí)別受體TLR2(PDB ID:1FYW)及TLR4(PDB ID:5IJD)進(jìn)行分子對(duì)接,篩選分子對(duì)接親和力最強(qiáng)的10個(gè)肽段進(jìn)行合成。
1.3.12 肽段合成
采用Fmoc固相合成法合成1.3.10.2篩選得到的10個(gè)肽段,該步驟委托吉爾生化(上海)有限公司完成。
1.3.13 AutoDock分子對(duì)接分析
利用軟件 ChemBio3D Ultra 14.0及AutoDockTools-1.5.6對(duì)1.3.11篩選所得肽段經(jīng)進(jìn)行設(shè)計(jì)及處理。根據(jù)受體蛋白的ID從PDB數(shù)據(jù)庫(kù)下載蛋白結(jié)構(gòu),利用PyMOL 2.3.0 AutoDockTools-1.5.6處理受體蛋白。最后,利用PyMOL 2.3.0和LIGPLOT V 2.2.4分析對(duì)接結(jié)果的相互作用模式。
1.3.14 HOMO分析
使用GaussView 5.0以及Gaussian 09進(jìn)行密度泛函數(shù)理論計(jì)算;使用Gaussian 09以B3LYP/6-31制圖并分析活性位點(diǎn)。
1.3.15 數(shù)據(jù)處理
使用SPSS 26.0軟件進(jìn)行顯著性差異分析,將P<0.05視為差異顯著;使用Origin 2021進(jìn)行制圖。
以L-亮氨酸為標(biāo)準(zhǔn)品測(cè)定的水解度標(biāo)準(zhǔn)曲線為y=0.286 1x-0.000 3(R2=0.999 6);根據(jù)牛血清蛋白測(cè)定的可溶性肽得率標(biāo)準(zhǔn)曲線為y=0.000 6x+0.000 9(R2=0.999 7)。
以僅經(jīng)過(guò)體外模擬胃腸消化所得的消化產(chǎn)物MCPH為陰性對(duì)照,消化產(chǎn)物B1~B5的得率、水解度(DH)及可溶性肽得率(YSP)如表2。
表2 六組消化產(chǎn)物的得率、水解度及可溶性肽得率Table 2 Yields, DHs, YSPs of the six digestion products
水解度是用于監(jiān)控及描述蛋白水解程度的重要指標(biāo)?,斂У鞍捉?jīng)模擬胃腸消化后所得MCPH的水解度為22.91%,低于一些常見食物蛋白質(zhì)消化產(chǎn)物的水解度,如小麥胚芽蛋白的為40.25%[24],豌豆蛋白的為53.62%[25],非洲核桃蛋白的為73.47%[26]。其原因可能是瑪咖蛋白為堿溶蛋白,水溶性較差,在腸液中的分散性較低,難以與蛋白酶發(fā)生相互作用[27]。與MCPH相比,B1~B5的消化產(chǎn)物得率及水解度得到了顯著的提高(P<0.05),其中消化產(chǎn)物得率的提高幅度為10%~ 30%,水解度提高約35%。蛋白質(zhì)經(jīng)酶解后會(huì)產(chǎn)生分子量不同的肽以及游離氨基酸;酶解程度越高,產(chǎn)生的可溶性肽和游離氨基酸的含量也越高。因此,可溶性肽和游離氨基酸的得率也可用于評(píng)價(jià)蛋白質(zhì)的可消化性。MCPH的可溶性肽得率為17.20%,低于常見食物蛋白的數(shù)值,如小麥胚芽蛋白的為40.25%[24],大豆蛋白的為88%[28]以及卵清蛋白的為99%[29],而B1~B5的可溶性肽得率皆明顯高于MCPH,增長(zhǎng)幅度為5%~16%。由此可見,預(yù)酶解能顯著提高瑪咖蛋白經(jīng)胃腸消化后產(chǎn)生的可溶性肽的含量。從表3可知,五組經(jīng)預(yù)酶解處理所得產(chǎn)物的游離氨基酸總量皆明顯高于MCPH的,增長(zhǎng)幅度為37%~92%;其中B5的增長(zhǎng)幅度最大,游離氨基酸總量的增長(zhǎng)率約為92%,說(shuō)明預(yù)酶解處理能提高瑪咖蛋白胃腸消化產(chǎn)生的游離氨基酸含量。
表3 六組消化產(chǎn)物的游離氨基酸含量(mg/100 g瑪咖蛋白)Table 3 Free amino contents of the six digestion products (mg/100 g maca proteins)
續(xù)表3
綜上,經(jīng)過(guò)預(yù)酶解處理后,瑪咖蛋白胃腸消化產(chǎn)物的水解度、可溶性肽得率及游離氨基酸含量皆得到了顯著的提高(P<0.05),意味著預(yù)酶解處理能使瑪咖蛋白具有更高的消化率和生物可及性[30],更易被人體所吸收利用。
巨噬細(xì)胞是先天性免疫的重要組成部分,其發(fā)揮免疫功能的途徑包括吞噬病原體、分泌細(xì)胞毒性分子(如NO)以及分泌細(xì)胞因子(如TNF-α、IL-6等)[21]。小鼠巨噬細(xì)胞RAW 264.7是評(píng)價(jià)天然產(chǎn)物免疫調(diào)節(jié)活性最常用的細(xì)胞模型,故本研究采用該模型探究MCPH及B1~B5各組消化產(chǎn)物的免疫調(diào)節(jié)活性,具體為各組消化產(chǎn)物對(duì)小鼠巨噬細(xì)胞RAW 264.7的存活率和TNF-α分泌情況的影響。由圖2可見,500 μg/mL的各組消化產(chǎn)物對(duì)小鼠巨噬細(xì)胞RAW 264.7無(wú)明顯毒性作用。在該濃度下,六組消化產(chǎn)物皆能提高TNF-α的分泌量。相比于MCPH,經(jīng)相同質(zhì)量濃度的B1~B5刺激的RAW 264.7細(xì)胞的TNF-α表達(dá)水平?jīng)]有明顯變化或略有降低,但由于B1~B5各組的消化產(chǎn)物得率比MCPH高10%~30%,即經(jīng)預(yù)酶解后,瑪咖蛋白通過(guò)胃腸消化所產(chǎn)生的具有免疫活性的消化產(chǎn)物更多。因此,預(yù)酶解實(shí)際上增強(qiáng)了瑪咖蛋白的免疫活性,這與Cian等[31]的發(fā)現(xiàn)相同。
圖2 瑪咖蛋白消化產(chǎn)物對(duì)RAW 264.7細(xì)胞的存活率及TNF-α分泌量的影響Fig.2 Effects of maca digestion products on the viability and secretion of TNF-αof cell line RAW 264.7
蛋白質(zhì)消化產(chǎn)物中的主要活性物質(zhì)為小分子肽。一般認(rèn)為,生物活性肽多為含2~10個(gè)氨基酸殘基的短肽。在對(duì)食源免疫調(diào)節(jié)肽的研究中,Ahn等[32]發(fā)現(xiàn)鮭魚副產(chǎn)物中的免疫調(diào)節(jié)肽分子量集中在1 000~ 2 000 u,Ndiaye等[33]發(fā)現(xiàn)黃豌豆種子免疫調(diào)節(jié)肽為小分子肽(1 000 u),而Wu等[34]從小麥胚芽蛋白中獲得的免疫調(diào)節(jié)肽的分子量范圍為300~1 450 u。由表4可知,經(jīng)過(guò)預(yù)酶解處理后,瑪咖蛋白模擬胃腸消化產(chǎn)物中分子量為500~2 000 u的小分子肽含量略有提高,其中B4中分子量處于500~2 000 u范圍的小分子肽占比最大,這可能是B4活性更高的原因。
表4 六組消化產(chǎn)物的分子量分布Table 4 Molecular weight distributions of the six digestion products
由于B4展現(xiàn)出的免疫調(diào)節(jié)活性最高,因此后續(xù)選擇預(yù)酶解消化產(chǎn)物B4進(jìn)行肽段序列測(cè)定及免疫調(diào)節(jié)活性肽的篩選。多項(xiàng)研究表明,免疫調(diào)節(jié)肽為分子量在3 000 u以下的小分子肽[35],故本實(shí)驗(yàn)選擇超濾后分子量小于3 000 u的組分進(jìn)行肽段的測(cè)序,而該超濾組分凍干物的得率為65.10%。經(jīng)鑒定,B4中分子量小于3 000 u的組分中共含有15 154個(gè)肽,其中符合免疫活性肽組成氨基酸數(shù)量一般規(guī)律(2~10個(gè))[20,21]的有2 546個(gè)肽段。將符合條件的肽段導(dǎo)入Peptide Ranker程序評(píng)分,其中分?jǐn)?shù)>0.5(具有生物活性的可能性>50%,一般可被認(rèn)為具有生物活性)的肽段數(shù)量為437,占比為17.17%。另外,實(shí)驗(yàn)室前期從MCPH中經(jīng)超濾小于3 000 u活性組分經(jīng)測(cè)定含有3 345條肽,數(shù)量較B4的少。有研究指出,免疫活性肽激活巨噬細(xì)胞的機(jī)制包括了激活其細(xì)胞膜表面的toll-like受體(TLRs)[31],其中TLR2和TLR4是免疫活性肽最為常見的受體。HPEPDOCK能預(yù)測(cè)蛋白質(zhì)-肽段的相互作用力,并給出結(jié)合模型的評(píng)分,分?jǐn)?shù)的負(fù)值越大,表明該肽段與蛋白質(zhì)受體的親和力越強(qiáng)[23]。因此,肽段最后被導(dǎo)入HPEPDOCK網(wǎng)站分別與模式識(shí)別受體TLR2、TLR4進(jìn)行分子對(duì)接,而評(píng)分在前10名的肽段如表5所示。免疫調(diào)節(jié)肽往往是富含疏水性氨基酸、芳香族氨基酸及帶電荷[20]的小分子肽。由表5可知,10個(gè)最終篩選得到的肽段分子量集中在900~1 300 u,皆帶有電荷,并都富含疏水性氨基酸及芳香族氨基酸,其中,疏水性的芳香族氨基酸(苯丙氨酸及色氨酸)占各肽段氨基酸個(gè)數(shù)的12.50%~33.33%,這可能暗示著10個(gè)肽段具有較強(qiáng)免疫調(diào)節(jié)活性。
表5 十個(gè)篩選肽段的基本信息Table 5 Basic informations of the ten selected peptides
為進(jìn)一步驗(yàn)證這10個(gè)肽段的免疫活性,本研究隨后對(duì)其進(jìn)行了合成,并利用RAW 264.7細(xì)胞探究了其免疫調(diào)節(jié)活性。由圖3結(jié)果可知,在250 μg/mL的濃度下,10條肽段皆對(duì)小鼠巨噬細(xì)胞RAW 264.7無(wú)毒性,且皆能不同程度地促進(jìn)RAW 264.7細(xì)胞分泌TNF-α。其中No.1肽NPYPFFGFSI展現(xiàn)出的免疫調(diào)節(jié)活性最強(qiáng),這與分子對(duì)接評(píng)分的結(jié)果一致,但其他肽段活性的高低與分子對(duì)接的結(jié)果之間存在一定的差異;很多其他研究[36,37]也發(fā)現(xiàn)分子對(duì)接的結(jié)果與活性肽實(shí)際驗(yàn)證的結(jié)果并不完全一致。事實(shí)上,分子對(duì)接是利用計(jì)算機(jī)進(jìn)行的一種理想化實(shí)驗(yàn),化合物的活性在實(shí)際環(huán)境中還會(huì)受溶解度、溶液中離子強(qiáng)度和pH值等多種因素的影響,因此會(huì)與實(shí)際結(jié)果有一定的出入。
圖3 瑪咖肽對(duì)RAW 264.7細(xì)胞的存活率及TNF-α分泌量的影響Fig.3 Effects of maca peptides on the viability and secretion of TNF-α of cell line RAW 264.7
2.4.1 瑪咖免疫調(diào)節(jié)肽與受體的相互作用模式
在分子相互作用的研究中,如AutoDock的分子模擬軟件常備用于模擬、分析配體-蛋白的結(jié)合情況。由于篩選打分結(jié)果僅反映肽段與受體結(jié)合程度的相對(duì)排名情況,并未體現(xiàn)活性肽與受體的相互作用模式,故通過(guò)AutoDock探究No.1肽NPYPFFGFSI與TLR2和TLR4的相互作用模式。由表6可知,No.1肽NPYPFFGFS與TLR2、TLR4的結(jié)合親和力皆小于 -5.0 kcal/mol,說(shuō)明其能與兩個(gè)受體發(fā)生相互作用[8];本實(shí)驗(yàn)室前期發(fā)現(xiàn)瑪咖胃腸消化產(chǎn)物中活性最強(qiáng)的肽段為RNPFLP,而No.1肽與TLR2的親和結(jié)合力強(qiáng)于RNPFLP的-6.9 kcal/mol,與TLR4的親和結(jié)合力則不及RNPFLP的-10.7 kcal/mol[8]。由圖4可知,No.1肽與TLR2、TLR4之間的作用力主要為氫鍵及疏水作用力:與TLR2之間共存在3個(gè)氫鍵和22個(gè)疏水位點(diǎn),與TLR4之間共存在8個(gè)氫鍵與12個(gè)疏水位點(diǎn)。另外,No.1肽與TLR2的結(jié)合親和力更高,則其傾向于通過(guò)激活TLR2來(lái)刺激RAW 264.7細(xì)胞分泌更多的TNF-α。
表6 No.1肽與TLR2、TLR4的結(jié)合親和力Table 6 Binding affinities between peptide No.1 and TLR2, TLR4
圖4 No.1肽與TLR2(a,c)、TLR4(b,d)的相互作用模式Fig.4 Interaction patterns between peptide No.1 and TLR2 (a, c)/TLR4 (b, d)
2.4.2 瑪咖免疫調(diào)節(jié)肽的活性位點(diǎn)判斷
根據(jù)前線軌道理論,分子的反應(yīng)活性隨HOMO(最高占據(jù)分子軌道)能量的升高而增強(qiáng),即位于HOMO的基團(tuán)更有可能發(fā)生親核反應(yīng),活性更高[38]。No.1肽NPYPFFGFSI中對(duì)HOMO貢獻(xiàn)最大的原子是C28(表7),貢獻(xiàn)比例為19.314%,則No.1肽的活性位點(diǎn)最有可能位于C28,HOMO主要分布在酪氨酸上(圖5),酪氨酸與TLR2之間存在疏水作用,與TLR4之間形成了氫鍵(圖4);另外,酪氨酸也被認(rèn)為與肽的抗氧化[39]、抗癌[20]活性有關(guān)。No.1肽的HOMO都主要分布在芳香族氨基酸上,與免疫調(diào)節(jié)肽一般都含有芳香族氨基酸的規(guī)律[20,21]相符。另外,No.1肽的可能活性位點(diǎn)還包括O22-H105、C25、C24-H107和C26-H108。
表7 No.1肽中各原子對(duì)HOMO的貢獻(xiàn)比例Table 7 Contribution rates of atoms of peptide No.1
圖5 No.1肽的HOMO軌道分布圖(a)及分子結(jié)構(gòu)式(b)Fig.5 HOMO distribution (a) and molecular formula (b) of peptide No.1
本研究發(fā)現(xiàn)預(yù)酶解的加工處理方式能有效增強(qiáng)瑪咖蛋白的可消化性,以及提高瑪咖蛋白經(jīng)胃腸消化后產(chǎn)生的活性肽和游離氨基酸的含量。其中,經(jīng)菠蘿蛋白酶預(yù)酶解處理得到的消化產(chǎn)物的免疫調(diào)節(jié)活性最強(qiáng);該消化產(chǎn)物中活性最強(qiáng)的肽段為NPYPFFGFSI,而該肽段的免疫調(diào)節(jié)活性與所含的酪氨酸密切相關(guān)。本研究的結(jié)果表明預(yù)酶解的處理方式能夠改善瑪咖蛋白的可食用性,提高其營(yíng)養(yǎng)學(xué)價(jià)值。