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4種脾虛造模法的橫向?qū)Ρ妊芯?

2022-02-28 13:15王啟航陸瑞敏陳萌張冬梅
天津中醫(yī)藥 2022年2期
關(guān)鍵詞:苦寒造模脾虛

王啟航,陸瑞敏,陳萌,張冬梅

(1.北京中醫(yī)藥大學(xué)中醫(yī)學(xué)院,北京 100029;2.北京中醫(yī)藥大學(xué)東直門醫(yī)院,北京 100700)

隨著社會(huì)的發(fā)展,人們壓力增大、飲食不規(guī)律等問題日益增多,結(jié)合暖期多虛寒的疾病譜特征[1],致當(dāng)代脾胃疾病多發(fā)。而脾氣的健運(yùn)與否也很大程度決定了人體健康與否。在越來越重視“治未病”的今天,展開脾胃生理功能、脾虛發(fā)生機(jī)制的研究,無疑有著重要的時(shí)代意義。中醫(yī)造模實(shí)驗(yàn)是一種現(xiàn)代形式的“比類取象”,它使整個(gè)生物科學(xué)成為了中醫(yī)學(xué)發(fā)展的基礎(chǔ)[2],研究脾虛動(dòng)物模型是研究脾胃理論的理想切入點(diǎn)。有關(guān)脾虛模型的復(fù)制方法逐漸多樣化、復(fù)雜化[3],但是缺少模型間的橫向?qū)Ρ燃皩?dǎo)致脾虛的病因探討。有鑒于此,筆者復(fù)制了苦寒瀉下、飲食失節(jié)、勞倦過度、利血平注射4種經(jīng)典脾虛模型,并從宏觀、免疫、消化、血液、線粒體功能角度進(jìn)行系統(tǒng)評(píng)價(jià)以比較模型損傷程度及適用性,希冀為脾虛的發(fā)生機(jī)制提供研究價(jià)值。

1 材料與方法

1.1 動(dòng)物 SPF級(jí)雄性昆明小鼠100只,體質(zhì)量18~22 g,購于斯貝福(北京)生物技術(shù)有限公司,許可證編號(hào)SYXK2019-0010。常規(guī)飼養(yǎng)于北京中醫(yī)藥大學(xué)SPF級(jí)動(dòng)物房。

1.2 藥物與試劑 番瀉葉配方顆粒150 g,北京康仁堂藥業(yè)有限公司生產(chǎn),購于北京中醫(yī)藥大學(xué)東直門醫(yī)院;利血平粉末(RH45599-1)購于北京百諾威生物科技有限公司;冰乙酸(20180911)購于天津市富宇精細(xì)化工有限公司;血清D-木糖檢測(cè)試劑盒(20180504)購于南京建成生物工程研究所;Trizol(A8404-1)購于 Invitrogen公司;SYBR Premix EX TaqII Kit(AK2901)、Prime Script TMR Treagent Kit(AK2003)購于 TaKaRa公司;DEPCH2O(20190811)、磷酸鹽緩沖液(20190522)、PCR 引物(20190818)、TIA Namp Genomic DNA Kit(201900526)、DNaseI(20190928)、Promega(M610A)購于北京晶萊生物有限公司。

1.3 儀器設(shè)備 DK-8D型電熱恒溫水浴鍋(上海一恒科技有限公司)、MB10Kpw型電子天平(上海??惦娮觾x器廠)、BC-2300型血液分析儀(深圳邁瑞生物醫(yī)療電子股份有限公司)、精密電子天平(JA2003 SHP07003,上海恒平科學(xué)儀器有限公司)、TU-1800S型紫外分光光度計(jì)、Scanspeed1730R型低溫離心機(jī)(Labogene公司)、Rotor-Gene 3000 Realtime PCR儀(Orbett Research公司)、EDTA抗凝血管(博士德生物工程有限公司)。

1.4 模型制備 將小鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)3 d后,按如下分組,見表1。

表1 各組小鼠造模方法Tab.1 Modeling methods of mice in each group

記錄各組小鼠進(jìn)食量、體質(zhì)量。造模持續(xù)10 d后,隨機(jī)取10只小鼠做相關(guān)指標(biāo)檢測(cè),10只小鼠自然恢復(fù)10 d,觀察各組宏觀指標(biāo)的穩(wěn)定性。

1.5 宏觀指標(biāo)評(píng)價(jià) 記錄各組小鼠進(jìn)食量、體質(zhì)量變化,觀察小鼠是否出現(xiàn)懶動(dòng)、拱背、扎堆、瞇眼、毛色枯黃、毛色稀少、耳尾色白、腹面被毛憔悴、抓取無力掙扎、受驚動(dòng)時(shí)無神、軟便、便溏、泄瀉、受激排便率增高等癥狀,出現(xiàn)某一癥狀記1分,對(duì)各組小鼠得分進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,比較宏觀體征得分[5]。

1.6 宏觀指標(biāo)穩(wěn)定性評(píng)價(jià) 分別記錄脾虛模型造模結(jié)束后和自然恢復(fù)10 d后各組小鼠體質(zhì)量、進(jìn)食量變化。然后,采用綁尾迫使小鼠強(qiáng)制游泳至力竭,游泳水溫為22℃,小鼠游泳以連續(xù)“冒泡”5次為力竭標(biāo)志,記錄游泳時(shí)長。

1.7 理化指標(biāo)檢測(cè) 造模結(jié)束后,小鼠摘眼球取血,血液分析儀檢測(cè)紅細(xì)胞(RBC)、白細(xì)胞(WBC)、血紅蛋白(HGB)。4℃靜置2 h后,以5 000 r/min,4℃離心5 min,離心半徑18 cm,取上清,比色法測(cè)定血清D-木糖水平,操作按試劑盒說明進(jìn)行。碘-淀粉酶比色法測(cè)定小鼠血清淀粉酶活性。記錄胸腺、脾臟質(zhì)量,計(jì)算胸腺、脾臟指數(shù)。臟器指數(shù)=臟器質(zhì)量(mg)/體質(zhì)量(g)。

1.8 mtDNA拷貝數(shù)及線粒體自噬相關(guān)蛋白Pink1、Parkin mRNA的表達(dá) 采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR法進(jìn)行檢測(cè)。取1 mm3大小的新鮮肝組織若干塊,按TIA Namp Genomic DNA Kit說明書提取總DNA。根據(jù)SYBR Premix EX TaqII Kit說明書進(jìn)行擴(kuò)增,擴(kuò)增程序?yàn)椋?5 ℃×60 s,(95 ℃×15 s,60 ℃×60 s)×40 個(gè)循環(huán),以 β-actin 為內(nèi)參照,所得 CT 值按照 2-ΔΔCt的方法進(jìn)行均一化處理后再進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,得出相對(duì)mtDNA拷貝數(shù)。引物序列如下,見表2。

表2 ND1 及 β-actin 引物序列(3′-5′)Tab.2 ND1 and β-actin primer sequences(3′-5′)

取適量組織,按Total RNA Extraction Kit說明書提取總RNA,DNaseI去基因組并用紫外分光光度儀檢測(cè)純度與完整性。根據(jù)Prime Script TMR Treagent Kit說明書進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,cDNA-20℃保存。按照mRNA/lncRNA qPCR Kit說明書進(jìn)行擴(kuò)增,擴(kuò)增程序?yàn)椋?5 ℃×60 s,(95 ℃×10 s,58℃×30 s)×39 個(gè)循環(huán),以β-actin為內(nèi)參照,將所得CT值按照2-ΔΔCt的方法進(jìn)行均一化處理再進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,得出線粒體自噬相關(guān)蛋白Pink1、Parkin mRNA水平。引物序列如下,見表3。

表3 Pink1、Parkin 及內(nèi)參引物序列(3′-5′)Tab.3 Pink1,Parkin,and the internal reference primer sequences(3′-5′)

1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用SPSS 24.0軟件處理。計(jì)量資料以均值±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,數(shù)據(jù)正態(tài)且方差齊多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD法,非正態(tài)或方差不齊組間比較采用非參數(shù)檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 各組小鼠宏觀指標(biāo)比較 與空白對(duì)照組相比,各組宏觀體征均有顯著變化(P<0.05)。其中,利血平組宏觀體征得分最高,飲食失節(jié)組最低。與空白對(duì)照組相比,各造模組小鼠造模后體質(zhì)量與進(jìn)食量平均值均有所下降(P<0.05),差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,以利血平組差異明顯。綜上利血平組小鼠脾虛癥狀表現(xiàn)、進(jìn)食量與體質(zhì)量變化最為顯著,飲食不節(jié)法因造模方法沖突故不參與統(tǒng)計(jì)。見表4。

表4 脾虛小鼠宏觀指標(biāo)比較(±s)Tab.4 Comparison of macroscopic indicators in spleen deficiency mice(±s)

表4 脾虛小鼠宏觀指標(biāo)比較(±s)Tab.4 Comparison of macroscopic indicators in spleen deficiency mice(±s)

注:與空白對(duì)照組比較,*P<0.05,**P<0.01。

造模結(jié)束后體質(zhì)量(g)空白對(duì)照組 10 - 15.9 31.5±2.6苦寒瀉下組 10 12.30±0.3** 11.2 26.3±2.6*利血平組 10 13.40±0.2** 5.1 23.4±2.2**飲食失節(jié)組 10 8.80±0.2* - 27.8±2.5*勞倦過度組 10 11.20±0.3** 14.8 28.2±2.9*組別 動(dòng)物數(shù) 宏觀體征得分造模結(jié)束后進(jìn)食量(g)

2.2 各組小鼠宏觀指標(biāo)穩(wěn)定性比較 自然恢復(fù)10 d后,與空白對(duì)照組相比,苦寒瀉下組、利血平組、飲食失節(jié)組體質(zhì)量仍未達(dá)到正常水平(P<0.05),差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,勞倦過度組體質(zhì)量水平無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05);各模型組小鼠進(jìn)食量恢復(fù)并超出空白對(duì)照組水平,進(jìn)食量發(fā)生“報(bào)復(fù)式”增長。其中,利血平組增長最多,苦寒瀉下組增長最少;造模結(jié)束后,苦寒瀉下組、飲食失節(jié)組、勞倦過度組小鼠游泳至力竭的時(shí)長均降低(P<0.05),以利血平組與苦寒瀉下組差異顯著(P<0.01),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。自然恢復(fù)10 d后,苦寒瀉下組與飲食失節(jié)組小鼠仍有低于對(duì)照組的趨勢(shì)(P<0.05),差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。綜上苦寒瀉下組與飲食失節(jié)組小鼠癥狀更穩(wěn)定,飲食不節(jié)組與勞倦過度組因造模方法沖突故不參與統(tǒng)計(jì)。見表5。

表5 脾虛小鼠宏觀指標(biāo)穩(wěn)定性比較(±s)Tab.5 Comparison of macroscopic index stability in spleen deficiency mice(±s)

表5 脾虛小鼠宏觀指標(biāo)穩(wěn)定性比較(±s)Tab.5 Comparison of macroscopic index stability in spleen deficiency mice(±s)

注:與空白對(duì)照組比較,*P<0.05,**P<0.01。

自然恢復(fù)10 d后游泳時(shí)長(min)空白對(duì)照組 10 30.6±2.4 35.7±2.4 16.4 17.3 9.2±2.4 11.3±4.3苦寒瀉下組 10 24.6±3.6* 30.6±2.4* 10.3 17.9 4.1±1.3** 7.9±3.4*利血平組 10 22.7±2.2** 29.9±3.2* 5.3 18.7 14.5±3.1** 11.5±4.6飲食失節(jié)組 10 25.2±3.0* 29.6±3.5* - - 6.1±2.8* 8.9±3.6*勞倦過度組 10 26.9±2.1* 34.3±2.6 16.2 18.6 - -組別 動(dòng)物數(shù)造模結(jié)束后體質(zhì)量(g)自然恢復(fù)10 d后體質(zhì)量(g)造模結(jié)束后進(jìn)食量(g)自然恢復(fù)10 d后進(jìn)食量(g)游泳至力竭時(shí)長(min)

2.3 各組小鼠理化指標(biāo)比較 與空白對(duì)照組相比,各模型組小鼠血清D-木糖水平低于正常組(P<0.05),說明各組造模成功;勞倦過度組胸腺指數(shù)下降最顯著(P<0.05),其次是利血平組(P<0.05),苦寒瀉下組變化最?。≒<0.05),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;利血平組脾臟指數(shù)下降最顯著(P<0.05),苦寒瀉下組次之(P<0.05),飲食失節(jié)組有所上升(P<0.01),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;血清淀粉酶活性均有所降低,變化以利血平組最為顯著(P<0.01);利血平組 RBC 下降最為明顯(P<0.01),其次為苦寒瀉下組(P<0.01),勞倦過度組有所上升(P<0.05),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;利血平組 WBC 下降最明顯(P<0.05),其次為苦寒瀉下組(P<0.05),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;利血平組HGB下降最為顯著(P<0.05),其次為苦寒瀉下組(P<0.05),勞倦過度組有所上升(P<0.01),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。綜上,利血平組小鼠理化指標(biāo)變化明顯,其次為苦寒瀉下組。見表6。

表6 脾虛小鼠理化指標(biāo)比較(±s)Tab.6 Comparison of physical and chemical indexes of spleen deficiency mice(±s)

表6 脾虛小鼠理化指標(biāo)比較(±s)Tab.6 Comparison of physical and chemical indexes of spleen deficiency mice(±s)

注:與空白對(duì)照組比較,*P<0.05,**P<0.01。

外周血指標(biāo)RBC(×1012/L) WBC(×109/L) HGB(g/L)空白對(duì)照組 10 5.14±0.12 2.98±0.27 4.96±0.19 718.94±15.49 7.37±0.59 6.42±0.93 139.47±13.74苦寒瀉下組 10 2.84±0.22** 2.72±0.34* 4.39±0.57* 633.28±17.58* 6.23±1.08* 5.73±1.29* 128.16±10.42*利血平組 10 2.12±0.26** 2.63±0.47* 4.17±0.62* 603.19±19.73** 5.93±1.16** 5.13±1.67* 120.95±11.73*飲食失節(jié)組 10 3.79±0.19* 2.80±0.41 5.87±0.51** 622.17±20.15** 6.43±0.93 6.23±0.85 126.45±14.94勞倦過度組 10 3.93±0.16* 2.54±0.33* 4.82±0.83 667.87±17.94 8.94±0.97* 5.43±1.36 148.74±12.69**組別 動(dòng)物數(shù) 血清D-木糖水平(Inmol/L)胸腺指數(shù)(mg/g)脾臟指數(shù)(mg/g)血清淀粉酶(U/100 mL)

2.4 各組小鼠mtDNA拷貝數(shù)、Pink1、Parkin mRNA表達(dá)水平比較 與空白對(duì)照組比較,飲食失節(jié)組mtDNA 拷貝數(shù)下降最為顯著(P<0.01),其次苦寒瀉下組(P<0.05),勞倦過度組下降較少(P<0.05),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;苦寒瀉下組Pink1mRNA轉(zhuǎn)錄水平降低最為顯著(P<0.01),其次飲食失節(jié)組(P<0.05),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;利血平組Parkin mRNA轉(zhuǎn)錄水平上升(P<0.05),差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,其他組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。綜上,飲食失節(jié)與苦寒瀉下組小鼠線粒體功能改變明顯。見表7。

表7 脾虛小鼠mtDNA相對(duì)拷貝數(shù)比較(±s)Tab.7 Comparative copy number comparison of mtDNA in spleen deficient mice(±s)

表7 脾虛小鼠mtDNA相對(duì)拷貝數(shù)比較(±s)Tab.7 Comparative copy number comparison of mtDNA in spleen deficient mice(±s)

注:與空白對(duì)照組比較,*P<0.05,**P<0.01。

組別 動(dòng)物數(shù)mtDNA相對(duì)拷貝數(shù) Pink1 mRNA Parkin mRNA空白對(duì)照組 10 1.140±0.120 1.024±0.068 1.049±0.156苦寒瀉下組 10 0.840±0.220* 0.612±0.083**1.028±0.172利血平組 10 1.120±0.260 0.973±0.126 1.319±0.165*飲食失節(jié)組 10 0.790±0.190** 0.893±0.097*1.057±0.176勞倦過度組 10 0.930±0.160* 0.997±0.164 1.059±0.247

3 討論

中醫(yī)在臨床診斷中常常是司外揣內(nèi)的,常以乏力懶言,語聲低微,四肢沉重,形體消瘦,食欲不振,便溏或泄瀉等表現(xiàn)作為衡量患者是否是脾虛證的重要參考,并以癥狀的突出與否來判斷脾虛的輕重及亞型,故在中醫(yī)的實(shí)驗(yàn)研究中,宏觀指標(biāo)也是動(dòng)物模型評(píng)價(jià)的重要組成部分[6]。4種造模法都能成功復(fù)制脾虛癥狀,但是各個(gè)模型的癥狀輕重存在差異,利血平模型組癥狀重且覆蓋全面,但自然恢復(fù)快,模型穩(wěn)定性差;苦寒瀉下組癥狀表現(xiàn)方面次之,但模型穩(wěn)定性好;飲食不節(jié)模型組癥狀覆蓋同樣較為全面,癥狀穩(wěn)定但較為輕淺,可造模至20 d,勞倦過度模型組的脾虛癥狀輕淺且覆蓋不全面。

脾胃為氣血生化之源,脾的運(yùn)化作用于血液質(zhì)量息息相關(guān)[7],故脾虛證動(dòng)物模型會(huì)出現(xiàn)血液質(zhì)量改變。近年來對(duì)脾虛模型評(píng)價(jià)的血液指標(biāo)主要包括:WBC、淋巴細(xì)胞、紅細(xì)胞比容、RBC平均血紅蛋白量等。脾主運(yùn)化,脾虛證的主要表現(xiàn)之一為消化系統(tǒng)的功能低下,其中較為公認(rèn)的是D-木糖代謝水平,該指標(biāo)可以衡量模型的吸收功能[8]。此外,血清淀粉酶也與消化功能關(guān)系密切?!八募酒⑼皇苄啊保饨∵\(yùn)與否很大程度上決定了人體是否健康,脾與人體免疫功能密切相關(guān)[9],脾臟指數(shù)與胸腺指數(shù)的降低不僅直接表明脾家損傷模型小鼠的免疫功能降低,也間接說明了其淋巴細(xì)胞與巨噬細(xì)胞產(chǎn)生數(shù)目的減少。實(shí)驗(yàn)表明,各模型組小鼠血清D-木糖水平和血清淀粉酶活性均下降,說明造模成功,脾虛小鼠存在消化功能低下的表現(xiàn),以利血平與飲食失節(jié)組小鼠消化系統(tǒng)功能障礙突出。利血平組與苦寒瀉下組小鼠外周血的RBC、WBC、HGB顯著下降,說明利血平造模法和苦寒瀉下造模法對(duì)小鼠的血液質(zhì)量影響廣泛,而勞倦過度造模法對(duì)小鼠血液質(zhì)量的影響較小。利血平組和苦寒瀉下組小鼠脾臟指數(shù)和胸腺指數(shù)均下降非常顯著,說明利血平造模法和苦寒瀉下造模法對(duì)小鼠的細(xì)胞免疫和體液免疫功能均有顯著影響。飲食失節(jié)組小鼠脾臟指數(shù)上升,可能是脾家損傷小鼠表現(xiàn)出的病理性的脾腫大。勞倦過度組小鼠則只有胸腺指顯著下降,說明其細(xì)胞免疫功能降低。飲食失節(jié)造模法和勞倦過度造模法只對(duì)動(dòng)物的部分免疫功能有影響。

脾主運(yùn)化為生命活動(dòng)提供能量,中醫(yī)脾的狀態(tài)影響生命活動(dòng)狀態(tài)。而線粒體為細(xì)胞生命活動(dòng)提供能量,這與脾的功能在某種程度上是相似的。有學(xué)者[10]認(rèn)為脾主運(yùn)化就是營養(yǎng)物質(zhì)在線粒體內(nèi)進(jìn)行的一系列氧化代謝所代表的“內(nèi)運(yùn)化”過程。線粒體功能與mtDNA的數(shù)量密切相關(guān),mtDNA下降超過閾值則發(fā)生線粒體功能障礙,介導(dǎo)線粒體自噬或誘發(fā)細(xì)胞凋亡[11]。Pink1、Parkin是介導(dǎo)并啟動(dòng)線粒體自噬的關(guān)鍵蛋白[12]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,除利血平組外,其他3種模型小鼠的mtDNA相對(duì)拷貝數(shù)下降,說明模型小鼠存在線粒體功能異常,以飲食失節(jié)組小鼠線粒體損傷程度最重。在線粒體損傷的進(jìn)程中,mtDNA相對(duì)拷貝數(shù)會(huì)先升高再降低,利血平組小鼠的mtDNA相對(duì)拷貝數(shù)變化不顯著,可能是由于其線粒體損傷程度較輕,處于mtDNA相對(duì)拷貝數(shù)變化的中間階段。除勞倦過度組和利血平組外,其他兩種模型小鼠的Pink1 mRNA水平下降,表明脾虛損傷小鼠存在線粒體自噬功能的抑制,損傷的線粒體無法被及時(shí)清除,線粒體疾病和細(xì)胞凋亡發(fā)生的概率增加。與對(duì)照組相比,除利血平組外,其他3種模型小鼠的Parkin mRNA水平差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,推測(cè)脾虛損傷主要影響Pink1 mRNA水平,因?yàn)镻ink1位于Parkin的上游,推測(cè)隨著脾虛損傷加重,模型小鼠的Parkin mRNA水平也將受到影響。與對(duì)照組相比,利血平組Parkin mRNA水平上升,可能是因?yàn)槔浇M小鼠存在線粒體損傷,但是線粒體自噬功能未受到影響,Parkin mRNA過表達(dá)以清除損傷線粒體,維持細(xì)胞穩(wěn)態(tài)。

綜上,4種造模方法都可以在不同程度上造成脾虛損傷。脾虛的形成可能是飲食失節(jié)、過食寒涼、勞倦過度等多種復(fù)合因素導(dǎo)致的胃腸道消化吸收異常,進(jìn)而影響到人體循環(huán)系統(tǒng)、免疫系統(tǒng),甚至線粒體異常,但是這些聯(lián)系的具體機(jī)制尚未闡明,有待于進(jìn)一步的研究。

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