方啟航，顏顧浙，方 偉，高 競(jìng)，趙 凱，蔣仁強(qiáng)，趙夢(mèng)麗，徐秋芳

（浙江農(nóng)林大學(xué) 環(huán)境與資源學(xué)院 浙江省森林生態(tài)系統(tǒng)碳循環(huán)與固碳減排重點(diǎn)試驗(yàn)室，浙江 杭州 311300）

番茄Lycopersicon esculentum青枯病是由病原菌青枯勞爾氏菌Ralstonia solanacearum(簡(jiǎn)稱青枯菌)引起的病害，該菌被公認(rèn)為最具侵染力和破壞力的土傳病害之一[1-2]。侵染后引起植株維管束堵塞，嚴(yán)重時(shí)導(dǎo)致植物枯萎死亡。據(jù)估算，由青枯病造成的農(nóng)業(yè)經(jīng)濟(jì)損失高達(dá)30萬元·hm-2，山東、新疆、河北、河南、云南、江蘇等地都是番茄青枯病的重災(zāi)區(qū)[3]。目前，對(duì)于番茄青枯病的防控措施主要有：抗病品種篩選，如BHN466和FL7514[4-5]，但其果實(shí)普遍比正常果實(shí)小[6]，且篩選抗病品種周期長(zhǎng)；采用嫁接方式，雖能增強(qiáng)植物抗病能力，但經(jīng)濟(jì)成本較大，目前中國(guó)在栽培番茄上采用嫁接技術(shù)比例不足2%[7]；化學(xué)農(nóng)藥噴施，易促進(jìn)病源菌產(chǎn)生抗病性和造成土壤污染[8]。尚未有單一的物理化學(xué)防治方法能完全有效地抑制番茄青枯病[9]。

目前，關(guān)于利用生防菌進(jìn)行生物防治研究集中在以根際促生菌作為拮抗微生物防治病源菌侵染[10]。其中芽孢桿菌Bacillus、青霉菌Penicillium、木霉菌Trichoderma等常用來作為生防菌應(yīng)用于植物病害防治研究中。研究發(fā)現(xiàn)：芽孢桿菌中解淀粉芽孢桿菌B.amyloliquefaciensAm1和枯草芽孢桿菌B.subtilisPTS-394對(duì)番茄青枯病抑制率分別達(dá)88.98%[11]和80.00%[12]。木霉菌主要通過競(jìng)爭(zhēng)作用、誘導(dǎo)宿主抗性、重寄生作用、抗生作用等機(jī)制抑制目標(biāo)病原菌的生長(zhǎng)繁殖[13]，其中棘孢木霉T.asperellum是目前開發(fā)應(yīng)用最多的菌種之一。平板對(duì)峙試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)：棘孢木霉F2通過空間位置和營(yíng)養(yǎng)競(jìng)爭(zhēng)有效抑制三七Panax notoginseng灰霉病病菌Botrytis cinerea，其抑制率高達(dá)90%[14]；棘孢木霉GDFS1009對(duì)秸稈腐爛病的抑制率達(dá)60%[15]。青霉菌對(duì)植物病原菌的抑制效果研究比木霉少，KOMAI等[16]從青霉菌P.simplicissimumIFM53375中分得的Penicillide(1-4)類化合物及其衍生物、嘌呤活性蛋白等具有抗真菌活性作用；夏漢祥等[17]發(fā)現(xiàn)淡紫擬青霉P.lilacinus產(chǎn)生的類植物生長(zhǎng)素有防治病蟲害、促進(jìn)植物生長(zhǎng)的作用；淡紫擬青霉能在香蕉Musa nana根際穩(wěn)定定殖，對(duì)香蕉枯萎病有很強(qiáng)的防控效果。草酸青霉P.oxalicum通過營(yíng)養(yǎng)競(jìng)爭(zhēng)、重寄生等多種方式抑制尖孢鐮刀菌Fusarium oxysporum生長(zhǎng)發(fā)育，它對(duì)蘋果Malus pumila連作土壤中常見的4種有害鐮孢菌有抑制作用[18]。

木霉菌和青霉菌是有潛力的生防菌，但作為青枯菌的生防菌研究鮮見報(bào)道。本研究利用篩選獲得的棘孢木霉QZ2和草酸青霉QZ8等2株生防菌探究對(duì)青枯菌的防治效果。

1 材料與方法

1.1 供試菌株與培養(yǎng)基

1.1.1 供試菌株 青枯勞爾氏菌 QL-RS 1115，GenBank: GU390462 (簡(jiǎn)稱青枯菌)由南京農(nóng)業(yè)大學(xué)資源與環(huán)境學(xué)院提供，從出現(xiàn)嚴(yán)重青枯病病癥的番茄根際分離，經(jīng)過科赫法則(Koch’ spostulates)[19]證實(shí)具有強(qiáng)致病性。棘孢木霉QZ2和草酸青霉QZ8由浙江農(nóng)林大學(xué)浙江省森林生態(tài)系統(tǒng)碳循環(huán)與固碳減排重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室從衢州退化植被恢復(fù)試驗(yàn)區(qū)土壤中分離獲得，經(jīng)過ITS序列克隆測(cè)序、美國(guó)國(guó)家生物信息中心(NCBI)數(shù)據(jù)庫比對(duì)鑒定，用甘油保存法-80 ℃保存[20]。

1.1.2 培養(yǎng)基 包括：①馬鈴薯葡萄糖培養(yǎng)基 (PDA)；②NA 培養(yǎng)基：葡萄糖 10 g，蛋白胨 5 g，酵母粉0.5 g，牛肉膏3 g，1 L蒸餾水；③NB培養(yǎng)基：NB培養(yǎng)基基礎(chǔ)上加20 g瓊脂；④SMSA培養(yǎng)基：1 L NA培養(yǎng)基中加入質(zhì)量濃度3%多黏菌素3 mL，質(zhì)量濃度3%放線菌酮3 mL，質(zhì)量濃度1%氯霉素450 μL，質(zhì)量濃度為1%青霉素450 μL，質(zhì)量濃度為1%結(jié)晶紫450 μL，質(zhì)量濃度為1% TTC 4.5 mL，質(zhì)量濃度為1%桿菌肽2.25 mL，于倒平板前加入到三角瓶中[17]；⑤青霉選擇培養(yǎng)基：孟加拉紅(虎紅)培養(yǎng)基；⑥木霉選擇培養(yǎng)基：每升孟加拉紅(虎紅)培養(yǎng)基中加入氯霉素0.25 g，質(zhì)量濃度為1%鏈霉素9 mL，于倒平板前加入到三角瓶中[21]。

1.2 方法

1.2.1 平板對(duì)峙試驗(yàn) 參照嚴(yán)無瑕等[22]方法，用兩點(diǎn)法進(jìn)行平板對(duì)峙試驗(yàn)，以不接種生防菌為對(duì)照，每個(gè)處理設(shè)置3個(gè)重復(fù)。將青枯菌和棘孢木霉QZ2菌株分別接種于PDA固體培養(yǎng)基中，(28±1) ℃黑暗培養(yǎng)4 d后，用無菌槍頭挑取棘孢木霉QZ2和青枯菌單菌落，接種于100 mL的PDA液體培養(yǎng)基中，28 ℃，170 r·min-1轉(zhuǎn)速震蕩培養(yǎng)14 h，得到棘孢木霉QZ2與青枯菌的種子液，取100 μL接種于PDA固體培養(yǎng)基，(28±1) ℃黑暗培養(yǎng)4 d，待平板長(zhǎng)滿后，用直徑9 mm的打孔器獲得青枯菌的菌餅，接種于平板中央，用同樣方法得到棘孢木霉QZ2菌餅接種青枯菌左右間距40 mm位置。以只在中央接種青枯菌的平板作為對(duì)照，每個(gè)處理設(shè)置3個(gè)重復(fù)。接種后置于(28±1) ℃黑暗條件下培養(yǎng)，分別于培養(yǎng)4、6、8、10 d時(shí)測(cè)量青枯菌菌落直徑。用同樣方法進(jìn)行草酸青霉QZ8兩點(diǎn)法平板對(duì)峙試驗(yàn)。青枯菌生長(zhǎng)抑制率=(對(duì)照菌落直徑-處理的菌落直徑)/對(duì)照菌落直徑×100%。

1.2.2 生防菌滅菌發(fā)酵液對(duì)病原菌抑制效果 生防菌發(fā)酵液的制備參照程敏等[23]的方法，生防菌種子液的配置參照1.2.1，將種子液按照體積分?jǐn)?shù)為3%的接種量接種至500 mL的PDA液體培養(yǎng)基中，28 ℃、170 r·min-1震蕩培養(yǎng) 48 h，得到棘孢木霉 QZ2 和草酸青霉 QZ8 的發(fā)酵液。以 6 000 r·min-1離心 5 min 發(fā)酵液后，收集上清液，分別與PDA液體培養(yǎng)基按照1∶1的體積比均勻混合，并加入質(zhì)量濃度為20%的瓊脂粉，115 ℃高壓滅菌30 min，制成PDA與棘孢木霉QZ2發(fā)酵液的混合培養(yǎng)基。用直徑9 mm的打孔器獲取青枯菌菌餅，接種至棘孢木霉QZ2和草酸青霉QZ8的混合培養(yǎng)基的中央，用無菌水代替發(fā)酵液的PDA培養(yǎng)基平板作為對(duì)照，每個(gè)處理設(shè)置3個(gè)重復(fù)。分別于培養(yǎng)4、6、8、10 d時(shí)測(cè)量青枯菌菌落的直徑，抑菌率計(jì)算公式同1.2.1。

1.2.3 生防菌活性發(fā)酵液對(duì)病原菌生長(zhǎng)抑制效果的液培養(yǎng)試驗(yàn) 生防菌發(fā)酵液滅菌后一些活性物質(zhì)可能會(huì)失活，通過活性發(fā)酵液的液培試驗(yàn)進(jìn)一步研究生防菌抑菌機(jī)制。液培試驗(yàn)參照譚軍等[24]的方法，棘孢木霉QZ2和草酸青霉QZ8的初次發(fā)酵液制備參照1.2.1，然后通過無菌濾膜過濾，分別取100 mL棘孢木霉QZ2和青霉QZ8無菌發(fā)酵液，與NA液體培養(yǎng)基按照1∶1體積比混合均勻，制成含有棘孢木霉QZ2或草酸青霉QZ8發(fā)酵液的NA液體培養(yǎng)基。青枯菌種子液制備：用無菌槍頭挑取青枯菌單菌落，接種至裝有20 mL的NA液體培養(yǎng)基的三角瓶中，28 ℃、170 r·min-1搖床培養(yǎng)12 h，得到青枯菌種子液。取6 mL接種至生防菌發(fā)酵液NA混合培養(yǎng)基中，28 ℃、170 r·min-1搖床培養(yǎng)60 h。用滅菌的PDA代替發(fā)酵液與NA液體培養(yǎng)基混合均勻作為對(duì)照，每個(gè)處理3個(gè)重復(fù)。每隔6 h取樣，測(cè)定各培養(yǎng)時(shí)間菌液的D(600)，共計(jì)10次。通過D(600)比較不同環(huán)境中青枯菌的含量，并繪制青枯菌的生長(zhǎng)曲線。

1.2.4 生防菌對(duì)病原菌抑制效果的土培試驗(yàn) 鑒于土壤中微生物豐富多樣，本研究開展土培試驗(yàn)驗(yàn)證生防菌的生防效果。青枯菌菌液制備參照熊漢琴[25]的方法，青枯菌種子液的制備參照1.2.1，吸取2 mL青枯菌接種于200 mL NB液體培養(yǎng)基，28 ℃，170 r·min-1搖床培養(yǎng)36 h制作青枯菌的菌液，隨后將青枯菌菌液分裝于50 mL無菌離心管中，6 000 r·min-1離心5 min，去上清液，加無菌水，重復(fù)2次，最后加無菌水調(diào)整菌液含量，通過分光光度計(jì)測(cè)D(600)，使其含量達(dá)1011CFU·L-1。2株生防菌孢子液制備方法參考文獻(xiàn)[26]，首先分別將2種生防菌接種于PDA固體培養(yǎng)基中，在(28±1) ℃、黑暗條件下培養(yǎng)至孢子長(zhǎng)滿整個(gè)平板，將5 mL無菌水注射在平板上，用涂布棒刮下孢子溶解于無菌水中，用4層紗布過濾后得到孢子懸液，最后將孢子液稀釋到1010CFU·L-1。

采集無青枯菌污染的森林土，土壤pH 6.0～7.0，設(shè)置青枯菌+棘孢木霉(QZ2)、青枯菌+草酸青霉(QZ8)、青枯菌+無菌水(對(duì)照)3個(gè)處理，每處理9個(gè)重復(fù)，每個(gè)重復(fù)用100 g土。QZ2和QZ8處理分別將青枯菌菌液與棘孢木霉QZ2和草酸青霉QZ8孢子液按體積比1∶1混合后加入土中，每100 g土加13 mL混合液，置于(28±1) ℃的氣候培養(yǎng)箱培養(yǎng)。分別在3、7、14、20、28 d，用SMSA培養(yǎng)基，采用稀釋涂布平板法計(jì)數(shù)所有土壤中青枯菌菌落數(shù)量[25]。由于群體效應(yīng)，孢子在土壤中數(shù)量達(dá)到峰值需要一定時(shí)間，因此從處理7 d開始用孟加拉紅(虎紅)培養(yǎng)基和木霉選擇性培養(yǎng)基，采用稀釋涂布平板法，獲得棘孢木霉QZ2和草酸青霉QZ8菌落數(shù)量。

1.3 數(shù)據(jù)處理

用Excel 2010統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)，結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示；用SPSS 22.0處理工作平臺(tái)進(jìn)行單因素方差分析，顯著性水平取0.05；用Origin Pro 2019b繪圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 生防菌對(duì)青枯菌抑制效果

平板對(duì)峙結(jié)果(圖1和表1)表明：棘孢木霉QZ2對(duì)青枯菌有顯著的抑制效果(P＜0.05)，棘孢木霉QZ2的菌絲生長(zhǎng)速度明顯快于青枯菌生長(zhǎng)速度，與對(duì)照相比，青枯菌的生長(zhǎng)明顯受到棘孢木霉QZ2抑制，對(duì)峙培養(yǎng)4 d時(shí)棘孢木霉QZ2菌絲布滿了整個(gè)培養(yǎng)皿，包圍了青枯菌，抑制率為45.5%，之后青枯菌停止擴(kuò)大，對(duì)照青枯菌則持續(xù)生長(zhǎng)，10 d對(duì)照青枯菌也停止擴(kuò)大，此時(shí)棘孢木霉QZ2對(duì)青枯菌的抑制率達(dá)80.9%。草酸青霉QZ8對(duì)青枯菌也有顯著抑制效果，對(duì)峙培養(yǎng)4 d時(shí)草酸青霉QZ8對(duì)青枯菌抑制率為30.5%，之后草酸青霉QZ8繼續(xù)生長(zhǎng)，10 d時(shí)草酸青霉QZ8與青枯菌菌落直徑都不再擴(kuò)大，此時(shí)草酸青霉QZ8對(duì)青枯菌生長(zhǎng)抑制率達(dá)到45.9%。

表1 平板對(duì)峙中棘孢木霉 QZ2 和草酸青霉QZ8對(duì)青枯菌的抑制率Table 1 Inhibition rate of T. asperellum QZ2 and P. oxalicum QZ8 against R. solanacearum in plate confrontation

圖1 平板對(duì)峙試驗(yàn)樣本結(jié)果Figure 1 Result of plate confrontation experiment

2.2 生防菌滅菌發(fā)酵液對(duì)青枯菌的抑制效果

由圖2和表2可見：2株生防菌制成的滅菌發(fā)酵液均對(duì)青枯菌產(chǎn)生顯著的抑制效果(P＜0.05)。棘孢木霉QZ2滅菌發(fā)酵液平板中的青枯菌菌落生長(zhǎng)速度明顯比對(duì)照慢，3個(gè)處理的青枯菌菌落均在培養(yǎng)10 d時(shí)停止擴(kuò)大，故以10 d為試驗(yàn)結(jié)果的統(tǒng)計(jì)時(shí)間。2株生防菌發(fā)酵液的抑制率隨著培養(yǎng)時(shí)間的增加而增加，4 d時(shí)棘孢木霉QZ2發(fā)酵液對(duì)青枯菌抑制率僅為9.6%，10 d時(shí)最大抑制率達(dá)33.3%。草酸青霉QZ8發(fā)酵液對(duì)青枯菌抑制作用與棘孢木霉QZ2相似，10 d時(shí)最大抑制率為34.8%，抑制率略高于棘孢木霉QZ2發(fā)酵液，差異不顯著。

表2 棘孢木霉 QZ2 和草酸青霉 QZ8 滅菌發(fā)酵液對(duì)青枯菌的抑制情況Table 2 Inhibition effect of sterilized fermentation supernatant of biocontrol broth on the growth of R. solanacearum

圖2 生防菌滅菌發(fā)酵液平板培養(yǎng)結(jié)果Figure 2 Inhibitory effect of supernatant of sterilized fermentation broth incubated for 10 days

2.3 生防菌活性發(fā)酵液對(duì)青枯菌的抑制效果

由圖3可見：2株生防菌制成的活性發(fā)酵液均對(duì)青枯菌有顯著的抑制效果(P＜0.05)。對(duì)照培養(yǎng)6～18 h時(shí)青枯菌呈指數(shù)生長(zhǎng)，18～24 h時(shí)逐漸趨向穩(wěn)定，其生長(zhǎng)曲線與大部分細(xì)菌相似。但棘孢木霉QZ2處理在30和36 h時(shí)青枯菌D(600)下降，而草酸青霉QZ8處理則在24 h青枯菌D(600)達(dá)到峰值后呈緩慢下降，青枯菌較早進(jìn)入衰亡期。差異檢驗(yàn)結(jié)果表明：24 h以后，2株生防菌活性發(fā)酵液處理的青枯菌D(600)均顯著低于對(duì)照(P＜0.05)，其中草酸青霉QZ8處理的D(600)低于棘孢木霉QZ2；60 h時(shí)，三者之間的D(600)差異均顯著(P＜0.05)。

圖3 生防菌活性發(fā)酵液對(duì)青枯菌數(shù)量變化的影響Figure 3 Effect of efermination broth on number of soil R.solanacearum

2.4 生防菌在土壤中的抑菌效果

2.4.1 不同處理土壤青枯菌的數(shù)量變化 圖4表明：棘孢木霉QZ2與草酸青霉QZ8在土壤中均能抑制番茄青枯菌的生長(zhǎng)繁殖，其在4個(gè)測(cè)定時(shí)間的青枯菌數(shù)量均小于對(duì)照土壤；抑制效果最好的是7 d，QZ2與QZ8處理土壤中青枯菌數(shù)量均顯著低于對(duì)照(P＜0.05)，分別下降了51.3%和64.7%；28 d，QZ2與QZ8處理青枯菌數(shù)量比對(duì)照顯著下降了38.9%和34.1%(P＜0.05)；除20 d外，QZ8處理的青枯菌數(shù)量均顯著低于對(duì)照(P＜0.05)；前期(7、14 d)的抑制效果是QZ8好于QZ2，而后期(20、28 d)則相反。

圖4 不同處理土壤青枯菌數(shù)量變化Figure 4 Number of R. solanacearum in soil under different treatments

2.4.2 土壤中棘孢木霉 QZ2和草酸青霉 QZ8的數(shù)量變化 圖5表明：棘孢木霉 QZ2數(shù)量在處理 7 d時(shí)處于低位，14 d達(dá)峰值，隨后逐漸開始下降。草酸青霉QZ8數(shù)量在處理14 d時(shí)達(dá)到峰值，且明顯多于棘孢木霉QZ2，但之后急劇下降，20 d時(shí)與棘孢木霉QZ2相近，28 d時(shí)反而少于棘孢木霉QZ2。

圖5 土壤中棘孢木霉 QZ2 和草酸青霉 QZ8 的數(shù)量變化Figure 5 Quantitative changes of T. asperellum QZ2 and P. oxalicum QZ8 in soil

3 討論與結(jié)論

木霉菌的拮抗機(jī)制包括營(yíng)養(yǎng)和空間競(jìng)爭(zhēng)、重寄生、分泌有活性代謝產(chǎn)物、誘導(dǎo)宿主植物抗性等[27]。通過平板對(duì)峙試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)：棘孢木霉QZ2生長(zhǎng)速度明顯快于青枯菌，8 d時(shí)已將青枯菌包圍，10 d時(shí)占領(lǐng)整個(gè)生存空間和營(yíng)養(yǎng)空間，對(duì)青枯菌抑制率達(dá)80.9%。黃遠(yuǎn)迪等[28]研究發(fā)現(xiàn)：棘孢木霉菌株GX004對(duì)尖孢鐮刀菌在平板上的抑制率達(dá)85.2%；張曉夢(mèng)等[29]發(fā)現(xiàn)棘孢木霉發(fā)酵11 d時(shí)的無菌濾液對(duì)枸杞炭疽病菌Collectotrichum gloeosporioides的抑制率達(dá)85.3%?？梢娂吣久挂种菩Ч己谩Ｆ桨鍖?duì)峙培養(yǎng)過程中草酸青霉QZ8的生長(zhǎng)速度與青枯菌基本一致，也沒有發(fā)現(xiàn)明顯的抑制帶，可以推測(cè)草酸青霉QZ8能分泌某些代謝產(chǎn)物，從而抑制青枯菌生長(zhǎng)。培養(yǎng)10 d時(shí)草酸青霉QZ8對(duì)青枯菌抑制率為45.9%，抑制效果較好。張先富[30]研究發(fā)現(xiàn)：草酸青霉A1對(duì)尖孢鐮刀菌抑制率為47.1%，且草酸青霉A1與尖孢鐮刀菌菌落交界處會(huì)產(chǎn)生抑菌帶。說明草酸青霉具有較好的生防效果。

本研究結(jié)果表明：2株生防菌高溫滅菌發(fā)酵液和無菌過濾發(fā)酵液均對(duì)青枯菌有顯著的抑制作用。高溫滅菌發(fā)酵液平板試驗(yàn)中，棘孢木霉QZ2和草酸青霉QZ8在混合培養(yǎng)基上培養(yǎng)10 d時(shí)最大抑制率分別為33.3%和34.8%。無菌過濾發(fā)酵液液培試驗(yàn)中，草酸青霉QZ8對(duì)青枯菌的抑制效果顯著好于棘孢木霉QZ2。前人研究發(fā)現(xiàn)：木霉和青霉均能產(chǎn)生豐富的代謝產(chǎn)物，其中具有抑菌作用的有聚酮類、生物堿、萜類、大環(huán)內(nèi)酯、纖維素酶和幾丁質(zhì)酶等物質(zhì)[31-32]。棘孢木霉QZ2與草酸青霉QZ8滅菌發(fā)酵液對(duì)青枯菌的抑制效果差別不大，說明均存在耐高溫的抑菌物質(zhì)，而未滅菌發(fā)酵液青霉QZ8抑制作用明顯強(qiáng)于木霉QZ2，說明草酸青霉QZ8發(fā)酵液中的某些不耐高溫活性物質(zhì)如生物堿、酶類化合物，對(duì)青枯菌的生長(zhǎng)起到較強(qiáng)的抑制作用。

棘孢木霉QZ2和草酸青霉QZ8在土壤中的抑菌效果顯著，在處理28 d時(shí)青枯菌數(shù)量顯著下降，對(duì)照土壤中青枯菌數(shù)量始終高于2株生防菌處理的土壤中青枯菌數(shù)量。草酸青霉QZ8在處理7、14 d時(shí)的抑制效果好于棘孢木霉QZ2，后期則相反，這與土壤中草酸青霉QZ8和棘孢木霉QZ2數(shù)量的動(dòng)態(tài)變化規(guī)律一致，說明草酸青霉QZ8比棘孢木霉QZ2能更快地在土壤中萌發(fā)、定殖，并發(fā)揮生防作用。

本研究的2株生防菌對(duì)青枯菌均有較好的抑制效果，抑制機(jī)制為營(yíng)養(yǎng)和空間競(jìng)爭(zhēng)、分泌有活性代謝產(chǎn)物等，其中棘孢木霉QZ2以營(yíng)養(yǎng)和空間競(jìng)爭(zhēng)作用為主，而草酸青霉QZ8則以代謝產(chǎn)物的抑制作用為主。兩者均是防治番茄青枯病的潛在生防菌，它們?cè)谕寥酪约胺洋w內(nèi)定殖情況需進(jìn)一步研究。