賈昌鋒,高海霞,祝 茜,張 雷,2
(1.山東大學(xué)海洋學(xué)院,山東威海 264209;2.威海長青海洋科技股份有限公司,山東榮成 264200)
熱休克蛋白(heat shock proteins,HSP)是一個高度保守的細(xì)胞蛋白超家族,存在于包括魚類在內(nèi)的所有生物中[1-2]。近年來,在應(yīng)激刺激和正常生理條件下,其轉(zhuǎn)錄調(diào)控、生態(tài)、進(jìn)化和先天免疫反應(yīng)等方面受到了廣泛關(guān)注[3-4]。傳統(tǒng)意義上,HSP可按分子量分為HSP110、HSP90、HSP70、HSP60、HSP47和sHSP[5]。其中,由于HSP70在呈遞抗原、自身免疫和腫瘤免疫中發(fā)揮著重要作用[6-7],成為研究最為廣泛的家族[8]。目前學(xué)術(shù)界普遍將HSP70家族分為:組成型的熱休克同源蛋白70(heat shock cognate protein 70,HSC70)和誘導(dǎo)型HSP70[9-12]。前者以組成方式表達(dá),主要在細(xì)胞分裂、增殖和發(fā)育等生理條件下發(fā)揮作用[13-14];后者則在環(huán)境和生物脅迫下表達(dá),如熱休克和微生物感染等[15-16]。但研究表明,兩者在魚類中發(fā)揮的作用幾乎相同。
盡管HSP70家族在硬骨魚類中的研究越來越廣泛,但也局限于少數(shù)魚類HSP70的識別,如虹鱒(Oncorhynchus mykiss)[17]、斑馬 魚(Danio rerio)[18]和美洲鰣(Alosa sapidissima)[19]等,以及從少部分魚類分離出來HSC70基因,如斑馬魚[20]、鱖(Siniperca chuatsi)[21]、大 菱 鲆(Scophthalmus maximus)[22]、草魚(Ctenopharyngodon idella)[9]和紋鱧(Channa striatus)[23]等。然而,在松江 鱸(Trachidermus fasciatus)中,還未見有關(guān)HSP70家族的研究報道。
松江鱸被發(fā)現(xiàn)于東北亞的東海岸[24],被收錄到國家重點保護(hù)野生動物名錄和《中國紅皮書》第二類嚴(yán)重瀕危物種[25],具有極高的生物、生態(tài)和經(jīng)濟(jì)價值[26]。然而,在過去的幾十年里,松江鱸的野生種群數(shù)量急劇下降[25],在我國許多水域甚至已絕跡[26]。因此,通過水產(chǎn)養(yǎng)殖等替代方法以恢復(fù)松江鱸的資源量已迫在眉睫。深入了解松江鱸在應(yīng)對病原體時的免疫應(yīng)答,有助于制定有效的疾病控制措施,促進(jìn)種群的長期可持續(xù)性發(fā)展。然而,目前對松江鱸的免疫研究尚較少[27]。本研究從松江鱸體內(nèi)克隆并鑒定一個HSC70基因(即TfHsc70),并檢測了TfHsc70 mRNA在松江鱸組織中的分布,以及脂多糖(LPS)刺激后TfHsc70的時間表達(dá)規(guī)律,以期為魚類免疫應(yīng)答中的HSC70蛋白功能研究奠定基礎(chǔ)。
實驗材料選用取自山東省威海市文登區(qū)埠口港的9~10月齡、體質(zhì)量(19±4)g的松江鱸。實驗前,將100尾松江鱸放在流通海水系統(tǒng)(1.2 m×0.45 m×0.5 m)中馴化一周左右,期間持續(xù)通氣并保持溫度為(13±1)℃(其他條件與自然海水相同)。在此過程中,有任何皮膚損傷或疾病跡象均不得進(jìn)入馴化環(huán)境。
將松江鱸分為試驗組和對照組,每組各50尾魚。試驗組腹腔注射來源于大腸桿菌的0.04 μg·g-1LPS(Sigma,St.Louis,MO,USA)(約50μL);對照組注射0.01 mol·L-1磷酸鹽溶液(PBS)50μL。完成注射后將魚放回流通海水系統(tǒng),并在注射2、6、12、24、48、72、96 h后各時間點隨機(jī)抽取6尾魚。
在保證無菌條件的前提下,分別采集松江鱸的血液、心臟、肝臟、皮膚、胃、腸、脾臟、腎臟、大腦、鰓等組織,并將這些組織立即冷凍在液氮中,-80℃冰箱凍存?zhèn)溆?,用于后續(xù)RNA的提取。
使用EZNATMMicroElute?Total RNA Kit II(QMEGA,USA)從松江鱸的各種組織中提取總RNA,采用OD260/280法檢測RNA提取質(zhì)量,并用1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測。第一鏈cDNA的合成采用SMART cDNA(BD Biosciences Clontech)方法,使用oligo-anchor R和Smart F引物,如表1所示。
根據(jù)松江鱸肝臟cDNA文庫隨機(jī)測序得到的表達(dá)序列標(biāo)簽(EST),設(shè)計一對基因特異性引物(TfHsc70F,TfHsc70R),其將用于后續(xù)的聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)。PCR反應(yīng)體積為25μL,包括PCR mix kit(Fermentas)12.5μL,引物各1μL(10μmol·L-1),Taq聚合酶0.25μL(TaKaRa),cDNA 1μL,Milli-Q水9.25μL。PCR反應(yīng)的最佳條件為:94℃預(yù)變性5 min;94℃50 s,50℃45 s,72℃30 s,運行30個循環(huán);72℃延伸10 min。PCR產(chǎn)物選用PCR純化試劑盒(BioFlux)純化,將純化產(chǎn)物與pMD18-T載體(TaKaRa)連接,并將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至大腸桿菌的感受態(tài)細(xì)胞。陽性克隆由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司選擇并測序。所得序列通過在線BLAST程序(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)比對,從而確認(rèn)為Hsc70序列。利用cDNA末端(RACE)快速擴(kuò)增得到TfHsc70的cDNA全長序列。5′-RACE使用5′引物與基因特異性引物TfHsc70R配對,3′-RACE使用3′anchor R與TfHsc70F引物配對(表1)。PCR程序為:94℃預(yù)變性5 min;94℃50 s,55℃45 s,72℃30 s,運行30個循環(huán);72℃延伸10 min。對獲得的PCR序列進(jìn)行克隆測序。
利用NCBI(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)和蛋白分析數(shù)據(jù)庫(http://www.expasy.org/)對TfHsc70的cDNA和氨基酸序列進(jìn)行分 析。使 用SMART service(http://smart.embl-heidelberg.de/)預(yù)測特定保守區(qū)域。用SignalP 3.0預(yù)測信號肽(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)。利用DNAStar 5.0軟件包中的EditSeq預(yù)測分子質(zhì)量和等電點。使用SWISS-MODEL(http://swissmodel.expasy.org/)預(yù)測三維結(jié)構(gòu)。利用Clustal W和DNAman軟件進(jìn)行序列比對,然后采用MEGA X實現(xiàn)的鄰接方法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹[28]。通過1 000次bootstrap抽樣來評估系統(tǒng)發(fā)育樹的可靠行。
采用實時熒光定量PCR(quantitative realtime PCR,qRT-PCR)技術(shù)分析松江鱸TfHsc70 mRNA的組織特異性表達(dá),同時測定使用LPS刺激后的時間表達(dá)譜系。
設(shè)計引物QTfHsc70F和QTfHsc70R(表1)擴(kuò)增TfHsc70片段。β-肌動蛋白為內(nèi)參,引物為Actin F和Actin R(表1)。qRT-PCR使用SYBR Premix Ex TaqTM(Takara,日本),使用ABI 7300實時檢測系統(tǒng)(Applied Biosystems,美國)進(jìn)行,總?cè)萘繛?0μL,包含10μL的2×SYBR Premix Ex TaqTM,2μL的1∶100稀釋的cDNA,每種引物各4μL(1μmol·L-1)。擴(kuò)增程序為94℃預(yù)變性3 min,94℃15 s,56℃20 s,運行40個循環(huán),然后進(jìn)行最后的裂解階段。利用解離曲線分析驗證PCR產(chǎn)物的特異性。所得數(shù)據(jù)歸一化至肌動蛋白,且所有樣本重復(fù)3次。通過2-ΔΔCT方法對所得實驗數(shù)據(jù)進(jìn)行量化處理,采用未配對、雙尾t檢驗來評價對照組和試驗組之間的顯著性差異。P<0.05為差異顯著,P<0.01為差異極顯著。
表1 TfHsc70基因擴(kuò)增和表達(dá)所用引物Tab.1 Primer of TfHsc70 used for cloning and expression
通過5′-RACE和3′-RACE技術(shù),得到全長2 138 bp的TfHsc70 cDNA(圖1)。TfHsc70的cDNA包括1個1 947 bp的開放閱讀框(ORF),1個78 bp的5′端未翻譯區(qū)(UTR)和1個95 bp的3′端帶有終止密碼子(TAA)的UTR。在poly A序列上游87 bp處發(fā)現(xiàn)一個典型的聚腺苷酸化信號序列(AATAAA)。該蛋白具有649個氨基酸,理論分子量為71.1 kDa,等電點為5.27。
序列比對顯示,TfHsc70含有3個保守標(biāo)記序列(GIDLGTTY、DLGGGTFD和VLVGGSTRIPKIQK)和1個ATP-GTP結(jié)合位點基序(AEAYLGKT),且在羧基區(qū),TfHsc70有兩個GGXP基序四肽,且在末端有保守的細(xì)胞質(zhì)特異性基序EEVD。此外,在該序列中還發(fā)現(xiàn)了偶聯(lián)核定位信號和經(jīng)典的多聚腺苷酸化信號(圖1)。
圖1 TfHsc70的mRNA和預(yù)測氨基酸序列Fig.1 The mRNA and predicted amino acid sequence of TfHsc70
通過SWISS-MODEL生成三維結(jié)構(gòu)模型可以發(fā)現(xiàn),TfHsc70蛋白包括兩個主要結(jié)構(gòu)域,包括在氨基末端區(qū)域發(fā)現(xiàn)的ATP酶結(jié)構(gòu)域和在羧基末端發(fā)現(xiàn)與肽結(jié)合的結(jié)構(gòu)域(圖2)。
圖2 TfHsc70的三級結(jié)構(gòu)Fig.2 Tertiary structure of TfHsc70
氨基酸序列比對結(jié)果顯示,松江鱸HSC70(TfHsc70)與 五條鰤(Seriola quinqueradiata)HSC70的一致性最高,達(dá)到97.09%[29]。而它與包括兩棲類、爬行類、鳥類和哺乳動物在內(nèi)的其他物種具有85.36%~93.98%的相似性?;隰~類、兩棲類、哺乳動物等25個物種氨基酸序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹顯示,硬骨魚與其他脊椎動物存在差異(圖3)。
圖3 Tf Hsc70系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.3 Phylogenetic tree of TfHsc70
為了檢測TfHsc70在松江鱸組織中的表達(dá),以β-肌動蛋白為對照,采用qRT-PCR分析。如圖4所示,TfHsc70轉(zhuǎn)錄在10個檢測組織中普遍表達(dá)。TfHsc70在大腦中的表達(dá)量最高,在血液、心臟、肝臟、胃、腸、脾臟、腎臟和鰓中表達(dá)量較低,而在皮膚中只檢測到微量。結(jié)果表明,松江鱸TfHsc70在各器官中均以組成型表達(dá),組織間存在一定的表達(dá)差異性。
圖4 松江鱸不同組織中TfHsc70 mRNA的表達(dá)Fig.4 TfHsc70 mRNA expression in different tissues of Trachidermus fasciatus
與對照組相比,肝臟、皮膚、血液、脾臟、鰓、大腦中的TfHsc70均在LPS刺激后出現(xiàn)不同程度的上調(diào)(P<0.05)(圖5)。其中肝臟TfHsc70表達(dá)量在LPS刺激2 h后顯著上調(diào)(P<0.05),但在6 h時急劇下降(P<0.05),48 h時下降到對照組的0.1倍(P<0.05),在96 h時又略有上升(圖5-A);皮膚TfHsc70在LPS刺激2 h后表達(dá)量明顯增加(P<0.05),盡管隨后TfHsc70的表達(dá)量有所下降,但96 h時,TfHsc70在皮膚中的表達(dá)量遠(yuǎn)高于對照組(圖5-B);血液TfHsc70在刺激2 h后表達(dá)量達(dá)到最大,達(dá)到原有的15倍(P<0.05),但在6 h時表達(dá)量有所下調(diào),并在6~24 h基本保持不變,48 h后TfHsc70表達(dá)量恢復(fù)到正常水平,72 h后出現(xiàn)第二個高表達(dá)(P<0.05);脾臟(圖5-D)和鰓(圖5-E)中TfHsc70的表達(dá)均呈現(xiàn)隨時間延長而逐漸上調(diào)的趨勢,并在感染后的96 h達(dá)到峰值,分別上調(diào)到對照組的2.0倍和1.8倍(P<0.05);大腦TfHsc70最初在2~6 h內(nèi)略有下調(diào),然后在12 h時迅速恢復(fù)至原有水平,并在刺激72 h后呈上升趨勢(圖5-F)。
圖5 LPS刺激后不同時間主要免疫組織TfHsc70 mRNA表達(dá)Fig.5 TfHsc70 mRNA expression in main immune tissues at different time after LPSstimulation
本研究成功克隆松江鱸HSC70基因的cDNA全長,并命名為TfHsc70。TfHsc70全長2 138 bp,其含有3個HSP70家族的保守標(biāo)記序列(GIDLGTTY、DLGGGTFD和VLVGGSTRIPKIQK)和 1個 ATP-GTP結(jié)合位點基序(AEAYLGKT)[30],前者表明該序列屬于HSP70家族,后者在HSP伴侶蛋白復(fù)合物的形成中起主要作用,可調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)底物的正確折疊[31]。而TfHsc70羧基區(qū)的兩個GGXP基序四肽,表明它是HSC70蛋白亞家族的成員。其中一些重復(fù)肽已被證明具有抗原性[32]。序列中的偶聯(lián)核定位信號可能參與了TfHsc70的選擇性轉(zhuǎn)位。而羧基末端的EEVD提示TfHsc70存在于細(xì)胞質(zhì)中,可能在肽結(jié)合活性中發(fā)揮重要作用[33-34]。此外,氨基酸序列比對結(jié)果顯示TfHsc70高度保守。
qRT-PCR結(jié)果顯示,TfHsc70廣泛分布在松江鱸的血液、心臟、肝臟等組織中,但表達(dá)量有所不同,特別是在大腦中的表達(dá)量明顯高于其他組織,類似結(jié)果在草魚[9]、斑馬魚[20]、真鯛(Pagrus major)和黑鯛(Acanthopagrus schlegelii)[35]上也有所體現(xiàn)。在草魚和鱖的主要免疫組織中,HSC70均有所表達(dá),但表達(dá)量不同[9,21]。前者在鰓、腎臟、頭腎及外周血淋巴細(xì)胞中高水平表達(dá),后者ScHSC70-1和ScHSC70-2分別在卵巢和心臟中高水平表達(dá)。而當(dāng)斑馬魚胚胎發(fā)育到原腸期后期時,HSC70表達(dá)在中樞神經(jīng)系統(tǒng)和一些體節(jié)中出現(xiàn)組織特異性[20]。此外,研究表明,在硬骨魚大腦中HSC70的高水平表達(dá)是很常見的[16,36-37]。究其原因是大腦作為機(jī)體最重要的器官,需要大量的分子伴侶(如HSC70蛋白)將蛋白質(zhì)的儲存和釋放維持一種動態(tài)平衡。而且由于血腦屏障的存在,HSC70蛋白可在大腦中的某一區(qū)域局部合成,這解釋了為什么在松江鱸大腦中發(fā)現(xiàn)了HSC70的高水平表達(dá)。然而,要進(jìn)一步了解HSC70組織特異性表達(dá)的機(jī)制,還需進(jìn)行更加詳細(xì)的研究。
LPS作為革蘭氏陰性細(xì)菌細(xì)胞壁的重要組成部分,可在哺乳動物和魚類中引起炎癥反應(yīng)[38]。而HSC70蛋白為組成型表達(dá)[12],其在受到外來刺激時會被誘導(dǎo)表達(dá),且在LPS刺激后HSC70的增加呈現(xiàn)時間依賴性[9],本研究也證明了這點。肝臟、皮膚和血液在LPS刺激2 h后,TfHsc70表達(dá)量均會迅速達(dá)到峰值,這是由于肝臟、皮膚和血液是機(jī)體參與免疫反應(yīng)的組織或器官,起到產(chǎn)生或承載相關(guān)免疫基因的作用[39-41]。但在草魚的研究中發(fā)現(xiàn),LPS刺激外周血淋巴細(xì)胞后HSC70 mRNA未出現(xiàn)上述變化[9],這表明HSC70 mRNA在LPS刺激后血液中的表達(dá)具有物種特異性。所以還需進(jìn)一步研究來了解硬骨魚的血液為什么會出現(xiàn)不同的調(diào)節(jié)模式。與大菱鲆和鱖相似,脾臟和鰓的TfHsc70表達(dá)量出現(xiàn)了時間上的滯后[21-22]。這說明生物體內(nèi)不同組織根據(jù)不同的調(diào)控模式,參與調(diào)節(jié)宿主先天對微生物的防御。由于血腦屏障可以維持大腦的相對平衡[42],所以在大腦中TfHsc70的表達(dá)量呈現(xiàn)先下降再上升的趨勢。這表明TfHsc70參與了宿主對微生物的防御機(jī)制。綜上所述,LPS刺激后TfHsc70表達(dá)具有時間依賴性和物種特異性,也表明TfHsc70在松江鱸對抗微生物感染的先天免疫應(yīng)答中發(fā)揮重要作用。
本文利用EST和RACE技術(shù)從松江鱸中克隆并鑒定TfHsc70。通過分析其氨基酸序列、構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹以及TfHsc70 mRNA的表達(dá)情況,最終得到TfHsc70蛋白屬于熱休克蛋白HSC70亞家族的結(jié)論。此外,在LPS刺激后發(fā)現(xiàn),TfHsc70 mRNA在松江鱸的主要免疫組織中顯著上調(diào),這表明松江鱸HSC70(即TfHsc70)作為一種功能蛋白,是參與先天免疫應(yīng)答的重要免疫相關(guān)分子。但其在松江鱸中的潛在生物學(xué)功能和防御機(jī)制需要進(jìn)一步研究,從而為HSC70在魚類免疫應(yīng)答中的功能作用奠定基礎(chǔ)。