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智能刺激響應(yīng)型基因編輯工具遞送系統(tǒng)研究進(jìn)展

2022-12-23 03:15:46郭家晶平淵
藥學(xué)進(jìn)展 2022年11期
關(guān)鍵詞:基因組質(zhì)粒靶向

郭家晶,平淵

(浙江大學(xué)藥學(xué)院,浙江 杭州 310058)

1 引言

在過去的幾年中,由于成簇的規(guī)律間隔的短回文重復(fù)序列(clustered regularly interspaced short palindromic repeats,CRISPR)-CRISPR相關(guān)蛋白9(Cas9,也稱Cas9核酸酶)技術(shù)的普及,全球基因編輯研究呈現(xiàn)井噴式的發(fā)展[1]。2020年CRISPRCas9技術(shù)被授予諾貝爾化學(xué)獎,凸顯了該技術(shù)在基因治療方面的非凡潛力[2]。這一新興的基因工程技術(shù)從基礎(chǔ)生物學(xué)到生物醫(yī)學(xué)工程、食品科學(xué)和醫(yī)療保健等諸多領(lǐng)域都展現(xiàn)出了巨大的應(yīng)用前景[3-5]。由于CRISPR-Cas9技術(shù)在國內(nèi)外獲得了廣泛的認(rèn)可和關(guān)注,基于CRISPR-Cas9技術(shù)的基因組編輯相關(guān)產(chǎn)品在全球市場中也獲得了爆炸性的增長[6]。

CRISPR-Cas9基因組編輯技術(shù)依賴于Cas9定向切割,引發(fā)DNA雙鏈斷裂(double-strand break,DSB),需要預(yù)先設(shè)計的單鏈引導(dǎo)RNA(single guide RNA,sgRNA)分別與Cas9和需要切割的DNA結(jié)合形成三元復(fù)合物,引導(dǎo)Cas9到特定的基因位點產(chǎn)生切割[7-8]。DNA發(fā)生雙鏈斷裂后,細(xì)胞內(nèi)存在的2種內(nèi)源性DNA修復(fù)途徑,會對斷裂位點進(jìn)行非同源末端連接(NHEJ)或同源定向修復(fù)(HDR,需要模板DNA),從而實現(xiàn)特定基因的敲除或者敲入[9-10]。與前兩代基因編輯工具鋅指蛋白核酸酶(ZFN)和轉(zhuǎn)錄激活因子樣效應(yīng)物核酸酶(TALEN)相比,基于CRISPR-Cas9的基因編輯工具有明顯的優(yōu)勢[11-12](見圖1):首先,在CRISPR-Cas9系統(tǒng)中,Cas9是固定的,只需要針對特定的目標(biāo)基因設(shè)計sgRNA即可,sgRNA長度只有約100個堿基對,很容易定制設(shè)計,而使用ZFN或TALEN工具需要設(shè)計和合成一個龐大的引導(dǎo)蛋白[13-14](鋅指蛋白DNA結(jié)合域或轉(zhuǎn)錄激活子樣效應(yīng)子),更為復(fù)雜;其次,與前面2種方法相比,CRISPR-Cas9技術(shù)在基因組編輯方面具有更高的精度和效率[15];最后,CRISPR-Cas9系統(tǒng)可以同時編輯多個基因位點,這是前面兩代基因編輯技術(shù)無法實現(xiàn)的[16]。

圖1 基因組編輯和雙鏈斷裂修復(fù)示意圖[11]Figure 1 Schematic diagram of genome editing and double-strand break repair

遞送CRISPR-Cas9基因編輯工具可以通過3種形式實現(xiàn),包括同時編碼Cas9蛋白和sgRNA的質(zhì)粒(Cas9/sgRNA-質(zhì)粒)、編碼Cas9蛋白和sgRNA的mRNA(Cas9/sgRNA-mRNA)或核糖核蛋白[17-19](RNP,Cas9蛋白和sgRNA的復(fù)合物)。3種CRISPR-Cas9工具遞送形式具有各自的特點[20],質(zhì)粒的穩(wěn)定性較好,可以實現(xiàn)較長時間的編輯,但也伴隨著起效慢、編輯效率低、脫靶率高并且有基因組整合風(fēng)險等缺陷;mRNA避免了DNA插入的風(fēng)險,但由于其不穩(wěn)定、容易被降解,也可能降低整體的編輯效率;RNP具有穩(wěn)定性較高、作用快速、脫靶率低、免疫原性低,同時沒有基因插入突變的風(fēng)險等優(yōu)勢,但也存在成本較高、基因編輯作用時間較短的問題[21-23]。

DNA、mRNA和RNP均帶有較高的電荷和較大的體積,導(dǎo)致它們很難穿過細(xì)胞膜進(jìn)入細(xì)胞中[24]。因此,發(fā)展新的胞內(nèi)遞送CRISPR-Cas9工具的策略一直是拓展基因編輯應(yīng)用領(lǐng)域的核心問題[25]。目前,病毒和非病毒載體都被用于CRISPR-Cas9工具的遞送[26-27]。病毒載體,如腺相關(guān)病毒(adeno-associated virus,AAV)和慢病毒(lentivirus,LV)等,是用于高效胞內(nèi)遞送基因編輯工具的常用載體,但由于裝載能力的限制、免疫原性以及誘導(dǎo)突變的風(fēng)險,使得它們的應(yīng)用受到限制[28-29]。此外,病毒遞送會導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)長時間的編輯作用,這可能引起較嚴(yán)重的脫靶效應(yīng)[30](見表1)。

表1 用于遞送CRISPR-Cas9工具的病毒載體Table 1 The viral vectors for delivery of CRISPR-Cas9 tools

非病毒載體與CRISPR-Cas9系統(tǒng)形成的納米粒子(NP)用于基因編輯工具的遞送有望解決上述問題。多種非病毒載體如脂質(zhì)、聚合物、硅基材料,以及金納米粒子等已被報道用于CRISPR-Cas9的胞內(nèi)遞送[22]。然而,非病毒載體用于CRISPR-Cas9系統(tǒng)的遞送仍然存在2個關(guān)鍵的問題。首先,與病毒載體相比,非病毒載體的遞送效率仍然較低,主要原因在于非病毒載體用于CRISPR-Cas9的遞送需要克服多種屏障[31-32](包括細(xì)胞外和細(xì)胞內(nèi)屏障)。具體來說,細(xì)胞外的障礙包括納米粒子與血清蛋白的非必要相互作用、免疫細(xì)胞的吞噬作用、血管表皮細(xì)胞的質(zhì)密連接導(dǎo)致納米粒子難以滲透以及靶向等;細(xì)胞內(nèi)屏障包括納米粒子容易在內(nèi)涵體/溶酶體中降解,進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)后難以將CRISPR-Cas9工具釋放,釋放后的工具還需要進(jìn)入細(xì)胞核才能發(fā)揮作用。其次,靶向遞送CRISPR-Cas9系統(tǒng)、實現(xiàn)精準(zhǔn)基因組編輯仍然是一個大問題[33]。

因此,為了應(yīng)對上述提到的挑戰(zhàn),實現(xiàn)高效且精確的基因組編輯,研究人員開發(fā)了多種刺激響應(yīng)型載體系統(tǒng)用于CRISPR-Cas9工具的胞內(nèi)遞送,這些新一代載體也代表著CRISPR-Cas9遞送領(lǐng)域的未來發(fā)展方向[32]。刺激響應(yīng)型納米遞送系統(tǒng)能從時間和空間上對特殊的反應(yīng)發(fā)生感知和應(yīng)對,從而觸發(fā)釋放出CRISPR-Cas9工具并產(chǎn)生相應(yīng)的作用。這些觸發(fā)開關(guān)有多種,比如內(nèi)源性的生物因素(pH值、酶、氧化還原因子水平等),或者外源性的因素(聲、光、電、小分子、磁場等)[34]。在本文中,筆者對刺激響應(yīng)性材料用于CRISPR-Cas9工具的胞內(nèi)遞送的研究進(jìn)展進(jìn)行綜述。這些特殊材料與CRISPR-Cas9工具形成穩(wěn)定的納米復(fù)合物后,能在時間和空間上實現(xiàn)CRISPR-Cas9工具的控制釋放。此外,重點介紹了這些載體的設(shè)計原理和可能的生物應(yīng)用方向。

2 內(nèi)源性刺激響應(yīng)載體

隨著生物科學(xué)、材料科學(xué)、生物醫(yī)學(xué)工程等學(xué)科的快速發(fā)展,內(nèi)源性刺激響應(yīng)型智能藥物遞送系統(tǒng)被研發(fā)問世,深刻地影響了醫(yī)療技術(shù)的發(fā)展,極大地提高了現(xiàn)有藥物的臨床表現(xiàn)和治療潛力[35]。這些研究成果也能應(yīng)用于CRISPR-Cas9工具的體內(nèi)外遞送。智能響應(yīng)型藥物遞送的概念起源于20世紀(jì)70年代,當(dāng)時有人利用熱響應(yīng)的脂質(zhì)體實現(xiàn)了藥物的控制釋放[36]。從那時起,大量的工作開始聚焦于智能遞送材料的設(shè)計與研究,這些材料可以通過感知特殊生物化學(xué)因素的變化從而實現(xiàn)藥物時空釋放,應(yīng)用于臨床患者[37]。內(nèi)源性因素包括pH值、酶、氧化還原水平的變化等,同時多種疾?。ㄈ鐞盒阅[瘤、自身免疫疾病、神經(jīng)退行性疾病、心腦血管疾病和感染等)的病理過程也伴隨著相應(yīng)生理因素的變化[34]。智能藥物遞送材料與CRISPR-Cas9工具(質(zhì)粒、mRNA和RNP)形成穩(wěn)定的納米復(fù)合物后,通過感知這些內(nèi)源性生理因素的變化,實現(xiàn)CRISPRCas9工具的控制釋放,發(fā)揮基因組編輯作用[22]。

2.1 pH響應(yīng)的CRISPR-Cas9遞送系統(tǒng)

生物體內(nèi)某些特殊的器官具有不同的pH值,比如胃中pH值1.5 ~ 3.5、小腸中pH值5.5 ~ 6.8、結(jié)腸中pH值6.4 ~ 7.0;細(xì)胞內(nèi)的細(xì)胞器,如內(nèi)涵體/溶酶體中pH值4.0 ~ 6.5;此外,一些疾病微環(huán)境(如腫瘤或者炎癥部位)中,與正常組織相比,pH值也會發(fā)生變化。這一特點已被廣泛用于設(shè)計智能刺激響應(yīng)型藥物遞送系統(tǒng)[38]。CRISPR-Cas9遞送的一個關(guān)鍵障礙就是細(xì)胞內(nèi)涵體/溶酶體系統(tǒng),里面較低pH值和大量酶會迅速使CRISPR-Cas9工具降解失活[39]。因此,考慮到內(nèi)涵體/溶酶體系統(tǒng)中較強(qiáng)的酸性環(huán)境,一些研究者在將pH響應(yīng)納米復(fù)合物用于CRISPR-Cas9工具的遞送時,通過載體材料的質(zhì)子化來打破溶酶體膜,實現(xiàn)內(nèi)涵體逃逸,從而發(fā)揮作用。2019年,Liu等[40]開發(fā)了一種苯硼酸(phenylboronic acid,PBA)修飾的樹形高分子材料P4。一方面,PBA上的芳香環(huán)可以通過陽離子-π相互作用與蛋白質(zhì)表面的陽離子和陰離子基團(tuán)相結(jié)合;另一方面,蛋白質(zhì)上的陰離子羧酸酯基團(tuán)可以通過離子相互作用與帶正電荷的P4有效結(jié)合。因此,P4能與多種蛋白質(zhì)(包括RNP)結(jié)合形成穩(wěn)定的納米粒子(見圖2)。同時,由于P4上面還有大量的氨基基團(tuán),可以結(jié)合質(zhì)子,具有很強(qiáng)的pH緩沖作用。納米粒子被細(xì)胞攝取后,能快速地質(zhì)子化,打破溶酶體膜,實現(xiàn)內(nèi)涵體逃逸進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)中。細(xì)胞實驗結(jié)果表明,P4遞送RNP可以高效敲除AAVS1和HBB基因,效率最高分別能達(dá)到29.6%和22.5%。

圖2 P4與蛋白質(zhì)相互作用形成納米粒子的示意圖[40]Figure 2 Schematic diagram of P4 interacting with proteins to form nanoparticles

Chen等[41]設(shè)計合成了不同長徑比(長度與直徑的比值)的金納米棒(gold nanorod),通過在金納米棒表面包裹一層支鏈的聚乙烯亞胺(PEI)形成新的陽離子金納米棒(AuNR-PEI,ARP,見圖3),其能絡(luò)合Cas9質(zhì)粒形成穩(wěn)定的納米粒子,同時具有優(yōu)良的細(xì)胞內(nèi)化能力和內(nèi)涵體逃逸能力。該課題組合成了一系列不同長徑比(1 ~ 9)的ARP,篩選后發(fā)現(xiàn)其長徑比為8時(對應(yīng)的ARP即ARP-8)具有最好的基因遞送效率。細(xì)胞實驗表明,以ARP-8負(fù)載Cas9質(zhì)粒,對AAVS1和PLK1這2種不同基因都有較好的敲除效率。隨后,課題組用半乳糖(Gal)修飾ARP-8得到了具有肝臟靶向能力的Gal-ARP,通過遞送CRISPR/Cas9的質(zhì)粒靶向敲除肝細(xì)胞的腫瘤壞死因子基因Fas,成功保護(hù)了急性肝損傷小鼠,體內(nèi)對小鼠肝細(xì)胞的Fas基因敲除效率能達(dá)到7.6%。Lee等[42]制備了一種基于金納米粒子的載體,用來遞送Cas9 RNP和模板DNA(該遞送系統(tǒng)命名為CRISPR-Gold)。通過硫醇可以將模板DNA附著在金納米粒子上面,同時用pH響應(yīng)性的聚合物——聚(N-(N-(2-氨基乙基))-2-氨基乙基)天冬酰胺[PAsp(DET)],通過雜交或靜電相互作用將Cas9 RNP和金納米粒子包裹起來,此外,聚合物中的二乙烯三胺(DET)功能基團(tuán)也使得納米粒子具有較好的內(nèi)涵體逃逸性能。納米粒子被細(xì)胞攝取后,PAsp(DET)聚合物通過質(zhì)子海綿效應(yīng)破壞內(nèi)涵體,進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)。在杜氏肌營養(yǎng)不良(DMD)模型小鼠(mdx小鼠)中進(jìn)行的體內(nèi)實驗結(jié)果表明,CRISPR-Gold能誘導(dǎo)肌萎縮蛋白(dystrophin)基因的同源定向修復(fù)(HDR),治療組mdx小鼠的肌萎縮蛋白基因定向修復(fù)率達(dá)5.4%。

圖3 陽離子金納米棒用于Cas9質(zhì)粒遞送的示意圖[41]Figure 3 Schematic diagram of cationic gold nanorods for Cas9 plasmid delivery

2.2 氧化還原反應(yīng)響應(yīng)的CRISPR-Cas9遞送系統(tǒng)

眾所周知,細(xì)胞內(nèi)外的氧化還原環(huán)境是不一樣的。例如,還原劑谷胱甘肽(GSH)在細(xì)胞內(nèi)的水平比在細(xì)胞外高2 ~ 3個數(shù)量級[38],因此,將GSH可斷裂的二硫或二硒鍵整合到遞送載體中可以實現(xiàn)特定位點的CRISPR-Cas9胞內(nèi)遞送[43]。另外,能對細(xì)胞內(nèi)活性氧[ROS,如過氧化氫(H2O2)和羥基自由基]響應(yīng)的載體也可用于CRISPR-Cas9的遞送。體內(nèi)多種病理條件下都能產(chǎn)生活性氧,包括癌癥、卒中、動脈粥樣硬化和組織損傷等[44]。

Chen等[45]研制了一種可被GSH降解的聚合物納米膠囊,用于遞送RNP。RNP納米膠囊是由陽離子單體和陰離子單體混合在RNP表面并通過原位聚合交聯(lián)而成,中間由一種含二硫鍵的N,N'-雙(丙烯酰)胱胺作為交聯(lián)劑,使得膠囊被細(xì)胞攝取后可以被GSH降解,導(dǎo)致交聯(lián)聚合物分解,從而釋放RNP用于基因組編輯。該膠囊RNP制劑具有良好的生物相容性和穩(wěn)定性。在多種體外(293T細(xì)胞和干細(xì)胞)實驗和體內(nèi)[Ai14小鼠的視網(wǎng)膜色素上皮(RPE)組織和骨骼肌]實驗中,都具有良好的基因組編輯效果。2021年,Guo等[46]設(shè)計了一種含雙硫主鏈的陽離子聚合物材料DET-CPD,該材料由含DET功能基團(tuán)的單體M1和精氨酸甲酯的單體M2通過巰基引發(fā)的開環(huán)聚合反應(yīng)聚合而成,獲得了一系列的聚雙硫陽離子載體(見圖4)。課題組通過篩選獲得了效果最好的材料DET-CPD-12,其能通過分子間的氫鍵、靜電相互作用等弱的相互作用力與3種CRISPR-Cas9基因編輯工具(Cas9/sgRNA-質(zhì) 粒、Cas9/sgRNA-mRNA和RNP)形 成穩(wěn)定的納米粒子。不僅如此,DET-CPD-12能與細(xì)胞外膜上的巰基發(fā)生一種獨特的“硫硫交換”反應(yīng)(disulfide-exchange reaction),能繞開細(xì)胞內(nèi)吞途徑直接進(jìn)入胞內(nèi),同時在胞內(nèi)高濃度的GSH作用下DET-CPD-12雙硫主鏈被迅速降解,將包載的基因編輯工具釋放出來發(fā)揮作用,因此,DET-CPD-12能高效地將基因編輯工具遞送到細(xì)胞內(nèi),同時大大降低了材料的毒性。細(xì)胞實驗表明,在293T細(xì)胞內(nèi),DET-CPD-12分別將3種基因編輯工具遞送到胞內(nèi)后,對CCNE1基因均具有較好的敲除效率,最高能達(dá)到39.2%。體內(nèi)實驗表明,DET-CPD-12與CRISPR-Cas9基因編輯工具形成的納米復(fù)合物能被動靶向遞送到小鼠肝臟部位、被肝細(xì)胞吸收,通過敲除CCNE1基因有效發(fā)揮對急性肝損傷小鼠的肝臟保護(hù)作用,顯著延長了小鼠的生存期。

圖4 DET-CPD-12用于3種基因編輯工具胞內(nèi)遞送的示意圖[46]Figure 4 Schematic diagram of DET-CPD-12 for intracellular delivery of three kinds of gene-editing tools

2021年,Yan等[47]報道了一種用于靶向炎癥部位的CRISPR-Cas9基因編輯前藥遞送系統(tǒng)(NanoProCas9,見圖5)。課題組先構(gòu)建了一種編碼不穩(wěn)定Cas9(destabilized Cas9,dsCas9)蛋白的質(zhì)粒,dsCas9上面帶有一個二氫葉酸還原酶(DHFR)的結(jié)構(gòu)域。然后用陽離子聚(β-氨基酯)聚合物(PBAE)絡(luò)合dsCas9質(zhì)粒形成穩(wěn)定納米復(fù)合物。接著,用巨噬細(xì)胞膜包被于PBAE/質(zhì)粒復(fù)合物表面,使得納米粒子具有靶向炎癥部位的能力。最后,課題組將dsCas9的小分子穩(wěn)定劑甲氧芐啶(TMP)通過硫代酮連接劑(TK)與油基醚改性聚乙二醇(OE-PEG,BAM)結(jié)合,得到ROS響應(yīng)的BAM-TK-TMP,BAM-TK-TMP上面疏水的尾部可以通過脂融合插入到巨噬細(xì)胞膜上面。在正常生理環(huán)境下,上述質(zhì)粒所表達(dá)的結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定的dsCas9被泛素依賴的蛋白酶所降解;而在炎癥部位等ROS豐富的內(nèi)環(huán)境中,BAM-TK-TMP被激活并釋放能夠穩(wěn)定dsCas9的TMP小分子。在右旋糖酐硫酸鈉誘導(dǎo)的結(jié)腸炎小鼠模型中,ROS依賴的NanoProCas9系統(tǒng)實現(xiàn)了高效的體內(nèi)遞送和CRISPR-Cas9的靶向激活,通過響應(yīng)高水平的ROS,起到基因組編輯作用,從而發(fā)揮對急性結(jié)腸炎小鼠的治療效果。

圖5 NanoProCas9靶向遞送至炎癥部位的示意圖[47]Figure 5 Schematic diagram of targeted delivery of NanoProCas9 to the site of inflammation

2.3 組織特異性響應(yīng)的CRISPR-Cas9遞送系統(tǒng)

一般來說,靶向給藥是基于細(xì)胞特異性受體和配體識別,觸發(fā)靶細(xì)胞內(nèi)吞作用。組織特異性CRISPR-Cas9遞送對于基因編輯工具的遞送非常重要,目的是對靶點組織或細(xì)胞產(chǎn)生編輯作用,減少身體其他部位不需要的基因編輯,減少脫靶。通過設(shè)計具有組織特異性啟動子的Cas9-質(zhì)粒或Cas9-mRNA,只有當(dāng)基因編輯工具被遞送到對應(yīng)的組織才可以啟動Cas9的表達(dá)從而發(fā)揮作用;也可以針對特定的靶組織或細(xì)胞設(shè)計對應(yīng)的配體,用于CRISPRCas9的靶向遞送,以減少非靶細(xì)胞的攝取[48]。Cheng等[49]開發(fā)了一種選擇性器官靶向性(SORT)脂質(zhì)納米顆粒(LNP)遞送系統(tǒng),用于Cas9-mRNA和RNP的靶向遞送。通過改變和調(diào)控組成納米粒子的小分子組分的物質(zhì)的量比例和內(nèi)部電荷分布,然后加入第5組分SORT分子,就能改變納米粒子在體內(nèi)不同組織和器官中的分布。利用此項技術(shù),研究團(tuán)隊已經(jīng)分別實現(xiàn)了CRISPR-Cas9工具對小鼠肺、肝、腎等器官的靶向遞送。體內(nèi)實驗結(jié)果顯示,該課題組研制的肝臟靶向SORT-LNP可共遞送Cas9 mRNA和sgPCSK9,使高膽固醇血癥模型小鼠血清中PCSK9蛋白含量降低了90%。

2022年,Xu等[50]報道了可靶向肝臟炎癥病灶部位的雙重納米編輯系統(tǒng)。首先,課題組構(gòu)建了含有肝臟特異性啟動子(P3)Cas編輯器(Cas9或者CasRx)的質(zhì)粒,其中P3啟動子是一種合成的肝臟特異性啟動子,僅在肝實質(zhì)細(xì)胞中具有活性,可啟動下游質(zhì)粒編輯元件的表達(dá)。他們用可以被動靶向到肝臟的聚雙硫陽離子高分子材料(PD)包裹上述質(zhì)粒,通過弱的相互作用壓縮質(zhì)粒,形成穩(wěn)定的納米復(fù)合物(PD/P)。最后,在PD/P納米粒子的表面包覆一層仿生巨噬細(xì)胞膜,組成了仿生納米粒子,從而將質(zhì)粒遞送到肝臟炎癥病灶部位(見圖6)。小鼠通過全身給藥后,巨噬細(xì)胞膜可以將多聚納米粒子靶向遞送到肝臟炎癥病灶,在那里,含有肝特異啟動子的質(zhì)粒啟動基因編輯器(Cas9或CasRx)的表達(dá),實現(xiàn)肝臟特異性的基因編輯,干擾靶點基因的表達(dá)或下調(diào)與肝臟疾病進(jìn)展相關(guān)基因的mRNA表達(dá)。盡管有小部分Cas編輯器會分布到非靶點組織或者器官中,但由于P3啟動子控制的基因編輯器只在肝臟表達(dá),導(dǎo)致基因編輯器在非靶部位的表達(dá)會受到極大的限制,從而最大程度地減少脫靶效應(yīng),提高了安全性和編輯的準(zhǔn)確性。課題組研制的這種雙重特異性CRISPR-Cas9納米編輯系統(tǒng)能有效地聚集于肝臟部位,通過P3啟動子的控制表達(dá),使基因編輯工具只在肝臟部位表達(dá)。在3種小鼠疾病模型(肝臟缺血再灌注、急性肝損傷、肝纖維化)中進(jìn)行的體內(nèi)實驗結(jié)果顯示,相比于未給藥的小鼠,使用本策略有效敲除了肝臟缺血再灌注模型小鼠肝臟的12-脂氧合酶(Alox12)基因(敲除率27.7%)與急性肝損傷模型小鼠的Fas基因(敲除率22.3%),以及使肝纖維化模型小鼠Alox12基因mRNA的表達(dá)下調(diào)約50%。

圖6 雙特異性CRISPR/Cas納米系統(tǒng)在肝病治療中的應(yīng)用[50]Figure 6 Application of dual-specific CRISPR/Cas nanosystem in the treatment of liver diseases

2.4 酶響應(yīng)的CRISPR-Cas9遞送系統(tǒng)

在病理條件下,體內(nèi)某些蛋白酶的表達(dá)會發(fā)生改變?;诖耍恍┭芯空咴O(shè)計了特定酶響應(yīng)的載體,用于藥物靶向遞送。目前,大多數(shù)酶響應(yīng)的給藥系統(tǒng)基本都是利用存在于細(xì)胞外的酶,例如基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP)和透明質(zhì)酸酶(HAase)這2種在腫瘤微環(huán)境中高表達(dá)的酶[51]。MMP在腫瘤微環(huán)境、腫瘤信號通路以及腫瘤發(fā)生、發(fā)展和轉(zhuǎn)移等一系列過程中都發(fā)揮著重要作用。腫瘤微環(huán)境中高水平的透明質(zhì)酸(HA)會降低腫瘤組織的彈性,增加間質(zhì)液體壓力,同時與腫瘤的不良預(yù)后密切相關(guān)[52]。

Yang等[53]設(shè)計了一種可編程的層層響應(yīng)的納米CRISPR遞送系統(tǒng)PUN@Cas-PT,用于靶向調(diào)控細(xì)胞程序性死亡配體1(PD-L1)和蛋白酪氨酸磷酸酶N2(PTPN2)。PUN@Cas-PT同時包含可對MMP和HAase響應(yīng)的底物,納米粒子含有的HA還能延長納米復(fù)合物的血液循環(huán)時間,增加納米粒子在腫瘤部位的滯留和吸收,同時促進(jìn)了納米粒子的內(nèi)涵體逃逸和胞內(nèi)釋放。PUN@Cas-PT通過層層響應(yīng)的方式遞送CRISPR-Cas9工具。首先,在腫瘤微環(huán)境中,過表達(dá)的MMP會降解PEG外層連接的MMP的底物,暴露出RGD腫瘤靶向肽和HA,促進(jìn)腫瘤細(xì)胞對納米粒子的識別和攝取。然后,溶酶體中的HAase降解HA,使得納米粒子電荷發(fā)生反轉(zhuǎn),實現(xiàn)內(nèi)涵體逃逸。最后,由對ROS敏感的聚乙烯亞胺衍生物和Cas9質(zhì)粒組成的核心進(jìn)入細(xì)胞后,在腫瘤細(xì)胞中高水平ROS作用下,納米粒子裂解釋放Cas9質(zhì)粒,通過下調(diào)PD-L1和PTPN2改善腫瘤組織的免疫抑制微環(huán)境,從而增強(qiáng)機(jī)體對腫瘤細(xì)胞的免疫應(yīng)答。

3 外源性刺激響應(yīng)載體

近年來,研究人員嘗試通過外部刺激進(jìn)行CRISPR-Cas9工具的遞送,使基因編輯在時間和空間上的精確控制成為了可能。通常能實現(xiàn)外部刺激響應(yīng)的方法包括光控制、超聲波控制和磁場控制等。

3.1 光響應(yīng)的CRISPR-Cas9遞送系統(tǒng)

光是一種無創(chuàng)的、時間和空間的控制開關(guān),可用于基因編輯系統(tǒng)的精確控制遞送。在光照射下,某些材料可以產(chǎn)生一些物理或化學(xué)的變化,包括光誘導(dǎo)光熱劑的光熱效應(yīng)、光敏物質(zhì)的ROS產(chǎn)生以及上轉(zhuǎn)化材料的光子轉(zhuǎn)換等。這些獨特的光響應(yīng)材料也被應(yīng)用于CRISPR-Cas9系統(tǒng)的控制遞送[54]。

近紅外光(NIR,波長范圍為800 ~ 2500 nm)由于其安全性良好同時具有較好的組織穿透性(可達(dá)3 cm),是一種理想光源。相比之下,紫外光或可見光穿透深度只有不到1 mm。通過光敏材料產(chǎn)生的光熱轉(zhuǎn)換在生物醫(yī)學(xué)工程應(yīng)用中比較常見,比如光熱治療。光熱劑(包括有機(jī)的吲哚菁綠和聚多巴胺,無機(jī)的金納米粒子和石墨烯等)可以將光能轉(zhuǎn)化為熱能,導(dǎo)致局部溫度升高。值得一提的是,已有研究表明,光熱效應(yīng)還可以促進(jìn)納米粒子的內(nèi)涵體/溶酶體逃逸,并且可以通過打斷熱敏化學(xué)鍵實現(xiàn)內(nèi)容物的釋放和激活[55]。2020年,Chen等[56]報道了可被近紅外二區(qū)的光(NIR-II,1 000 ~ 1 700 nm)激活的CRISPR-Cas9納米系統(tǒng)(nanoCRISPR)的遞送研究(見圖7),用于可編程的基因組編輯。作者首先合成了β-環(huán)糊精(β-cyclodextrin)-聚乙烯亞胺(PEI)包裹的金納米棒(APC)材料,然后用這種材料包裹含有特異性熱啟動子HSP70的Cas9質(zhì)粒(HSP-Cas9-質(zhì)粒),形成穩(wěn)定的納米復(fù)合物nanoCRISPR。陽離子聚合物能夠吸附和攜帶質(zhì)粒到目標(biāo)細(xì)胞,APC作為光熱轉(zhuǎn)化器能將外部的光能轉(zhuǎn)為細(xì)胞內(nèi)的局部熱能,啟動質(zhì)粒的表達(dá),因此,APC不僅可以作為質(zhì)粒遞送的載體,還可以作為細(xì)胞內(nèi)的光熱轉(zhuǎn)換器來啟動Cas9和sgRNA的轉(zhuǎn)錄和表達(dá),光信號就可以通過APC轉(zhuǎn)換為熱源來調(diào)節(jié)Cas9表達(dá)和活性。在1 064 nm的光照射下,APC在細(xì)胞內(nèi)微環(huán)境中迅速產(chǎn)生局域熱,誘導(dǎo)熱休克因子(HSF)從非活性單體轉(zhuǎn)化為活性三聚體,并能使活性三聚體進(jìn)入細(xì)胞核。然后,核內(nèi)三聚體與HSP70啟動子的熱休克元件(HSE)結(jié)合,導(dǎo)致轉(zhuǎn)錄激活。但是,一旦關(guān)閉光照,溫度迅速降低,三聚體將從HSE上解離下來并重新轉(zhuǎn)化為單體,從而抑制轉(zhuǎn)錄過程。因此,將APC作為光遺傳開關(guān)調(diào)節(jié)Cas9的表達(dá),可實現(xiàn)時間和空間上的調(diào)控。體內(nèi)實驗結(jié)果顯示,該遞送策略對PLK1基因的敲除效率最高可達(dá)28.3%。不僅如此,相比于近紅外一區(qū),采用二區(qū)的光也具有更深的組織穿透性。體內(nèi)和體外數(shù)據(jù)表明,APC介導(dǎo)的光控制Cas9基因的表達(dá)能以精確和可編程的方式指導(dǎo)Cas9的基因編輯作用,并顯著減少脫靶效應(yīng)。

圖7 光響應(yīng)的nanoCRISPR納米系統(tǒng)在Cas9質(zhì)粒遞送中的應(yīng)用[56]Figure 7 Application of light-responsive nanoCRISPR nanosystem in Cas9 plasmid delivery

光照除了能誘導(dǎo)光熱效應(yīng)外,在光敏劑(如二氫卟啉)存在下,還能引發(fā)ROS[如單線態(tài)氧(1O2)]的產(chǎn)生,用于某些疾病的治療,這種光介導(dǎo)的療法稱為光動力療法(photodynamic therapy,PDT)。當(dāng)產(chǎn)生的ROS濃度足夠高時,就可以殺死腫瘤細(xì)胞或細(xì)菌,從而發(fā)揮抗腫瘤或抗菌療效。另一方面,生成的ROS也可以用于誘導(dǎo)內(nèi)涵體/溶酶體膜破裂或者對ROS敏感的化學(xué)鍵的斷裂,使納米粒子中的藥物釋放[57]。Deng等[58]開發(fā)了一種將Cas9/sgRNA的RNP和二氫卟酚e6(Ce6)共同遞送的近紅外GSH響應(yīng)遞送系統(tǒng)。該課題組用氮基三乙酸(NTA)-二硫二丙酸酯(SS)-聚乙二醇(PEG)-聚己酸內(nèi)酯(PCL)共聚物膠束與Ce6通過自組裝生成納米粒子,其中用組氨酸標(biāo)記的Cas9/sgRNA和用iRGD修飾的NTA-SS-PEG-PCL包覆在納米粒子表面。Ce6作為光敏劑在671 nm光照下產(chǎn)生1O2,破壞內(nèi)涵體/溶酶體膜,將納米粒子釋放到胞漿中,然后在細(xì)胞質(zhì)中GSH作用下打斷雙硫鍵釋放RNP。體內(nèi)實驗表明,該遞送策略能通過靶向敲除Nrf2基因顯著降低細(xì)胞中Nrf2蛋白的表達(dá),具有治療CNE-2型鼻咽癌的潛在價值。

稀土摻雜的上轉(zhuǎn)化納米粒子(UCNP)是一種獨特的無機(jī)納米粒子,可以將低能量的近紅外光轉(zhuǎn)化為高能的可見光或者紫外光,利用這一特點可以在深層次的組織區(qū)域中發(fā)生光化學(xué)反應(yīng)[59],而直接使用紫外線或可見光是無法實現(xiàn)的。Pan等[60]設(shè)計了一種基于UCNP的RNP遞送系統(tǒng)。RNP通過一種可以被紫外線切斷的光敏分子4-(羥甲基)-3-硝基苯甲酸(ONA)結(jié)合到UCNP的表面。在980 nm近紅外光照射下,UCNP產(chǎn)生紫外光,降解ONA并釋放RNP,實現(xiàn)了近紅外光控制的體外和體內(nèi)基因組編輯,顯著延長了A549荷瘤小鼠的生存期。

3.2 小分子響應(yīng)的CRISPR-Cas9遞送系統(tǒng)

最近,通過有機(jī)小分子調(diào)控Cas9功能的相關(guān)研究也為在轉(zhuǎn)錄和轉(zhuǎn)錄后水平對Cas9活性的調(diào)控開辟了新的途徑。通常情況下,對Cas9功能的化學(xué)控制是利用量身定制的小分子激活或抑制Cas9核酸酶的活性。為了提高CRISPR-Cas9基因組編輯的時空特異性,研究人員嘗試了一些化學(xué)控制策略來調(diào)控Cas9的活性,如dsCas9系統(tǒng)、自剪接內(nèi)嵌Cas9系統(tǒng),以及分裂Cas9系統(tǒng)(split-Cas9)的二聚體等[61-62]。與光調(diào)控的Cas9功能相反,小分子可以通過器官特異性的方式從給藥部位到達(dá)深層組織,解決了光調(diào)控存在的穿透深度問題,從而實現(xiàn)對Cas9的精準(zhǔn)調(diào)控。Davis等[63]設(shè)計了一種通過小分子特異性調(diào)控Cas9活性的基因編輯系統(tǒng)。作者開發(fā)了一種新的Cas9核酸酶,在Cas9的特定位置嵌入4-羥基他莫昔芬(4-HT)響應(yīng)基團(tuán)。在4-HT存在的情況下,Cas9的編輯活性顯著提升。4-HT可以通過滲透作用直接進(jìn)入細(xì)胞,激活Cas9,產(chǎn)生編輯作用。該課題組嘗試在Cas9不同位置插入活性內(nèi)基并進(jìn)行篩選,最終發(fā)現(xiàn)活性內(nèi)基在Cys574位置時Cas9特異性最高,通過4-HT控制激活的該Cas9的編輯能力是野生型核酸酶的25倍。

3.3 超聲波響應(yīng)的CRISPR-Cas9遞送系統(tǒng)

除了光以外,超聲波也能用于基因編輯工具的胞內(nèi)遞送。與光相比,超聲波通常具有更深層次的組織穿透性,同時還顯示出與超聲波強(qiáng)度和頻率相關(guān)的生物效應(yīng)。高強(qiáng)度的超聲波能通過分子共振產(chǎn)生熱能,而低頻率的超聲波能產(chǎn)生空穴效應(yīng)。此外,將聲敏劑暴露于低強(qiáng)度的超聲波下可以觀察到ROS的產(chǎn)生,這也被稱為聲動力療法(sonodynamic therapy)[64]。Pu等[65]利用對ROS敏感的硫醚鍵將Cas9的RNP連接到集成了聲敏劑的納米金屬有機(jī)框架(nMOF)上,通過超聲波觸發(fā)nMOF中的聲敏劑5,10,15,20-四(4-羧基苯基)卟啉(TCPP),產(chǎn)生ROS打斷硫醚鍵從而釋放RNP,有效敲除A549細(xì)胞中的MTH1基因。體內(nèi)實驗結(jié)果表明,這種通過超聲波控制的基因編輯工具遞送系統(tǒng)可有效敲除癌基因從而抑制腫瘤生長,提高小鼠的生存率。

3.4 磁場響應(yīng)的CRISPR-Cas9遞送系統(tǒng)

磁場響應(yīng)的遞送系統(tǒng)通常由帶有磁性的納米材料組成。由于磁場具有優(yōu)異的組織穿透能力,外部磁場可以引導(dǎo)載體向目標(biāo)區(qū)域移動,實現(xiàn)遠(yuǎn)程控制的靶向給藥[66]。具有磁性的材料與CRISPR-Cas9形成納米粒子,在磁場的引導(dǎo)下可以減少非靶點區(qū)域的編輯作用,提高了基因組編輯的精確性。Zhu等[67]報道了一種納米顆粒-病毒雜合遞送系統(tǒng),這種系統(tǒng)由含有Cas9/sgRNA-質(zhì)粒的桿狀病毒(BV)和磁性氧化鐵納米顆粒(MNP)組成(即MNP-BV)。大體積的BV提高了DNA的裝載能力,由于BV在哺乳動物細(xì)胞中沒有復(fù)制能力,所以遞送的質(zhì)粒只能在短時間內(nèi)起作用,同時,BV也會被體內(nèi)的免疫系統(tǒng)清除而失活。BV的清除可以被視為基因組編輯活性的關(guān)閉,而外部磁場由于可以促進(jìn)MNPBV復(fù)合物沿著磁場進(jìn)入靶點組織,產(chǎn)生特異性的基因組編輯,可以被視為基因編輯活性的激活。

4 結(jié)語與展望

與病毒載體相比,非病毒載體用于CRISPRCas9系統(tǒng)的遞送顯示出巨大的優(yōu)勢,通過設(shè)計不同的非病毒載體,將CRISPR-Cas9的質(zhì)粒、mRNA或RNP封裝于相應(yīng)的載體中,既提高了生物穩(wěn)定性又提升了基因組編輯效率,同時在一定程度上降低了脫靶效應(yīng)。然而,目前的非病毒納米遞送系統(tǒng)仍然有很多需要改進(jìn)的地方,以實現(xiàn)安全、精準(zhǔn)且高效的基因組編輯。正如本文所總結(jié)的,智能響應(yīng)的納米制劑通過生物體內(nèi)部信號或者外部刺激實現(xiàn)了基因編輯工具的遞送,并能在時間和空間上對CRISPR-Cas9工具予以控制[68]。雖然已經(jīng)有不少智能材料成功用于質(zhì)粒、mRNA、RNP的系統(tǒng)遞送,但由于CRISPR-Cas9/sgRNA工具的特殊性,設(shè)計刺激響應(yīng)納米材料時仍需要多加考慮[22]。

雖然近年來智能刺激響應(yīng)性材料用于CRISPRCas9遞送的研究已經(jīng)取得了一系列卓有成效的結(jié)果,但仍然存在著諸多挑戰(zhàn)。首先,雖然目前開發(fā)出了高效且具有器官或組織靶向能力的CRISPRCas9刺激響應(yīng)型遞送系統(tǒng),但其精度不高,導(dǎo)致效率低下,仍然不能應(yīng)用于疾病的臨床治療。未來可以考慮設(shè)計具有多種刺激響應(yīng)性的材料來提高遞送的靶向精確性和編輯能力。其次,共遞送基因編輯工具和模板DNA用于基因定向修復(fù)的遞送材料仍然偏少,這可能是共遞送提升了刺激響應(yīng)型系統(tǒng)設(shè)計的難度。同時,對于材料的設(shè)計要充分考慮到實驗結(jié)果的可重復(fù)性和工業(yè)轉(zhuǎn)化應(yīng)用的可能性。再次,設(shè)計智能刺激響應(yīng)型非病毒遞送系統(tǒng)并用于其他最新報道的一些基因編輯工具[如單堿基編輯器(base editors)和先導(dǎo)編輯器(prime editors)等[30]]遞送的研究仍然較少。最后,目前報道的智能刺激響應(yīng)型CRISPR-Cas9遞送系統(tǒng)絕大部分仍然局限于臨床前研究,要將CRISPR-Cas9介導(dǎo)的基因組編輯技術(shù)真正應(yīng)用于臨床治療,還有很長的路要走。提高靶點基因的編輯效率、提升向靶細(xì)胞或靶組織遞送的特異性、減少潛在的脫靶效應(yīng)是當(dāng)務(wù)之急。此外,CRISPR-Cas9工具導(dǎo)致潛在的機(jī)體免疫反應(yīng)也是不可忽視的問題。但可以相信,隨著CRISPR-Cas9技術(shù)的不斷進(jìn)步和創(chuàng)新以及智能刺激響應(yīng)型遞送技術(shù)的不斷發(fā)展,兩者結(jié)合將實現(xiàn)更為精準(zhǔn)的基因組編輯,并應(yīng)用于臨床,造福廣大患者。

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