楊星瑩 朱威巍 江麗 爨向丹 盛軍 黃艷蘋1,
(1.云南農(nóng)業(yè)大學(xué)/普洱茶學(xué)教育部重點實驗室 云南昆明 650201;2.云南農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)技術(shù)學(xué)院 云南昆明 650201;3.云南農(nóng)業(yè)大學(xué)理學(xué)院 云南昆明 650201;4.云南省高原特色農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)研究院 云南昆明 650201)
肺癌是目前惡性腫瘤死亡的首要原因[1],在腫瘤治療中備受關(guān)注。肺癌又被分為小細胞肺癌和非小細胞肺癌,其中非小細胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)約占肺癌總數(shù)的85%以上[2]。非小細胞肺癌分為肺腺癌、鱗狀細胞癌(SCC)和大細胞肺癌(LCC)的組織學(xué)亞型,以上病癥每年造成150 多萬人死亡[3-4]。表皮生長因子受體(epidermal growth factor receptor,EGFR)屬于人表皮受體酪氨酸激酶家族的一員,該家族還包括人表皮生長因子受體 2、3、4[HER2/neu(ERBB2),HER3(ERBB3)和HER4(ERBB4)]3 個成員[5-6]。EGFR 參與調(diào)節(jié)多種細胞生命過程,如增殖、分化、存活等[7]。EGFR主要包括4 個部分:胞外配體結(jié)合域、跨膜域、酪氨酸激酶域和C 端尾[8]。當(dāng)EGFR 與配體(EGF)結(jié)合后,胞內(nèi)的酪氨酸激酶域會發(fā)生動態(tài)構(gòu)象變化,通過首尾相連的方式形成不對稱二聚體,使胞內(nèi)C 端酪氨酸激酶殘基發(fā)生磷酸化[9]。肺癌患者具有極低的存活率[10],科學(xué)家們在這些患者的肺癌腫瘤中發(fā)現(xiàn)EGFR 的表達量明顯高于常人[11]。因此靶向EGFR 治療非小細胞肺癌具有重要意義。
本實驗所用化合物L(fēng)upalbigenin(LG)是一種類黃酮天然化合物。已有文獻報道,從Derrisscandens中分離出的LG 可以誘導(dǎo)乳腺癌細胞系發(fā)生死亡[12]。Ausawasamrit 等[13]發(fā)現(xiàn),LG可以通過影響蛋白激酶B(AKT)和細胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(Erk)的磷酸化來誘導(dǎo)肺癌細胞發(fā)生凋亡。還有研究報道,LG 通過下調(diào)炎癥基因和蛋白表達來抑制NF-κB 信號的傳導(dǎo)[14]。根據(jù)前人LG在癌癥和炎癥治療方面的相關(guān)研究,本研究對LG抑制EGFR 野生型肺癌細胞增殖作用機制進行研究。構(gòu)建Ba/F3 EGFR WT 細胞并經(jīng)過單克隆、流式細胞術(shù)、Western blot 檢測EGFR 表達量,通過MTS 法篩選出化合物L(fēng)G,使用LG 處理細胞,從細胞存活率、細胞形態(tài)、細胞凋亡情況、周期阻滯情況、信號通路轉(zhuǎn)導(dǎo)變化方面闡述LG 抑制Ba/F3 EGFR WT 肺癌細胞增殖作用機制。驗證LG是否能抑制Ba/F3 EGFR WT 細胞增殖,并且在EGF 存在時依舊能抑制細胞存活,以期為治療EGFR 野生型非小細胞肺癌患者提供新的基礎(chǔ)研究理論,同時為天然化合物治療人類疾病提供相關(guān)依據(jù)。
實驗所用化合物L(fēng)G,分子式C25H26O5,純度99%,購于云南西力生物技術(shù)股份有限公司,其結(jié)構(gòu)式如圖1 所示。實驗用細胞Ba/F3 購于美國典型培養(yǎng)物保藏中心(Manassas,VA,USA),并在含有10% FBS、1% P/S 和5%白介素3(IL3)的1640 培養(yǎng)基中于37℃下在含5% CO2的細胞培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)(BINDER;Tuttlingen,Ger-many)。實驗用抗體購于Cell Signaling Technology 公司。
1.2.1 試驗設(shè)計將EGFR WT 質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入大腸桿菌中擴大培養(yǎng),使用無內(nèi)毒素大提質(zhì)粒試劑盒提取質(zhì)粒測定濃度后,使用電轉(zhuǎn)染將質(zhì)粒導(dǎo)入Ba/F3 細胞。經(jīng)過轉(zhuǎn)化實驗、抗生素篩選、單克隆實驗得到高表達EGFR 的Ba/F3 EGFR WT 野生型肺癌細胞。使用MTS 法篩選化合物L(fēng)G,再確定有效濃度,選取2 個有效濃度分別聯(lián)合EGF 處理Ba/F3 EGFR WT 細胞。試驗設(shè)6 個處理組:對照組,Control;EGF 組:EGF;5 μmol/L 的LG組,LG 5 μmol/L;5 μmol/L 的LG 聯(lián)合應(yīng)用EGF組,LG 5 μmol/L+EGF;10 μmol/L 的LG 組,LG 10 μmol/L;10 μmol/L 的LG 聯(lián)合應(yīng)用EGF 組,LG 10 μmol/L+EGF。依次檢測6 個處理組細胞存活率、細胞狀態(tài)、EGFR 信號轉(zhuǎn)導(dǎo)變化、凋亡水平和周期阻滯情況。
1.2.2 細胞培養(yǎng)與傳代當(dāng)細胞單層布滿細胞培養(yǎng)瓶時,在超凈工作臺中,用移液器吹勻細胞后取出轉(zhuǎn)移至離心管中1 000 r/min 離心3 min,棄上清。加入無菌、預(yù)熱的PBS 吹勻洗滌,1 000 r/min 離心3 min,棄上清后加入完全培養(yǎng)基輕吹混勻細胞,分別移入兩個T25 細胞培養(yǎng)瓶中,補充適量相應(yīng)的完全培養(yǎng)基觀察狀態(tài)后置于37℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
1.2.3 質(zhì)粒提取將質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入大腸桿菌;添加適量抗生素培養(yǎng)篩選并擴大培養(yǎng)目的菌種,收集離心后,使用無內(nèi)毒素質(zhì)粒大提試劑盒提取目的質(zhì)粒,使用分光光度計測定質(zhì)粒濃度,保存質(zhì)粒備用。
1.2.4 細胞轉(zhuǎn)染收集狀態(tài)良好的Ba/F3 細胞,經(jīng)過計數(shù)計算使用轉(zhuǎn)染試劑盒中的T Buffer 將細胞Ba/F3 密度調(diào)整為5×107個/mL,并按照比例與質(zhì)粒混合,電轉(zhuǎn)槍取一槍細胞密度為 5×106或2×106個/100 μL。在電轉(zhuǎn)杯內(nèi)加入3 mL E Buffer。通過NeonTM電轉(zhuǎn)染系統(tǒng)選擇合適程序?qū)①|(zhì)粒導(dǎo)入細胞內(nèi)。轉(zhuǎn)染完成的細胞用新鮮1640 培養(yǎng)基(含有10% FBS)混勻,細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h 后加入篩選抗生素擴大培養(yǎng)。
1.2.5 細胞篩選細胞轉(zhuǎn)染24 h 之后,將細胞培養(yǎng)基替換為完全培養(yǎng)基(含有10% FBS,1% P/S)。48 h 后加入嘌呤霉素,正常進行細胞傳代與換液。
1.2.6 細胞單克隆取狀態(tài)穩(wěn)定的轉(zhuǎn)染細胞離心后,重懸、計數(shù),96 孔板接單克隆,保證每個孔0.5 個細胞?;靹蚝屑毎幕旌弦?,用排槍將細胞液轉(zhuǎn)移到96 孔板中,每孔200 μL,周圍用無菌PBS 填充。置于37℃細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)10 d,在顯微鏡下逐孔觀察,將單一細胞團轉(zhuǎn)移到小皿中,根據(jù)細胞生長狀態(tài)及密度逐步擴大培養(yǎng)。
1.2.7 MTS 檢測細胞增殖將細胞密度調(diào)整為每100 μL 5×104個細胞,用無酚紅1 640 培養(yǎng)基混勻,接種于96 孔板中,恒溫培養(yǎng)箱靜置4 h;再加入含有藥物的培養(yǎng)基 100 μL/孔,總體積200 μL/孔,置于37℃培養(yǎng)箱處理48 h;加入MTS溶液,20 μL/孔,避光孵育3~4 h,震蕩5~10 min充分溶解結(jié)晶物。將96 孔板放于酶標儀中,在492 nm 處讀取細胞的吸光值。
1.2.8 細胞蛋白表達檢測
(1)細胞蛋白提取 取經(jīng)過藥物處理的細胞1 000 r/min,離心3 min,棄上清;冰PBS 清洗一遍離心后棄上清,加入高效裂解液(PMSF:RIPA高效裂解液=1∶100),冰上裂解30 min,放入4℃離心機,15 000 g,離心20 min,吸出上清,放于冰上備用。
(2)蛋白濃度測定 37℃恒溫孵育30 min,使用多通道酶標儀測定吸光度,測定波長分別為560 和630 nm,測定數(shù)值均扣除空白孔吸光值,代入計算公式得到樣品蛋白濃度。
(3)蛋白電泳與轉(zhuǎn)膜 將蛋白樣品按順序依次加入凝膠泳道,電泳第一階段電壓為50 V,待蛋白跑出濃縮膠后增加電壓至120 V,根據(jù)目的蛋白分子量調(diào)節(jié)第二階段時間。將分離膠與甲醇激活的PVDF 膜帖在一起,放入轉(zhuǎn)膜夾中卡入轉(zhuǎn)膜槽,設(shè)置電流為200 mA,轉(zhuǎn)膜時間為60 min。
(4)化學(xué)發(fā)光 配制化學(xué)發(fā)光液(A∶B=1∶1),混勻,將膜與發(fā)光液充分接觸,點擊“Expose”開始曝光。曝光時間根據(jù)出現(xiàn)條帶的曝光程度自動選擇曝光停止時間,曝光停止后選擇合適的圖片拷貝。
1.2.9 數(shù)據(jù)分析與統(tǒng)計采用SPSS 17.0 軟件進行顯著性分析[(mean+SEM),one-way ANOVA],*p<0.05 為差異顯著,**p<0.01 為差異有明顯顯著,***p<0.001 為差異極顯著。使用GraphPad Prism8 作圖軟件,對實驗數(shù)據(jù)進行作圖。細胞存活率=[(As–Ab)]/[(Ac–Ab)]×100%,As:驗孔吸光度;Ac:對照孔吸光度;Ab:空白孔吸光度。細胞抑制率=1–細胞存活率。
通過電穿孔轉(zhuǎn)染法成功構(gòu)建 Ba/F3 EGFR WT 細胞,該細胞可脫離IL3 獨立生長。通過流式細胞技術(shù)對單克隆細胞EGFR 表達水平進行檢測,如圖2-a 所示,EGFR 表達量為98.04%。同時利用Western blot 檢測Ba/F3 細胞和Ba/F3 EGFR WT 細胞的EGFR 蛋白表達水平。結(jié)果如圖2-b 所示,Ba/F3 EGFR WT 細胞高表達EGFR蛋白,因此細胞系構(gòu)建成功,可以進行后續(xù)實驗。
基于云南農(nóng)業(yè)大學(xué)普洱茶教育部重點實驗室化合物庫中的天然化合物選擇5 種化合物見表1,濃度5 μmol/L,在Ba/F3 EGFR WT 細胞上使用MTS 法進行篩選。其中Lupalbigenin(LG)能夠抑制Ba/F3 EGFR WT 細胞增殖,如圖3-a 所示,LG 將Ba/F3 EGFR WT 細胞存活降低至50%以下,如圖3-b 所示,并且隨著LG 濃度的升高細胞存活逐漸降低。
表1 化合物信息
LG 處理Ba/F3 EGFR WT 細胞15 h 后其細胞形態(tài)如圖4 所示。可以看出,Ba/F3 EGFR WT 細胞形態(tài)發(fā)生明顯變化。對照組的Ba/F3 EGFR WT細胞形態(tài)圓潤透亮有光澤,在培養(yǎng)液中下層且生長密集。處理組(LG 10 μmol/L+EGF)細胞狀態(tài)明顯改變,體積明顯縮小、細胞膜破裂呈碎片、呈不透亮的狀態(tài)。
經(jīng)過1 h 的處理后,LG 10 μmol/L+EGF 組顯著抑制Ba/F3 EGFR WT 細胞EGFR 相關(guān)蛋白磷酸化表達,降低了P-EGFR、P-Erk、P-Gsk-3β和P-S6蛋白表達水平(圖5)。表明10 μmol/L 的LG 可以抑制EGFR 下游信號通路轉(zhuǎn)導(dǎo),并且在EGF 存在時也有抑制效果。
經(jīng)過15 h 的處理后,EGF 組凋亡率低于對照(Control),LG 10 μmol/L 凋亡率最高。LG 10 μmol/L+EGF 組凋亡率有所回升,但也高于對照組(Control)、EGF 組和兩個低濃度組(LG 5 μmol/L 和LG 5 μmol/L+EGF)(圖6)。表明10 μmol/L 的LG 可以增加Ba/F3 EGFR WT 細胞凋亡率。
經(jīng)過15 h 處理后,LG 10 μmol/L+EGF 組與其他組相比,可以上調(diào)Bax 和下調(diào)Bcl-2 蛋白的表達,誘導(dǎo)Cytochrome-C 釋放,激活Caspase-3、Caspase-6、Caspase-7,使得Cleaved-Caspase-3、Cleaved-Caspase-6、Cleaved-Caspase-7 的表達上調(diào)(圖7)。這表明LG 通過激活Bcl-2 家族、釋放 Cytochrome-C 來激活 Caspase 家族,通過Caspase-3、Caspase-6 和 Caspase-7 執(zhí)行Ba/F3 EGFR WT 細胞凋亡,且在EGF 存在時細胞凋亡蛋白表達增加。
經(jīng)過15 h 處理后,LG 10 μmol/L+EGF 組與其他組相比,上調(diào)細胞內(nèi)P27 蛋白表達(圖8),阻抑細胞周期由G1/S 期向下一時期轉(zhuǎn)移,從而抑制CDK6 蛋白的表達,進而抑制Cyclin D1 的表達,將Ba/F3 EGFR WT 細胞的周期阻滯在G1/S期,同時對 Cyclin A2 的表達也有抑制作用,Cyclin A2 蛋白的調(diào)控周期是S 期。表明LG 能夠?qū)a/F3 EGFR WT 細胞的周期阻滯在G1/S 期,且在EGF 存在時對細胞周期相關(guān)蛋白阻滯效果更加明顯。
本實驗用的轉(zhuǎn)染方法是電穿孔轉(zhuǎn)染法[15],使用NeonTM電轉(zhuǎn)染系統(tǒng)。利用Ba/F3 細胞自身不表達EGFR、依賴于白介素3(IL3)且生長迅速易于轉(zhuǎn)染等特點,以Ba/F3 為模式細胞使用電轉(zhuǎn)染的方法將EGFR WT 質(zhì)粒導(dǎo)入Ba/F3 細胞,構(gòu)建了Ba/F3 EGFR WT 細胞。根據(jù)普洱茶學(xué)教育部重點實驗室前期的實驗基礎(chǔ),EGFR WT 轉(zhuǎn)染條件為1 400 V,20 ms,2 pulse。已有文獻報道,用Ba/F3 細胞進行轉(zhuǎn)染構(gòu)建穩(wěn)定表達EGFR 的Ba/F3 細胞[16]。Xie 等[17]通過使用IL3 剝奪法成功構(gòu)建表達 EGFR-insH 突變的 Ba/F3 細胞系(Ba/F3-insH 細胞系)。Yuza 等[18]通過抗生素篩選和IL3 獨立篩選構(gòu)建了表達3 個EGFR 20 號外顯子突變的Ba/F3 細胞。為了獲得單一來源且穩(wěn)定表達EGFR 的細胞株,在培養(yǎng)基中添加篩選抗生素對Ba/F3 EGFR WT 細胞進行單克隆培養(yǎng)。證明Ba/F3 EGFR WT 細胞能夠脫離IL3 獨立生長,且通過流式細胞術(shù)和Western blot 實驗證明是高表達EGFR 的野生型肺癌細胞。因此本實驗采用的細胞系構(gòu)建方法是成功的,可以為質(zhì)粒轉(zhuǎn)染和細胞系構(gòu)建提供新的方法和思路。
已有研究表明,EGFR 信號的異常活化及其導(dǎo)致的下游信號激活與癌癥的驅(qū)動因素(標志特征)密切相關(guān)[19],使用靶向藥物特異性地封閉EGFR 信號,將對癌癥的治療產(chǎn)生重要影響。目前關(guān)于EGFR 的靶向藥物主要包括單抗類藥物和小分子酪氨酸激酶抑制劑[20]。2004 年6 月,美國科學(xué)家Lynch 等[21]和Paez 等[22]發(fā)現(xiàn),具有EGFR突變的肺癌患者使用靶向藥物治療可以有更好的治療效果。研究結(jié)果顯示,吉非替尼(Gefitinib)在治療具有EGFR 突變的腫瘤患者有效率高達80%以上,而這種藥物在治療無突變的野生型(Wild-Type)腫瘤患者基本無效[23],隨后這一觀點,在一年內(nèi)相繼被Mu 等[24]、Mitsudomi 等[25]、Han 等[26]和Huang 等[27]各國科學(xué)家證實。因此為野生型EGFR 肺癌患者尋找新的治療方案和藥物成為科學(xué)家研究的難題。
由于癌癥機制復(fù)雜性,不同藥物的敏感性和耐藥性、缺乏標志物以及藥物監(jiān)管測試都給靶向藥物的上市帶來巨大挑戰(zhàn)[28]。不乏患者在接受靶向藥物治療時產(chǎn)生許多副作用,如皮疹、腹瀉和血壓等問題[29],因此人們將目光轉(zhuǎn)向來源廣泛、毒副作用小的天然化合物。天然化合物種類繁多,許多天然化合物的抗癌潛力已被開發(fā)[30]。90 年代中期,有2 種喜樹堿類拓撲替康和伊立替康[31-32]獲得FDA 批準用于治療各種類型的癌癥。2005年紫杉醇獲批用于治療轉(zhuǎn)移性乳腺癌、胰腺癌和非小細胞肺癌[33]。目前大部分抗癌藥物是天然產(chǎn)物來源[34],已有文獻報道,天然化合物L(fēng)G 能夠誘導(dǎo)人大細胞肺癌細胞死亡[13],但并未明確靶點。對于非小細胞肺癌,LG 可以抑制EGFR 相關(guān)蛋白磷酸化,因此以EGFR 為作用靶點進行一系列驗證。由于此實驗未開展動物實驗,LG 在體內(nèi)表現(xiàn)還不明確,其與EGFR 具體結(jié)合位點還有待進一步確認。
經(jīng)實驗結(jié)果證明,LG 在調(diào)控EGFR 野生型肺癌細胞增殖方面起到重要作用,其機制主要是通過抑制Ba/F3 EGFR WT 細胞EGFR 及下游相關(guān)蛋白磷酸化水平表達,進而靶向細胞凋亡、細胞周期,從而通過誘導(dǎo)細胞凋亡來抑制野生型EGFR肺癌細胞Ba/F3 EGFR WT 的存活。本研究有望為調(diào)控野生型EGFR 肺癌腫瘤提供藥物開發(fā)的新思路。