李春緣,梁克峰,任瑞文,陳迪佳,劉 炅,劉 軍,陳 月,田 靖
(南部戰(zhàn)區(qū)疾病預(yù)防控制中心,廣東省蟲媒病毒性傳染疾病應(yīng)急技術(shù)研究中心,廣州 510507)
流行性乙型腦炎(Japanese encephalitis,JE)是由流行性乙型腦炎病毒(Japanese encephalitis virus,JEV)感染導(dǎo)致,據(jù)世界衛(wèi)生組織(World Health Organization,WHO)估算,全球每年約有6.8 萬臨床病例。我國、東南亞和西太平洋地區(qū)為JE 主要流行區(qū)[1],全球約一半的JE 病例發(fā)生在我國,除新疆、青海和西藏之外的多數(shù)省市均有分布[2]。JE 發(fā)病急,可表現(xiàn)出不同程度的意識障礙,嚴(yán)重病例可出現(xiàn)中樞性呼吸衰竭,致死率高達30%,存活的患者中30%~50%會留下永久性神經(jīng)損傷或嚴(yán)重精神后遺癥,目前尚無特效治療方法[3]。媒介蚊蟲作為JEV 擴增的中間宿主,是JEV 傳播的重要途徑,我國熱區(qū)氣候炎熱潮濕,媒介蚊蟲滋生迅速,JE 的威脅尤為嚴(yán)重[4]。
大部分JE 患者為非癥狀感染者,僅0.1%~1%的感染者表現(xiàn)為腦炎癥狀,給疾病診斷和監(jiān)測帶來困難[5]。作為JE 診斷的金標(biāo)準(zhǔn),中和試驗操作煩瑣費時,僅用于實驗室檢測,在臨床中應(yīng)用較少。在臨床診斷中,最常用的血凝抑制實驗操作較為簡單,但該方法靈敏性較低,特異性較差。因此,建立準(zhǔn)確、快速的篩查和診斷方法,對于掌握J(rèn)E 的真實流行病學(xué)數(shù)據(jù)以及制訂疾病防控策略具有重要意義。膠體金法操作簡便,對操作人員要求低,且人體感染JEV 后引起的免疫反應(yīng)可以持續(xù)終生,其IgG 抗體的檢測不受采樣時間的限制,因此,該方法在流行病學(xué)調(diào)查及臨床評估中具有重要的應(yīng)用價值[6]。本研究基于前期篩選鑒定的JEV 特異性原核表達抗原[7],利用免疫層析技術(shù)制備膠體金快檢試紙條,并對技術(shù)參數(shù)進行系統(tǒng)優(yōu)化與評估,為醫(yī)療條件較差的基層部隊單位提供JE 快速篩查的新手段。
JEV 高特異性原核表達抗原JEVAg45 由本實驗室篩選和鑒定,由基因工程菌株pMAL-JEVAg45表達[7]。
膠體金溶液(粒徑20 nm)購自珠海博美生物有限公司;金黃色葡萄球菌蛋白A(staphylococal protein A,SPA)和膠體金耗材套裝[包括硝酸纖維素膜(NC 膜)、玻璃纖維素膜、樣品墊、吸水紙、底襯板等]均購自上海杰一生物技術(shù)公司;人IgG 抗體購自上海羽朵生物科技有限公司;Amylose 樹脂購自NEB公司。
將基因工程菌株pMAL-JEVAg45 接種于細(xì)菌基礎(chǔ)培養(yǎng)基(luria broth,LB),當(dāng)OD 值(光密度)為0.6 時,經(jīng)異丙基-β-D-硫代半乳糖苷(isopropyl beta-D-thio-galactopyranoside,IPTG)誘導(dǎo)表達,之后收集菌體并經(jīng)超聲破碎后,采用NEB 公司的Amylose 樹脂利用親和層析法純化重組蛋白,使用核酸蛋白分析儀測定其濃度,于-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.4.1 最佳pH 值確定
用0.1 mol/L 的碳酸鉀溶液將膠體金溶液的pH值調(diào)整為5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0、9.5、10.0,各取100 μL 分別加入3 μg 的SPA,重復(fù)3 次,靜置5 min 后加入20 μL 10%的NaCl 溶液,混勻,在室溫下放置10 min,以溶液能保持紅色的最低pH 值作為最佳pH 值。本研究中,當(dāng)pH≥7.5 時膠體金溶液保持鮮艷紅色,因此確定SPA 標(biāo)記的最佳pH 值為7.5。
1.4.2 最適SPA 標(biāo)記濃度確定
取最佳pH 值的膠體金溶液100 μL,分別加入3~7 μL 的SPA(1 mg/mL),每間隔0.5 μL 為1 個梯度,重復(fù)3 次,混勻后室溫放置15 min,加入20 μL 10%的NaCl 溶液,室溫放置2 h 后,記錄仍保持紅色的最小蛋白用量,在此基礎(chǔ)上增加10%,確定為最適SPA 標(biāo)記濃度。
1.4.3 金標(biāo)SPA 制備
取30 mL 最佳pH 值膠體金溶液,在250 r/min攪拌下,逐滴加入最適標(biāo)記濃度SPA 溶液1 mL,攪拌30 min 后逐滴加入10%的聚乙二醇20000(PEG 20000)溶液至最終濃度為0.25%,室溫3 000 r/min離心15 min,棄沉淀,取紅色上清液;紅色上清液于4 ℃、11 000 r/min 離心35 min,取沉淀,用1%的牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)將沉淀混懸至原體積,重復(fù)離心2 次,以去除未結(jié)合的蛋白質(zhì);用含1%的BSA 和0.02 mol/L NaN3的磷酸鹽緩沖溶液(phosphate buffered saline,PBS)重懸沉淀至原體積的1/10,即為金標(biāo)記SPA,于4 ℃保存?zhèn)溆?。最佳pH 值條件下,在SPA 為34.33~65.42 μg/mL 范圍內(nèi),當(dāng)SPA添加濃度至52.13 μg/mL 時,標(biāo)記溶液仍可保持鮮艷紅色,為保證標(biāo)記反應(yīng)的穩(wěn)定性,最終確定膠體金標(biāo)記的SPA 濃度為60.00 μg/mL。
在NC 膜上,用不同濃度的JEVAg45 蛋白繪制檢測線(T 線),用不同濃度的人IgG 抗體繪制質(zhì)控線(C 線),間距為0.5 cm,自然晾干,切割成5 mm 寬的檢測試紙條,置4~8 ℃干燥保存?zhèn)溆?。包被抗原濃度實驗表明,在過高的蛋白濃度條件下,試紙條的檢測敏感性顯著降低,過高的包被濃度導(dǎo)致較高的假陽性率,最終確定JEVAg45 抗原與人IgG 抗體NC膜最佳使用濃度分別為1.2 與0.9 mg/mL。
將玻璃纖維素膜用金標(biāo)記SPA 溶液浸泡,真空冷凍干燥后,制備金標(biāo)墊;在底襯板中間固定NC膜,一端貼吸水紙,另一端貼樣品墊,樣品墊下貼金標(biāo)墊,室溫下加干燥劑后密封保存。膠體金快檢試紙條成品如圖1 所示。
圖1 膠體金快檢試紙條成品
2.1.1 實驗毒株
JEV、黃熱病毒(yellow fever virus,YFV)、西尼羅河病毒(West Nile virus,WNV)、登革熱病毒1~4 型(Dengue virus type 1~4,DEV1-4)、基孔肯雅病毒(Chikungunya virus,CHIKV)、辛德畢斯病毒(Sindbis virus,SINV)、蓋塔病毒(Getah virus,GETV)、羅斯河病毒(Ross River virus,RRV)、鷺山病毒(Sagiyama virus,SAGV)、西門利克森林病毒(Semliki Forest virus,SFV)、瑪雅羅病毒(Mayaro virus,MAYV)均由中國藥品生物制品檢定所引進,本研究室傳代保存。
2.1.2 標(biāo)本來源
12 例JE 患者血清標(biāo)本于2007—2009 年期間收集于廣州及周邊地區(qū);20 例登革熱患者血清標(biāo)本于2014 年7—11 月收集于廣東省武警總隊醫(yī)院、解放軍第458 醫(yī)院(現(xiàn)南部戰(zhàn)區(qū)空軍醫(yī)院)、解放軍第421 醫(yī)院(現(xiàn)陸軍第74 集團軍醫(yī)院);6 例基孔肯雅熱患者血清標(biāo)本于2010 年收集于廣東省東莞市;1例黃熱病患者血清標(biāo)本收集于新疆地區(qū)。所有標(biāo)本均經(jīng)實驗室反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(reverse transcriptionpolymerase chain reaction,RT-PCR)法確診。20 例陰性血清收集于健康體檢人群,經(jīng)實驗室檢測確診為JEV 抗體陰性。
2.1.3 多克隆抗體(以下簡稱“多抗”)制備
將JEV 及13 種相近蟲媒病毒C6/36 細(xì)胞培養(yǎng)物100 倍稀釋,按200 μL/只分別接種于3 日齡昆明乳鼠,待其規(guī)律發(fā)病后將鼠腦研磨、離心、取上清,分別用0.01 mol/L PBS 進行10 倍稀釋,按常規(guī)程序多點注射給免疫6~8 周齡昆明小鼠(300 μL/只),4 次免疫后在小鼠腹腔注射S180 細(xì)胞,3~5 d 后收集的腹水即為病毒多克隆抗體。利用免疫熒光法測定抗體效價后,于-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
2.1.4 敏感性、特異性、穩(wěn)定性及臨床評估
用含2% BSA 的生理鹽水將JEV 多抗按1∶10~1∶5 120 進行稀釋,測定膠體金快檢試紙條的敏感性及穩(wěn)定性。將13 種相近蟲媒病毒多抗按1∶20 稀釋后作為參考樣品,并設(shè)置陰性血清對照,鑒定試紙條的特異性。采用以上血清標(biāo)本進行試紙條的臨床評估。
2.2.1 膠體金快檢試紙條的敏感性及穩(wěn)定性
敏感性實驗表明,所制備試紙條在JEV 多抗1∶10~1∶640 稀釋條件下均能清晰顯示陽性結(jié)果(免疫熒光效價為1∶320),在1∶1 280 稀釋時陽性條帶不明顯(如圖2 所示),表明其具有較高的檢測敏感性與較大的檢測線性范圍。穩(wěn)定性實驗表明,采用3 個不同批次試紙條的檢測結(jié)果一致,表明該試紙條穩(wěn)定性較好。
圖2 膠體金快檢試紙條敏感性實驗結(jié)果
2.2.2 膠體金快檢試紙條的特異性
特異性實驗表明,所制備試紙條僅與JEV 多抗呈陽性反應(yīng),與黃熱病毒、西尼羅河病毒、基孔肯雅病毒、登革熱病毒1~4 型、辛德畢斯病毒、瑪雅羅病毒、蓋塔病毒、鷺山病毒、羅斯河病毒、西門利克森林病毒等其他13 種相近蟲媒病毒多抗均無交叉反應(yīng),表明該試紙條具有良好的特異性(如圖3 所示)。
圖3 膠體金快檢試紙條特異性實驗結(jié)果
2.2.3 膠體金快檢試紙條的臨床評估
膠體金快檢試紙條的臨床樣本評估結(jié)果表明,12 例JE 患者血清檢測結(jié)果均為陽性,20 例登革熱、1 例黃熱病、6 例基孔肯雅熱患者血清及20 例健康體檢者血清均為陰性。采用免疫熒光法對上述樣本進行檢測,檢測出陽性樣本12 例,陰性樣本47 例,制備的膠體金快檢試紙條與免疫熒光法的評估結(jié)果符合率為100%,表明所研制的試紙條具備較高的敏感性與特異性(見表1)。
表1 符合性試驗結(jié)果單位:例
近年來,研究人員對JEV 檢測方法的研究多偏重于核酸檢測,但JE 患者病毒血癥持續(xù)時間短、病毒在腦脊液中的滴度較低以及病毒RNA 不穩(wěn)定性等因素,給JEV 的核酸檢測帶來困難[8-9]。同時,核酸檢測方法對設(shè)備和人力有較高要求,在基層衛(wèi)生單位實施起來有一定難度。目前,基于血清學(xué)的檢測方法仍是JE 臨床診斷的主要方法,其中,微量中和試驗是公認(rèn)的血清學(xué)檢測金標(biāo)準(zhǔn),但操作復(fù)雜、耗時,而補體結(jié)合試驗、血凝抑制試驗等的特異性、敏感性較差,在臨床中已較少使用[10]。酶聯(lián)免疫吸附實驗因具有特異性強、敏感性高等優(yōu)勢而被廣泛采用。馬淑娟等[11]評估了3 種豬JEV 商品化IgG 抗體酶聯(lián)免疫吸附測定(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒,結(jié)果表明其靈敏度介于41.94%~90.32%之間,特異度介于16.95%~79.66%之間,表明檢測質(zhì)量仍有待提高。
膠體金免疫層析技術(shù)操作簡單、快速,對操作人員、設(shè)備要求較低,非常適合基層大批量樣本的現(xiàn)場篩查[12]。田純見等[13]以豬JEV 標(biāo)準(zhǔn)株作為抗原,提出JEV 抗體的膠體金免疫層析檢測方法,經(jīng)評估和豬繁殖與呼吸綜合征、豬瘟、Ⅱ型圓環(huán)病毒病等無免疫學(xué)交叉反應(yīng)。但在人群血清學(xué)檢測方面,JEV 隸屬黃病毒屬,該類病毒之間的序列相似度較高,相互之間存在嚴(yán)重的血清學(xué)交叉反應(yīng),由于混合感染,患者體內(nèi)存在交叉抗體,采用全病毒抗原難以避免與登革熱等相近病毒的免疫學(xué)交叉反應(yīng)[13-14],對診斷抗原的特異性要求較高,現(xiàn)階段市面上仍無成熟的用于人JE 診斷的膠體金快檢試劑盒銷售。為解決上述問題,本研究對JEV 抗原表位進行了較為系統(tǒng)的分析,在保證其免疫學(xué)反應(yīng)親和力的前提下,盡量縮短診斷用抗原長度,以減少非特異性反應(yīng)。在此基礎(chǔ)上,基于標(biāo)準(zhǔn)毒株、地方流行株及臨床標(biāo)本資源,對試紙條進行了詳細(xì)評估,結(jié)果表明試紙條具有良好的敏感性和特異性,可清晰檢測到按1∶640 稀釋的JEV 抗體,與所試的10 余種相近蟲媒病毒均無交叉反應(yīng),與歷年來地方流行株抗血清均呈陽性反應(yīng)。本研究臨床評估階段中制備的膠體金試紙條與免疫熒光法檢測結(jié)果的符合率為100%。但收集的樣品數(shù)量較少,考慮到臨床中的大規(guī)模樣品檢測,故在接下來的實驗中應(yīng)增加臨床JEV 陽性樣本數(shù),加強陽性質(zhì)控,實現(xiàn)試紙條的標(biāo)準(zhǔn)化,為快檢試劑盒的研制奠定基礎(chǔ),也為基層衛(wèi)生單位快速篩查診斷JE 提供新的技術(shù)手段。