蔣斐斐,孫麗芃,李亞楠

安徽省亳州市人民醫(yī)院兒科,安徽亳州 236800

新生兒感染性肺炎是指新生兒在宮內(nèi)、分娩過程中或出生后吸入胎糞、羊水、胃內(nèi)容物等，或是娩出后感染細菌、病毒等病原體，導致的肺部炎癥病理改變[1]。臨床上，根據(jù)新生兒感染性肺炎病因可分為吸入性肺炎與感染性肺炎兩種[1]，且不同類型肺炎發(fā)病機制、臨床表現(xiàn)差異不明顯，導致臨床診療難度較大。臨床上以新生兒感染性肺炎更為常見[2-3]，故本研究選擇新生兒感染性肺炎進行研究。病原學檢查是新生兒感染性肺炎常用的診斷“金標準”，能指導臨床治療，但是該診斷方法所需時間長[4-5]。微小RNA(miRNA)是一類高度保守的非編碼核苷酸，與機體免疫功能存在明顯的差異性。外周血miR-223在肺炎患兒中呈高表達，能作為肺炎早期診斷指標之一，用于評估患兒病情嚴重程度[6]。Toll樣受體2(TLR2)是Toll家族成員之一，在人體中具有廣泛的作用，可識別不同類型病原微生物抗原成分，但是該指標在新生兒感染性肺炎中的應用研究較少[7]。因此，本研究將新生兒感染性肺炎患兒納入研究，旨在探討miR-223、TLR2在新生兒感染性肺炎中的表達情況及對臨床診斷的價值，現(xiàn)報道如下。

1 資料與方法

1.1一般資料 將2018年5月至2021年3月本院收治的67例新生兒感染性肺炎患兒作為觀察組，男34例、女33例，日齡0～32 d，平均(13.58±4.51)d，孕周38～42周、平均(40.13±1.75)周，母親分娩次數(shù)1～3次、平均(1.65±0.51)次，分娩方式：順產(chǎn)39例、剖宮產(chǎn)28例。另外，將本院同期健康新生兒51例作為對照組，男32例、女19例，日齡4～33 d、平均(13.62±4.56)d，孕周37～42周、平均(40.06±1.71)周，分娩方式：順產(chǎn)40例、剖宮產(chǎn)11例。本研究獲得本院倫理委員會批準。受試者家屬均簽署知情同意書。兩組一般資料比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。納入標準：(1)觀察組患兒符合新生兒感染性肺炎診斷標準[8]，經(jīng)血常規(guī)、臨床表現(xiàn)、影像學檢查確診；(2)均能配合完成miR-223、TLR2檢查；(3)單胎。排除標準：(1)有先天畸形、一般情況較差或器質(zhì)性疾病；(2)伴有其他感染性疾病及嚴重肝、腎功能異常；(3)研究期間死亡或轉(zhuǎn)上一級醫(yī)院；(4)有藥物過敏史、禁忌證。

1.2儀器與試劑 FSCS Vantage流式細胞儀購自美國BD公司；PCR擴增儀購自Biometra公司；MX3000PTM熒光定量PCR儀購自Stratagene公司；白細胞介素-6(IL-6)酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)檢測試劑盒購自南京博湃生物技術有限公司；反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自美國Sigma公司。酶免檢測儀購自美國Beckman公司；VIDAs全自動熒光免疫分析儀購自法國梅里埃公司；RNA提取Trizol試劑購自美國Sigma公司；TLR2相關抗體購自美國Abcam公司；降鈣素原(PCT)檢測試劑盒均購自法國梅里埃公司。

1.3方法

1.3.1標本采集及保存 根據(jù)患兒病原學檢查結(jié)果和病情，對其進行相應的治療，分別于治療前、后抽取靜脈血3 mL。對照組采集臍帶血3 mL，以2 000 r/min離心10 min，分離得到血清，于-80 ℃冰箱內(nèi)保存，待測。

1.3.2miR-223檢測 采用實時熒光定量PCR法測定miR-223水平，利用Trizol法提取血液標本的總RNA，利用酶標儀測定其濃度。將總RNA按反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書逆轉(zhuǎn)為cDNA。反轉(zhuǎn)錄條件：30 ℃ 20 min，35 ℃ 30 min，75 ℃ 10 min。實時熒光定量PCR反應體系：cDNA模板8 μL、SYBRP Green 10 μL、PCR Primer mix 2 μL；反應條件：95 ℃預變性10 min，95 ℃變性15 s、60 ℃退火30 s、72 ℃延伸30 s，連續(xù)完成40個循環(huán)。以β-actin作為內(nèi)參，采用2-ΔΔCt法計算血液標本中miR-223的相對表達水平。引物設計見表1。

表1 引物設計

1.3.3治療方案 觀察組均給予常規(guī)對癥支持治療，具體方法如下:給予抗感染、平喘及退熱等治療，7 d治療后評估效果[9-10]。觀察組治療后記錄為觀察組-T。

1.3.4指標的測定 采用流式細胞儀測定TLR2的表達水平(檢測抗體購自美國Abcam公司)，取血液標本100 μL于流式細胞管，加入FITC-抗TLR2抗體10 μL，快速震蕩混勻，室溫下避光孵育15 min。將流式細胞管以2 000 r/min離心5 min后棄上清，用流式細胞儀進行檢測。采用ELISA測定IL-6水平；采用全自動熒光免疫分析儀測定降鈣素原(PCT)水平[11]。

2 結(jié) 果

2.1血清miR-223、TLR2、IL-6及PCT水平比較 治療前觀察組的miR-223、TLR2、IL-6及PCT水平均高于對照組(P<0.05)；觀察組治療7 d后miR-223、TLR2、IL-6及PCT水平均低于治療前(P<0.05)，與對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表2。

表2 血清miR-223、TLR2、IL-6、PCT水平的比較

2.2檢測指標間的相關性分析 Pearson相關分析顯示：血清miR-223與TLR2、IL-6、PCT水平均呈正相關(r=0.492、0.489、0.503，P<0.05)，TLR2與IL-6、PCT水平亦呈正相關(r=0.465、0.542，P<0.05)。

2.3miR-223、TLR2對新生兒感染性肺炎的診斷價值 ROC曲線分析顯示：用于新生兒感染性肺炎的診斷，miR-223的最佳截斷值為9.12，曲線下面積(AUC)為0.715，TLR2的最佳截斷值為2.11，AUC為0.753。miR-223、TLR2聯(lián)合診斷新生兒感染性肺炎的AUC為0.894，明顯高于miR-223、TLR2單項診斷的AUC(P<0.05)。見表3、圖1。

表3 miR-223、TLR2單項及聯(lián)合檢測對新生兒感染性肺炎的診斷價值分析

圖1 miR-223、TLR2單項及聯(lián)合檢測用于新生兒感染性肺炎的診斷的ROC曲線

3 討 論

新生兒感染性肺炎是兒科常見病、多發(fā)病，由于多數(shù)患兒發(fā)病早期臨床癥狀缺乏典型性，導致患兒診療難度較大[12]。同時，新生兒特殊的生理與免疫狀態(tài)，導致新生兒感染性肺炎發(fā)生率較高，隨著病程延長，將會增加窒息、呼吸衰竭的發(fā)生率。目前新生兒感染性肺炎診療難度大，本研究旨在探討新生兒感染性肺炎新的診斷標志物。

miR-223屬于miRNA的一種[13]。miR-223在人體中具有廣泛的生物學作用，如參與免疫細胞譜系的發(fā)生、分化調(diào)控，維持免疫穩(wěn)態(tài)等[14]。miR-223在膿毒癥患兒和小兒肺炎支原體感染患者中均呈高表達[15-16]，而且與T淋巴細胞亞群、炎癥因子密切相關[17]。由此可見，miR-223異常表達可能與新生兒感染性肺炎存在緊密聯(lián)系[18]。本研究顯示:觀察組miR-223、IL-6及PCT水平均高于對照組(P<0.05)，miR-223在新生兒感染性肺炎患者中高表達。

TLR2是新發(fā)現(xiàn)的先天性免疫的病原模式識別受體，可介導跨膜信號，激活機體免疫反應。Toll受體與相應的配體結(jié)合后，能激活機體炎性反應，并產(chǎn)生瀑布聯(lián)級反應，可清除機體內(nèi)的病原體[19]。重癥肺炎患者外周血TLR2、TLR4表達水平升高，與炎癥反應緊密相關[20]。本研究結(jié)果顯示：觀察組TLR2、IL-6及PCT水平高于對照組(P<0.05)，說明TLR2在新生兒感染性肺炎患者中高表達。

目前臨床上對于新生兒感染性肺炎以對癥支持治療為主。本研究對新生兒感染性肺炎患兒均給予對癥支持治療。觀察組治療7 d后miR-223、TLR2、IL-6及PCT水平均低于治療前(P<0.05)，觀察組治療后miR-223、TLR2及IL-6、PCT述評均明顯降低(P<0.05)，而且觀察組治療后miR-223、TLR2、IL-6及PCT水平與對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。miR-223、TLR2在新生兒感染性肺炎治療后水平降低，能較好反映患兒肺炎治療的效果。本研究進一步分析了miR-223、TLR2在新生兒感染性肺炎診斷中的價值。miR-223、TLR2聯(lián)合檢測用于診斷的靈敏度與特異度均高于miR-223、TLR2單項檢測。血清miR-223與TLR2、IL-6及PCT水平呈正相關，并且TLR2與IL-6及PCT水平也呈正相關。提示血清miR-223和TLR2與IL-6及PCT一樣具有早期診斷新生兒感染性肺炎的能力。因此，臨床上對于疑似新生兒感染性肺炎者，應加強miR-223、TLR2水平測定，從而輔助診斷。

綜上所述，miR-223、TLR2在新生兒感染性肺炎中呈高表達，而且二者聯(lián)合測定具有較高的靈敏度與特異度，能為新生兒感染性肺炎的診療提供參考依據(jù)。但是，本研究中亦存在諸多局限性與不足，研究中納入病例數(shù)較少，需進一步加大樣本量進行研究。